Nghiên cứu bảo quản thanh long bằng chế phẩm sinh học nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ

ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƢỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - CHU THỊ THỦY NGHIÊN CỨU BẢO QUẢN THANH LONG BẰNG CHẾ PHẨM SINH HỌC NANO CHITOSAN KẾT HỢP VỚI TINH DẦU NGHỆ LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC Hà Nội – Năm 2013 ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƢỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - CHU THỊ THỦY NGHIÊN CỨU BẢO QUẢN THANH LONG BẰNG CHẾ PHẨM SINH HỌC NANO CHITOSAN KẾT HỢP VỚI TINH DẦU NGHỆ Chuyên ngành: Vi sinh vật học Mã số: 60 42 40 LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC Ngƣời hƣớng dẫn khoa học: PGS.TS PHẠM VIỆT CƢỜNG Hà Nội – Năm 2013 MỤC LỤC DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU, CHỮ VIẾT TẮT DANH MỤC CÁC BẢNG VÀ SƠ ĐỒ DANH MỤC CÁC HÌNH VẼ MỞ ĐẦU Chƣơng – TỔNG QUAN 1.1 Nano chitosan 1.1.1 Chitosan 1.1.2 Phương pháp điề u chế nano chitosan từ chitosan 1.1.3 Hoạt tính đối kháng vi sinh vật chitosan 12 1.1.4 Ứng dụng nano chitosan 13 1.2 Tinh dầu nghệ 15 1.2.1 Giới thiệu chung nghệ 15 1.2.2 Thành phần hóa học 15 1.2.3 Hoạt tính sinh học tinh dầu nghệ 18 1.3 Thanh Long 23 1.3.1 Thanh long giá trị kinh tế 23 1.3.2 Vi sinh vật gây hỏng 26 1.3.3 Biện pháp bảo quản rau hoa tươi sau thu hoạch 28 Chƣơng 2: VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 32 2.1 Nguyên vật liệu 32 2.1.1 Đối tượng nghiên cứu 32 1.2 Hóa chất sử dụng 32 2.1.3 Thiết bị, dụng cụ sử dụng nghiên cứu 33 2.2 Phƣơng pháp nghiên cứu 34 2.2.1 Phương pháp đo độ đục định lượng tế bào nấm men 34 2.2.2 Phương pháp đếm khuẩn lạc nấm men 35 2.2.3 Phương pháp tìm nồng độ diệt tối thiểu (MBC) hỗn hợp nano chitosan tinh dầu nghệ cho nấm men 36 2.2.4 Phương pháp kiểm tra khả đối kháng nấm mốc chế phẩm tinh dầu nghệ nano chitosan 37 2.2.5 Phương pháp thử nghiệm hoạt tính đối kháng vi sinh vật tinh dầu nghệ nano chitosan long 38 2.2.6 Bảo quản long điều kiện phịng thí nghiệm NCS-TDN 38 Chƣơng 3: KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 40 3.1 Đánh giá khả đối kháng nấm men chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ in vitro 40 3.2 Đánh giá khả đối kháng nấm mốc chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ in vitro 43 3.3 Đánh giá khả đối kháng nấm nano chitosan-tinh dầu nghệ in vivo long 46 3.4 Đánh giá khả bảo quản long chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ 48 3.4.1 Bảo quản long nhiệt độ phòng 48 3.4.2 Bảo quản long nhiệt độ lạnh (10 ± 2oC) 50 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 55 TÀI LIỆU THAM KHẢO 56 DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU, CHỮ VIẾT TẮT ĐC: Đối chứng Đ-d: đƣờng kính kháng khuẩn LDL: Low – density Lipoprotein MBC: Minimum bactericidal concentration MTL2: Cladosporium clasdosporioides de Vries MTL4: Cladosporium tenuisimum Cooke NCS – TDN: Nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ OD: Optical Density TL1: