khảo sát khả năng đáp ứng miễn dịch của gà tàu vàng đối với vaccine bal – ibd của singapore phòng bệnh gumboro

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ KHOA NÔNG NGHIỆP & SINH HỌC ỨNG DỤNG NGUYỄN NGỌC TRANG KHẢO SÁT KHẢ NĂNG ĐÁP ỨNG MIỄN DỊCH CỦA GÀ TÀU VÀNG ĐỐI VỚI VACCINE BAL – IBD CỦA SINGAPORE PHÒNG BỆNH GUMBORO LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP NGÀNH THÚ Y Cần Thơ, 12/2013 TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ KHOA NÔNG NGHIỆP & SINH HỌC ỨNG DỤNG BỘ MÔN THÚ Y Luận văn tốt nghiệp Ngành: THÚ Y KHẢO SÁT KHẢ NĂNG ĐÁP ỨNG MIỄN DỊCH CỦA GÀ TÀU VÀNG ĐỐI VỚI VACCINE BAL – IBD CỦA SINGAPORE PHÒNG BỆNH GUMBORO Giáo viên hướng dẫn: Huỳnh Ngọc Trang Sinh viên thực hiện: Nguyễn Ngọc Trang MSSV: LT11672 Lớp: CN1167L1 Cần Thơ, 12/2013 TRƢỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ KHOA NÔNG NGHIỆP SINH HỌC & SINH HỌC ỨNG DỤNG BỘ MÔN THÚ Y Đề tài: “Khảo sát khả năng đáp ứng miễn dịch của gà Tàu vàng đối với vaccine Bal-IBD phòng bệnh Gumboro của Singapore”, do sinh viên Nguyễn Ngọc Trang thực hiện tại trại thực nghiệm Ba Hoàng, phường Thới An Đông, quận Bình Thuỷ, Thành Phố Cần Thơ và phòng thí nghiệm bệnh truyền nhiễm, Bộ môn Thú y Khoa Nông Nghiệp và Sinh Học Ứng Dụng, trường Đại Học Cần Thơ, từ tháng 7 đến tháng 11 năm 2013. Cần Thơ, ngày… tháng…năm 2013 Cần Thơ, ngày… tháng…năm 2013 Duyệt bộ môn Duyệt giáo viên hướng dẫn Huỳnh Ngọc Trang Cần Thơ, ngày… tháng…năm 2013 Duyệt Khoa Nông Nghiệp & Sinh Học Ứng Dụng i LỜI CẢM ƠN Xin kính dâng lòng biết ơn sâu sắc đến Ba Mẹ, người đã sinh ra và nuôi dưỡng tôi. Xin chân thành cảm ơn: Cô Huỳnh Ngọc Trang đã tận tình hướng dẫn và giúp đỡ tôi hoàn thành luận văn này. Thầy Trần Ngọc Bích cố vấn học tập đã dìu dắt chúng tôi trong suốt quá trình học tập. Quý Thầy, Cô Bộ môn Chăn nuôi và Bộ môn Thú y, Khoa Nông Nghiệp và Sinh Học Ứng Dụng, trường Đại Học Cần Thơ đã cung cấp những kiến thức quý báu trong suốt quá trình học tập. Tập thể các bạn lớp Thú y liên thông khoá 37 đã động viên và giúp đỡ tôi trong 2 năm học vừa qua. Xin chúc quý Thầy Cô, người thân và bạn bè tôi lời chúc sức khoẻ và thành công. Cuối cùng, tôi xin cám ơn đến Hội Đồng Ban Giám Khảo đã dành thời gian đọc, xem xét và đóng góp những ý kiến quý báo cho đề tài tốt nghiệp của tôi. Nguyễn Ngọc Trang ii MỤC LỤC Trang duyệt ......................................................................................................... i Lời cảm ơn ......................................................................................................... ii Mục lục ............................................................................................................. iii Danh mục chữ viết tắt ........................................................................................ v Danh sách hình.................................................................................................. vi Danh sách bảng ................................................................................................ vii Tóm lược ......................................................................................................... viii Chƣơng 1 ĐẶT VẤN ĐỀ ................................................................................. 1 Chƣơng 2 CƠ SỞ LÝ LUẬN .......................................................................... 2 2.1. Khái quát về bệnh Gumboro và tình hình nghiên cứu ................................ 2 2.1.1. Khái quát về bệnh Gumboro ............................................................... 2 2.1.2. Tình hình nghiên cứu bệnh Gumboro trên thế giới ............................. 2 2.1.3. Tình hình nghiên cứu bệnh Gumboro trong nước ............................... 3 2.2. Căn bệnh học .............................................................................................. 5 2.2.1. Đặc điểm hình thái, cấu trúc của virus Gumboro ................................ 5 2.2.2. Sức đề kháng của virus đối với tác nhân lý hóa .................................. 6 2.2.3. Truyền nhiễm học bệnh Gumboro....................................................... 6 2.3. Cơ chế sinh bệnh ......................................................................................... 7 2.4. Miễn dịch học ............................................................................................. 8 2.5. Triệu chứng và bệnh tích ............................................................................ 9 2.5.1. Triệu chứng ......................................................................................... 9 2.5.2. Bệnh tích ............................................................................................ 10 2.6. Chẩn đoán ................................................................................................. 12 2.6.1. Chẩn đoán lâm sàng .......................................................................... 12 2.6.2. Chẩn đoán huyết thanh học ............................................................... 12 2.6.3. Chẩn đoán phân biệt .......................................................................... 13 2.7. Phòng bệnh và điều trị .............................................................................. 14 2.7.1. Phòng bệnh ........................................................................................ 14 2.7.2. Điều trị ............................................................................................... 15 2.8. Vaccine ..................................................................................................... 15 2.8.1. Khái quát chung về vaccine ............................................................ 15 2.8.2. Vacccine Gumboro nhược độc đông khô (Bal – IBD B38 của Bestar) ...................................................................................................... 16 Chƣơng 3 PHƢƠNG TIỆN VÀ PHƢƠNG PHÁP THÍ NGHIỆM ........... 17 iii 3.1. Nội dung ................................................................................................... 17 3.2. Phương tiện thí nghiệm ............................................................................. 17 3.2.1. Thời gian và địa điểm ........................................................................ 17 3.2.2. Đối tượng thí nghiệm ........................................................................ 17 3.2.3. Vật liệu thí nghiệm ............................................................................ 17 3.3. Phương pháp tiến hành ............................................................................. 18 3.3.1. Phương pháp nuôi gà thí nghiệm....................................................... 18 3.3.2. Bố trí thí nghiệm................................................................................ 19 3.3.3. Phương pháp lấy mẫu ........................................................................ 20 3.3.4. Phương pháp xét nghiệm ................................................................... 20 3.4. Các chỉ tiêu theo dõi ................................................................................. 23 3.5. Phương pháp xử lý số liệu ........................................................................ 23 Chƣơng 4 KẾT QUẢ THẢO LUẬN ............................................................ 24 4.1. Tình trạng sức khỏe của đàn gà sau khi tiêm vaccine .............................. 24 4.2. Kết quả kiểm tra kháng thể thụ động mẹ truyền trên gà Tàu thí nghiệm . 24 4.3. Khả năng bảo hộ của vaccine Gumboro đối với giống gà Tàu vàng ........ 25 4.4. Tăng trưởng của gà Tàu vàng qua các giai đoạn ...................................... 27 4.4.1. Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà Tàu giai đoạn 0 – 4 tuần tuổi ...................................................................................................... 27 4.4.2. Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà Tàu giai đoạn 4 – 12 tuần tuổi ...................................................................................................... 28 Chƣơng 5 KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ .......................................................... 29 5.1. Kết luận ..................................................................................................... 29 5.2. Đề nghị ...................................................................................................... 29 TÀI LIỆU THAM KHẢO ............................................................................. 