Chương 12 cấu trúc và chức năng của phức hợp ngà tủy

C H A P T E R 12 Cấu Trúc Và Chức Năng Của Phức Hợp Tủy Ngà KEIJO LUUKKO, PÄIVI KETTUNEN, INGE FRISTAD, and ELLEN BERGGREEN CHAPTER OUTLINE SỰ PHÁT TRIỂN Các Giai Đoạn Phát Triển Sự Phát Triển Của Hệ Thần Kinh Răng Kiểm Soát Phân Tử Của Axon Sinh Ba Sự Phân Chia Của Tế Bào Răng Sự Phát Triển Chân Răng Các Ống Tủy Phụ Của Chân Răng NGÀ Ngà Sơ Câp, Ngà Thứ Cấp Và Ngà Thứ Ba Bó Vỏ Ngà Ngà Chung Quanh Tủy Tiền Ngà Ngà Liên Ống Ngà Trong Ống Xơ Cứng Ngà Ngà Liên Cầu Dịch Ngà Tính Thấm Ngà ĐẶC ĐIỂM C.

CHAPTER 12 Cấu Trúc Và Chức Năng Của Phức Hợp Tủy-Ngà KEIJO LUUKKO, PÄIVI KETTUNEN, INGE FRISTAD, and ELLEN BERGGREEN* CHAPTER OUTLINE SỰ PHÁT TRIỂN Các Giai Đoạn Phát Triển Sự Phát Triển Của Hệ Thần Kinh Răng Kiểm Soát Phân Tử Của Axon Sinh Ba Sự Phân Chia Của Tế Bào Răng Sự Phát Triển Chân Răng Các Ống Tủy Phụ Của Chân Răng NGÀ Ngà Sơ Câp, Ngà Thứ Cấp Và Ngà Thứ Ba Bó Vỏ Ngà Ngà Chung Quanh Tủy Tiền Ngà Ngà Liên Ống Ngà Trong Ống Xơ Cứng Ngà Ngà Liên Cầu Dịch Ngà Tính Thấm Ngà ĐẶC ĐIỂM CƠ HỌC CỦA NGÀ CHÂN RĂNG VÙNG HÌNH THÁI CỦA TỦY Phức Hợp Ngà-Tủy Lớp Tế Bào Tạo Răng Vùng Nghèo Tế Bào Vùng Giàu Tế Bào Tủy Chính TẾ BÀO TỦY Mối Quan Hệ Của Cấu Trúc Tế Bào Tạo Răng Với Chức Năng Tiết Tế Bào Sợi Tủy Đại Thực Bào Tế Bào Đuôi Gai Tế Bào Lympho Dưỡng Bào CHUYỂN HĨA KHƠNG GIAN KẼ VÀ CHẤT NỀN Hyaluronan Sợi Elastic Vùng Kẽ Viêm SỢI MÔ NỐI CỦA TỦY PHÂN BỐ DÂY THẦN KINH Tổn Thương Mô Và Khử Hướng Tâm Thử Nghiệm Tủy Độ Nhạy Của Ngà Peptid Thần Kinh Độ Mềm Dẻo Của Sợi Thần Kinh Trong Răng Tăng Cảm Đau HỆ THỐNG TUẦN HỒN Điều Chỉnh Dịng Máu Tủy Tuần Hồn Trong Tủy Viêm SỬA CHỮA TỦY VƠI HĨA TỦY THAY ĐỔI THEO TUỔI TÁC Tế Bào Tạo Răng Đuôi Tế Bào Tạo Răng Từ nhiều góc độ, tủy mơ độc đáo Nó mơ mềm có nguồn gốc trung mô với tế bào đặc hiệu, tế bào tạo răng, xếp ngoại biên tiếp xúc trực tiếp với ngà Các mối quan hệ chặt chẽ tế bào tạo ngà răng, gọi phức hợp ngà- tủy,115,278,342 nhiều lý ngà tủy nên xem xét thực thể chức có yếu tố mô học khác biệt Đặc biệt, số tính chất độc đáo áp *The authors acknowledge the outstanding work of Drs Henry Trowbridge, Syngcuk Kim, Hideaki Suda, David H Pashley, and Fredrick R Liewehr in previous editions of this text The present chapter is built on their foundational work 452 đặt tủy ngà khống hóa cứng kèm theo Nó nằm mơi trường hạn hẹp làm hạn chế khả mở rộng giai đoạn giãn mạch tăng thấm lọc Bởi tủy tương đối không nén được, tổng khối lượng buồng tủy tăng lên nhiều (mặc dù thay đổi khối lượng đối ứng xảy tiểu động mạch, tiểu tĩnh mạch, mạch bạch huyết, mô ngoại mạch) Như hệ quả, phản ứng viêm dẫn đến tăng áp lực mơ gia tăng hạn chế thể tích chất lỏng.141,143 Trong tủy răng, đó, điều hịa thận trọng dòng máu chảy quan trọng CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex Tủy nhiều cách tương tự mô kết nối khác thể, tính chất đặc biệt xứng đáng xem xét nghiêm túc Ngay tủy trưởng thành dù giống với mô liên kết phôi thai nguồn tế bào gốc tương đối phong phú (xem chương 16) Tuy chứa số lượng thành phần mô, bao gồm sợi trục axon, mô mạch máu, sợi mô liên kết, chất nền, dịch kẽ, tế bào tạo răng, nguyên bào sợi, tế bào miễn dịch, thành phần tế bào khác Những thành phần đáp ứng tự động với kích thích phát triển, sinh lý (ví dụ, chỉnh hình lực nhai) kích thích bệnh lý Các mơ hình phản ứng động tổng thể đóng vai trị quan trọng việc mơ tủy thích nghi tiến tới hoại tử mơ tác nhân kích thích (xem chương 13) Tủy cung cấp hệ thống tuần hồn vi mơ, thành phần mạch máu lớn tiểu động mạch tiểu tĩnh mạch Không giống hầu hết mô, tủy thiếu hệ thống tuần hoàn bổ trợ thực phụ thuộc vào số tiểu động mạch thơng qua lỗ chóp Hệ thống mạch máu giảm dần theo tuổi.24 Tủy quan cảm giác độc đáo Bởi bọc lớp bảo vệ ngà, bao phủ với men, dự kiến hồn tồn khơng đáp ứng với kích thích Tuy nhiên, bất chấp dẫn nhiệt thấp ngà răng, phủ nhận tủy nhạy cảm với kích thích nhiệt,chẳng hạn kem đồ uống nóng Các chế bất thường cho phép phức hợp ngà-tủy115,278,342 với chức hệ thống cảm ứng sắc sảo thảo luận sau chương Sau phát triển răng, tủy giữ lại khả để tạo thành ngà suốt đời Điều cho phép tủy sống bù đắp phần cho mát men ngà gây chấn thương học bệnh tật Làm thực chức phụ thuộc vào nhiều yếu tố, khả tái sinh sửa chữa nhiều thực tế tủy giống mô liên kết khác thể Chương quy tụ biết phát triển, cấu trúc chức phức hợp ngà răng-tủy với hy vọng kiến thức cung cấp sở sinh học cho việc định lâm sàng SỰ PHÁT TRIỂN Các nghiên cứu phơi thai tủy có nguồn gốc từ mào thần kinh đầu Tế bào mào thần kinh phát sinh từ ngoại bì dọc theo lề bên thần kinh di chuyển lan rộng Thành phần xuống hai bên đầu vào hàm hàm đóng góp vào hình thành mầm Nhú răng, từ tủy trưởng thành phát sinh, bắt đầu phát triển tế bào ngoại trung mô sinh sôi nảy nở ngưng tụ tiếp giáp với biểu mơ (Hình 12-1) Điều quan trọng nên nhớ tiềm di cư tế bào ngoại trung mô sau chương xem xét khả tế bào tủy di chuyển vào khu vực chấn thương thay tế bào tạo bị phá hủy Trong tuần thứ sáu phơi thai, hình thành bắt đầu dày lên khu trú ngoại bì gắn liền với trình hàm hàm Hoạt động tạo kết hình thành hai cấu trúc hình móng ngựa, cho trình Những cấu trúc gọi sơ khởi Mỗi sơ khởi chia tách thành tiền đình (Hình 12-2) 453 Hình 12-1 Lá (mũi tên) phát triển từ ngoại bì miệng Vestibular lamina Dental lamina Hình 12-2 Sơ đồ cho thấy hình thành tiền đình từ ngoại bì miệng Nhiều nghiên cứu phát triển phôi thai mô thúc đẩy tương tác với mô lân cận Các tương tác phức hợp biểu mô-trung mô phát triển nghiên cứu rộng rãi Tương tác tế bào với tế bào tế bào với chất ngoại bào (ECM) đạo việc phân chia tế bào tạo men tế bào tạo cách gây tế bào để thay đổi biểu gen Các yếu tố tăng trưởng, thường gọi phân tử tín hiệu, polypeptide thúc đẩy tăng sinh, di cư, phân chia loạt tế bào Có thể giả định yếu tố tăng trưởng có liên quan đến báo động trình tương tác