Rhodoturola sp DANH MỤC CÁC BẢNG VÀ SƠ ĐỒ Bảng 1.1: Giá trị dinh dƣỡng 100g long Bảng 2.1: Độ chuẩn Mc Farland bƣớc sóng 550nm Bảng 2.2: Sơ đồ thí nghiệm xác định tính đối kháng nấm men NCS-TDN Bảng 3.1: Kết đo OD bƣớc sóng 550nm mẫu TL1 Bảng 3.2: Khả ức chế sinh trƣởng nấm men NCS-TDN Bảng 3.3: Hoạt tính đối kháng nấm mốc NCS-TDN Bảng 3.4: Khả ức chế nấm NCS-TDN long Bảng 3.5: Kết long đƣợc bảo quản nhiệt độ phòng Bảng 3.6: Kết long bảo quản lạnh 10±20C Bảng 3.7: Kết phân tích hàm lƣợng dinh dƣỡng long sau bảo quản lạnh 30 ngày Sơ đồ 2.1: Nghiên cứu khả bảo quản long sau thu hoạch chế phẩm NCS-TDN DANH MỤC CÁC HÌNH VẼ Hình 1.1: Cấu trúc hóa học chitosan đƣợc điều chế từ chitin Hình 1.2: Hình thái nghệ Hình 1.3: Cấu trúc hợp chất curcumin tinh dầu nghệ Hình 1.4: Cấu trúc số hợp chất tinh dầu nghệ Hình 1.5: Vị trí chế tế bào vi khuẩn đƣợc cho điểm hoạt tính tinh dầu Hình 1.6: Các giống long Hình 1.7: Cladosporium cladospotioides Hình 1.8: Cladosporium tenuisimum cooke Hình 1.9: Rhodoturola sp Hình 2.1: Pha lỗng mẫu theo dãy thập phân Hình 2.2: Cấy trải mẫu vào môi trƣờng Hansen cứng đĩa peptri Hình 3.1: Đánh giá hoạt tính đối kháng nấm men TL1 NCS-TDN Hình 3.2: Hoạt tính đối kháng NCS-TDN MTL2 Hình 3.3: Thử hoạt tính kháng NCS-TDN với MTL4 Hình 3.4: Thanh long bị hỏng nhiễm nấm Hình 3.5: Thanh long đƣợc bảo quản nhiệt độ phịng Hình 3.6: Thanh long bảo quản sau ngày nhiệt độ phịng Hình 3.7: Thanh long đƣợc bảo quản sau 15 ngày nhiệt độ phịng Hình 3.8: Thanh long đƣợc bảo quản lạnh 10±2oC Hình 3.9: Thanh long đƣợc bảo lạnh sau 15 ngày Hình 3.10: Thanh long đƣợc bảo lạnh sau 30 ngày MỞ ĐẦU Tinh dầu nghệ đƣợc biết đến nhƣ chất có khả chống oxy hóa có tính đối kháng vi sinh vật tốt, ức chế vi sinh vật có khả gây hỏng Trong chitosan loại polymer carbohydrate tự nhiên đƣợc tạo cách deacetyl hóa chitin, tìm thấy nhiều lồi động vật giáp xác, côn trùng vài loại nấm Với nhiều tính nhƣ tính tƣơng thích sinh học, phân hủy sinh học, bám dính màng khơng độc hại nên trở thành nguyên liệu cho nhiều ứng dụng dƣợc sinh học thực phẩm chức Vì tính chất ƣu việt mà năm gần đây, chitosan đƣợc nghiên cứu sử dụng để tạo hạt nano chitosan Cùng với tinh dầu nghệ, nano chitosan chất có khả kháng nấm vi khuẩn mạnh Quả tƣơi rau dễ bị hỏng mẫn cảm bệnh sau thu hoạch, hạn chế thời gian bảo quản đƣa chúng thị trƣờng Ngoài ra, hƣ hỏng sau thu hoạch gây thất thu kinh tế đáng kể toàn giới Nhƣ biết, loại thuốc diệt nấm tổng hợp đƣợc sử dụng từ lâu nhƣ phƣơng thức để kiểm sốt bệnh sau thu hoạch Nhƣng ngƣời ta lo ngại ảnh hƣởng chất đến sức khỏe ngƣời tiêu dùng nhƣ xuất nguồn bệnh kháng thuốc Vì cần có biện pháp thay để kiểm sốt nguồn bệnh sau thu hoạch có hiệu quả, dƣ lƣợng thấp, độc khơng độc thể khơng đích Trong sản phẩm rau hoa Việt Nam, Thanh Long chiếm vị trí quan trọng xuất khẩu, mang lại hiệu kinh tế cao Vì việc sử dụng chất hoạt tính sinh học tự nhiên để bảo quản Thanh Long khơng có ý nghĩa kinh tế, mà mở phƣơng pháp ngành bảo quản sau thu hoạch nƣớc ta Với đề tài nghiên