30 iv DANH SÁCH CHỮ VIẾT TẮT Viết tắt Nguyên chữ AGP Agar Gel Precipitation Ctv Cộng tác viên ELISA Enzyme Linked Immuno Sorbent Assay IBD Infectious Bursal Disease IBDV Infectious Bursal Disease Virus OD Optical Density TMB Teramethyl benzidine v DANH SÁCH HÌNH Hình Tựa hình Trang 2.1 Mô hình cấu trúc virus Gumboro 5 2.2 Gà bệnh suy nhược và lờ đờ 10 2.3 Cơ đùi xuất huyết thành từng vệt 11 2.4 Túi Fabricius sưng to, niêm mạc sung huyết và xuất huyết 11 2.5 Biến đổi túi Fabricius trong bệnh Gumboro 11 2.6 Vaccine nhược độc Gumboro 16 3.1 Sơ đồ bố trí huyết thanh xét nghiệm ELISA 21 vi DANH SÁCH BẢNG Bảng Tựa bảng Trang 3.1 Quy trình phòng bệnh chung 19 3.2 Sơ đồ bố trí thí nghiệm 20 4.1 Kết quả kiểm tra kháng thể thụ động mẹ truyền trên gà thí nghiệm 24 4.2 Tỷ lệ đáp ứng miễn dịch sau khi tiêm vaccine lần hai 14 ngày (lúc gà 35 ngày tuổi) 25 4.3 Tỷ lệ đáp ứng miễn dịch sau khi tiêm vaccine lần hai 28 ngày (lúc gà 49 ngày tuổi) 26 4.4 Tỷ lệ đáp ứng miễn dịch sau khi tiêm vaccine lần hai lúc gà 80 ngày tuổi 26 4.5 Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà Tàu giai đoạn 0-4 tuần tuổi 27 4.6 Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà Tàu giai đoạn 4-12 tuần tuổi 28 vii TÓM LƯỢC Đề tài “Khảo sát khả năng đáp ứng miễn dịch của gà Tàu vàng đối với vaccine Bal-IBD phòng bệnh Gumboro của Singapore” được thực hiện tại trại gà thực nghiệm Ba Hoàng, phường Thới An Đông, quận Bình Thuỷ, thành phố Cần Thơ từ tháng 7/2013 đến tháng 11/2013. Nhằm khảo sát độ dài miễn dịch của kháng thể thụ động và khả năng đáp ứng miễn dịch của gà Tàu vàng đối với vaccine Gumboro Bal-IBD của Singapore qua xét nghiệm ELISA. Qua thời gian nghiên cứu chúng tôi ghi nhận kết quả: Kháng thể thụ động mẹ truyền bảo hộ 100% gà con đến 10 ngày tuổi. Kiểm tra khả năng đáp ứng miễn dịch sau khi tiêm phòng vaccine lần 2 được 14 ngày (gà 35 ngày tuổi), 100% gà đều có đáp ứng miễn dịch với hiệu giá kháng thể 804±194 đủ bảo hộ gà chống bệnh Gumboro. Ở 49 ngày tuổi, tỷ lệ gà có miễn dịch với virus Gumboro vẫn là 100% và hiệu giá kháng thể trung bình là 5527±561. Hiệu giá vẫn đạt ở mức cao (7997±392) ở thời điểm 80 ngày tuổi và 100% gà được bảo hộ. Qua theo dõi khả năng tăng trưởng của gà được kết quả như sau: Trọng lượng của gà Tàu ở 4 tuần tuổi đạt 258-259,40 gram/con, tăng trọng bình quân 7,88-7,91 gram/con/ngày, hệ số chuyển hoá thức ăn từ 2,22-2,27 gram thức ăn/gram tăng trọng. Ở 12 tuần tuổi đạt 1295,501356,50 gram/con, tăng trọng bình quân 18,53-19,59 gram/con/ngày, hệ số chuyển hoá thức ăn từ 3,14-3,22 kg thức ăn/kg tăng trọng. Chưa thấy có sự ảnh hưởng của việc lấy máu định kỳ kiểm tra kháng thể lên tăng trọng của gà. viii Chƣơng 1 ĐẶT VẤN ĐỀ Trong nhiều năm qua, bệnh Gumboro là một trong những bệnh gây thiệt hại lớn cho ngành chăn nuôi gà tại nhiều địa phương ở nước ta. Bệnh không những gây tỷ lệ chết cao mà còn làm suy giảm miễn dịch, làm thất bại các chương trình chủng ngừa các bệnh truyền nhiễm khác (Nguyễn Bá Thành, 2006). Bệnh Gumboro là một bệnh cấp tính do virus gây ra ở gia cầm. Bệnh có đặc điểm là gây viêm túi Fabricius, xuất huyết cơ ngực, cơ đùi, làm hoại tử thận và đặc biệt làm suy giảm hệ thống miễn dịch hoặc mất khả năng đáp ứng miễn dịch đối với vaccine phòng các bệnh khác và dễ bị cảm nhiễm các bệnh truyền nhiễm khác. Bệnh thường xảy ra khi gà ở giai đoạn từ 3 - 6 tuần tuổi, tỷ lệ nhiễm bệnh có thể lên đến 100% và tỷ lệ chết có thể từ 20 - 50% (Phạm Sĩ Lăng và Nguyễn Thiện, 2004). Vì vậy, trong chăn nuôi gà, nhất là chăn nuôi tập trung với số lượng lớn, biện pháp quan trọng là phòng bệnh bằng vaccine, tạo miễn dịch chủ động đặc hiệu cho con vật. Trên thị trường nước ta hiện nay có khá nhiều loại vaccine nhập như: vaccine D78 của Intervet Hà Lan, Bal-IBD của Singapore, Medivac Gumboro B của Indonesia được sản xuất từ nhiều nước khác nhau và vaccine trong nước. Sự đa dạng phong phú về chủng loại, tên gọi gây không ít khó khăn cho người chăn nuôi khi muốn sử dụng vaccine. Có không ít trường hợp lần đầu dùng một loại vaccine, lần sau dùng vaccine khác trên cùng một đàn gà và hậu quả là đàn gà đã phòng vaccine nhưng bệnh Gumboro vẫn xảy ra. Từ thực tế trên chúng tôi tiến hành đề tài: “Khảo sát khả năng đáp ứng miễn dịch của gà Tàu vàng đối với vaccine Bal-IBD phòng bệnh Gumboro của Singapore”. Từ kết quả nghiên cứu là cơ sở khoa học khuyến cáo một cách phù hợp và hiệu quả cho việc sử dụng vaccine phòng bệnh Gumboro cho đàn gà. Mục tiêu đề tài: Khảo sát khả năng đáp ứng miễn dịch của giống gà Tàu vàng sau tiêm phòng đối với vaccine Gumboro. Theo dõi khả năng sinh trưởng và phát triển của giống gà Tàu vàng. 1 Chƣơng 2 CƠ SỞ LÝ LUẬN 2.1 Khái quát về bệnh Gumboro và tình hình nghiên cứu 2.1.1 Khái quát về bệnh Gumboro Bệnh Gumboro là bệnh truyền nhiễm của gà do virus gây ra. Bệnh chỉ biểu hiện triệu chứng lâm sàng khi gà mắc bệnh ở giai đoạn trên 1-2 tuần tuổi, nhưng rõ nhất ở giai đoạn 4-8 tuần tuổi. Trong giai đoạn này tỷ lệ gà bệnh có thể lên đến 100% và tỷ lệ chết có thể từ 20-50%. Bệnh gây suy giảm miễn dịch trầm trọng cho nên việc tiêm phòng vaccine khác trên những đàn gà bệnh Gumboro thường cho hiệu quả không cao. Gà bệnh có biểu hiện ủ rũ, xù lông, tiêu chảy phân trắng hoặc vàng. Bệnh tích quan trọng là túi Fabricius sưng to, xuất huyết. Bệnh diễn ra hầu hết ở các nước trên thế giới có chăn nuôi gà công nghiệp (Nguyễn Xuân Bình và ctv, 2005). 2.1.2 Tình hình nghiên cứu bệnh Gumboro trên thế giới Bệnh Gumboro được mô tả lần đầu tiên trên thế giới vào năm 1957 tại vùng Gumboro, thuộc bang Delaware của Mỹ. Đến năm 1962, Cosgrove đã mô tả bệnh Gumboro và đã phân lập được virus này trên phôi trứng từ 9 đến 10 ngày tuổi. Cũng vào năm 1962, Winterfield và Hitchner tiến hành một thí nghiệm sàng lọc khẳng định đây là tác nhân gây bệnh mới – bệnh viêm túi Fabricius truyền nhiễm. Theo Hichner (1970), gọi bệnh do Cosgrove phát hiện được gọi chính thức là bệnh viêm túi Fabricius truyền nhiễm (Infectious Bursal Disease - IBD) hay còn gọi là bệnh Gumboro. Virus gây bệnh được gọi là virus gây viêm túi Fabricius truyền nhiễm (Infectious Bursal Disease Virus). Tại châu Á, năm 1966 bệnh Gumboro được phát hiện ở Israel, năm 1973 tại Thái Lan, bệnh xuất hiện trên đàn gà nuôi công nghiệp. Năm 1974, Hirai phát hiện bệnh Gumboro nhờ kiểm tra kháng thể kháng Gumboro có trong huyết thanh những đàn gà không được sử dụng vaccine. Trong thời gian này tại Đài Loan, Trung Quốc dịch bệnh xảy ra liên tiếp, tỷ lệ chết cao từ 40 - 50 % (Nguyễn Bá Thành, 2006). Năm 1972, Allan et al. đã công bố đặc tính gây suy giảm miễn dịch ở gà con của virus Gumboro. Mc Ferran et al. (1980), thông báo về sự tồn tại của serotype 2 và việc phát hiện các biến chủng của serotype 1 ở vùng chăn nuôi gà công nghiệp Delmarva làm cho việc khống chế bệnh trở nên phức tạp hơn 2 (Rosenberger et al., 1985). Các biến chủng này đã gây bệnh cho đàn gà đã có kháng thể thụ động kháng virus Gumboro chuẩn và khác với các chủng chuẩn về đặc tính sinh học (Rosenberger et al., 1985). Theo Hirai (1979), ở Nhật Bản khi kiểm tra huyết thanh đàn gà không chủng ngừa vaccine Gumboro có đến 60% có kháng thể kháng virus Gumboro. Vào năm 1988 trường đại học Georgia (Mỹ) đã phân lập được 2 chủng mới của serotype 1 ở gà thịt mà tính kháng nguyên khác với serotype điển hình (Standard IBD virus). Hai chủng mới phân lập này gây teo túi Fabricius trong vòng 3 ngày và gây ức chế miễn dịch mà không có triệu chứng lâm sàng rõ ràng (trích dẫn Nguyễn Bá Thành, 2006). Ở Thái Lan từ năm 1990, bệnh Gumboro đã gây tổn thất đáng kể cho chăn nuôi gà công nghiệp (Chaisingha et al., 1992). Năm 1992 phát hiện bệnh Gumboro ở Hungari, các nhà nghiên cứu cũng đã đưa ra kết luận virus gây bệnh phân lập được từ gà bệnh ở Hungari có cấu trúc kháng nguyên giống với các chủng virus độc lực cao đã được phát hiện ở châu Âu. Năm 1991, các nhà nghiên cứu đã công bố dịch và phân lập được virus Gumboro cường độc từ những gà nghi bệnh tại Ai Cập, Malaysia, Kenia, Singapore. Châu Mỹ là nơi đầu tiên phát hiện bệnh nhưng theo thông báo của tổ chức thú y thế giới tình hình dịch bệnh ở châu lục này không dữ dội, chỉ rất ít nước báo cáo phát hiện thấy bệnh Gumboro. 2.1.3 Tình hình nghiên cứu bệnh Gumboro trong nước Tại Việt Nam, năm 1981 tại trại gà Cục hậu cần quân khu 5 – Đà Nẵng có một đợt bệnh xảy ra làm chết 6460 con trên tổng số 23.310 con chiếm 27%, khi đó chưa chẩn đoán ra bệnh (Nguyễn Đăng Khải, 1988). Năm 1982, Viện Thú Y Quốc gia chính thức công bố bệnh Gumboro ở Việt Nam (Trần Minh Châu và ctv, 1982). Từ năm 1986, bệnh Gumboro xảy ra ồ ạt tại các trại gà công nghiệp. Đầu tiên, người ta nghi đó là Newcastle nhưng qua dấu hiệu lâm sàng, bệnh tích đại thể và những chẩn đoán phân biệt khác, người ta đã xác định là bệnh Gumboro (Lê Văn Hùng, 1996). Những năm 1987 - 1989, bằng kỹ thuật chẩn đoán kết tủa khuếch tán trên thạch (Agar Gel Precipitation - AGP), người ta cũng đã phát hiện được nhiều gà giò, gà đẻ của một trại gà ở Hà Nội có kháng thể đặc hiệu kháng virus Gumboro. Tỷ lệ AGP dương tính với kháng thể kháng virus Gumboro đạt 30 - 40% tổng số mẫu kiểm tra (Lê Thanh Hoà, 1992). 