biểu mơtrung mơ, điều điều chỉnh bắt đầu hình thành răng, hình thái hóa, phân chia tế bào.294,298-300,319-321 Từ khởi đầu hình thành răng, lớp màng (DBM) tồn tế bào biểu mô bên trung mô DBM bao gồm phiến mỏng, hình thành tế bào biểu mơ, lớp ECM có nguồn gốc từ trung mơ Phiến tạo thành mạng lưới đàn hồi gồm collagen loại IV, vị trí kết nối cho màng khác laminin, fibro-nectin, proteoglycans sul-fate 454 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS heparan Laminin gắn vào collagen IV vào thụ thể bề mặt tiền tế bào tạo men tế bào tạo men CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex 455 Hình 12-3 Sơ đồ biểu diễn (A), nụ (B), chỏm (C) chng q trình phát triển A C B DBM chứa trung mơ có nguồn gốc từ collagen loại I loại III, hyaluronate, heparan sulfate chondroitin 4- 6-sunfat Một số proteoglycans bày bề mặt tế bào tạo có chức thụ thể phân tử chất Điều cho phép tín hiệu từ thành phần chất ảnh hưởng đến di cư biệt hóa tế bào tạo Thành phần DBM thay đổi trình phát triển răng, thay đổi xuất để điều chỉnh bước q trình tạo răng.Với biệt hóa tế bào tạo răng, collagen loại III biến khỏi chất tiền ngà, fibronectin, bao quanh tiền tế bào tạo răng, bị hạn chế cực đỉnh tế bào tạo trưởng thành.196 Giai đoạn phát triển ban đầu nhú đặc trưng hoạt động tăng sinh bên địa điểm tương ứng với vị trí sữa Ngay trước bắt đầu hình thành quan men, mạng lưới mao mạch máu phát triển ngoại trung mơ, có lẽ để hỗ trợ tăng cường hoạt động trao đổi chất nụ phát triển OEE SR IEE DS SL DP CL DS Các Giai Đoạn Phát Triển Mặc dù hình thành trình liên tục, để thuận tiện, hình thái chia thành ba giai đoạn: (1) nụ, (2) chỏm, (3) chng (Hình.12-3).186 Trong giai đoạn nụ tế bào biểu mô sinh sơi nảy nở tạo hình chiếu giống nụ vào ngoại trung mô liền kề Giai đoạn chỏm đạt tế bào tăng lên nhanh chóng để tạo thành lõm giống hình chỏm Các tế bào ngồi chỏm hình khối tạo thành lớp biểu mơ men bên ngồi Các tế bào phần bên hay phần lõm chỏm phần thuôn dài đại diện cho biểu mô men bên Giữa biểu mô bên bên mạng lưới tế bào gọi lưới hình xếp lưới phân nhánh yếu tố tế bào Vành quan men (Tức là, nơi biểu mô men bên bên nối lại với nhau) gọi vòng cổ Khi tế bào tạo thành vịng lặp tiếp tục sinh sơi Hình 12-4 Pha chng q trình phát triển cho thấy biểu mơ men ngồi (OEE), mạng lưới hình (SR), biểu mơ mên (IEE), nhú (DP), vịng cổ (CL), (SL) túi (DS) nảy nở, có du nhập quan men vào trung mô Trong thời gian này, quan giả định dạng hình chng, phát triển sau vào giai đoạn chng (Hình 12-4) Trong giai đoạn chng, ngoại trung bì nhú trở thành phần bao bọc biểu mô du nhập Các ngoại trung mô đặc xung quanh quan men phức hợp nhú hình thành túi cuối phát triển thành dây chằng nha chu (xem hình.12- 4) Trong giai đoạn chng, thối hóa bị xâm lược thay thế- 456 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS mô trung mô Trong cách này, biểu mô kết nối quan men biểu mô miệng bị cắt đứt Đầu tự kết hợp với sữa tiếp tục phát triển hình thành (thứ cấp) Từ cấu trúc mà mầm răng phát sinh Do trình hàm hàm tăng kích thước, hàm lớn thường xuất phát từ phía sau phần mở rộng Sau sinh, hàm thứ hai thứ ba xuất sinh sôi vào trung mơ nằm bên Hình thái (hình dạng) thân điều khiển trung tâm tín hiệu đặc biệt gọi nút thắt biểu mô men (EK) Các nút thắt men cụm thoáng qua tế bào biểu mô không tăng sinh nằm biểu mô răng.159,215,353 Chúng thể thành viên phân tử thuộc yếu tố tăng trưởng bảo tồn nguyên bào sợi (Fgf), protein hình thái xương (Bmp), Hedgehog (Hh), nhóm Wnt biết đến cần thiết cho hình thành phơi quan.332 Các hoạt động tín hiệu nút men phân tử biểu Fgf4 Bmp4 điều tiết trình tế bào tế bào biểu mô trung mô xung quanh, dẫn đến thay đổi phổ biến biểu gen cần thiết cho hình thành răng, chẳng hạn yếu tố phiên mã Mxs1 Pax9.172,354 Nút men sơ khởi xuất (PEK) có mặt đầu nụ biểu mơ pha nụ.159 Ở giai đoạn chỏm, PEK nằm phần trục trước- sau quan men.159,353 Các nút men thứ cấp (SEK), xuất sau vị trí đỉnh múi, điều tiết hình thành số lượng múi nhiều múi.159 Các phát gần thấy nút men tam cấp (TEK) ngăn ngừa hình thành men tế bào tạo mẹn lót kiểm sốt hình thành vùng khơng men động vật có khu vực này, chẳng hạn chuột.215 Sự Phát Triển Của Hệ Thần Kinh Răng Sự phân bố thần kinh ngoại vi phục vụ vai trò quan trọng sinh học tủy Sự phân bố thần kinh ban đầu bắt nguồn từ hạch sinh ba cảm giác Các sợi thần kinh phân bố vị trí cụ thể người lớn, kết là, phát triển phân bố thần kinh không ngẫu nhiên, thay vào q trình hồn tồn kiểm sốt khơng gian chặt chẽ-liên kết với hình thái biệt hóa tế bào 173,209 (Hình 12-5) Trong hàm lớn hàm chuột phân tích, dây thần kinh 209 hàm từ nhánh thần kinh ống chạm đến giai đoạn nụ sớm Các dây thần kinh theo đường trung mô hẹp mầm răng, nơi chia thành nhánh vùng miệng lưỡi.173,209,243 Trong giai đoạn chỏm chuông, sợi thần kinh thiết lập đám rối thần kinh lỗ chóp sơ khởi Các sợi thần kinh đợi trước họ phép vào nhú Điều diễn sau hình dạng thân xác định men ngà răng.237,238 Các sợi thần kinh vào nhú đầu gần xa, vị trí tương lai chân gần xa mầm hàm Các sợi thần kinh phân bố thần kinh vùng tế bào tạo răng, tế bào tạo thân răng, lớp tiền ngà với số sợi chấm dứt ngà Các sợi thần kinh đám rối thần kinh góp phần phân bố mơ nha chu.146 Phân bố thần kinh giao cảm tiên tủy theo dây cảm giác.237 e d snp b de cm l ian A B de dp df C D dp df O a de de cp rp p pe E F Hình 12-5 Tăng trưởng sợi trục thần kinh sinh ba cảm giác tới đích Hình sơ đồ minh họa dựa nghiên cứu vị trí sợi thần kinh hàm chuột phát triển (AF).173,237,238 Sợi trục theo đường trung mô hạn chế (đánh dấu màu xanh B) phát triển xung quanh mầm răng, gọi vùng mầm mục tiêu trung mô (màu xanh C-F) Sợi thần kinh xâm nhập vào tủy (p) sau khởi phát hình thành men (E) phân bố vùng thần kinh tủy- ngài (đánh dấu màu xanh F) a, tế bào tạo mên; b, miệng; cm,trung mô đặc; cp, tủy thân; d, ngà răng; de, biểu mô răng; df, túi