Phương pháp nuôi cấy (tiến hành tại khoa Vi sinh, Bệnh viện Phổi Trung ương)

Một phần của tài liệu Thực trạng lây nhiễm lao ở bệnh viện lao và bệnh phổi thái bình, một số giải pháp can thiệp (Trang 43 - 47)

- Làm phản ứng Mantoux, kiểm tra sẹo lao.

2.2.4.2. Phương pháp nuôi cấy (tiến hành tại khoa Vi sinh, Bệnh viện Phổi Trung ương)

Trung ương)

Dng c và hóa cht

- Dung dịch Natri hydroxit (NaOH) 4%

- Chất dinh dưỡng ODAC: Bovine abumin, Dextroza, Catalaza, acid oleic

- Hỗn hợp kháng sinh PANTA: Polymixin B, Amphotericin B, acid nalidixic, Trimethoprim, Azlocillin

- Dung dịch fuchsin phenic o,3%

- Dung dịch cồn acid 25% - Dung dịch XanhMethylen - Ống ly tâm 50ml - Eppendorf 1,5ml - Môi trường Chun b bnh phm

- Mẫu không khí (gelatin): cho mẫu vào một ống 50ml có nắp xoáy, thêm 03ml nước muối sinh lý, ngâm trong 15 phút, sau đó lắc cho đến khi tan hoàn toàn.

- Mẫu tăm bông: cho vào ống chứa mẫu 03ml nước muối sinh lý, ngâm 15 phút, lắc thật kỹ, sau đó dung pipette Pasteur hút hết dung dịch mẫu sang 1 ống 50ml vô khuẩn.

- Nước thải: cho 2,5ml nước muối sinh lý, 500µl nước thải sau xử lý vào 1 ống 50ml có nắp xoáy, ngâm 15 phút, lắc kỹ.

X lý bnh phm

- Thêm 1 thể tích NaOH 4% bằng với thể tích bệnh phẩm đựng trong ống nghiệm.

- Lắc trên máy lắc cho đến khi bệnh phẩm tan ra hoàn toàn. Để ống nghiệm đứng thẳng 15 phút ở 370C để khử tạp khuẩn.

- Thêm 40ml nước muối sinh lý, ly tâm 15 phút (3000 vòng/phút)

- Thêm 01ml nước muối sinh lý, lắc kỹ. Dung dịch này để cấy vào môi trường Loeweinstein – Jensen, môi trường MGIT và nhuộm Ziehl – Neelsen để tìm vi khuẩn lao.

Nuôi cy trên môi trường Loeweinstein – Jensen:

- Cấy vào môi trường:

+ Cấy vào môi trường Loeweinstein – Jensen mỗi ống 5 giọt cặn đã trung hòa, láng đều trên bề mặt của mỗi ống môi trường.

+ Đểống môi trường nằm nghiêng trên giá nằm.

+ Giữ ở nhiệt độ 35 – 370C (mở lỏng nắp 1 tuần để làm khô và cung cấp đủ không khí cho nuôi cấy vì vi khuẩn lao là vi khuẩn hiếu khí).

+ Khi bề mặt môi trường đã khô, đóng chặt nắp tiếp tục ủấm từ 4-8 tuần.

- Đọc kết quả: sau 3 ngày, 7 ngày, 4 tuần và 8 tuần. Đọc sau 3 ngày để bỏ đi những ống nuôi cấy bị nhiễm trùng, sau 7 ngày để phát hiện khuẩn lạc mọc nhanh, sau 4 tuần để phát hiện khuẩn lạc mọc chậm, sau 8 tuần không thấy có khuẩn lạc mọc trên môi trường thì mẫu âm tính.

- Ghi kết quả:

+ Âm : không có khuẩn lạc.

+ 1+ : 1 – 200 khuẩn lạc, ghi số khuẩn lạc (ví dụ +12).

+ 2+ : ½ môi trường khuẩn lạc mọc dày không đếm được, tương ứng 200 – 500 khuẩn lạc.

+ 3+ : 3/4 môi trường khuẩn lạc mọc dày không đếm được, xấp xỉ 500 – 2000 khuẩn lạc.

+ 4+ : khuẩn lạc mọc dầy đặc toàn bộống môi trường, xấp xỉ 2000 khuẩn lạc.

- Khi nuôi cấy có khuẩn lạc mọc, làm phản ứng sinh vật hóa học đểđịnh danh vi khuẩn mọc trên môi trường (Niacin)

Ảnh 2.2: Nuôi cấy vi khuẩn lao trên môi trường Loeweinstein - Jensen

Nuôi cy trên môi trường MGIT

+ Thêm 0,5ml ODAC (chất dinh dưỡng) và 0,1ml PANTA (hỗn hợp kháng sinh) vào ống môi trường MGIT.

+ Lấy 0,5ml bệnh phẩm đã xử lý cấy vào ống môi trường MGIT. + Đóng chặt nút, lắc trộn đều, giữở tủấm 370C.

Đọc và ghi kết quả:

+ Đọc kết quả hàng ngày bằng đèn cực tím có bước song 365 nm, bắt đầu từ ngày thứ 2 sau nuôi cấy.

+ Kết quả âm tính: ánh sáng huỳnh quang yếu hoặc không có (tiêp tục kiểm tra hàng ngày cho tới 8 tuần mới được kết luận âm tính).

+ Kết quả dương tính: ánh sáng có màu vàng da cam hoặc được phát hiện bởi độđục không đồng nhất hay những hạt nhỏ trong môi trường nuôi cấy.

+ Các mẫu dương tính được tiếp tục làm phản ứng vi sinh vật hóa học đểđịnh danh vi khuẩn (Niacin).

Ảnh 2.3: Nuôi cấy vi khuẩn lao trên môi trường MGIT

Một phần của tài liệu Thực trạng lây nhiễm lao ở bệnh viện lao và bệnh phổi thái bình, một số giải pháp can thiệp (Trang 43 - 47)

Tải bản đầy đủ (PDF)

(117 trang)