3 Ở Việt Nam giai đoạn từ 1986 – 1990 là thời kỳ chưa có vaccine phòng bệnh Gumboro, thiếu kinh nghiệm phòng bệnh nên đã gây thiệt hại kinh tế nghiêm trọng cho ngành chăn nuôi gà công nghiệp, tỷ lệ gà bị bệnh từ 80–90%, tỷ lệ chết 30–40 % (Nguyễn Tiến Dũng, 1996). Theo số liệu của Cục Thú y từ năm 1986, nhiều tỉnh trong cả nước đều báo cáo có bệnh Gumboro như ở Hà Nội, Hà Tây, Sơn La, Hòa Bình, Nam Định và Vĩnh Phúc. Các tỉnh phía Nam thường xảy ra dịch trên đàn gà có quy mô từ 100 – 6.000 con ở cả chăn nuôi gia đình và quốc doanh như ở Thành phố Hồ Chí Minh, Long An, Bình Thuận, Phan Thiết (Nguyễn Bá Thành, 2006). Từ năm 1989 – 1995 tình hình bệnh Gumboro không ngừng gia tăng, các giống gà công nghiệp nuôi ở Việt Nam đều có thể mắc bệnh. Nếu như năm 1989 tỷ lệ đàn gà nhiễm bệnh 19,23% thì đến năm 1995 tăng lên 90,31% trong tổng số đàn được kiểm tra (Lê Hồng Mận và Phương Song Liên, 1999). Bệnh Gumboro vẫn đang là một trong những bệnh có tỷ lệ nhiễm cao nhất khoảng 56,98% so với các bệnh khác trên gia cầm (Lê Văn Năm, 1996). Nghiên cứu thấy rằng các chủng virus cường độc Gumboro Việt Nam hoàn toàn thuộc nhóm phả hệ cùng chủng Gumboro châu Á (Lê Thanh Hòa, 2003). Theo Nguyễn Bá Thành (2004), khi gây bệnh thực nghiệm chủng virus phân lập tại địa phương gây bệnh cho gà Brown Nick vào 14 ngày tuổi có triệu chứng và bệnh tích tương tự như triệu chứng và bệnh tích do chủng virus 52/70 gây bệnh ở gà con còn kháng thể mẹ. Nghiên cứu của Hoàng Thị Mỹ Hiền (2009), cho thấy sử dụng vaccine Busaplex chống bệnh Gumboro cho gà đạt hiệu giá kháng thể bảo hộ lúc 42 ngày tuổi cao nhất và hiệu quả kinh tế tốt nhất. Theo Nguyễn Hồng Minh và ctv (2011), gà sử dụng 1 lần vaccine Gumboro, hiệu giá kháng thể đạt cao nhất ở 28 ngày tuổi (914,23 ± 13,78 với vaccine đơn giá và 823,25 ± 15,56 với vaccine đa giá). Gà sử dụng 2 lần vaccine Gumboro vào lúc 7 và 14 ngày tuổi, hiệu giá kháng thể đạt cao nhất ở 42 ngày tuổi (2289,79 ± 18,26 với vaccine đơn giá và 1995,01 ± 24,28 với vaccine đa giá). Công cường độc vào lúc 42 ngày tuổi, toàn bộ gà được sử dụng vaccine đều không bị tiêu chảy và không có bệnh tích ở túi Fabricius. Một tỷ lệ nhất định gà sử dụng 1 lần vaccine có bệnh tích xuất huyết cơ đùi, cơ ngực (13,33% - vaccine đơn giá, 20% - vaccine đa giá) 4 2.2 Căn bệnh học 2.2.1 Đặc điểm hình thái, cấu trúc của virus Gumboro Virus gây bệnh Gumboro (Infectious Bursal Disease Virus = IBDV) thuộc họ Birnaviridae, giống Birnavirus, là một loại virus trần, không có vỏ bọc ngoài cùng, có cấu tạo hình khối đa diện, kích thước 55-65nm (Nick et al., 1976). Theo Almeida and Moriris (1973), thì virus gây bệnh Gumboro có hai dạng hạt với kích thước khác nhau: một dạng có đường kính 55-60nm với hình 6 cạnh và một dạng thứ hai chỉ có đường kính 18-22nm tương tự như các Parvovirus. Trong nguyên sinh chất tế bào bị nhiễm, có thể quan sát dưới kính hiển vi điện tử thấy tập hợp virus Gumboro giống như tổ ong xếp đều đặn cạnh nhau. Mỗi một nguyên sinh chất có thể chứa vài tập hợp virus nói trên (Phạm Sỹ Lăng và Nguyễn Thiện, 2004). Virus Gumboro là virus chứa ARN 2 sợi cuộn tròn, phân làm 2 đoạn riêng biệt, vì vậy có tên là Birnavirus (Bi: hai; ARN: acid ribonucleic) nghĩa là virus có 2 đoạn ARN (Nguyễn Như Thanh, 1997). Cấu tạo virus bao gồm acid ribonucleic bên trong, bao quanh nó là lớp capsid cấu tạo bằng protein. Ngoài phần capsid virus không có vỏ bọc bằng lipid. Do vậy, IBDV (Infectious bursal disease virus) có sức đề kháng cao khi tồn tại ngoài thiên nhiên. Do không có vỏ bọc ngoài nên IBDV không mẫn cảm với ether và chloroform, nhưng chúng rất mẫn cảm với formalin (Lê Văn Hùng, 1996). Hình 2.1 Mô hình cấu trúc virus Gumboro ( http://cost839.var.fgov.be/paco/index.htm) 5 2.2.2 Sức đề kháng của virus đối với tác nhân lý hóa Virus Gumboro có sức đề kháng cao đối với hầu hết các chất sát trùng ngay cả ether, chloroform, và các tác nhân môi trường. Virus có thể sống hàng tháng trong chuồng trại, hàng tuần trong nước uống, thức ăn, phân. Virus có thể sống ở 560C trong 5 giờ, virus dễ bị tiêu diệt bởi phenol 0,5%, có nhiều bằng chứng cho thấy virus không gây bệnh khi tiếp xúc với formol 0,5% trong 6 giờ, virus cũng bị vô hoạt với 3 chất sát trùng với các nồng độ khác nhau (iod, dẫn xuất phenolic và hợp chất ammonium) trong 2 phút ở 230C. Trong điều kiện tự nhiên, những nơi xảy ra dịch bệnh Gumboro thì virus tồn tại rất lâu: trong chuồng nuôi từ 54 - 122 ngày, trong nước, chất độn chuồng, dụng cụ chăn nuôi và chất thải virus vẫn giữ đặc tính gây nhiễm và gây bệnh ít nhất 52 ngày, thậm chí đến 168 ngày vẫn còn khả năng gây bệnh. 2.2.3 Truyền nhiễm học bệnh Gumboro Nguồn bệnh Trong tự nhiên bệnh Gumboro thường thấy ở gà nhà (Gallus domesticus) và gà tây (Gallus turkey) và khi mắc bệnh đều có biểu hiện lâm sàng và bệnh tích điển hình của Gumboro. Cũng vì thế mà trước đây người ta chia virus gây bệnh Gumboro thành 2 serotype: serotype I gây bệnh ở gà nhà và serotype II gây bệnh ở gà tây (Jackwood et al., 1985). Khi virus xâm nhập vào đúng loài gà mẫn cảm nào thì bệnh Gumboro ở loài gà đó nặng hơn. Nhưng trong tự nhiên nhiều trường hợp khi phân lập căn nguyên gây bệnh Gumboro ở gà nhà, người ta lại tìm thấy serotype II. Do vậy, có thể nói gà nhà và gà tây là nguồn tàng trữ tiềm tàng của 2 type virus Gumboro. Phương thức lan truyền Vào những năm 1985-1989, tại trung tâm nghiên cứu gia cầm Thụy Phương – Viện Chăn nuôi quốc gia, Lê Văn Năm đã quan sát thấy nhiều gà cùng lứa tuổi nuôi tại các ô chuồng khác nhau xen kẽ với các lứa gà khác nhau trong cùng một dãy chuồng, thì khi bệnh Gumboro nổ ra, thông thường nổ ra ở gà cùng lứa tuổi, rồi sau đó mới lan sang những ô gà bên cạnh có độ tuổi khác nhau. Điều đó chứng tỏ bệnh Gumboro xảy ra và lan truyền chủ yếu qua đường tiếp xúc trực tiếp, qua thức ăn, nước uống… Bệnh lan từ chuồng này sang chuồng khác là do người chăn nuôi, dụng cụ chăn nuôi, nguồn thức ăn, nước uống bị ô 6 nhiễm. Chuột bọ, chó mèo, thú hoang và một số côn trùng khác đều có thể đóng vai trò lan truyền bệnh (Lê Văn Năm, 2004). Sự mẫn cảm của giống gia cầm đối với bệnh Gumboro Trước đây, trong nhiều tài liệu cho rằng gà bị bệnh Gumboro thường từ 3 - 6 tuần tuổi, Lê Văn Năm đã quan sát thấy ngoài lứa tuổi từ 3 - 6 tuần, ở thể lâm sàng bệnh còn xảy ra ở gà 8 ngày tuổi và 96 ngày tuổi. Nói cách khác dao động độ tuổi gà bị bệnh thường có biên độ lớn. Gà nhỏ hơn 3 tuần tuổi thường mắc bệnh ở thể ẩn. Gà Ri Việt Nam có sức đề kháng khá tốt đối với bệnh Gumboro trong cùng một điều kiện chăn nuôi. Gà Rôtri chuyên dụng lai tạo từ nền gà Ri Việt Nam và gà Ross của Hungari có sức đề kháng tốt nhất đối với bệnh Gumboro so với các giống gà khác như: Leghorn, Plymouth – Rock, Tam hoàng. Tuy nhiên, tác giả chưa phát hiện ra sự khác nhau về độ mẫn cảm đối với bệnh Gumboro giữa gà siêu thịt và siêu trứng (Lê Văn Năm, 2004). Sau thời gian nghiên cứu từ năm 1982 đến năm 1997, Lê Văn Năm nhận định không có sự khác biệt giữa gà trống và gà mái về độ mẫn cảm đối với mầm bệnh, tỷ lệ mắc bệnh, tỷ lệ chết ở bệnh Gumboro (Lê Văn Năm, 2004). 2.3 Cơ chế sinh bệnh Theo Lê Văn Năm (2004), sau khi virus gây bệnh Gumboro (IBDV) xâm nhập vào một cá thể nào đó thì chỉ cần 1-2 ngày sau cả đàn đã mắc bệnh. Virus xâm nhập qua đường tiêu hoá của gà, theo đường máu đến túi Fabricius, chúng khu trú tại đây và bắt đầu nhân lên về số lượng. Chúng tấn công các nang bào túi Fabricius, phá huỷ các chức năng tạo tế bào lympho B. Kết quả là hệ thống tạo miễn dịch bị tổn thương, không đủ khả năng chống lại các yếu tố gây bệnh, cũng như việc đáp ứng miễn dịch bằng vaccine khi tiêm phòng. Do sự tấn công của virus làm cho túi Fabricius sưng to lên trong 3 ngày đầu, sau đó bắt đầu teo lại và thấy rõ sự khác nhau đó vào khoảng 7-10 ngày sau khi nổ ra bệnh. Đồng thời xuất hiện phức hợp các miễn dịch bệnh lý, trong đó có sự kết hợp giữa kháng nguyên Gumboro với bổ thể, cùng một số ít kháng thể được tạo thành. Gumboro gây nên sự thẩm xuất dịch ra khỏi hệ tuần hoàn, đồng thời gây nên sự sung huyết, xuất huyết. Chúng ta thường gặp biểu hiện bệnh tích này ở các vùng ngực, vùng đùi, có thể xuất huyết thành tia, vệt và có màu sậm. 7 2.4 Miễn dịch học Miễn dịch chủ động: sự miễn dịch được hình thành do tiếp xúc với virus cường độc, hoặc chủ động đưa vaccine. Tuỳ theo đặc tính của vaccine mà chọn loại, liều, cách sử dụng cho hợp lý, tuỳ điều kiện dịch tễ mà chọn thời điểm và số lần vaccine thích hợp (Lê Thanh Hoà, 2003). Miễn dịch thụ động: gà con nhận miễn dịch thụ động (IgG) từ huyết thanh gà mẹ qua lòng đỏ trứng. Những gà con có kháng thể thụ động sẽ không mắc bệnh nếu hàm lượng của chúng đủ để trung hoà virus. Hàm lượng kháng thể thụ động trong cơ thể gà con phụ thuộc vào khoảng thời gian từ khi tiêm vaccine cho gà mẹ đến khi trứng ấp nở và hàm lượng kháng thể ở gà mẹ chuyển cho gà con. Theo Skeeles et al., (1979) kháng thể thụ động trong gà con giảm rất nhanh: giảm 1/2 sau khi nở 3 - 5 ngày và hầu như hoàn toàn hết khang thể sau 10 – 21 ngày (Lê Văn Năm, 2004). Khi hiệu giá kháng thể trung hòa nhỏ hơn 100 thì gà hoàn toàn mẫn cảm với virus Gumboro và phát bệnh khi bị nhiễm (Lucio và Hitchner, 1979). Kháng thể trung hòa thụ động có vai trò tích cực trong việc bảo hộ đàn gà con nhưng lại ức chế việc tạo ra miễn dịch chủ động bằng vaccine nhất là vaccine sống nhược độc. Hiện nay, quan điểm chung của tất cả các chuyên gia trên thế giới cho rằng việc tiêm phòng cho gà con bằng vaccine nhược độc đang gặp trở ngại lớn nhất là kháng thể thụ động của gà mẹ truyền sang nên nhiều khi vaccine không có tác dụng và việc tiêm phòng không đem lại hiệu quả như mong muốn. Quy trình tiêm phòng bằng vaccine cho gà con không có lịch rõ ràng và cũng không thể có lịch áp dụng chung cho tất cả mọi nơi (Nguyễn Xuân Bình và ctv, 2000). Bên cạnh các loại miễn dịch đặc hiệu, về nguyên lý cơ bản cần phải có một sức đề kháng tốt và có sự hoạt động đắc lực của các yếu tố miễn dịch không đặc hiệu trong đó phải kể đến vai trò của đại thực bào, propectin, opsonin, lysozim… Một cơ thể khoẻ mạnh, phải được nuôi dưỡng trong đó cần có thành phần đúng, khẩu phần tốt và sự điều hoà các chất đạm, lipid, glucid, cũng như phải đảm bảo các điều kiện tốt về vệ sinh chăn nuôi (Đái Duy Ban và Phạm Công Hoạt, 2004). 