cứu “ Nghiên cứu bảo quản Thanh long chế phẩm sinh học nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ ” đóng góp thêm phƣơng pháp bảo quản rau hoa an toàn hiệu Mục tiêu đề tài:  Thử nghiệm in vitro chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ với vi sinh vật gây hỏng Thanh Long để tìm nồng độ ức chế vi sinh vật tối thiểu MBC  Thử nghiệm chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ để kéo dài thời gian bảo quản long, đảm bảo long cịn tƣơi, khơng bị vi sinh vật làm hỏng Nội dung nghiên cứu:  Xác định hoạt tính đối kháng nấm chế phẩm nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ  Nghiên cứu thăm dò ứng dụng nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ bảo quản long Chƣơng – TỔNG QUAN 1.1 Nano chitosan 1.1.1 Chitosan Chitosan, đƣợc phát Rouget năm 1859 [55], loại polymer polysaccharide sinh học quan trọng Về mặt hóa học, phân tử có trọng lƣợng phân tử cao, polycationic gồm hai monosaccharide, N-acetyl-D-glucosamine Dglucosamine, liên kết với cầu nối β-(1 → 4) glycosidic (Hình 1.1) Hàm lƣợng tƣơng đối hai monosaccharide chitosan khác nhau, mẫu mức độ khác phụ thuộc vào mức độ deacetyl hóa (75-95%), khối lƣợng phân tử (502.000 kDa), độ nhớt, giá trị pKa, v.v [27] Do đó, chitosan khơng thể đƣợc định nghĩa hợp chất nhất, đơn họ copolymer với phân số khác đơn vị acetyl Hình 1.1: Cấu trúc hóa học chitosan đƣợc điều chế từ chitin Chitosan liên kết (1→4) 2- amino-2-deoxy-β-D-glucan, đƣợc điều chế từ chitin qua trình thủy phân kiềm nhóm N-acetyl b) a) Hình 3.7: Thanh long bảo quản nhiệt độ phòng sau 15 ngày; a) long đƣợc phun nano chitosan tinh dầu nghệ 0,2%; b)Thanh long đối chứng Kết thí nghiệm cho thấy mẫu long đƣợc phun chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ 0,2% giữ đƣợc vẻ tƣơi lâu hỏng so với mẫu đối chứng 3.4.2 Bảo quản long nhiệt độ lạnh (10 ± 2oC) Mẫu long đƣợc đem rửa nƣớc sạch, để nƣớc tự nhiên Các mẫu đƣợc sử dụng làm đối chứng mẫu đƣợc phun chế phẩm nano chitosan 0,2% tinh dầu nghệ 0,2% đƣợc bảo quản ngăn lạnh có nhiệt độ 10 ± 2oC Hình 3.8: Bảo quản long nhiệt độ lạnh 10 ± 2oC 50 Bảng 3.6: Kết long bảo quản nhiệt độ lạnh 10 ± 2oC Lô TN ĐC 10 ngày 100% tƣơi đỏ 20 ngày 30 ngày 50% tai héo, ngả vàng 100% tai vàng, Còn lại tai ngả vàng héo.Còn lại vỏ sạm Vỏ màu thâm nám NCS-TDN 100% tƣơi đỏ màu, khơng cịn độ bóng 100% tai ngả vàng Vỏ 100% tai ngả vàng Vỏ màu đỏ sẫm đỏ sẫm, căng Khơng có tƣợng hƣ hỏng Ghi chú: ĐC: đối chứng TN: thí nghiệm a) b) Hình 3.9: Thanh long bảo quản lạnh sau 15 ngày a) Mẫu đối chứng b) Mẫu phun chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ 0,2% 51 a) b) Hình 3.10: Thanh long bảo quản lạnh sau 30 ngày a) Mẫu đối chứng b) Mẫu phun chế phẩm nanochitosan tinh dầu nghệ 0,2% Nhƣ qua thí nghiệm bảo quản nhiệt độ thấp lần cho kết mẫu đƣợc phun chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ 0,2% bảo quản đƣợc lâu hỏng mẫu đối chứng Vì mà nồng độ nano chitosan tinh dầu nghệ 0,2% phù hợp cho bảo long Kết thử hàm lƣợng dinh dƣỡng long bảo quản nhiệt