răng; dm, trung mô răng; dp, nhú răng; e, men; ian, dây thần kinh ống dưới; l, lưỡi; o, tế bào tạo răng; p, tủy răng; pe, mô nha chu; rp, tủy chân; SNP,đám rối thần kinh tế bào tạo răng; sợi thần kinh đánh dấu màu đen (Modified from Kenntunen P, et al: Regularing av utvikling av tannens form og sensorisk nerveforsying er samordent Nor Tannlaegeforen Tid 119:162–166, 2009.) Kiểm Soát Phân Tử Của Axon Sinh Ba Ngày có nhiều chứng cho thấy chuyển hướng phát triển sợi axon liên quan đến việc phối hợp, hoạt động truyền tín hiệu phân tử nguồn gốc khác Các phân tử gây hiệu ứng hấp dẫn tích cực hướng dẫn sợi axon hay tồn thể đường trung mô khu vực mục tiêu xung quanh mầm răng.214 Các phân tử bao gồm yếu tố dinh dưỡng thần kinh, thúc đẩy tồn tại, biệt hóa, trì tế bào thần kinh phát triển hệ thống thần kinh trung tâm người NGF (yếu tố tăng trưởng thần kinh), điều cần thiết để cung cấp dây thần kinh tủy răng, GDNF (tế bào thần kinh đệm phân chia theo hang từ yếu tố dinh dưỡng thần kinh) thể khu vực mục tiêu lớn phát triển, cụ thể túi bột giấy ngà khu vực mục tiêu biên giới ngà- tủy Ngoài ra, nhiều gia đình phân tử khác, laminins, neuregulin / ErbB, Ephs Ncam liên quan đến phát triển hệ cung cấp dây thần kinh 100,214 Hướng dẫn phân tử sợi axon đẩy tới lượt mình, sản xuất khu vực bên cạnh đường axon thần kinh Chúng kiểm soát chuyển hướng sợi axon cách ngăn chặn sợi thần kinh khỏi việc vào khu vực nên tránh Các chemorepellant, semaphorin3A (sema3A) tiết, thể khu vực hạn chế trung mơ, kiểm sốt,173 chùm axon sinh ba thời gian khuôn mẫu phân bố thần kinh răng.173 Ngồi ra, sema 3A xuất để kiểm sốt vị trí sợi thần kinh thâm nhập vào tủy (ví dụ, thơng qua chân tương lai).216 Bởi biểu sema3A khu vực hạn chế trung mơ điều khiển tín hiệu từ tế bào biểu mô răng, điều phát triển phân bố thần kinh răng, giống hình thành mầm thích hợp, điều khiển mô tương tác chỗ Chú ý, Fgfr2b, điều cần thiết để tạo hình CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex thái cách điều tiết tăng sinh biểu mô chức nút men, kiểm soát biểu sema3A chuyển hướng axon thần kinh Như vậy, Fgf2b hoạt động phân tử tích hợp với hình thái dạng axon sinh ba răng.197 Sự Biệt Hóa Của Tế Bào Răng Sự biệt hóa tế bào biểu mơ trung mơ thành nguyên bào men tế bào tạo răng, tương ứng, xảy thời gian giai đoạnchuông phát triển Sự biệt hóa bắt đầu khu vực nơi đỉnh múi phát triển lan phía vịng cổ Các tiền ngun bào men lót nhú gây biệt hóa tế bào tạo Hậu là, chất ngà tiết tế bào tạo dẫn tới tiết men nguyên bào men Trong giai đoạn phát triển chuông, hoạt nguyên phân tế bào tương đối non biểu mô men khu vực vòng cổ Do chúng bắt đầu trưởng thành vào ngun bào men, hoạt động phân bào khơng cịn, tế bào mọc dài hiển thị đặc điểm hoạt động tổng hợp protein (tức là, phong phú lưới nội chất [RER], máy Golgi phức tạp phát triển tốt, nhiều ti thể) Khi nguyên bào men trải qua biệt hóa, thay đổi diễn khắp màng đáy liền kề nhú có trao đổi phối hợp yếu tố tăng trưởng chất trung gian hịa tan khác Trước biệt hóa tế bào tạo răng, nhú bao gồm tế bào gốc trung mơ đa hình phân bố rải rác với khoảng gian bào rộng (Hình 12-6) Với khởi đầu biệt hóa, m,ột lớp tế bào đơn, tế bào tạo giả định (tức là, tiền tế bào tạo răng) gắn dọc theo màng đáy tách tế bào biểu mô men khỏi nhú Những tế bào ngừng phân chia kéo dài thành tế bào cột ngắn với hạt nhân nằm phía đáy (Hình 12-7) Một số tế bào chất từ nhô từ tế bào mở rộng phía lamina Ở giai đoạn này, tiền tế bào tạo tương đối khơng biệt hóa Khi tế bào tạo tiếp tục biệt hóa, chúng kéo dài đưa vào đặc điểm siêu cấu trúc tế bào tiết protein Các đuôi tế bào chất từ tế bào mở rộng thông qua DBM phía lamina đáy, ngày nhiều sợi collagen - xuất vịng ECM Các sợi collagen hình thành vượt qua tiền tế bào tạo mở rộng phía lamina để hình thành bó lớn hình quạt, đường kính 100200 nm thường gọi sợi von Korff Những sợi nhuộm màu với bạc kết hợp với hàm lượng cao proteoglycan Một số sợi collagen nhỏ hơn, khoảng 50 nm đường kính, vượt qua tế bào tạo răngvà cho phát sinh nhú tế bào tạo răng.29 Một nghiên cứu collagen iểu gen rat hàm chuột phát triển tìm thấy hai collagen loại I III mã hóa IEE PO BM DP Hình 12-6 Pha chng cho thấy tiền tế bào tạo (PO) thẳng dọc theo màng (MB) phân chia biểu mô men (IEE) với nhú (DP) Ameloblasts Inner enamel epithelium Ameloblasts Preameloblasts Basal lamina Basement membrane Ectomesenchymal cells 457 Preodontoblasts Odontoblasts Odontoblasts Hình 12-7 Sơ đồ biểu diễn pha biệt hóa tế bào tạo 458 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS ribonucleic acid (RNA) tế bào tạo phát triển.75 Các mức độ collagen dạng I mRNA tăng lên với tiến triển biệt hóa tế bào tạo răng, collagen III biểu kiểu gen giảm tiến hành hình thành ngà Cả hai loại collagen loại I III mRNA phát tế bào trung mơ tủy Q trình sinh ngà xảy phát triển vị trí mà đỉnh múi hay rìa cắn hình thành Trong khu vực tế bào tạo trưởng thành đầy đủ trở thành tế bào hình cột cao, có lúc đạt độ cao khoảng 50 mm (Xem hình 12-7) Chiều rộng tế bào tương đối ổn định khoảng mm Sản xuất chất ngà ban đầu liên quan đến việc hình thành, tổ chức, trưởng thành sợi collagen proteo-glycan Do tiền ngà hình thành, tế bào tạo bắt để di chuyển phía trung tâm tủy, lắng đọng tiền ngà tỷ lệ khoảng 4-8 mm ngày trình phát triển sớm Ở tiền ngà, trình từ tế bào tạo trở nên bật trì để hình thành tế bào tạo Các ống ngà hình thành xung quanh tế bào Tương tự q trình khởi phát sinh hình thái, trình sinh ngà điều khiển tương tác biểu mô-trung mô qua trung gian kết hợp EMC phân tử tín hiệu từ gia đình khác BMP TGF-β1.197 Sự Phát Triển Chân Răng Chân bắt đầu phát triển sau hồn thành hình thành men, vịng cổ khơng tồn tại.Mạng lưới hình saoi tế bào trung gian biến mất, biểu mô men bên bên ngồi phần xa vịng cổ tạo thành bao biểu mô Hertwig (HERS), gồm hai lớp tế bào, biểu mơ men bên bên ngồi (Hình 