8 2.5 Triệu chứng và bệnh tích 2.5.1 Triệu chứng Thể ẩn tính Thông thường thể không lâm sàng do những chủng hoặc biến chủng virus có độc lực thấp hoặc trung bình gây nên. Triệu chứng bệnh thể hiện không rõ: gà khật khừ, mệt mỏi đột ngột, giảm ăn, ủ rũ, sốt cao, uống nhiều nước, tiêu chảy phân trắng, nếu không quan sát kỹ ta cảm giác như gà bị gió lùa hoặc bị lạnh. Nhưng sau 2-3 ngày đàn gà trở lại bình thường với tỷ lệ chết không đáng kể 0-5% (Lê Văn Năm, 2004). Thể cấp tính Gà bị bệnh thường ở lứa tuổi 3-6 tuần, có trường hợp sau 6 tuần. Thời gian nung bệnh rất ngắn, trong 24 giờ sau khi nhiễm mầm bệnh đã có biến đổi vi thể ở túi Fabricius (Helnooldt et al., 1964) và chỉ sau 2-3 ngày đã xuất hiện triệu chứng lâm sàng. Ngay sau khi virus vừa mới xâm nhập túi Fabricius gà đã có biểu hiện: cơ vùng hậu môn co bóp nhanh, mạnh không bình thường, gà có phản xạ như muốn đi ngoài nhưng không thực hiện được. Đây là triệu chứng đặc trưng đầu tiên giúp chúng ta phát hiện sớm bệnh Gumboro. Bệnh xảy ra thình lình, gà bệnh suy nhược, ủ rủ, xù lông, đi loạng choạng. Gà tiêu chảy, phân có màu trắng xám hoặc xanh lá cây có nhiều nước, gà rặn suốt trong quá trình đi tiêu, hậu môn đưa ra ngoài, những gà khác xúm lại mổ, có thể tự mổ chính nó, hậu môn bết đầy phân, gà bỏ ăn run rẩy, suy nhược trầm trọng và có thể chết. Tỷ lệ nhiễm có thể lên đến 100%. Gà chết bắt đầu từ ngày thứ 3 sau khi nhiễm bệnh, sau đó tăng nhanh và giảm nhanh sau 5-7 ngày thì chấm dứt. Tỷ lệ chết thường thấp, nhưng nếu điều kiện chăn nuôi kém, tỷ lệ chết có thể lên 2050% hoặc cao hơn (Hồ Thị Việt Thu, 2012). 9 Hình 2.2 Gà bệnh suy nhƣợc và lờ đờ ( http:marphavet.com) Gà hướng thịt thường phát bệnh trong giai đoạn từ 20-40 ngày tuổi. Gà hướng trứng thường phát bệnh trong giai đoạn 30-80 ngày tuổi (Lê Văn Năm, 2003). 2.5.2 Bệnh tích Bệnh tích đại thể Ở thể ẩn, bệnh tích có thể quan sát được là teo tuyến ức và túi Fabricius (Lê Văn Năm, 1996). Ở thể cấp tính: cơ đùi, cơ ngực có nhiều điểm xuất huyết, đôi khi tạo thành vệt, thành mảng, nơi tiếp giáp dạ dày tuyến và dạ dày cơ xuất huyết. Thận có thể sưng, ống dẫn tiểu chứa nhiều urat. Lách có thể sưng, có những chấm xám nhỏ trên bề mặt (Hồ Thị Việt Thu, 2012). Theo Cheville (1967), kích thước túi Fabricius của gà diễn biến như sau: Ở ngày thứ ba sau khi nhiễm virus kích thước bắt đầu tăng, đến ngày thứ tư kích thước túi tăng gắp 2 so với bình thường. Đến ngày thứ năm, trọng lượng túi trở lại bình thường, rồi tiếp tục nhỏ dần. Từ ngày thứ tám trở đi, trọng lượng cũng như kích thước đều bị giảm, chỉ còn 1/2 hoặc 1/3 so với bình thường. Theo Lê Hồng Mận và Bùi Đức Lũng (2004) khi bị nhiễm bệnh túi Fabricius có dịch nhầy, sánh đục vàng lẫn máu, bệnh nặng có bã đậu. 10 Hình 2.3 Cơ đùi xuất huyết thành từng vệt (http://www.anova.com.vn/contents/article.asp?id=285&detail=16&ucat=44) Hình 2.4 Túi Fabricius sƣng to, niêm mạc sung huyết và xuất huyết (http://marphavet.com/modules.php?name=News&opcase=detailsnews&mid=29&mcid=330) Túi Fabricius gà bình thường Túi Fabricius bị xuất huyết khi gà nhiễm Gumboro lúc 5 ngày tuổi Túi Fabricius gà nhiễm Gumboro lúc 8 ngày tuổi, kích thước giảm 1/8 so với bình thường Hình 2.5 Biến đổi túi Fabricius trong bệnh Gumboro (http://www.ebook.edu.vn/?page=1.1&view=7250) 11 Bệnh tích vi thể Các bệnh tích vi thể của bệnh Gumboro chủ yếu xảy ra ở các tổ chức lympho của túi Fabricius, lách, tuyến ức. Túi Fabricius là nơi xảy ra những biến đổi vi thể nhiều nhất và đặc trưng nhất. Ngay 24 giờ sau khi nhiễm, phần lớn tế bào lympho trong túi đã bị thoái hóa. Ở giai đoạn 48 - 96 giờ sau khi nhiễm, các tế bào biểu mô bề mặt niêm mạc túi Fabricius tăng sinh, các tế bào hình trụ tiết mucin đổ vào lòng túi làm trong túi có nhiều bọt màu vàng. Từ 72 - 96 giờ sau khi nhiễm hầu như 100% các nang lympho của túi Fabricius đều có bệnh tích như trên (Lê Văn Hùng, 1996). 2.6 Chẩn đoán 2.6.1 Chẩn đoán lâm sàng Bệnh Gumboro xảy ra ở thể cấp tính trên toàn đàn rất dễ nhận biết và việc chẩn đoán có thể thực hiện được ngay. Bệnh bắt đầu nhanh, bệnh số cao, tử số tăng tạo thành đường hình gai nhọn, hồi phục nhanh 5 - 7 ngày sau khi có các biểu hiện triệu chứng bệnh. Việc chẩn đoán được thực hiện bằng việc mổ khám xem các biến đổi đại thể của túi Fabricius. Có sự biến đổi về kích thước, màu sắc trong suốt giai đoạn bệnh diễn ra, túi sưng to do bị viêm sau đó túi bị teo. Ở gà con hoặc gà có kháng thể thụ động, khi bị nhiễm virus thường không có triệu chứng, trong trường hợp này chẩn đoán bằng phương pháp mổ khám, quan sát đại thể và vi thể túi Fabricius. Gà bệnh ở bất kỳ lứa tuổi nào với các biến chủng của virus Gumboro chỉ chẩn đoán bằng phương pháp khảo sát bệnh tích vi thể túi Fabricius hoặc phân lập virus (Nguyễn Thành Trung, 1997). 2.6.2 Chẩn đoán huyết thanh học Phản ứng kết tủa khuếch tán trên thạch (Agar Gel Precipitation Test, AGP) dùng để phát hiện kháng thể khi có kháng nguyên chuẩn và ngược lại có thể dùng để phát hiện kháng nguyên khi có kháng thể chuẩn. Phản ứng AGP cho kết quả nhanh, nhạy, đơn giản, dễ tiến hành, nên được sử dụng nhiều trong chẩn đoán, nhưng phản ứng AGP chỉ có tính chất định tính không có tính chất định lượng, không xác định được serotype (Nguyễn Như Thanh và ctv, 1997). ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorbent Assay) là một kỹ thuật sinh hóa để phát hiện kháng thể hay kháng nguyên trong mẫu xét nghiệm. Hiện nay ELISA được sử dụng rộng rãi trong nhiều lĩnh vực nghiên cứu như y học, nông nghiệp và trong các quy trình an toàn chất lượng trong các sản phẩm sinh học. 12 Đồng thời sử dụng phương pháp ELISA để phát hiện và đánh giá kháng thể đặc hiệu bệnh Gumboro đã trở nên thông dụng nhất hiện nay (Luckert et al, 1991). Để tiến hành ELISA cần phải có ít nhất một kháng thể đặc hiệu cho kháng nguyên chưa biết. Thông thường kháng nguyên được cố định tại các giếng của đĩa. Phương thức cố định không đặc hiệu: kháng nguyên gắn trực tiếp vào bề mặt của đĩa. Phương thức gắn đặc hiệu: kháng nguyên được gắn với một kháng thể đặc hiệu cho cùng kháng nguyên kiểm tra. Kháng thể đặc hiệu được cho vào, phản ứng phức hợp kháng nguyên – kháng thể có thể xảy ra. Nếu kháng thể được gắn trực tiếp với enzyme, tính hiệu quang học do enzyme làm biến đổi cơ chất sẽ giúp phát hiện kháng nguyên cần kiểm tra. Giữa các bước của ELISA, các protein và các kháng thể không đặc hiệu, kháng thể không gắn với kháng nguyên sẽ được loại bỏ sau thao tác rửa. Sau bước rửa cuối cùng, chỉ còn kháng thể liên kết kháng nguyên được giữ lại. Sau khi được cho vào, cơ chất sẽ chịu tác động của enzyme liên kết với kháng thể trong phức hợp kháng nguyên – kháng thể. Phản ứng tác dụng (biến đổi cơ chất) sẽ xảy ra. Trước đây các cơ chất tạo màu sắc được sử dụng trong ELISA nhưng ngày nay các chất phát quang được dùng rộng rãi làm tăng tính đặc hiệu và độ chính xác của ELISA 2.6.3 Chẩn đoán phân biệt Trong chẩn đoán cần phân biệt bệnh Gumboro với một số bệnh khác như: Bệnh cầu trùng: bệnh cầu trùng cấp tính có triệu chứng tương tự như bệnh Gumboro với các biểu hiện: bệnh xảy ra đột ngột, tỷ lệ mắc bệnh cao, lông xù, ủ rũ và tiêu chảy có vấy máu. Tuy nhiên, bệnh cầu trùng không dẫn đến xuất huyết cơ và viêm sưng túi Fabricius. Bệnh Newcastle: xảy ra ở gà mọi lứa tuổi, bệnh xảy ra nhanh, tỷ lệ chết cao, có triệu chứng bệnh đường hô hấp và tiêu hóa. Nếu bệnh kéo dài còn có triệu chứng thần kinh, có xuất huyết ở nhiều cơ quan, nhưng không có bệnh tích ở túi Fabricius. 13 Bệnh viêm thận do virus (viral nephritis) có bệnh tích ở thận giống bệnh Gumboro, nhưng không có bệnh tích ở túi Fabricius. Bệnh Viêm phế quản truyền nhiễm (infectious bronchitis) có thể có độ tuổi mắc bệnh giống như bệnh Gumboro (trước 6 tuần tuổi) cũng có thể có biểu hiện bệnh tích ở thận mà trong nhiều trường hợp ở bệnh Gumboro cũng có, nhưng chắc chắn bệnh Gumboro thuần nhất không thấy có các triệu chứng đường hô hấp như ở bệnh viêm phế quản truyền nhiễm. Bệnh Gumboro với hai loại bệnh tích đặc trưng là xuất huyết cơ và viêm sưng túi Fabricius là cơ sở để chẩn đoán phân biệt về lâm sàng với một số bệnh khác. Nhưng để kết luận chính xác cần phải dùng một số phương pháp chẩn đoán trong phòng thí nghiệm. 2.7 Phòng bệnh và điều trị 2.7.1 Phòng bệnh Phòng bằng vaccine: hiện nay các nước trên thế giới và nước ta đang sử dụng 2 loại vaccine. Vaccine nhược độc: Trên thị trường hiện nay có nhiều loại vaccine từ các chủng có độc lực khác nhau bao gồm: độc lực yếu, trung bình và cao. Vaccine có độc lực yếu an toàn nhưng cho miễn dịch ngắn, thường được sử dụng ở những đàn gà con không có kháng thể thụ động. Vaccine có độc lực cao cho miễn dịch tốt hơn, có thể khắc phục được hiện tượng trung hòa kháng thể thụ động, nhưng có thể làm tổn thương túi Fabricius. Vaccine có độc lực trung bình thường được sử dụng nhất (Hồ Thị Việt Thu, 2012). Vaccine vô hoạt: thường được sử dụng trên các đàn gà giống. Quy trình tiêm phòng phụ thuộc vào tình hình dịch bệnh từng nơi và tình trạng miễn dịch của đàn gà. Vệ sinh phòng bệnh: áp dụng nghiêm ngặt quy trình phòng bệnh, đồng nhập, đồng xuất (all in – all out). Tiêm phòng cho đàn gà giống để tạo miễn dịch thụ động cho gà con. Nếu có dịch đe dọa nên chú ý tiêm ngừa vaccine chặt chẽ. Định kỳ tiêu độc, vệ sinh chuồng trại, xử lý chuồng trại định kỳ mỗi tháng và sau mỗi đợt nuôi bằng Chloramin 0,5% trong 10 phút. Nếu chuồng nuôi gà trước đó đã bị bệnh thì xử lý 14 mỗi tuần 1 lần và sau 2-3 tháng mới được bắt gà mới về nuôi (Nguyễn Xuân Bình et al., 2000). 