độ thấp sau 30 ngày: Quả long bảo quản lạnh sau 30 ngày đƣợc gửi tới Trung tâm phân tích giám định thực phẩm Quốc gia – Viện cơng nghiệp thực phẩm để phân tích hàm lƣợng dinh dƣỡng 52 Bảng 3.7: Kết phân tích hàm lượng dinh dưỡng long sau bảo quản lạnh 30 ngày STT Tên tiêu Đơn vị tính Kết mẫu Kết mẫu ĐC NC Hàm lƣợng vitamin C mg/100g 13,2 12,56 Hàm lƣợng đƣờng khử % 5,31 6,3 Vật chất khô % 14,2 13,87 Ghi chú: ĐC: đối chứng NC: nghiên cứu Quả long đƣợc bảo quản chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ 0,2% có hàm lƣợng vitamin C thấp mẫu đối chứng hàm lƣợng đƣờng khử cao mẫu đối chứng Chứng tỏ, long đƣợc bảo quản chế phẩm hạn chế đƣợc trình lên men mẫu đối chứng Hoa cộng (2006) [26] xử lý nhiệt long Bình Thuận để bảo quản sau thu hoạch 5oC túi polypropylene Hình thức long điều kiện bị ảnh hƣởng, chất lƣợng chấp nhận đƣợc Theo số tác giả, long bảo quản tối đa đƣợc 14 ngày 10oC Marisa cs (2008) [39] khuyến cáo bảo quản long đƣợc chiếu tia X 10oC tối đa 14 ngày để đảm bảo giá trị sử dụng Thanh long phụ thuộc vào lồi chế độ chăm sóc, đƣợc thu hoạch thời điểm màu gần phát triển hoàn tồn, giữ đƣợc chất lƣợng thƣơng phẩm long tuần 14oC tuần 20oC [41] Kết nhận đƣợc cho thấy NCS-TDN có khả kéo dài thời gian bảo quản long Ở nhiệt độ phòng, sau 15 ngày long khơng bị hỏng, 53 hình thức không đƣợc tƣơi nhƣ ngày Ở nhiệt độ lạnh, bảo quản long đến 30 ngày NCS-TDN mà không làm ảnh hƣởng tới chất lƣợng 54 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ  Kết luận Xác định đƣợc MBC nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ cho chủng nấm men Rhodoturola sp 0,08% Nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ có khả ức chế sinh trƣởng chủng nấm mốc C.cladosporioides C tenuisimum in vitro Hoạt tính ức chế phụ thuộc vào nồng độ nghiên cứu Thử nghiệm in vivo cho thấy nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ ức chế sinh trƣởng nấm long Thanh long bảo quản nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ 0,2% đƣợc đến 15 ngày nhiệt độ thƣờng 30 ngày nhiệt độ 10oC± đảm bảo chất lƣợng  Kiến nghị Tiếp tục nghiên cứu khả bảo quản long nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ qui mô lớn áp dụng đối tƣợng khác 55 TÀI LIỆU THAM KHẢO Tài liệu tiếng việt: Nguyễn Thị Kim Cúc cộng sự., (2010), Báo cáo đề tài Độc lập, mã số ĐTĐL.2008T/16 Nguyễn Thùy Châu cộng (2009), Báo cáo Đề tài KHCN cấp Bộ giai đoạn 2006-2009: Nghiên cứu sản xuất số chế phẩm sinh học, hóa học bảo quản rau, quả, hoa tươi Phạm Gia Điền cộng sự, (2010), Nghiên cứu chế tạo polime sinh học chitosan cấu trúc nanô ứng dụng làm chất mang thuốc Đặng Vũ Miên, Châu Ngọc Hải, Lê Thị Bảo Trúc (2008), “Nghiên cứu xác định hệ nấm mốc số trái Việt nam”, tạp chí Sinh học, 10 – 2008 Trần Thị Việt Hoa, Trần Thị Phƣơng Thảo, Vũ Thị Thanh Tâm (2007), “Thành phần hóa học tính kháng oxy hóa nghệ đen Curcuma zedoaria Berg trồng Việt Nam”, tạp chí phát triển khoa học công nghệ, 10(4):37-47 Tài liệu tiếng Anh: Allemann, ER Gurny and E Doelker Eur J Pharm Biopharm (1993), 39: 173-191 A Krishna Sailaja, P Amareshwar, P Chakravarty, (2010), “Chitosan nanoparticles as a drug delivery system”, Biological and Chemical Sciences ,Volume 1, Issue 3: 477-480 56 Apisariyakul A, N Vanittanakom, D Buddhasukh (1995), “Antifungal activity of turmeric oil extracted from Curcuma longa (Zingiberaceae)”.J.Ethnopharmacol 49: 163-169 Behura S, S Sahoo, V K Srivastava (2002), “Major constituents in leaf essential oils of Curcuma longa L and Curcuma aromatica Salisb.,” Curr Sci 83 (11): 1312-1313 10 Bernard GT, Esteban P, Christopher JS, Turmerones (1982), “ Isolation from Turmeric and their Structure Determination”, Chem Commun, 6, 363 11 Chen, Y H., Yu, J G., & Fangy, H J (1983), “Studies on Chinese curcuma III Comparison of the volatile oil and phenolic constituents from the rhizome and tuber of Curcuma longa”, Zhongyao Tongbao, 81, 27–29 12 Chen Fei, Zhilong Shi, K.G Neoh, E.T Kang (2009), “Antioxidant and Antibacterial Activities of Eugenol and Carvacrol-Grafted Chitosan Nanoparticles Biotechnol”, Bioeng.104: 30–39 13 Cooray, N F., Jansz, E R., Ranatunga, J., & Wimalasena, S (1988) “Effect of maturity on some chemical constituents of turmeric (Curcuma longa L.)”, Journal of the National Science Council of Sri Lanka, 16, 39–51 14 Cousins M., J Adelberg, F Chen and J (2007) Rieck Antioxidant capacity of fresh and dried rhizomes from four clones of turmeric (Curcuma longa L.) grown invitro Industrial Crops and Products, 25(2):129-135 15 Domsch K H., Gams W., Anderson T (1980), “Compendium of soil fungi”, Acad Press London-New York-Toronto-Sydney-San Francisco 57 16 Dhingra OD, Jham GN, Barcelos RC, Mendonỗa FA, Ghiviriga I (2007), Isolation and Identification of the Principal Fungitoxic Component of Turmeric Essential Oil J Essential Oil Res 19(4): 387-391 17 Erbacher P, S Zou, AM Steffan, and JS Remy.(1998), Pharm Res; 15: 13321339 18 Ferreira L.A., O.B Henriques, A.A Andreoni, G.R Vital, M.M Campos, G.C Habermehl and V.L de Moraes (1992) “Antivenom and biological effects of arturmerone isolated from Curcuma longa (Zingiberaceae)” Toxicon 30 (10): 1211-8 19 Fang, S W., C F Li, and D Y C Shih (1994), “ Antifungal activity of chitosan and its preservative effect on low – sugar candied kumquat.j.” Food Protect.57:136-140 20 G.K Jayaprakasha, L Jagan Mohan Rao and K.K Sakariah, (2005), “Chemistry and biological activities of C Longa”, Food Science & Technology 16 533–548 21 Gopalan, A., & Ratnambal, M J (1987) “Gas chromatographic evaluation of turmeric essential oil”, Indian Perfumer, 31,245–248 22 Grantbio, Densitometer, DEN-1, (2012), “operating instructions”, Version 1.02, pp: 23 Griffin Shane G., S Grant Wyllie, Julie L Markham and David N (1999), Leach The role of structure and molecular properties of terpenoids in determining their antimicrobial activity Flavour Fragr J., 14, 322±332 58 24 Hazen KC.