12-8) HERS định kích thước hình dạng chân chân Như hình thành chân răng, tế bào biểu mô men bên tạo tế bào gốc trung mô liền kề tủy để biệt hóa thành tiền tế bào tạo tế bào tạo Ngay sau lớp chất ngà khống hóa, khoảng trống xuất HERS- có nguồn gốc biểu mơ Malassez, cho phép tế bào gốc trung mô từ túi di chuyển tiếp xúc với ngà thành lập Các tế bào gốc trung mơ sau phân hóa thành nguyên bào xê măng chất xê măng bồi đắp ngà chân Một số tế bào biểu mô Malassez tồn dây chằng nha chu gọi tế bào biểu mơ sót Malassez Những cụm tế bào biểu mơ bao quanh màng xuất mạng mắt lưới quanh chân Mặc dù số lượng tế bào sót giảm dần với tuổi, chứng minh số chúng giữ lại khả phân chia tế bào347 (Hình 12-9) Trong sống sau này, tổn thương viêm mạn tính phát triển mơ cận chóp kết bệnh tủy răng, gia tăng biểu mơ sót tạo nang cận chóp(chân răng) Các Ống Tủy Phụ Của Chân Răng Đơi q trình hình thành bao chân răng, đoạn nghỉ phát triển liên tục bao, sản xuất lỗ hổng nhỏ Khi điều xảy ra, trình sinh ngà khơng diễn vùng khiếm khuyết Kết ống tủy phụ nhỏ xuất túi tủy Một ống tủy phụ hình thành nơi dọc theo chân răng, tạo đường nha chu-nội DP DS ERS Hình 12-8 Sự phát triển chân cho thấy tuỷ (DP), túi (DS) bao biểu mô chân (ERS) Hình 12-9 Phim tự động tế bào biểu mơ sót cho thấy Hthymidine định vị nhân, tế bào chuẩn bị phân chia (From Trowbridge HO, Shibata F: Mitotic activity in epithelial rests of Malassez Periodontics 5:109, 1967.) CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex nha liên kết cổng vào tủy mơ nha chu tính tồn vẹn Trong bệnh nha chu, phát triển túi nha chu phơi bày ống tủy phụ cho phép vi sinh vật sản phẩm chuyển hóa chúng vào tủy Ngược lại, trường hợp nhiễm khuẩn, hoại tử tủy, việc khơng có khả làm sạch, tạo hình, trám bít ống tủy dẫn đến viêm nha chu (xem chương 18) NGÀ Ngà hoàn toàn trưởng thành bao gồm khoảng 70% chất vô cơ, 20% chất hữu 10% nước trọng lượng Các thành phần vô ngà calcium hydroxyapatite, Ca10 (Po4)6(OH)2.204 chất hữu bao gồm protein, phổ biến số collagen loại I; có phần nhỏ collagen loại V.43 Các protein không collagen phổ biến bao gồm phosphoprotein ngà (DPP), chất protein ngà (DMP1), sialoprotein (DSP) ngà, osteopontin (OPN), osteocalcin, sialoprotein xương (BSP).43 Ngồi ra, ngà có chứa proteoglycans, lượng nhỏ phospholipid, nhiều yếu tố tăng trưởng, bao gồm protein hình thái xương (BMP), yếu tố tăng trưởng giống Insulin (IGFs), yếu tố tăng trưởng beta biến đổi (TGF-β) Những yếu tố tăng trưởng có ý nghĩa q trình khử khống men chúng kích thích biệt hóa chỗ tế bào chân sau (xem phần sau Chương 16) Độ co giãn ngà cung cấp linh hoạt cho phần men giịn nằm phía cho phép lực nhai tác động mà không bị gãy men.183,184,369 Từ quan điểm kỹ thuật, collagen cho thép xây dựng, tinh thể khống đóng vai trị xi măng; kết cấu trúc hỗn hợp có độ bền kéo lớn, đặc biệt kích thước nhỏ Ngồi ra, đường nối men ngà (EDJ) ngà men biên giới hình vỏ sị khơng đồng làm tăng tiếp xúc gắn dính ngà men răng, giữ cho hai mơ cứng thực q trình nhai Ngà Sơ Cấp, Ngà Thứ Cấp Và Ngà Thứ Ba Ngà sơ cấp sản xuất trình phát triển răng mọc vào khoang miệng Nó xếp vào loại ngà chỉnh hình, dạng hình ống ngà thiếu tế bào tìm thấy tất động vật có vú.204 Ngà sơ cấp tiết với tốc độ tương đối cao tạo thành phần ngà răng Đều đặn cấu trúc chứa ống ngà tạo thành độ cong hình S kết chuyện động hướng tế bào tạo răng, có tế bào kéo dài từ biên giới ngoại vi hướng đến lớp tế bào hẹp nằm trung tâm Sau mọc răng, tế bào tạo tiếp tục nằm ngà thay đổi hướng, góp phần uốn cong ống ngà Ngà thứ cấp tổng hợp mức độ thấp nhiều đặn cấu trúc ngà sơ cấp Ngà thứ cấp lắng đọng phần thời gian sống cịn lại Khơng giống ngà sơ cấp thứ cấp, ngà thứ ba, ngà sửa chữa ngà phản ứng, lắng đọng sau q trình bệnh lý sâu nhai mài mịn Ngà sửa chữa đề xuất tiết tế bào tạo ban đầu trường hợp chúng chết đi, tế bào tạo thay biệt hóa từ tế bào gốc trung mô lân cận Chức ngà thứ 459 ba bảo vệ tủy từ ảnh hưởng độc hại Ngà sửa chữa khơng có tổ chức cấu trúc so với ngà sơ khởi thứ cấp Bó Ngà Vỏ Lớp ngà sơ khởi lắng đọng lớp vỏ ngà Nó sản xuất tế bào tạo chưa biệt hóa đầy đủ Trong người lớn, lớp vỏ ngà ngà lâu đời sản xuất tiếp giáp với men thân Các tế bào tạo sản xuất thành phần collagen, tổ chức mạng lưới collagen tơ nhỏ Phân tích kính hiển vi electron cho thấy tế bào tạo sản xuất túi nhỏ cất gần màng, nơi mà khống hóa bắt đầu.33 Sau vỡ túi chất nền, tinh thể phát tán chất collagen cho hành động khởi đầu cho phát triển tinh thể apatit Ngồi thân răng, bó vỏ ngà tìm thấy chân cementum lớp hạt Tomes Tuy nhiên, điều phát gây tranh cãi, liệu đối lập cho lớp hyaline men non tìm thấy chân thay bó ngà Trễ q trình khống hóa men xung quanh tủy, túi chất khơng cịn phát thấy.205 Bó vỏ ngà nhận biết độ dày, sợi collagen hình quạt đặc trưng bồi đắp lamina lát cắt mô học Những sợi chạy vng góc với DEJ Khoảng trống sợi chiếm đóng sợi collagen nhỏ nằm song song nhiều với DEJ CDJ Bó ngà có 150 mm độ dày khoáng (ít khoảng 4% khoáng) so với ngà lót 139 mềm hơn.369 Khống hố bó ngà khác từ khống phần cịn lại ngà răng, từ phosphoprotein ngà (DPP)- điều hòa tăng trưởng tinh thể ngà quanh tủy, không xuất lớp vỏ ngà.246 Ngà Chung Quanh Tủy Ngà quanh tủy hình thành sau lớp ngà vỏ lắng đọng, tạo thành phần chủ yếu ngà sơ khởi ngà thứ cấp Các tế bào tạo lắng đọng chất hữu cơ, bao gồm chủ yếu sợi collagen khoảng 500 nm, đường kính, định hướng vng góc với trục dài ống ngà Những sợi collagen liên kết chặt chẽ với tạo thành mạng lưới đan xen nhúng vào tinh thể khống Canxi tích cực vận chuyển từ mạch máu tế bào tạo vào / mạng collagen tơ nhỏ Có chứng cho thấy khoáng hoá ngà kiểm sốt phosphoprotein ngà (DPP) DPP liên kết canxi, anion cao Sự thay đổi hình thể DPP kích hoạt nối với số lượng lớn ion canxi, cho phép hình thành phát triển tinh thể khoáng chất mạng lưới chất collagen Bằng cách điều chỉnh việc giải phóng nồng