2.7.2 Điều trị Bệnh Gumboro do virus gây ra vì vậy không có thuốc điều trị đặc hiệu. Nhưng nếu dựa vào cơ chế sinh bệnh và nguyên nhân gây chết khi gà bị bệnh Gumboro như: sốt cao, cơ thể thiếu nước, loạn khuẩn đường ruột,… thì việc điều trị bệnh Gumboro phải theo nguyên tắc: giải nhiệt và trợ lực kết hợp chống viêm và chống bội nhiễm, đồng thời cung cấp đủ nước (Lê Văn Năm, 1996). Khi Gumboro bị kế phát bệnh khác hoặc Gumboro là nguyên nhân kế phát thì cả 2 trường hợp đều có nguy cơ tăng nhanh tỷ lệ chết, do vậy khi ghép với Newcastle hay bệnh thiếu máu truyền nhiễm thì nguyên tắc điều trị tất cả các bệnh ghép còn lại là phải tập trung cứu chữa Gumboro trước sau đó mới triển khai đồng thời việc trị các bệnh khác. 2.8 Vaccine 2.8.1 Khái quát chung về vaccine Vaccine là chế phẩm sinh học làm tăng cường miễn dịch chống lại một căn bệnh cụ thể. Một vaccine điển hình có chứa một số lượng nhỏ nhân tố tương đồng với mầm bệnh. Nhân tố này gọi là kháng nguyên. Kháng nguyên kích thích hệ thống miễn dịch của cơ thể để nhận diện nó như một vật ngoại lai, cơ thể tiêu diệt vật ngoại lai này và cơ thể cũng “nhớ” nó để mà hệ miễn dịch có thể nhận diện nó dễ dàng hơn và tiêu diệt mầm bệnh khi gặp lần sau. Vaccine được sản xuất từ mầm bệnh gây ra bệnh mà ta muốn phòng. Vaccine có thể từ các vi sinh vật chết, hoặc được làm yếu đi hoặc các sản phẩm tinh khiết từ các vi sinh vật. Có một số loại vaccine đang được sử dụng, hoặc chỉ mới trong giai đoạn nghiên cứu. Các loại vaccine này đại diện cho những chiến lược khác nhau, nhằm giảm nguy cơ nhiễm bệnh, trong khi tạo được đáp ứng miễn dịch có lợi cho cơ thể. Đáp ứng miễn dịch là một phản ứng của cơ thể tạo được bảo hộ chống lại mầm bệnh. Đáp ứng miễn dịch tạo ra kháng thể gọi là miễn dịch dịch thể. Đáp ứng miễn dịch do các tế bào có vai trò tiêu diệt mầm bệnh gọi là miễn dịch tế bào (trích dẫn Võ Thị Trà An và Võ Bảo Ngọc, 2011). 15 2.8.2 Vaccine Bal-IBD B38 của hãng Bestar, Singapore dùng phòng bệnh Gumboro Chỉ định Vaccine được khuyến cáo chủng ngừa cho gà khoẻ mạnh. Nên kiểm tra và xác định tình trạng miễn dịch của đàn gà trước khi chủng ngừa. Chủng ngừa vaccine khi kháng thể thụ động (kháng thể mẹ truyền) đã giảm thấp. Hướng dẫn sử dụng Ngưng pha thuốc trong nước uống 48 giờ trước khi chủng ngừa. Sau khi nước vaccine đã hết thì không được pha bất kỳ thuốc nào vào nước uống 24 giờ sau đó. Nước pha phải xử lý sạch triệt để trước khi sử dụng, không được dùng các loại thuốc sát trùng trong quá trình làm sạch. Pha lọ vaccine 500 liều với 3,75 lít nước. Tránh ánh sáng mặt trời chiếu vào vaccine. Không được chủng ngừa vaccine trong vòng 21 ngày trước khi giết mổ. Nhiệt độ bảo quản 2-60C, tránh đông đá. Hình 2.6 Vaccine nhƣợc độc Gumboro Bal – IBD B38 (www.bestar.com.tw) 16 Chƣơng 3 PHƢƠNG TIỆN VÀ PHƢƠNG PHÁP THÍ NGHIỆM 3.1 Nội dung - Theo dõi tình trạng sức khoẻ của đàn gà sau khi tiêm vaccine. - Đánh giá khả năng bảo hộ của vaccine Gumboro BAL-IBD B38 (BestarSingapore) đối với giống gà Tàu vàng. - Theo dõi tốc độ tăng trưởng của gà qua các giai đoạn. 3.2 Phƣơng tiện thí nghiệm 3.2.1 Thời gian và địa điểm - Thời gian thực hiện đề tài: tháng 07/2013 đến tháng 11/2013. - Địa điểm thí nghiệm: Gà thí nghiệm được nuôi tại trại thực nghiệm Ba Hoàng, phường Thới An Đông, Quận Bình Thủy, Thành Phố Cần Thơ. Các mẫu huyết thanh gà được xét nghiệm tại phòng thí nghiệm Bệnh truyền nhiễm Bộ Môn Thú Y, Khoa Nông Nghiệp và Sinh Học Ứng Dụng, trường Đại học Cần Thơ. 3.2.2 Đối tượng thí nghiệm Gà được nuôi lúc 1 ngày tuổi thuộc giống gà Tàu vàng. Số lượng gà thí nghiệm là 63 con. 3.2.3 Vật liệu thí nghiệm Vật liệu và dụng cụ Ống tiêm y tế 1ml, 3ml, găng tay, khẩu trang, cân, sổ ghi chép, viết, ống nghiệm, thùng trữ lạnh, máy ly tâm, eppendorf, micropipet, kéo, parafilm,... Mẫu vật và sinh phẩm Mẫu huyết thanh gà thí nghiệm. Vaccine phòng bệnh đậu gà, vaccine phòng bệnh cúm gia cầm, vaccine phòng bệnh Newcastle, vaccine tụ huyết trùng gia cầm, vaccine nhược độc phòng bệnh Gumboro BAL-IBD do Bestar Laboratories PTE LTD Singapore sản xuất. 17 Dung dịch sinh lý 0,85%, nước cất, ELISA kit (USA) do công ty Thịnh Á phân phối Thành phần bộ kit: STT 1 2 3 4 5 6 7 Thành phần Đĩa 96 giếng đã hấp phụ kháng nguyên Đối chứng dương Đối chứng âm Conjugate Dung dịch pha loãng mẫu Dung dịch TMB Dung dịch Stop Số lƣợng 5 1,9 ml 1,9 ml 50 ml 253 ml 60 ml 60 ml 3.3 Phƣơng pháp tiến hành 3.3.1 Phương pháp nuôi gà thí nghiệm Nhiệt độ là yếu tố cơ bản ảnh hưởng đến hiệu quả của giai đoạn nuôi khởi động trong 8-10 ngày đầu tiên, gà con rất mẫn cảm với nhiệt độ khả năng điều tiết thân nhiệt của gà con rất kém. Để gà con sinh trưởng và phát triển tốt thì trong giai đoạn úm cần chiếu sáng 24/24h. Sử dụng chụp úm bằng kim loại có bóng đèn tròn 75W (2 đèn/100 gà con). Xung quanh chuồng được che kín tránh mưa tạt, gió lùa. Gà được cho ăn uống tự do, sử dụng thức ăn C225 và C235 của công ty Proconco (Pháp), bổ sung thêm Bcomplex, vitamin C, Vimecox phòng bệnh cầu trùng. Mật độ nuôi: 1 ngày đến 2 tuần tuổi: 50 con/m2 2 tuần đến 3 tuần tuổi: 35 con/m2 3 tuần đến 4 tuần tuổi: 30 con/m2 4 tuần đến 5 tuần tuổi: 25 con/m2 5 tuần đến 6 tuần tuổi: 20 con/m2 6 tuần đến 7 tuần tuổi: 15 con/m2 18 Quy trình phòng bệnh chung Trong quá trình thí nghiệm, gà thí nghiệm được phòng đầy đủ các bệnh theo quy trình phòng bệnh chung. Bảng 3.1 Quy trình phòng bệnh chung Ngày tuổi Tên vaccine Tên công ty Cách tiêm ngừa 3 7 10 15 18 21 30 40 Lasota Gumboro Đậu Cúm A H5N1 Lasota Gumboro Cúm A H5N1 Tụ huyết trùng Navetco Bestar Navetco Navetco Navetco Bestar Navetco Navetco Nhỏ mắt mũi Nhỏ mắt mũi Chủng qua cánh Tiêm dưới da cổ Nhỏ mắt mũi Nhỏ mắt mũi Tiêm dưới da cổ Tiêm dưới da cổ 3.3.2 Bố trí thí nghiệm Thí nghiệm được bố trí theo kiểu hoàn toàn ngẫu nhiên 7 con/nghiệm thức gồm 3 nghiệm thức và 3 lần lặp lại. Nghiệm thức 1: gà được tiêm phòng vaccine đầy đủ theo quy trình phòng bệnh chung và lấy máu định kỳ để theo dõi khả năng đáp ứng miễn dịch. Nghiệm thức 2: gà được tiêm phòng vaccine đầy đủ theo quy trình phòng bệnh chung nhưng không lấy máu, nhằm so sánh khả năng tăng trọng so với lấy máu định kỳ. Nghiệm thức đối chứng: gà được tiêm phòng theo quy trình phòng bệnh chung nhưng không tiêm vaccine Gumboro và lấy máu định kỳ để kiểm tra kháng thể thụ động. 19 Bảng 3.2 Sơ đồ bố trí thí nghiệm Số gà trong thí nghiệm Lặp lại (lần) Nghiệm thức Nghiệm thức I Nghiệm thức II 1 7 7 7 2 7 7 7 3 7 7 7 đối chứng 3.3.3 Phương pháp lấy mẫu - Phương pháp lấy máu để kiểm tra kháng thể: + Để xác định hàm lượng kháng thể thụ động ở gà con, tiến hành lấy máu ở tim vào lúc 3, 10 ngày tuổi và tĩnh mạch cánh lúc 17, 24 ngày tuổi, mỗi con 0,5ml máu. + Để xác định hàm lượng kháng thể sau khi tiêm phòng vaccine. Tiến hành lấy máu ở tĩnh mạch cánh của gà sau khi tiêm vaccin lần 2 được 2 tuần (35 ngày tuổi), 4 tuần (49 ngày tuổi) và sau đó lấy định kỳ mỗi tháng một lần. Số mẫu cần lấy trong mỗi lần là 30% số gà thí nghiệm tương đương 7 mẫu. Mỗi con lấy 0,51ml máu cho vào ống nghiệm, ghi lại ký hiệu của gà thí nghiệm, khi lấy phải sát trùng bằng cồn 700. Đặt ống nằm nghiêng cho máu đông đến khi có huyết thanh đem ly tâm 2000 vòng/phút trong 15 phút, chiết lấy huyết thanh cho vào ống eppendorf bảo quản ở - 200C cho đến khi xét nghiệm. 3.3.4 Phương pháp xét nghiệm Thực hiện kiểm tra kháng thể kháng virus Gumboro bằng phản ứng ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorbent Assay). Nguyên lý Kỹ thuật ELISA là phản ứng huyết thanh học dựa vào phản ứng miễn dịch học giữa kháng nguyên và kháng thể chuẩn. Kháng nguyên hoặc kháng thể trong mẫu huyết thanh dương tính sẽ được gắn kết với kháng thể hoặc kháng nguyên đã được gắn sẵn trong giếng. Thành phần không gắn kết sẽ bị rửa trôi, phần giữ lại tiếp tục kết hợp với Conjugate (chất kết hợp) có enzyme peroxidase. Phản ứng 20 chuyển màu (từ không màu thành màu xanh dương) khi có sự tham gia của cơ chất Chromagen. Mức độ màu thể hiện ở mỗi giếng tương ứng với hàm lượng kháng thể ở mỗi mẫu xét nghiệm. Máy đọc ở bước sóng phù hợp sẽ xác định lượng kháng thể hoặc kháng nguyên bị giữ lại trong giếng. Phương pháp thực hiện Chuẩn bị mẫu: Cho 500l dung dịch pha mẫu vào mỗi giếng của đĩa 96 giếng (đĩa sạch). Đĩa này được gọi là đĩa pha loãng huyết thanh. Sau đó thêm 1l huyết thanh cần kiểm tra vào mỗi giếng (pha loãng theo tỷ lệ 1:500). Bắt đầu với giếng A5 và kết thúc bằng giếng H12 (di chuyển trái sang phải) như hình 3.1: A 1 + 2 + 3 - 4 - 5 1 6 2 7 3 8 4 9 5 10 6 11 7 12 8 B 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 C 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 D 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 E 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 F 57 57 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 G 69 70 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80 H 81 82 83 84 85 86 87 88 89 90 91 92 Hình 3.1 Sơ đồ bố trí huyết thanh xét nghiệm ELISA Dùng máy lắc trộn đều mẫu huyết thanh và dung dịch pha mẫu sau đó mới chuyển mẫu pha loãng sang đĩa phản ứng có hấp phụ kháng nguyên (virus Gumboro). Quy trình thực hiện phản ứng 1. Ghi lại vị trí của mẫu bố trí trên đĩa 2. Cho 100 l đối chứng dương tính không pha loãng vào giếng A1 và A2 3. Cho 100 l đối chứng âm tính không pha loãng vào giếng A3 và A4 4. Cho 100 l mẫu đã pha loãng vào đúng vị trí các giếng còn lại. 5. Ủ đĩa trong 30 phút ở nhiệt độ phòng. 6. Giũ hết chất lỏng trong các giếng vào bồn rửa dụng cụ. 21 7. Cho 350l nước cất vào mỗi giếng, sau đó loại bỏ các chất lỏng. Lập lại việc rửa 3 - 5 lần. 8. Cho 100l dung dịch Conjugate vào mỗi giếng. 9. Ủ trong 30 phút ở nhiệt độ phòng. 10. Lặp lại bước 6 và 7 ở trên. 11. Cho 100l dung dịch TMB vào mỗi giếng. 