(1995), “New and emerging yeast pathogens” Clin Microbiol Rev; 8: 462-478 25 Hernández-Lauzardo AN, Miguel Gerardo Velázquez-del Valle and María Guadalupe Guerra-Sánchez (2011), Current status of action mode and effect of chitosan against phytopathogens fungi African J Microbiol Res 5(25): 4243-4247 26 T.T Hoa, C.J Clark, B.C Waddell and A.B (2006), “Wool Postharvest quality of Dragon fruit (Hylocereus undatus) following disinfesting hot air treatments” Postharvest Biology and Technology 41 (1): 62-69, 2006 27 Illum, L.1998 “Chitosan and its use as a pharmaceutical excipient” Pharm Res 15: 1326-1331 28 Ing L Y, NoraziahMohamad Zin, Atif Sarwar, and Haliza Katas (2012), “Antifungal Activity of Chitosan Nanoparticles and Correlation with Their Physical” Properties International J Biomaterials, Article ID 632698, pages doi :10 1155/2012/632698 29 Jain S, Satyaendra Shrivastava, Satish Nayak, S Sumbhate (2007), “Plant Review Recent trends in Curcuma longa Linn” Pharmacognosy Reviews (1): 119128 30 Jayaprakasha GK, Bhabani S Jena, Pradeep S Negi and Kunnumpurath K (2002), Sakariah Evaluation of Antioxidant Activities and Antimutagenicity of Turmeric Oil: A Byproduct from Curcumin Production Z Naturforsch 57c 828-835 31 Kaur P, Rajesh Thakur and Ashok Choudhary (2012), “An In Vitro Study of The Antifungal Activity of Silver/Chitosan Nanoformulations Against Important Seed Borne Pathogens” Intern J Sci Technol Res, 1(6): 83-86 59 32 Kelkar, N C., & Sanjeev Rao, B (1933) “Studies in Indian essential oils: From Curcuma longa” Journal of the Indian Institute of Science, 17A, 7–10 33 Liu, X F., Y L Guan, D Z Yang, Z Li, and K De Yao.( 2001), “Antibacterial action of chitosan and carboxymethylated chitosan” J Appl Polym Sci 79:1324‐13 34 Lee H.S (2006), “Antiplatelet property of Curcuma longa L rhizome- derived ar-turmerone” Bioresource Tech 97(12): 1372-6 35 Lonso MJ, Sanchez A (2003), J Pharm Pharmacol;55:1451-1463 36 McCarron, M., Mills, A J., Whittaker, D., Sunny, T P., & Verghese, J (1995), “ Comparison of the monoterpenes derived from green leaves and fresh rhizomes of Curcuma longa L from India” Flavour and Fragrance Journal, 10, 355– 357 37 Muzzarelli, R, R Tarsi, O Filippini, E, Giovanetti, G Biagini, and P.E Varolo (1990), Antimicrobial properties of N carboxybutyl chitosan Antimicro Agents Chenmother 34: 2019-2023 38 Malingre, T R (1975), “Curcuma xanthorrhiza roxb., temoe lawak, als plant met galdrijrende werking” Pharmaceutisch Weekblad, 110, 601–606 39 Marisa M Wall, Shakil A Khan Postharvest (2008), Quality of Dragon Fruit (Hylocereus spp.) after X-ray Irradiation Quarantine Treatment HortScience 43(7): 2115-2119 40 Mishra N and S.S Gupta.