độ DPP, tế bào tạo điều chỉnh việc bắt đầu tốc độ khống hóa Tinh thể hydroxyapatite bồi đắp bề mặt bên sợi tiếp tục phát triển q trình khống hóa, kết tăng nội dung khoáng chất ngà Ngà quanh tủy khống hóa thơng qua calcospherites phần khống phía trước tiền ngà ngà khống hóa Các tinh thể khống hóa tổ chức mơ hình xạ calcospherites, kích thước thay đổi tùy thuộc vào kích thước hình dạng vùng khác ngà 460 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS Khi calcospherites phóng to, chúng sát nhập với calcospherites liền kề chất ngà khống hóa hồn tồn Predentin Tiền ngà lớp chất hữu khơng khống hóa từ 15 đến 20 mm ngà nằm lớp tế bào tạo ngà khống hóa.204 Thành phần protein bao gồm loại collagens I loại I.42 Các yếu tố không collagen bao gồm nhiều proteoglycan (tức là, dermatan sulfate, heparan sulfate, hyaluronate, keratin sulfat, chondroitin sulfate 4, chondroitin 6sulfate),40,117glycoprotein, glycosaminoglycans (GAGs),83protein GLA, phospho-protein ngà (DPP)42 DPP is a highly DPP protein cao phosphoryl hóa tìm thấy xương ngà răng.290 Trong ngà răng, DPP sản xuất tế bào tạo vận chuyển đến phía trước khống hóa Người ta nghĩ chúng liên kết với canxi đóng vai trị khống hóa.109,359 Yếu tố tăng trưởng TGF-β, yếu tố, tăng trưởng giống Insulin, yếu tố tăng trưởng tiểu huyết cầu có nguồn gốc yếu tố phát triển mạch máu xác định ngà răng.294 Sự diện yếu tố tăng trưởng ngà có ý nghĩa lâm sàng sâu sắc tiêu ngà hình dung giải phóng yếu tố tăng trưởng vào tủy, nơi chúng làm thay đổi chức sinh học mơ Sự tiêu ngà kích thích hình thành ngà thứ ba - TABLE 12 - Số Lượng Và Đường Kính Trung Bình Theo Milimet Vuông Của Ống Ngà Tại Nhiều Khoảng Cách Khác Nhau Từ Tủy Ở Răng Người Số Lượng Ống Ngà (1000/mm2) Đường Kính Ống Ngà (m) Khoảng Cách Từ Tủy (mm) Mean Range Mean Range Pulpal wall 45 30–52 2.5 2.0–3.2 0.1–0.5 43 22–59 1.9 1.0–2.3 0.6–1.0 38 16–47 1.6 1.0–1.6 1.1–1.5 35 21–47 1.2 0.9–1.5 1.6–2.0 30 12–47 1.1 0.8–1.6 2.1–2.5 23 11–36 0.9 0.6–1.3 2.6–3.0 20 7–40 0.8 0.5–1.4 3.1–3.5 19 10–25 0.8 0.5–1.2 (From Garberoglio R, Brännström M: Scanning electron microscopic investigation of human dentinal tubules Arch Oral Biol 21:355, 1976.) Các Ống Ngà Một đặc tính ngà người diện ống ngà chiếm từ 1% (bề mặt ngà răng) đến 30% (ngà sâu) khối lượng ngà nguyên vẹn.107,277 Đường kính ống khác từ μ đến 2,5 mm qua toàn chiều dày ngà từ DEJ CDJ tới tủy Chúng thuôn nhẹ, với phần rộng lớn nằm phía tủy Sự thn kết hình thành tiến lên đến micron ngà quanh ống, dẫn đến sụt giảm liên tục đường kính lịng ống tới đạt đường kính cuối khoảng mm.107 Khơng có ngà quanh ống pxuất ống đạt tới buồng tủy tiền ngà Trong ngà thân răng, ống có hình S nhẹ nhàng chúng mở rộng từ DEJ tới tủy Độ cong hình S có lẽ kết số đơng tế bào tạo di chuyển phía trung tâm tủy Khi chúng tiếp cận tủy, ống hội tụ bề mặt buồng tủy có diện tích nhỏ nhiều so với bề mặt ngà dọc theo DEJ Điều dẫn đến gia tăng liên tục tính thấm ngà (thảo luận sau).275-277,279 Số lượng đường kính ống xác định thay đổi tùy theo vị trí (Bảng 12-1).107 Số lượng đường kính ống ngà tương tự chuột, mèo, chó, khỉ, người, thể quán đáng kể hình thái ngà động vật có vú ở.4 Các vi ống phía bên chứa chi nhánh đuôi tế bào tạo chứng minh nhà nghiên cứu khác,167,236 họ đề nghị tạo đường cho chuyển động vật liệu q trình chất xa Cũng có khả hướng nhánh có ảnh hưởng đến định hướng sợi collagen ngà liên ống Gần DEJ, ống ngà phân nhánh thành nhiều nhánh tận cùng236 (Hình 12-10) Điều xảy suốt giai đoạn đầu trình sinh ngà, tế bào tạo biệt- hóa mở rộng thêm số đường tế bào chất nhỏ phía DEJ, tế bào tạo di cư, đường ngày hội tụ thành (xem hình 12-7) Ngà Liên Ống Ngà liên ống nằm ống ngà chiếm số lượng lớn ngà (Hình 12-11) Chất hữu bao gồm chủ yếu sợi collagen có đường kính từ 50 đến 100 nm Những sợi định hướng xấp xỉ vuông góc với ống ngà Chúng khống hóa tốt cung cấp độ bền kéo cho ngà.184 Ngà liên ống tìm thấy DEJ phần trước khống hóa.204 Ngà Trong Ống Ngà lót thành ống gọi ngà ống hya ngà quanh ống (xem hình 12-11) Ngà ống đại diện cho hình dạng đặc hiệu hình thái ngà khơng tìm thấy tất động vật có vú Chất ngà quanh ống khác với ngà liên ống có tương đối sợi collagen tỷ lệ cao proteoglycan sulfate khoáng chất Bởi nội dung chứa collagen,183,374 ngà quanh ống cứng ngà liên ống nhanh chóng hịa tan axit ngà liên ống Bằng cách ưu tiên loại bỏ ngà quanh ống, chất axit-etching dung thủ tục phục hồi nha khoa axit ethylenediaminetetraacetic (EDTA) sử dụng điều trị nội nha mở rộng độ hở ống ngà, làm cho men thấm Sự vắng mặt khoáng nội sợi bệnh nhân với hội chứng sinh ngà bất toàn loại II phải chịu trách nhiệm hệ thống ngà mềm họ.185 Xơ Cứng Ngà Sự lấp lại phần tồn ống ngà xảy kết lão hóa phát triển đáp ứng với kích thích liên tục mòn mặt sâu Khi ống trở nên CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex 503 A PD F F B C Hình 12-57 Phim tự động chụp hàm chó minh hoạ lấy H- thymidine tế bào tuỷ để phân chia tế bào sau lấy tuỷ phần che tuỷ với canxi hydroxit A, ngày sau che tuỷ Các tế bào sợi, tế bào nội mơ, bao thích vùng bộc lộ B, ngày sau che tuỷ Các tế bào sợi, tế bào nội mơ, bao thích vùng bộc lộ C, ngày sau che tuỷ Các tế bào sợi, tế bào nội mô, bao thích vùng bộc lộ (Titrated thymidine was injected days after the pulp capping procedures in B and C.) (From Yamamura T, Shimono M, Koike H, et al: Differentiation and induction of undifferentiated mesenchymal cells in tooth and periodontal tissue during wound healing and regeneration Bull Tokyo Dent Coll 21:181, 1980.) miễn dịch tủy điều chỉnh trình sửa chữa.118 Mặc dù nhiều nghiên cứu động vật cho thấy cầu ngà hình thành tủy khỏe mạnh sau che tủy keo dính,64 thủ tục thất bại người bình thường.62 Khi lộ tủy học nhỏ vơ tình thực khỏe mạnh, khuyến cáo đặt lượng thuốc canxi hydroxit nhỏ lên vết thương.Sau đông cứng, ngà xung quanh dán cách sử dụng chất gắn lót