5.1. Kết luận
Thành phần chính trong dịch tương của tinh trùng cá mú cọp bao gồm các ion: Na+ (176,72 mmol/L), K+ (7,08 mmol/L), Cl- (122,45 mmol/L), Mg2+ (15,07 mmol/L), Ca2+ (2,93 mmol/L); trong đĩ các ion Na+ và K+; Mg2+ và Cl- thể hiện sự tương quan.
Hoạt lực của tinh trùng cá mú cọp trung bình là 93,1% số tinh trùng vận đợng với vận tốc 140,1 µm/s trong thời gian 557,0 giây khi pha lỗng tinh trùng với nước biển nhân tạo ở tỉ lệ 1:100.
Tinh trùng cá mú cọp khơng vận đợng trong nước cất. Chúng vận đợng tốt sau khi pha lỗng với tỷ lệ 1:100 trong mơi trường nước biển nhân tạo lần lượt cĩ chứa 0,6M Na+ hoặc 0,4M K+ hoặc 0,4M Ca2+ hoặc 0,2M Mg2+.
5.2. Đề xuất
Cần nghiên cứu về sự thay đổi thành phần hĩa học của tinh trùng cá mú cọp ở các thời điểm khác nhau trong mùa sinh sản để đánh giá được chất lượng tinh trùng ở từng thời điểm.
Cần nghiên cứu ảnh hưởng của thời gian bảo quản lên chất lượng tinh trùng trong điều kiện nhân tạo thơng qua các chỉ số như tỷ lệ thụ tinh, tỷ lệ nở của trứng và sức sống của ấu trùng.
LỜI CẢM ƠN
Đây là mợt phần kết quả trong dự án nghiên cứu của quỹ khoa học trẻ Thụy Điển (IFS): “Nghiên cứu mợt số đặc tính lý hĩa và bảo quản tinh trùng cá mú cọp Epinephelus fuscoguttatus (Forsskal, 1775) tại Việt Nam”
với mã số A/5165-1 do TS. Lê Minh Hồng làm chủ nhiệm dự án.
30 TẠP CHÍ NGHỀ CÁ SƠNG CỬU LONG - 3 - THÁNG 6/2014TÀI LIỆU THAM KHẢO TÀI LIỆU THAM KHẢO
Tài liệu tiếng Việt
Đồn Khắc Bợ, 2008. Kỹ thuật nuơi cá mú. Nhà xuất bản Đà Nẵng, 71 trang.
Lê Anh Tuấn, 2004. Tình hình nuơi cá mú ở Việt Nam: hiện trạng và các trở ngại về mặt kỹ thuật. Tạp chí Khoa học – Cơng nghệ Thủy sản, Trường ĐH Thủy sản, số đặc biệt, 174 - 179.
Tài liệu tiếng Anh
Aas, G.H., Refstie, T., and Gjerde, B., 1991. Evaluation of milt quality of Atlantic salmon. Aquaculture 95, 125-132.
Abascal, F.J., Cosson, J., and Fauvel, C., 2007. Characterization of sperm motility in sea bass: the effect of heavy metals and physicochemical variables on sperm motility. Journal Fish Biology 70, 509-522.
Alavi, S.M.H., Cosson, J., Karami, M., Abdolhay, H., and Amiri, B.M., 2004. Chemical composition and osmolality of seminal fluid of Acipenser persicus; their physiological relationship with
sperm motility. Aquaculture Research 35, 1238- 1243.
Alavi, S.M.H., and Cosson, J., 2005a. Sperm motility in fishes: (I) effects of temperature and pH. Cell Biology International 29, 101-110.
Alavi, S.M.H., and Cosson, J., 2005b. Spermatozoa motility in the Persian sturgeon, Acipenser persicus: effects of pH, dilution rate, ions and
osmolality. Aquaculture Research 36, 841-850. Alavi, S.M.H., and Cosson, J., 2006. Sperm motility
in fishes: (II) Effects of ions and osmolality. Cell Biology International 30, 1-14.
Alavi, S.M.H., Rodina, M., Policar, T., Kozak, P., Psenicka, M. and Linhart, O., 2007. Semen of
Perca fluviatilis L.: Sperm volume and density,
seminal plasma indices and effects of dilution ratio, ions and osmolality on sperm motility. Theriogenology 68, 276-283.
Bobe, J., and Labbé, C., 2010. Egg and sperm quality in fish. General and Comparative Endocrinology 165, 535-548.
Chang, Y.J., Choi, Y.H., Lim, H.K. and Kho, K.H., 1999. Milt property and sperm motility of grey mullet Mugil cephalus. J Kor Fish Soc. 32, 238- 241.
Charles, D. and Peter, T., 1998. Role of Ions and Ion Channels in the Regulation of Atlantic Croaker Sperm Motility. The Journal of Experimental Zoology 281, 139–148.
Ciereszko, A., and Dabrowski, K., 1993. Estimation of sperm concentration of rainbow trout, whitefish and yellow perch using a spectrophotometric technique. Aquaculture 109, 367-373.
Cosson, J., 2004. The ionic and osmotic factors controlling motility of fish spermatozoa. Aquaculture International 12, 69-85.
Gwo, J.C., 1993. Cryopreservation of black grouper
Epinephelus malabaricus spermatozoa. Theriogenology 39, 1331-1342.
Hatef, A., Niksirat, H., Amiri, B.M., Alavi, S.M.H. and Karami, M., 2007. Sperm desity, seminal plasma composition and their physiological relationship in the endangered Caspian brown trout Salmo trutta caspius. Aquaculture Research 38, 1175-
1181.
He, S.Y. and Curry Woods, L., 2003. The Effects of Osmolality, Cryoprotectant and Equilibration Time on Striped Bass Morone saxatilis Sperm
Motility. Journal of The World Aquaculture Society 34(3), 255-265.
Lahnsteiner, F., Berger, B., Weismann, T. and Patzner, R.A., 1996. Physiological and biochemical determination of rainbow trout Oncorhynchus mykiss semen quality for cryopreservation. J Appl
Aquacult 6, 47-73.
Lahnsteiner, F., Berger, B., Weismann, T. and Patzner, R.A., 1997a. Sperm motility and seminal fluid composition in the burbot Lota lota. J Appl
Ichthyol 13, 113-119.
Lahnsteiner, F., Berger, B., Weismann, T. and Patzner, R.A., 1997b. Sperm structure and motility of the freshwater teleost Cottus gobio. Journal of Fish
31
TẠP CHÍ NGHỀ CÁ SƠNG CỬU LONG - 3 - THÁNG 6/2014
Le, M.H., Lim, H.K., Min, B.H., Kim, S.Y. and Chang, Y.J., 2007. Milt properties and spermatozoa structure of filefish Thamnaconus modestus, Dev
Reprod. 11, 227-233.
Le, M.H., 2010. Reproductive cycle and semen preservation of yellow croaker Larimichthys
polyactis. Ph.D thesis, Pukyong National
University, Korea, p. 168.
Le, M.H., Lim, H.K., Min, B.H., Lee, J.U. and Chang, Y.J., 2011a. Semen properties and spermatozoan structure of yellow croaker Larimichthys
polyactis. Israeli Journal of Aquaculture 63, p. 8.
Le, M.H., Lim, H.K., Min, B.H., Park, M.S., Son, M.H., Lee, J.U. and Chang, Y.J., 2011b. Effects of varying dilutions, pH, temperature and cations on sperm motility in fish Larimichthys polyactis. Journal of Environmental Biology 32, 271-276. Linhart, O., Cosson, J., Mims, S.D., Rodina, M., Gela,