(1997), “Anti-Inflammatory and Anti- hyaluronidase activity of volatile oil of Curcuma longa” J Res Ayur Siddha 1-2 (18): 56-62 60 Nerd, A., F Gutman and Y Mizrahi (1999), “Ripening and postharvest 41 behaviour of fruits of two Hylocereus species (Cactaceae)” Postharv Biol Technol 17:39-45 Ohya Y., Shiratani M., Kobayashi H and Ouchi T (1994), “ Release 42 behavior of 5-fluorouracil from chitosan-gel nanospheres immobilizing 5- fluorouracil coated with polysaccharides and their cell specific cytotoxicity” Pure Appl Chem., 31, 629-642 43.Pochanavanich, P and W Suntornsuk (2002), “Fungal chitosan production and its characterization” Lett Appl Microbiol 35:17‐21 44 Phan Minh Giang, Van Ngoc Huong, Phan Tong Son (2000) “Antimicrobial activity of sesquiterpene constituents from some curcuma species of Vietnam” J Chem., 38(1):91-94 45 Rosenberg, M., D Gutnick, and E Rosenberg (1980), “ Adherence of bacteria to hydrocarbons: A simple method for measuring cell-surface hydrophobicity” FEMS Microbiol Lett.9: 29-33 46 Saju M.N.V and M.J Mathew (1998), “Activities of essential oil of turmeric (Curcuma longa L)” Current Sci 75 660-662 47 Singla, A K and M Chawla 2001 “Chitosan: Some pharmaceutical and bi ological aspects” ‐ an update J Pharm Pharmacol 53:1047‐1067 48 Sara Burt (2004), “Essential oil: their antibacterial properties and potential applications in foods” -a review Inter J food Microbiol., 94:223-253 49 Scartezzini P, and Speroni E (2000), “Review on some plants of Indian traditional medicine with antioxidant activity” J Ethnopharmacology 71: 23-43 61 50 Tiyaboonchai Waree (2003), “ Chitosan Nanoparticles : A Promising System for Drug Delivery” Naresuan University J; 11(3): 51-66 51 Tripathi P, NK Dubey, R Banerji and JPN Chansouria (2004), “ Evaluation of some essential oils as botanical fungitoxicants in management of post-haverst rotting of citrus fruits” World J Microbiol Biotechnol., 20:317-321 52 Tokura, S., K Ueno, S Miyazaki, and N Nishi (1997), “ Molecular weight dependent antimicrobial activity by chitosan” Macromol Symp 121-9 53 Y.A Batta, (2004), Cladosporium tenuissimum Cooke (Deuteromycotina: Hyphomycetes) as a causal organism of new disease on cucumber fruits 54 Zhu, L F., Li, Y H., Li, B L., Ju, B Y., & Zhang, W L (1995) “Aromatic plants and essential constituents” (Suppl 1): South China Institute of Botany, Chinese Academy of Sciences, HaiFeng Publ Co Distributed by Peace Book Co., Ltd Hong Kong Tài liệu tiếng Pháp: 55 Rouget M.C (1859), “ Des substances amylacéé dans les tisus des animaux, spécialement des articulés (chitine)”, Comp Rend 48: 792-795 Website: 56 http://www.rigonfruit.com/vn 57 http://vi.wikipedia.org/wiki/Thanh_long 58 http://elib.hcmuaf.edu.vn 59 http://www.rauhoaquavietnam.vn 62 PHỤ LỤC 63 64 ... pháp ngành bảo quản sau thu hoạch nƣớc ta Với đề tài nghiên cứu “ Nghiên cứu bảo quản Thanh long chế phẩm sinh học nano chitosan kết hợp với tinh dầu nghệ ” đóng góp thêm phƣơng pháp bảo quản rau...ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƢỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - CHU THỊ THỦY NGHIÊN CỨU BẢO QUẢN THANH LONG BẰNG CHẾ PHẨM SINH HỌC NANO CHITOSAN KẾT HỢP VỚI TINH DẦU NGHỆ Chuyên ngành: Vi sinh. .. đồ 2.1: Nghiên cứu khả bảo quản long sau thu hoạch chế phẩm NCS-TDN Quả long sau thu hoạch Quả phun chế phẩm nano chitosan tinh dầu nghệ Quả đối chứng Bảo quản Bảo quản lạnh 10 ± 2oC Bảo quản nhiệt