tự etching khơng rửa.165 Giống canxi hydroxit, trioxide khống tổng hợp (MTA) cơng nhận thúc đẩy hình thành mơ cứng.3,7,245 Sự hình thành sợi ngà không ống "fibrodentin" sản phẩm tiềm tế bào tạo phân chia, với 504 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS điều kiện đám rối mao mạch phát triển fibrodentin.17 Điều phù hợp với quan sát thực nhà nghiên cứu khác64,96 cầu ngà thành lập bao gồm lớp ngà không ống mỏng, lớp ngà hình ống tương đối dày bồi đắp Các fibrodentin lót tế bào giống tế bào gốc trung mô, ngà hình ống kết hợp với tế bào gần giống tế bào tạo Các nhà nghiên cứu khác 323 tìm hiểu ngà sửa chữa hình thành đáp ứng tương đối chấn thương thực nghiệm xoang loại V chuẩn bị người Họ phát ngà sửa chữa hình thành sau can thiệp 30 ngày Tốc độ hình thành ngà 3,5 mm / ngày người đầu tiên, tuần sau bắt đầu sinh ngà, sau giảm rõ rệt Theo ngày 132 sau phẫu thuật, hình thành ngà gần chấm dứt Giả sử hầu hết tế bào tạo bị phá hủy trình chuẩn bị xoang sau chấn thương, có khả thí nghiệm này, chậm trễ 30 ngày chuẩn bị xoang ngà sửa chữa hình thành cho phản ánh thời gian cần thiết cho phát triển, di cư, phân chia tế bào tạo thay Có ngà sửa chữa bảo vệ tủy, đơn giản hình thành vết sẹo? Để phục vụ cho chức bảo vệ, phải cung cấp rào cản tương đối không thấm loại trừ chất gây kích ứng khỏi tủy bù đắp cho mát ngà phát triển Các đường giao ngà phát triển ngà sửa chữa nghiên cứu cách sử dụng thuốc nhuộm khuếch tán.Kỹ thuật chứng minh diện vùng không ống ngà nằm ngà thứ cấp ngà sửa chữa (Hình 12-58).92 Ngồi việc giảm đáng kể số ống, thành ống dọc theo đường nối thường dày lên làm tắc với chất liệu tương tự chất quanh ống.310 Gộp chung lại, quan sát vùng nối ngà phát triển sửa chữa khu khơng có ống có độ thấm thấp Hơn nữa, tích tụ tế bào gai tủy giảm sau hình thành ngà sửa chữa, giảm kháng nguyên vi khuẩn đến.303 Một nhóm nghiên cứu 335 ảnh hưởng đặt vàng tủy người thấy điều dung nạp tốt ngà sửa chữa trước bồi đắp bên khoang bị thiếu bồi đắp Do ngà sửa chữa bảo vệ tủy,19 cần phải nhấn mạnh trường hợp luôn Họ biết ngà sửa chữa bồi đắp vào tủy có chấn thương không hồi phục không thiết biểu tiên lượng thuận lợi (xem hình.12-55) Chất lượng ngà hình thành, khả bảo vệ tủy đó, đến mức độ lớn phản ánh môi trường tế bào sản sinh chất Sự diện tổn thương rãnh đơn 64 qua ngà sửa chữa phá vỡ hiệu bảo vệ ngà sửa chữa khơng có ống Vì nỗ lực lâm sàng điều trị tủy phải bảo đảm kín khít ngà với chất kết dính Răng có bệnh lý nha chu có đường kính ống tủy chân nhỏ so với khỏe mạnh.193 Ống tủy chân răng bị thu hẹp lắng đọng số lượng ngà phản động lớn dọc theo thành ngà.311 Sự giảm đường kính ống tủy với độ tuổi ngày tăng, vắng mặt bệnh nha chu, có nhiều khả hình thành ngà thứ cấp Hình 12-58 Sự lan rộng màu từ tuỷ tới ngà thay Lưu ý vùng khơng có ống ngà ngà thay (RD) ngà sơ cấp bên trái (From Fish EW: Experimental investigation of the enamel, dentin, and dental pulp, London, 1932, John Bale Sons & Danielson, Ltd.) Một nghiên cứu cho thấy mẫu hình chuột, cạo vơi làm chân tạo hình thành ngà sửa chữa dọc theo thành tủy phía bề mặt thực hiện.134 Tuy nhiên, ngà bình thường chuột dày 100 um, quy trình chấn thương nhiều chuột so với người, người độ dày 2000 um Không phổ biến thành phần tế bào tủy thay mô sợi liên kết nhiều kỉ Trong số trường hợp, đáp ứng tủy với kích thích khơng độc hại cách tính tụ bó sợi collagen lớn phổ biến hình thành ngà sửa chữa (Hình 12-59) Tuy nhiên, hình thành sợi hay ngà sửa chữa thường chung với nhau, cho thấy hai có tiềm sửa chữa Với mở rộng kiến thức chế sinh học tái sinh sửa chữa mô chức năng, chiến lượng điều trị đại bắt đầu đưa lĩnh vực xây dựng mô sinh học mô Các tế bào gốc tủy làm khung cho thấy tạo mô giống tủy với ống giống ngà,85 mẫu động vật, thủng điều trị với giàn khung collagen, tế bào tủy gốc chất protein 1, tạo chất tổ chức giống mô tủy.288 Một trường hợp bao cáo có khả tái cung cấp máu tủy chưa trưởng thành bị nhiễm trùng hoại tử xảy (Hình 12-60).16 Một bệnh nhân với hàm nhỏ thứ hai bên phải hàm với dấu hiệu lâm sàng Xquang viêm nha chu chóp cộng với đường dị Ống tủy làm mà không sử dụng dụng cụ học, với nong rửa dồi sử dụng CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex 505 CB Hình 12-59 Viêm sợi tuỷ cho thấy thay mơ tuỷ bó collagen lớn (CB) VƠI HĨA TỦY Pre-op Month recall Hình 12-60 Răng chưa trưởng thành có ống tuỷ nhiễm khuẩn hoại tử viêm nha chu chóp Ống tuỷ làm cách nong rửa với sodium hypochlorite paste kháng sinh tháng sau điều trị, bệnh nhân khơng có triệu chứng chóp cho thấy liền thương nha chu chóp đóng chóp (From Banchs F, Trope M: Revascularization of immature permanent teeth with apical periodontitis: new treatment protocol? J Endod 30:196–200, 2004.) hỗn hợp chất kháng sinh Sau đó, cục máu đơng tạo không gian tủy đường vào bịt lại MTA Điều trị cho phép tái thông mạch máu chưa trưởng thành lấy lại sức sống buồng tủy, phát triển bình thường chân phía phục hồi giống bên cạnh đối diện Trong tương lai, lĩnh vực sửa chữa tủy phát triển nhanh chóng, với nhiều chiến lượng điều trị xuất Vơi hóa tủy phổ biến Mặc dù ước tính tỷ lệ tượng khác nhau, an tồn để nói vơi hóa nhiều tủy có mặt 50% tất Trong tủy thân, vơi hóa thường có dạng sạn tủy rời rạc, đồng tâm (Hình 12-61), phần tủy chân, vơi hóa có xu hướng khuếch tán (Hình 12-62).349 Khơng có chứng rõ ràng liệu tủy vơi hóa q trình bệnh lý liên quan đến hình thức khác chấn thương tượng tự nhiên Tầm quan trọng lâm sàng canxi hóa tủy cản trở điều trị tủy Sạn tủy (denticles) có kích thước từ nhỏ, cực nhỏ thường thấy kết hợp với thành động mạch tới chiếm gần toàn buồng tủy (Hình 12-63) Pha khống calci hóa tủy cho thấy bao gồm hydro-xylapatite carbonat điển hình.349 Về mơ học, hai loại sạn ghi nhận: (1) loại có hình trịn hình trứng, với bề mặt nhẵn phân lớp đồng tâm (xem hình 12-61) (2) loại giả sử khơng có hình dạng đặc