12. Ủ trong 15 phút ở nhiệt độ phòng. 13. Cho 100l dung dịch Stop vào mỗi giếng. 14. Đo và đọc kết quả bằng máy ELISA ở bước sóng 650nm. Tính toán kết quả - Trung bình đối chứng dương (PCX) = Giếng 1 + Giếng 2 2 - Trung bình đối chứng âm (NCX) = Giếng 3+ Giếng 4 2 - Tỷ số S/P= OD mẫu - NCX PCX – NCX - Hiệu giá kháng thể (X): Log10 X = 1,09 (log10 S/P) + 3,36 X = 10 ^ [1,09 (log10 S/P + 3,36)] Kết quả Kết quả IBD ELISA có giá trị khi mật độ quang học trung bình (OD) của đối chứng huyết thanh âm tính là nhỏ hơn 0,150 và trung bình dương tính lớn hơn 0,750. Nếu một trong những giá trị này vượt ra khỏi phạm vi, kết quả xét nghiệm IBD nên được coi là không hợp lý và mẫu phải được kiểm tra lại. Giá trị S/P trong phạm vi nhỏ hơn hoặc bằng 0,2 (hiệu giá kháng thể 396) cho kiểm tra huyết thanh âm tính và lớn hơn 0,2 cho kiểm tra huyết thanh dương tính. 22 3.4 Các chỉ tiêu theo dõi + Tình trạng sức khoẻ của đàn gà sau khi tiêm vaccine Phương pháp theo dõi tình trạng sức khoẻ của đàn gà sau khi tiêm vaccin: đàn gà sau khi tiêm ngừa vaccin Gumboro sẽ được ghi nhận và theo dõi tình trạng sức khoẻ, như có mệt mõi hay bỏ ăn sau khi tiêm vaccine hay không. + Tỷ lệ gà có đáp ứng miễn dịch sau tiêm phòng + Tỷ lệ dương tính với kháng thể (%) = Số mẫu dương tính x 100 Số mẫu kiểm tra + Theo dõi tốc độ tăng trưởng của gà qua các giai đoạn: giai đoạn nuôi úm (0-28 ngày tuổi), giai đoạn nuôi thịt (28 ngày tuổi-xuất chuồng) theo dõi bằng cách cân trọng lượng gà lúc 1 ngày tuổi, sau đó cân lại lúc kết thúc giai đọan úm và một lần nữa trước khi xuất chuồng lúc gà được 12 tuần tuổi, cân vào lúc sáng sớm trước khi cho gà ăn Tăng trọng qua các = trọng lượng cuối giai đoạn (g/con) - giai đoạn (g/con) trọng lượng đầu giai đoạn (g/con) + Mức tiêu tốn thức ăn qua các giai đoạn Cân lượng thức ăn đầu kỳ trước khi cho gà thí nghiệm ăn, sau đó cộng toàn bộ lượng thức ăn đã cho ăn trừ đi lượng thức ăn thừa lúc cuối kỳ. HSCHTĂ = Tổng lượng thức ăn qua các giai đoạn Tăng trọng qua các giai đoạn 3.5 Phƣơng pháp xử lý số liệu Tất cả các số liệu thô được xử lý bằng phần mềm Excel. So sánh tăng trọng giữa các nghiệm thức bằng phép thử t của phần mềm minitab 16.0. 23 Chƣơng 4 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 4.1 Tình trạng sức khoẻ của đàn gà sau khi tiêm vaccine Qua ghi nhận được trong quá trình thí nghiệm, sau khi tiêm vaccine có 2 gà thí nghiệm có biểu hiện mệt mỏi, ăn ít hơn những con khác. Tuy nhiên trạng thái này trở lại bình thường ở ngày hôm sau, sau khi gà được nghỉ ngơi. Những biểu hiện ở trên có thể là do gà còn nhỏ, khi tiêm vaccine cầm bắt gà nên có biểu hiện mệt mỏi. Điều này chứng tỏ rằng vacine Bal-IBD B38 an toàn khi sử dụng không gây gây sốc cho đàn gà. 4.2 Kết quả kiểm tra kháng thể thụ động mẹ truyền trên gà tàu thí nghiệm Bảng 4.1 Kết quả kiểm tra kháng thể thụ động mẹ truyền trên gà tàu thí nghiệm Ngày Số mẫu tuổi kiểm tra Số mẫu dƣơng tính Tỷ lệ (%) Tỷ số S/P (X±SE) Hiệu giá kháng thể (X±SE) 3 5 5 100 0,81±0,30 1877±758 10 5 5 100 0,44±0,05 930±108 17 5 3 60 0,20±0,02 394±31 24 5 0 0 0,12±0,02 236±38 X: giá trị trung bình, SE: sai số chuẩn Kết quả bảng 4.1 cho thấy, kháng thể thụ động mẹ truyền ở gà con duy trì đến 10 ngày tuổi với tỷ lệ dương tính là 100% và kháng thể này đủ mức bảo hộ cho gà con đến 10 ngày. Tuy nhiên đến 17 ngày tuổi chỉ còn 60% gà tồn tại kháng thể thụ động, trung bình đều dưới ngưỡng bảo hộ, hiệu giá kháng thể giảm đáng kể dưới mức bảo hộ 394 so với 396. Theo nghiên cứu của (Lê Văn Hùng, 1996), nghiên cứu miễn dịch thu được trên các bệnh truyền nhiễm do virus (Newcastle, Gumboro) cho thấy khi gây miễn dịch cho gà mẹ nhiều lần bằng vaccine sống và sau đó bằng vaccine vô hoạt thì trong máu gà mẹ có hàm lượng kháng thể cao và kháng thể mẹ truyền cho gà con, bảo vệ đàn gà con được 4-5 tuần tuổi. Nếu gà mẹ chỉ chủng ngừa bằng vaccine nhược độc thì kháng thể truyền chỉ bảo vệ cho gà con 1-3 tuần. Nhưng kết quả nghiên cứu trên kháng thể chỉ bảo hộ được cho gà con đến 10 ngày tuổi, điều này có thể là do gà mẹ có hàm lượng kháng thể thấp hoặc đàn gà mẹ chủng ngừa không đầy đủ. Song các nghiên 24 cứu gần đây cho thấy kháng thể truyền từ gà mẹ truyền sang gà con không ổn định, lúc cao, lúc thấp, không đồng đều giữa các con trong đàn. Qua đó cho thấy việc tiêm phòng cho gà bằng vaccine đang gặp trở ngại lớn nhất là kháng thể thụ động mẹ truyền, nên quy trình tiêm phòng bằng vaccine cho gà con không có lịch rõ ràng và cũng không có lịch áp dụng chung cho tất cả mọi nơi (Nguyễn Xuân Bình và ctv, 2000). 4.3 Khả năng bảo hộ của vaccin Gumboro đối với giống gà tàu vàng Bảng 4.2 Tỷ lệ đáp ứng miễn dịch sau khi tiêm vaccine lần hai 14 ngày (lúc gà 35 ngày tuổi) Nghiệm thức Số mẫu kiểm tra Số mẫu dƣơng tính Tỷ lệ (%) Tỷ số S/P (X±SE) Hiệu giá kháng thể (X±SE) NT1 7 7 100 0,38±0,09 804±194 Đối chứng 7 0 0 0,03±0,02 46±29 NT1: sử dụng vaccine, X: giá trị trung bình, SE: sai số chuẩn Qua kết quả bảng 4.2 cho thấy gà có tiêm phòng vaccine đều có đáp ứng miễn dịch 100% sau khi tiêm lần 2 được 14 ngày. Qua đó cho thấy vaccine đảm bảo đúng khuyến cáo của nhà sản xuất. Điều này phù hợp với nhận định của Lê Văn Năm (2004) tiêm vaccine sau 2-3 tuần cơ thể mới tạo miễn dịch, vì bình thường lúc đầu khi kháng nguyên mới vào cơ thể đã kích thích hệ thống miễn dịch nhưng cơ thể không thể sản sinh ra ngay kháng thể mà phải trải qua một thời gian nhất định. Bên cạnh đó, hiệu giá kháng thể đạt 804±194 đủ bảo hộ gà chống lại bệnh Gumboro. Theo tiêu chuẩn xét nghiệm của ELISA kit của hãng Idexx cho rằng hiệu giá 396 đủ bảo hộ gà. Trong khi đó những gà không tiêm phòng vaccine thì lúc 35 ngày tuổi hiệu giá kháng thể giảm đến mức thấp, gà hoàn toàn mẫn cảm với bệnh. Từ kết quả trên chứng tỏ gà có đáp ứng miễn dịch tốt với vaccine đang sử dụng. Nhằm theo dõi độ dài miễn dịch sau khi tiêm chúng tôi tiếp tục khảo sát hiệu giá kháng thể vào thời điểm gà được 49 ngày tuổi và 80 ngày tuổi, kết quả đươc thể hiện qua bảng 4.3 và 4.4 25 Bảng 4.3 Tỷ lệ đáp ứng miễn dịch sau khi tiêm vaccine lần hai 28 ngày (lúc gà 49 ngày tuổi) Nghiệm thức Số mẫu kiểm tra Số mẫu dƣơng tính Tỷ lệ (%) Tỷ số S/P (X±SE) Hiệu giá kháng thể (X±SE) NT1 7 7 100 2,24±0,21 5527±561 Đối chứng 7 0 0 0,01±0,01 11±8 NT1: sử dụng vaccine, X: giá trị trung bình, SE: sai số chuẩn Từ kết quả bảng 4.3 cho thấy gà có tiêm phòng vaccine cho đáp ứng miễn dịch cao 100% gà đều có kháng thể và hiệu giá kháng thể đạt 5527±561 với hiệu giá kháng thể này đảm bảo miễn dịch chắc chắn cho đàn gà. Tại thời điểm sau 28 ngày tiêm phòng lần 2 thì hiệu giá tăng cao hơn so với 14 ngày (804±194). Kết quả này phù hợp với nhận định của Phan Văn Lục (1999), sau khi tiêm vaccine Gumboro nhũ dầu vô hoạt cho gà, hàm lượng kháng thể Gumboro trong máu gà đạt đỉnh cao vào tuần thứ 4. Khi sử dụng vaccine Busaplex chống bệnh Gumboro cho gà đạt hiệu giá kháng thể bảo hộ lúc 42 ngày tuổi là cao nhất (Hoàng Thị Mỹ Hiền, 2009). Bảng 4.4 Tỷ lệ đáp ứng miễn dịch sau khi tiêm vaccine lần hai lúc gà 80 ngày tuổi Nghiệm thức Số mẫu kiểm tra Số mẫu dƣơng tính Tỷ lệ (%) Tỷ số S/P (X±SE) Hiệu giá kháng thể (X±SE) NT1 7 7 100 3,15±0,14 7997±392 Đối chứng 7 0 0 0 0 NT1: sử dụng vaccine, X: giá trị trung bình, SE: sai số chuẩn Kết quả bảng 4.4 cho thấy kháng thể vẫn được duy trì ở mức cao, đảm bảo đến giai đoạn xuất chuồng. Hàm lượng kháng thể tại thời điểm 80 ngày cho hiệu giá kháng thể cao nhất 7997±392. Vì đây là đáp ứng miễn dịch chủ động, vaccine Bal-IBD là loại vaccine sống. Khi tiêm vaccine sống thì sẽ cho đáp ứng miễn dịch bền và kéo dài. Theo Nguyễn Bá Hiên (2007), vaccine khi đưa vào cơ thể gà sẽ kích thích cơ thể tạo ra kháng thể, đây là loại kháng thể do cơ thể tạo ra nên nó có tính bền và lâu hơn, hơn nữa đây là loại vaccine sống có khả năng gây đáp ứng miễn dịch mạnh, chúng nhân lên trong cơ thể vật chủ và tiếp tục tạo ra kích thích của kháng nguyên trong một khoảng thời gian. Trong khi đó ở nghiệm thức không tiêm phòng vaccine hiệu giá kháng thể giảm đến mức không thể phát hiện qua phản ứng ELISA. Qua đó cho thấy việc tiêm phòng vaccine 2 lần đảm bảo 26 cho đàn gà thịt đến giai đoạn xuất bán thì hàm lượng kháng thể vẫn đủ khả năng bảo hộ cho đàn không mắc bệnh không cần phải tiêm nhắc lại lần 3. Tuy nhiên đối với đàn gà đẻ cần phải theo dõi độ dài miễn dịch để tiêm vaccine lặp lại theo định kỳ nhằm đảm bảo miễn dịch chắc chắn cho đàn gà con 4.4 Tăng trƣởng của gà Tàu vàng qua các giai đoạn 4.4.1 Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà Tàu giai đoạn 0-4 tuần tuổi Bảng 4.5 Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà Tàu giai đoạn 0-4 tuần tuổi Chỉ số NT1 (X±SE) NT2 (X±SE) P TL 1 ngày tuổi (g/con) 37,30±0,70 37,90±0,69 0,52 TL 4 tuần tuổi (g/con) 258,00±5,01 259,40±3,70 0,83 Tăng trọng (g/con/ngày) 7,88±0,19 7,91±0,14 0,90 T.Ă tiêu thụ (g/con/ngày) 17,43±4,49 17,92±4,52 0,23 HSCH.TĂ (g TĂ/g tăng trọng) 2,22±0,05 2,27±0,04 0,48 NT1: sử dụng vaccine-lấy máu, NT2: sử dụng vaccine-không lấy máu, TL: trọng lượng,T.