biệt, thiếu phân lớp, có bề mặt thơ (Hình.12-64) Sạn tủy nhiều lớp xuất tăng bổ sung sợi collagen bề mặt, sạn tủy không phân lớp phát triển cách khống hóa bó sợi collagen hình thành Trong loại sau, dường khống hóa mở rộng dọc theo sợi thô, làm cho bề mặt đá xuất mờ (Hình 12-65) Thường bó sợi thơ xuất để trải qua q trình hyaline hóa, giống vết sẹo cũ Sạn tủy hình thành xung quanh tế bào biểu mơ (ví dụ, dấu tích cịn lại vỏ biểu mơ Hertwig) Có lẽ tàn tích biểu mô gây tế bào gốc trung mô liền kề biệt hóa thành tế bào tạo Đặc trưng mà nói, sạn tủy phát gần chóp chân chứa ống ngà 506 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS Hình 12-61 Sạn tuỷ với bề mặt láng hướng tâm tuỷ hàm nhỏ mọc- nhổ điều trị chỉnh nha căng thẳng chức khơng cần phải có mặt để vơi hóa xảy Vơi hóa tủy trưởng thành thường giả định có liên quan đến q trình lão hóa, nghiên cứu gồm 52 Hình 12-62 Vơi hố lan rộng gần lỗ chóp Ngun nhân vơi hóa tủy bí ẩn lớn Vơi hóa xảy xung quanh ổ thối hóa tế bào, huyết khối máu, sợi collagen Nhiều tác giả tin điều thể dạng loạn dưỡng vơi hóa Trong loại vơi hóa này, canxi lắng đọng mơ bị thối hóa Tinh thể calcium phosphate bồi đắp tế bào thân Ban đầu, điều diễn ty lạp thể gia tăng tính thấm màng với canxi tạo từ thất bại trì hoạt động hệ thống vận chuyển bên màng tế bào Do thối hóa tế bào phục vụ ổ khởi nguồn vơi hóa mơ Trong vắng mặt thối hóa mơ rõ ràng, ngun nhân tủy vơi hóa bí ẩn Khó để gán thuật ngữ loạn dưỡng vơi hóa cho sạn tủy chúng thường xuyên xảy tủy khỏe mạnh, cho thấy CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex Hình 12-63 Sạn tuỷ chiếm phần lớn buồng tuỷ nanh bị ảnh hưởng từ bệnh nhân từ 11 đến 76 tuổi, có tỷ lệ khơng đổi sạn tủy đồng tâm tất nhóm tuổi, cho thấy khơng có mối liên hệ với tuổi tác.259 Vơi hóa lan rộng, mặt khác, tăng tỷ lệ với độ tuổi 25; sau chúng khơng đổi nhóm tuổi Đơi khi, nhiều sạn tủy đồng tâm khơng có ngun nhân rõ ràng nhìn thấy tất cá nhân trẻ Trong trường hợp vậy, xuất loại sạn tủy gán cho đặc điểm cá nhân sinh học (ví dụ, tori, mụn ruồi).259 Mặc dù collagen mơ mềm thường khơng vơi hóa, phổ biến cho thấy vơi hóa xảy vết sẹo mơ hyalin hóa cũ da Điều gia tăng mức độ liên kết chéo phân tử collagen (vì tăng liên kết ngang thúc đẩy khả sợi collagen trở nên vơi hóa) Một mối quan hệ tồn thay đổi bệnh lý phân tử collagen tủy tủy vơi hóa Vơi hóa thay thành phần tế bào tủy cản trở việc cung cấp máu, chứng vững cho lý thuyết thắt thiếu Đau tủy vô xác định diện sạn tủy Kiến thức đại chế kích hoạt tế bào nhận cảm, với việc quan sát sạn tủy thường 507 508 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS Hình 12-64 Bề mặt thơ sạn tuỷ Lưu ý hyaline hố sợi collagen Hình 12-65 Nhìn phóng to sạn tuỷ từ hình 1257, cho thấy mối quan hệ khống hố với sợi collagen CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex 509 Trật khớp kết chấn thương dẫn đến biến thái vơi hóa, điều kiện mà có thể, vài tháng năm, dẫn đến chặn phần hồn tồn hình ảnh X quang buồng tủy Nguyên nhân tắc nghẽn X quang lắng đọng q nhiều mơ khống giống cementum hoặc, đơi xun xuất khơng có lịch sử đau, phần lớn giảm giá giả thuyết Vì vậy, từ quan điểm lâm sàng, khó có triệu chứng đau khơng rõ ngun nhân bệnh nhân tủy vơi hóa, dù chúng xuất nặng nề X quang 510 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS C A B Hình 12-66 A, Nhìn phóng to sạn tuỷ từ hình 12-57, cho thấy mối quan hệ khống hố với sợi collagen.B, Nhìn tế bào xê măng (mũi tên) nằm bọc lấy xê măng (C)- bồi đắp thành ngà khi, xương thành ngà răng, hay dính khớp nội (Hình 1266) Kiểm tra mô học cho thấy diện số mô mềm, tế bào tương tự tế bào tạo xê măng quan sát dọc theo mơ khống Biến thái vơi hóa tủy báo cáo trồng lại chuột.258 Trên lâm sàng, mão bị ảnh hưởng biến thái vơi hóa hiển thị màu vàng nhạt so với bình thường liền kề Tình trạng thường xảy với hình thành chân không đầy đủ Chấn thương làm gián đoạn mạch máu xâm nhập vào răng, tạo nhồi máu tủy Các lỗ cận chóp rộng cho phép mô liên kết từ dây chằng nha chu sinh sôi nảy nở thay mơ chết, mang theo tế bào sinh xê măng sinh xương có khả biệt hóa thành hai nguyên bào xê măng nguyên bào xương hai Khi biến thái vơi hóa ghi nhận X quang bệnh nhân, gợi ý điều trị nội nha tủy dự kiến nhiễm bệnh thứ cấp, điều trị nội nha nên thực ống tủy đủ lớn để đưa dụng cụ Trong nghiên cứu cổ điển trật khớp, Andreasen tìm thấy có 7% tủy mà biến thái vơi hóa thể nhiễm khuẩn thứ cấp Vì tỷ lệ thành cơng cho điều trị nội nha không phẫu thuật, không nói chung 373 cho bị tắc nghẽn,68 coi cao, can thiệp dự phòng dường khơng đảm bảo giảm kích thước buồng tủy hệ thống ống tủy, độ rộng đường giao xê măng ngà xuất tương đối khơng thay đổi.105,323 Ngồi ra, số thay đổi thối hóa tủy xuất có liên quan đến q trình lão hóa Có giảm dần lượng tế bào đồng thời tăng số lượng độ dày sợi collagen, đặc biệt tủy chân Các sợi collagen dày tiêu điểm vơi hóa tủy (xem hình 12-64) Các tế bào tạo giảm kích thước số lượng, chúng biến hồn tồn khu vực định tủy, đặc biệt sàn tủy khu vực chia đôi chia ba nhiều chân Cùng với độ tuổi có giảm dần số lượng thần kinh 99 mạch máu.24,26 Nhiều chứng cho thấy lão hóa gia tăng kháng mô tủy với hoạt động enzyme phân giải protein,387 hyaluronidase, sialidase,26 cho thấy thay đổi hai collagen proteo-glycan tủy già Những thay đổi ngà liên quan đến lão hóa gia tăng ngà quanh ống, xơ cứng ngà, số lượng vùng chết ngà.