Ă: thức ăn, HSCH.TĂ: hệ số chuyển hóa thức ăn, X: giá trị trung bình, SE: sai số chuẩn Kết quả bảng 4.5 cho thấy nghiệm thức lấy máu ở giai đoạn 1 ngày tuổi trọng lượng trung bình là 37,30 g/con, nghiệm thức không lấy máu là 37,90 g/con, sự sai khác về trọng lượng giữa 2 nghiệm thức là không có ý nghĩa thống kê (P>0,05). Điều này chứng tỏ rằng gà thí nghiệm đồng đều nhau về trọng lượng ở mỗi nghiệm thức. Qua 4 tuần nuôi úm ở nghiệm thức lấy máu đạt trọng lượng 258 g/con, nghiệm thức không lấy máu là 259,40 g/con. Sự khác biệt này không có ý nghĩa qua phân tích thống kê. Qua đó cho thấy có sự giống nhau về điều kiện thí nghiệm, chăm sóc nuôi dưỡng gà giữa các nghiệm thức. Hệ số chuyển hoá thức ăn bình quân trong giai đoạn úm của nghiệm thức lấy máu là 2,22, nghiệm thức không lấy máu là 2,27, sự khác biệt giữa các nghiệm thức không có ý nghĩa thống kê (P>0,05). Theo nghiên cứu của Đỗ Võ Anh Khoa và Nguyễn Minh Thông (2013), hệ số chuyển hoá thức ăn ở gà Tàu vàng qua 4 tuần nuôi đầu tiên là 2,17. Sự chênh lệch về hệ số chuyển hoá thức ăn giữa 2 nghiên cứu có thể do nghiên cứu của Đỗ Võ Anh Khoa và Nguyễn Minh Thông thực hiện trên giống gà 27 Tàu vàng thế hệ F2, thì sự chọn lọc di truyền giúp thế hệ F2 có sức tăng trưởng cao nên hệ số chuyển hoá thức ăn thấp hơn. 4.4.2 Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà giai đoạn 4-12 tuần tuổi Bảng 4.6: Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà Tàu giai đoạn 4-12 tuần tuổi Chỉ số NT1 (X±SE) NT2 (X±SE) P TL 4 tuần tuổi (g/con) 258,00±5,01 259,40±3,70 0,83 TL 12 tuần tuổi (g/con) 1295,50±52,80 1356,50±58,20 0,39 Tăng trọng (g/con/ngày) 18,53±0,92 19,59±1,06 0,40 T.Ă tiêu thụ (g/con/ngày) 58,43±7,27 60,04±7,78 0,11 HSCH.TĂ (kg TĂ/kg tăng trọng) 3,22±0,15 3,14±0,16 0,69 NT1: sử dụng vaccine-lấy máu, NT2: sử dụng vaccine- không lấy máu. TL: trong lượng, T.Ă: thức ăn, HSCH.TĂ: hệ số chuyển hóa thức ăn, X: giá trị trung bình, SE: sai số chuẩn Từ kết quả bảng 4.6 cho thấy qua phân tích các chỉ số theo dõi ở giai đoạn từ 4-12 tuần tuổi giữa 2 nghiệm thức đều khác biệt không có ý nghĩa thống kê. Mặc dù trọng lượng của gà ở nghiệm thức 1 (có lấy máu định kỳ lúc 35, 49, 80 ngày tuổi) là 1295,50 g/con thấp hơn gà ở nghiệm thức 2 (nghiệm thức đối chứng có tiêm vaccine theo quy trình nhưng không lấy máu) là 1356,50 g/con, nhưng sai khác không có ý nghĩa thống kê. Qua đó việc lấy máu chưa thấy có sự ảnh hưởng đến tăng trọng của gà. Tăng trọng ở giai đoạn này bình quân dao động 18,5319,59 g/con/ngày cao hơn so với giai đoạn nuôi úm tăng trọng bình quân 7,887,91 g/con/ngày. Vì sau giai đoạn nuôi úm khả năng sinh trưởng cao. Hệ số chuyển hoá thức ăn ở nghiệm thức 1 là 3,22, còn ở nghiệm thức 2 là 3,14. Theo nghiên cứu của Lâm Minh Thuận (2002) thì hệ số chuyển số chuyển hoá thức ăn đến giai đoạn này là 3,25. 28 Chƣơng 5 KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ 5.1 Kết luận Kháng thể mẹ truyền bảo hộ 100% cho đàn gà con đến 10 ngày tuổi. Tỷ lệ đáp ứng miễn dịch sau tiêm phòng là 100%. Mức độ bảo hộ của vaccine Gumboro tại thời điểm 35 ngày tuổi với hiệu giá kháng thể đạt 804±194. Mức độ bảo hộ của vaccine Gumboro tại thời điểm 49 ngày tuổi với hiệu giá kháng thể đạt 5527±561. Mức độ bảo hộ của vaccine Gumboro tại thời điểm 80 ngày tuổi với hiệu giá kháng thể đạt 7997±392. Sự tăng trưởng của gà Tàu vàng lúc 4 tuần tuổi trọng lượng bình quân dao động 258,00-259,40 g/con. Tiêu tốn thức ăn ở giai đoạn này là 17,43-17,92 g/con/ngày, hệ số chuyển hóa thức ăn 2,22-2,27 g TĂ/g tăng trọng. Sự tăng trưởng của gà Tàu vàng lúc 12 tuần tuổi trọng lượng bình quân dao động 1295,50-1356,50 g/con. Tiêu tốn thức ăn ở giai đoạn này là 58,43-60,04 g/con/ngày, hệ số chuyển hóa thức ăn là 3,14-3,22 kg TĂ/kg tăng trọng. 5.2 Đề nghị Số cá thể thí nghiệm phải nhiều hơn để làm tăng độ chính xác của kết quả. Nghiên cứu thêm về khả năng hấp thu và duy trì kháng thể thụ động trên các giống gà khác. Đề nghị các cơ quan khuyến nông, thú y phổ biến các lợi ích của việc tiêm phòng vaccine phòng bệnh đúng quy trình kỹ thuật cho đàn gà nhất là đối với vaccine phòng bệnh Gumboro. Nên khảo sát hiệu quả phòng bệnh Gumboro của vaccine Bal-IBD trên nhiều giống gà khác nhau để cho kết quả chính xác hơn. 29 TÀI LIỆU THAM KHẢO Tiếng việt Đái Duy Ban và Phạm Công Hoạt (2004), vaccine Gumboro phòng chống suy giảm miễn dịch cho gia cầm, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr. 9 – 56. Đỗ Võ Anh Khoa và Nguyễn Minh Thông (2013), Ảnh hưởng của các loại thức ăn công nghiệp lên khả năng sinh trưởng và FCR ở gà Tàu Vàng giai đoạn 1-4 tuần, Tạp chí khoa học trường Đại Học Cần Thơ, tr.114-118. Hoàng Thị Mỹ Hiền (2009), Ðánh giá độ an toàn và hiệu lực của vaccine bursaplex phòng bệnh Gumboro trên gà khi tiêm chủng qua phôi trứng 18 ngày tuổi, Tủ sách khoa Nông Nghiệp, Trường Đại học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh. Hồ Thị Việt Thu (2012), Bệnh gia cầm, NXB Đại Học Cần Thơ, tr.19-21. Lâm Minh Thuận (2002) Khảo sát khả năng sản xuất thịt của gà Tàu vàng nuôi tại Bà Rịa Vũng Tàu , Tủ sách khoa Nông Nghiệp, Trường Đại học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh. Lê Thanh Hòa (1992), Bệnh Gumboro suy giảm miễn dịch gia cầm, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr.10-14. Lê Thanh Hòa (2003), Sinh học phân tử virus Gumboro nghiên cứu ứng dụng tại Việt Nam, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr. 7 - 89. Lê Thanh Hòa (2003), Bước đầu khảo sát nguồn gốc và phả hệ virus cường độc Gumboro phân lập ở Hà Nội và vùng phụ cận, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, tập X (số 3 - 2003), Hội thú y Việt Nam. Lê Văn Hùng & Nguyễn Phước Ninh (1995), Nghiên cứu miễn dịch thu được chống bệnh Gumboro trên gà, hội nghị khoa học ngành chăn nuôi thú y, Đại học nông lâm 1995, tr. 20-25. Lê Văn Hùng (1996), Nghiên cứu miễn dịch thu được trên các bệnh truyền nhiễm do virus (Newcastle, Gumboro) đề xuất những cải tiến trong quy trình phòng bệnh bằng vaccine cho gà, Luận án PTS Khoa học Nông nghiệp, Đại Học Nông Lâm TP. Hồ Chí Minh, tr. 11-12. Lê Văn Năm (1996), 60 câu hỏi và đáp về những bệnh ghép phức tạp ở gà, NXB Nông Nghiệp, tr. 48-54. Lê Văn Năm (2003), Hướng dẫn điều trị bệnh ghép phức tạp ở gà, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr.12-13, 170-171. 30 Lê Văn Năm (2004), Bệnh Gumboro ở gà và biện pháp phòng trị, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr.1- 53. Lê Hồng Mận và Bùi Đức Lũng (2004), Kỹ thuật nuôi gà công nghiệp lông màu thả vườn và phòng trị một số bệnh, NXB Lao Động Xã Hội, tr. 169-171. Lê Hồng Mận và Phương Song Liên (1999), Bệnh gia cầm và biện pháp phòng trị, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr. 34-35. Nguyễn Bá Hiên (2007), Giáo trình miễn dịch học ứng học, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr 73 Nguyễn Bá Thành (2004), Khảo sát đặc tính gây bệnh thực nghiệm của chủng virut Gumboro 52/70 và chủng phân lập tại địa phương trên gà con có hiệu giá kháng thể mẹ truyền cao, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, tập XI (số 2 - 2005), Hội thú y Việt Nam, tr. 26 - 32. Nguyễn Bá Thành (2006), Nghiên cứu một số đặc điểm dịch tễ bệnh Gumboro, virus gây bệnh và đề xuất quy trình tiêm chủng vaccine phù hợp để phòng bệnh cho đàn gà tại tỉnh Đồng Nai, Luận án tiến sĩ nông nghiệp, Đại học Nông Lâm thành phố Hồ Chí Minh, tr. 4-43. Nguyễn Đăng Khải (1988), Bệnh Gumboro ở gia cầm’, Thông tin thú y tháng 10 – 1988. Nguyễn Như Thanh, Nguyễn Bá Hiên và Trần Thị Lan Hương (1997), Vi sinh vật thú y, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr. 246 – 251. Nguyễn Hồng Minh, Trần Thị Liên, Trương Quang (2011), Kết quả nghiên cứu đáp ứng miễn dịch chống bệnh Gumboro của gà được sử dụng vaccine đơn giá và đa giá sản xuất tại xí nghiệp thuốc thú y trung ương, Tạp chí Khoa học kỹ thuật thú y, tập IIX (số 4 - 2011), Hội thú y Việt Nam, tr. 13 – 19. Nguyễn Thành Trung (1997), Tình hình và biện pháp phòng tổng hợp bệnh Gumboro tại xí nghiệp gia cầm Meko, Luận án thạc sĩ Khoa học Nông Nghiệp, Đại học Cần Thơ, tr. 9-21. Nguyễn Xuân Bình, Trần Xuân Hạnh và Tô Thị Phấn (2000), 43 bệnh gia cầm và biện pháp phòng trị, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr. 170-179. Nguyễn Xuân Bình, Trần Xuân Hạnh, Tô Thị Phấn (2005), 109 bệnh gia cầm và biện pháp phòng trị, NXB Nông Nghiệp Hà Nội, tr. 156-164. Phạm Sĩ Lăng và Nguyễn Thiện (2004), Một số bệnh mới do virus ở gia súc, gia cầm nhập nội và biện pháp phòng trị, NXB NN Hà Nội, tr 170-171. Tài liệu tập huấn của trung tâm chẩn đoán thú y vùng, tr. 112- 120. 31 Trần Minh Châu, Dương Công Thuận và Bitayzotan (1982), Phát hiện bệnh Gumboro ở gà công nghiệp, đăng trong kết quả nghiên cứu khoa học và kỹ thuật thú y của viện thú y (1979-1984), tr 28 -31. Võ Thị Trà An và Võ Ngọc Bảo (2011), Vaccin trong thú y, NXB Nông Nghiệp Thành Phố Hồ Chí Minh, tr. 10-20 Tiếng Anh Allan W.H., Faragher J.T., and Cullen G.A. (1972), Immunosuppression by the infectious bursal agent in chickens immunized against Newcastle disease, Veterinary Record 90, pp. 511-512. Benton, H.1967. Infectious bursal virus disease virus, Current Top Microbiology and Immunology 90, pp 107-121. Chaisingha, A, trongwiongsa, I. Panoolsinsap, T, Tantas Wasdi (1992), The virulence of the infectious bursal disease virus isolated in 1991’, Proceeding of the 11th Annual Livesrock Conference F. 48, (1992). Cheville, N.F. (1967), Study on pathogenesis of Gumboro disease in the bursal of Fabricius, speen and thymus of the chicken, Journal of Pathology, 51, pp.527551. Cosgrove A.S. (1962), An apparently new disease of Chicken – Avian nephrosis, Avian Diseases, pp. 282-287. Jackwood D.J.; Y.M. Saif and P.D. Moorhead, 1985. Immunogenicity and antigenicity of infectious bursal disease virus serotypes I and II in chickens. Avian disease, 29, pp 1184-1194 Hirai K, K. Kunihiro and Shimakura S. (1979), Characterization of immunosuppression in chickens by infectious bursal disease virus, Nucleic Acids Research, 14, pp. 5001-5010. Luckert P.D and Y.M Saif, 1991. Infectious bursal disease, disease of poultry, ninth edition, IOWA, VSA.F. pp 643-663 Lucio, B & Hitchner S.B (1979), Infectious bursal disease emulsifield vaccine: Effect upon neutralizing antibody levels in the dam and supsequent protection of the progeny, Avian Diseases, 23, pp. 466-478. Mc Ferran J.B, Mc Nulty M.S, Odenwale W.F. Conner T.J, Mc Cracker R. M, Collin D.S and Allan G. M. (1980), Isolation and serological studies with infectious bursal disease viruses from 10 weeks turkey and duck, Demonstration of second serotypes, Avian Pathology, 9, pp. 395-404. 32 Rosenberger J. K and Cloud S.S. (1985), Isolation and characterizatin of variant infectious bursal disease viruses, Journal American Veterinary Medicine Association, 18, pp. 375. Skeeles J.K, Lukert P.D, Fletcher O.J, and Leonard (1979), Immunization studies with a cell-culture-adapted infectious bursal disease virus, Avian diseases 23, pp.456465. . Internet www.anova.com.vn/contents/article.asp?id=285&detail=16&ucat=44, www.ebook.edu.vn/?page=1.1&view=7250 www.vemedim.vn/benhvadieutri.php?id=3&b=38 http://marphavet.com/modules.php?name=News&opcase=detailsnews&mid=29&mcid= 330 http://srmo.hcmuaf.edu.vn/data/file/tap%20chi/2002/CNTY www.bestar.com.tw 33 PHỤ CHƯƠNG 1 Thành phần dinh dưỡng thức ăn của gà thí nghiệm Hỗn hợp C225 viên cho gà ta, gà tàu từ 1-42 ngày tuổi Nguyên liệu chính: Bắp, tấm, cám gạo, cám mì, khoai mì, bánh dầu đậu nành, bánh dầu cải, đạm động vật và thực vật, vitamin, khoáng, phụ gia. Thành phần dinh dưỡng: Năng lượng trao đổi (min) 2850Kcal/kg Protein thô (đạm) (min) 20% Xơ thô (max) 7% Canxi (min-max) 0,7-1,6% Phospho tổng số (min-max) 0,5-1,1% Lysine tổng số (min) 1,0% Methionine + Cystine (min) 0,8% Colistine (max) 80mg/kg Độ ẩm (max) 13% Hỗn hợp C235 viên cho gà ta, gà tàu trên 42 ngày tuổi Nguyên liệu chính: chất bột đường, đạm động vật và thực vật, vitamin, khoáng vi-đa lượng, phụ gia. Thành phần dinh dưỡng: Năng lượng trao đổi (min) 2900Kcal/kg Protein thô (đạm) (min) 16,5% Xơ thô (max) 6% Canxi (min-max) Phospho tổng số Nacl Độ ẩm (min) (min- max) (max) 0,7-1,5% 0,45% 0,2-0,5% 13% PHỤ CHƯƠNG 2 Một số hình ảnh trong quá trình làm thí nghiệm Máy ly tâm Máy đọc ELISA Đĩa ELISA eppendorf Lô gà thí nghiệm Nhỏ vaccine cho gà thí nghiệm PHỤ CHƯƠNG 3 Kết quả xử lý thống kê Bảng 4.5 Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà Tàu giai đoạn 0-4 tuần tuổi Paired T-Test and CI: NT 1. NT 3 Paired T for NT 1 - NT 3 NT 1 NT 3 Difference N 10 10 10 Mean 37,300 37,900 -0,600 StDev 2,214 2,183 2,836 SE Mean 0,700 0,690 0,897 95% CI for mean difference: (-2,629. 1,429) T-Test of mean difference = 0 (vs not = 0): T-Value = -0,67 P-Value = 0,520 Paired T-Test and CI: NT 1. NT 3 Paired T for NT 1 - NT 3 NT 1 NT 3 Difference N 10 10 10 Mean 258,00 259,40 -1,40 StDev 15,85 11,70 20,48 SE Mean 5,01 3,70 6,48 95% CI for mean difference: (-16,05. 13,25) T-Test of mean difference = 0 (vs not = 0): T-Value = -0,22 P-Value = 0,834 Paired T-Test and CI: NT 1. NT 3 Paired T for NT 1 - NT 3 NT 1 NT 3 Difference N 10 10 10 Mean 7,882 7,911 -0,029 StDev 0,593 0,428 0,715 SE Mean 0,188 0,135 0,226 95% CI for mean difference: (-0,540. 0,483) T-Test of mean difference = 0 (vs not = 0): T-Value = -0,13 P-Value = 0,902 Paired T-Test and CI: NT 1. NT 3 Paired T for NT 1 - NT 3 NT 1 NT 3 Difference N 4 4 4 Mean 17,43 17,92 -0,491 StDev 8,98 9,04 0,653 SE Mean 4,49 4,52 0,326 95% CI for mean difference: (-1,530. 0,548) T-Test of mean difference = 0 (vs not = 0): T-Value = -1,50 P-Value = 0,230 Paired T-Test and CI: NT 1. NT 3 Paired T for NT 1 - NT 3 NT 1 NT 3 Difference N 10 10 10 Mean 2,2227 2,2710 -0,0483 StDev 0,1721 0,1209 0,2060 SE Mean 0,0544 0,0382 0,0651 95% CI for mean difference: (-0,1957. 0,0990) T-Test of mean difference = 0 (vs not = 0): T-Value = -0,74 P-Value = 0,477 Bảng 4.6 Kết quả tăng trọng, tiêu tốn thức ăn của gà Tàu giai đoạn 4-12 tuần tuổi Paired T-Test and CI: NT 1. NT 3 Paired T for NT 1 - NT 3 NT 1 NT 3 Difference N 10 10 10 Mean 1295,5 1356,5 -61,0 StDev 166,9 184,2 212,5 SE Mean 52,8 58,2 67,2 95% CI for mean difference: (-213,0. 91,0) T-Test of mean difference = 0 (vs not = 0): T-Value = -0,91 P-Value = 0,388 Paired T-Test and CI: NT 1. NT 3 Paired T for NT 1 - NT 3 NT 1 NT 3 Difference N 10 10 10 Mean 18,53 19,59 -1,06 StDev 2,90 3,35 3,81 SE Mean 0,92 1,06 1,21 95% CI for mean difference: (-3,79. 1,66) T-Test of mean difference = 0 (vs not = 0): T-Value = -0,88 P-Value = 0,400 Paired T-Test and CI: NT 1. NT 3 Paired T for NT 1 - NT 3 NT 1 NT 3 Difference N 8 8 8 Mean 58,43 60,04 -1,611 StDev 20,56 22,00 2,488 SE Mean 7,27 7,78 0,880 95% CI for mean difference: (-3,691. 0,468) T-Test of mean difference = 0 (vs not = 0): T-Value = -1,83 Paired T-Test and CI: NT 1. NT 3 Paired T for NT 1 - NT 3 N Mean StDev SE Mean P-Value = 0,110 NT 1 NT 3 Difference 10 10 10 3,218 3,139 0,079 0,462 0,490 0,610 0,146 0,155 0,193 95% CI for mean difference: (-0,358. 0,516) T-Test of mean difference = 0 (vs not = 0): T-Value = 0,41 P-Value = 0,692 [...]... đàn gà Mục tiêu đề tài: Khảo sát khả năng đáp ứng miễn dịch của giống gà Tàu vàng sau tiêm phòng đối với vaccine Gumboro Theo dõi khả năng sinh trưởng và phát triển của giống gà Tàu vàng 1 Chƣơng 2 CƠ SỞ LÝ LUẬN 2.1 Khái quát về bệnh Gumboro và tình hình nghiên cứu 2.1.1 Khái quát về bệnh Gumboro Bệnh Gumboro là bệnh truyền nhiễm của gà do virus gây ra Bệnh chỉ biểu hiện triệu chứng lâm sàng khi gà. .. loại vaccine, lần sau dùng vaccine khác trên cùng một đàn gà và hậu quả là đàn gà đã phòng vaccine nhưng bệnh Gumboro vẫn xảy ra Từ thực tế trên chúng tôi tiến hành đề tài: Khảo sát khả năng đáp ứng miễn dịch của gà Tàu vàng đối với vaccine Bal- IBD phòng bệnh Gumboro của Singapore Từ kết quả nghiên cứu là cơ sở khoa học khuyến cáo một cách phù hợp và hiệu quả cho việc sử dụng vaccine phòng bệnh Gumboro. .. đoạn nghiên cứu Các loại vaccine này đại diện cho những chiến lược khác nhau, nhằm giảm nguy cơ nhiễm bệnh, trong khi tạo được đáp ứng miễn dịch có lợi cho cơ thể Đáp ứng miễn dịch là một phản ứng của cơ thể tạo được bảo hộ chống lại mầm bệnh Đáp ứng miễn dịch tạo ra kháng thể gọi là miễn dịch dịch thể Đáp ứng miễn dịch do các tế bào có vai trò tiêu diệt mầm bệnh gọi là miễn dịch tế bào (trích dẫn Võ... Nghiệm thức 1: gà được tiêm phòng vaccine đầy đủ theo quy trình phòng bệnh chung và lấy máu định kỳ để theo dõi khả năng đáp ứng miễn dịch Nghiệm thức 2: gà được tiêm phòng vaccine đầy đủ theo quy trình phòng bệnh chung nhưng không lấy máu, nhằm so sánh khả năng tăng trọng so với lấy máu định kỳ Nghiệm thức đối chứng: gà được tiêm phòng theo quy trình phòng bệnh chung nhưng không tiêm vaccine Gumboro và... hộ gà chống lại bệnh Gumboro Theo tiêu chuẩn xét nghiệm của ELISA kit của hãng Idexx cho rằng hiệu giá 396 đủ bảo hộ gà Trong khi đó những gà không tiêm phòng vaccine thì lúc 35 ngày tuổi hiệu giá kháng thể giảm đến mức thấp, gà hoàn toàn mẫn cảm với bệnh Từ kết quả trên chứng tỏ gà có đáp ứng miễn dịch tốt với vaccine đang sử dụng Nhằm theo dõi độ dài miễn dịch sau khi tiêm chúng tôi tiếp tục khảo sát. .. thanh gà thí nghiệm Vaccine phòng bệnh đậu gà, vaccine phòng bệnh cúm gia cầm, vaccine phòng bệnh Newcastle, vaccine tụ huyết trùng gia cầm, vaccine nhược độc phòng bệnh Gumboro BAL- IBD do Bestar Laboratories PTE LTD Singapore sản xuất 17 Dung dịch sinh lý 0,85%, nước cất, ELISA kit (USA) do công ty Thịnh Á phân phối Thành phần bộ kit: STT 1 2 3 4 5 6 7 Thành phần Đĩa 96 giếng đã hấp phụ kháng nguyên Đối. .. cầm đối với bệnh Gumboro Trước đây, trong nhiều tài liệu cho rằng gà bị bệnh Gumboro thường từ 3 - 6 tuần tuổi, Lê Văn Năm đã quan sát thấy ngoài lứa tuổi từ 3 - 6 tuần, ở thể lâm sàng bệnh còn xảy ra ở gà 8 ngày tuổi và 96 ngày tuổi Nói cách khác dao động độ tuổi gà bị bệnh thường có biên độ lớn Gà nhỏ hơn 3 tuần tuổi thường mắc bệnh ở thể ẩn Gà Ri Việt Nam có sức đề kháng khá tốt đối với bệnh Gumboro. .. thống miễn dịch hoặc mất khả năng đáp ứng miễn dịch đối với vaccine phòng các bệnh khác và dễ bị cảm nhiễm các bệnh truyền nhiễm khác Bệnh thường xảy ra khi gà ở giai đoạn từ 3 - 6 tuần tuổi, tỷ lệ nhiễm bệnh có thể lên đến 100% và tỷ lệ chết có thể từ 20 - 50% (Phạm Sĩ Lăng và Nguyễn Thiện, 2004) Vì vậy, trong chăn nuôi gà, nhất là chăn nuôi tập trung với số lượng lớn, biện pháp quan trọng là phòng bệnh. .. 4.3 cho thấy gà có tiêm phòng vaccine cho đáp ứng miễn dịch cao 100% gà đều có kháng thể và hiệu giá kháng thể đạt 5527±561 với hiệu giá kháng thể này đảm bảo miễn dịch chắc chắn cho đàn gà Tại thời điểm sau 28 ngày tiêm phòng lần 2 thì hiệu giá tăng cao hơn so với 14 ngày (804±194) Kết quả này phù hợp với nhận định của Phan Văn Lục (1999), sau khi tiêm vaccine Gumboro nhũ dầu vô hoạt cho gà, hàm lượng... Fabricius Vaccine có độc lực trung bình thường được sử dụng nhất (Hồ Thị Việt Thu, 2012) Vaccine vô hoạt: thường được sử dụng trên các đàn gà giống Quy trình tiêm phòng phụ thuộc vào tình hình dịch bệnh từng nơi và tình trạng miễn dịch của đàn gà Vệ sinh phòng bệnh: áp dụng nghiêm ngặt quy trình phòng bệnh, đồng nhập, đồng xuất (all in – all out) Tiêm phòng cho đàn gà giống để tạo miễn dịch thụ động cho gà