*323 Xơ cứng ngà giảm dần tính thấm ngà cácc ống ngà giảm đường kính.328 THAY ĐỔI THEO TUỔI TÁC Tiếp tục hình thành ngà thứ cấp suốt đời làm *The term dead tract refers to a group of dentinal tubules in which odon- toblast CH APTER processes are absent Dead tracts are easily recognized in ground sections because the empty tubules refract transmitted light, and the tract appears black in contrast to the light color of normal dentin 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex 511 512 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS REFERENCES Aars H, et al: Effects of autonomic reflexes on tooth pulp blood flow in man Acta Physiol Scand 146:423–429, 1992 Aars H, Brodin P, Anderson E: A study of cholinergic and b-adrenergic components in the regulation of blood flow in the tooth pulp and gingiva of man Acta Physiol Scand 148:441, 1993 Accorinte ML, et al: Response of human dental pulp capped with MTA and calcium hydroxide powder Oper Dent, 33:488–495, 2008 Ahlberg K, Brännström M, Edwall L: The diameter and number of dentinal tubules in rat, cat, dog and monkey: a comparative scanning electronic microscopic study Acta Odontol Scand 33:243, 1975 Alitalo K, Tammela T, Petrova TV: Lymphangiogenesis in development and human disease Nature 438:946–953, 2005 Amess TR, Matthews B: The effect of topical application of lidocaine to dentin in the cat on the response of intradental nerves to mechanical stimuli: proceedings of the International Conference on Dentin/Pulp Complex In Shimono M, Maeda T, Suda H, Takahashi K, editors: Tokyo, 1996, Quintessence Publishing Co Andelin WE, et al: Identification of hard tissue after experimental pulp capping using dentin sialoprotein (DSP) as a marker J Endod 29:646–650, 2003 Anderson LC, Vakoula A, Veinote R: Inflammatory hypersensitivity in a rat model of trigeminal neuropathic pain Arch Oral Biol 48:161, 2003 Andreasen JO: Luxation of permanent teeth due to trauma A clinical and radiographic follow-up study of 189 injured teeth Scand J Dent Res 78:273, 1970 10 Anneroth G, Norberg KA: Adrenergic vasoconstrictor innervation in the human dental pulp Acta Odontol Scand May;26:89–93, 1968 11 Arola D, Rouland JA, Zhang D: Fatigue and fracture of bovine dentin Exp Mech 42:380, 2002 12 Artese L, et al: Vascular endothelial growth factor (VEGF) expression in healthy and inflamed human dental pulps J Endod 28:20–23, 2002 13 Avery JK: Structural elements of the young normal human pulp Oral Surg Oral Med Oral Pathol 32:113–125, 1971 14 Awawden L, Lundy FT, Shaw C, Kennedy JG, Lamey PJ: Quantitative analysis of substance P, neurokinin A, and calcitonin gene-related peptide in pulp tissue from painful and healthy human teeth Int Endod J 36:30, 2002 15 Bajaj D, Sundaram N, Nazari A, Arola D: Dehydration and fatigue crack growth in dentin Biomaterials 27:2507–2517, 2006 16 Banchs F, Trope M: Revascularization of immature permanent teeth with apical periodontitis: new treatment protocol? J Endod 30:196–200, 2004 17 Baume LJ: The biology of pulp and dentine In Myers HM, editor: Monographs in oral science, vol 8, Basel, 1980, S Karger AG 18 Bender IB, Landau MA, Fonsecca S, Trowbridge HO: The optimum placement-site of the electrode in electric pulp testing of the 12 anterior teeth J Am Dent Assoc 118:305, 1989 19 Bergenholtz G: Evidence for bacterial causation of adverse pulpal responses in resin-based dental restorations Crit Rev Oral Biol Med 11:467, 2000 20 Berggreen E, Haug SR, Mkony LE, Bletsa A: Characterization of the dental lymphatic system and identification of cells immunopositive to specific lymphatic markers Eur J Oral Sci 117:34–42, 2009 21 Berggreen E, Heyeraas KJ: Effect of the sensory neuropeptide antagonists h-CGRP(8–37) and SR 140.33 on pulpal and gingival blood flow in ferrets Arch Oral Biol 45:537–542, 2000 22 Berggreen E, Heyeraas KJ: Role of K+ATP channels, endothelin A receptors, and effect of angiotensin II on blood flow in oral tissues J Dent Res 82:33–37, 2003 23 Berggreen E, Heyeraas KJ: The role of sensory neuropeptides and nitric oxide on pulpal blood flow and tissue pressure in the ferret J Dent Res 78:1535–1543, 1999 24 Bernick S, Nedelman C: Effect of aging on the human pulp J Endod 1:88, 1975 25 Bevilacqua MP, et al: Interleukin-1 activation of vascular endothelium Effects on procoagulant activity and leukocyte adhesion Am J Pathol 121:394–403, 1985 26 Bhussary BR: Modification of the dental pulp organ during development and aging In Finn SB, editor: Biology of the Dental Pulp Organ: a Symposium, Birmingham, 1968, University of Alabama Press 27 Biesterfeld RC, Taintor JF, Marsh CL: The significance of alterations of pulpal respiration: a review of the literature J Oral Pathol 8:129, 1979 28 Bishop MA, Malhotra MP: An investigation of lymphatic vessels in the feline dental pulp Am J Anat 187:247, 1990 29 Bishop MA, Malhotra M, Yoshida S: Interodontoblastic collagen (von Korff fibers) and circumpulpal dentin formation: an ultrathin serial section study in the cat Am J Anat 191:67, 1991 30 Bishop MA, Yoshida S: A permeability barrier to lanthanum and the presence of collagen between odontoblasts in pig molars J Anat 181:29, 1992 31 Bletsa A, et al: Cytokine signalling in rat pulp interstitial fluid and transcapillary fluid exchange during lipopolysaccharide-induced acute inflammation J Physiol 573(Pt 1):225–236, 2006 32 Bongenhielm U, Haegerstrand A, Theodorsson E, Fried K: Effects of neuropeptides on growth of cultivated rat molar pulp fibroblasts Regul Pept 60:2391–2398, 1995 33 Bonucci E: Matrix vesicles: their role in calcification In Linde A: editor: Dentin and dentinogenesisis, Vol I, Boca Raton 1984, CRC Press, pp 135–154 34 Borda E, et al: Nitric oxide synthase and PGE2 reciprocal interactions in rat dental pulp: cholinoceptor modulation J Endod 33:142–147, 2007 35 Botero TM, et al: TLR4 mediates LPS-induced VEGF expression in odontoblasts J Endod 32:951–955, 2006 36 Bowles WR, et al: beta 2-Adrenoceptor regulation of CGRP release from capsaicin-sensitive neurons J Dent Res 82:308–311, 2003 37 Brännström M: Communication between the oral cavity and the dental pulp associated with restorative treatment Oper Dent 9:57, 1984 38 Brännström M: The transmission and control of dentinal pain In Grossman LJ, editor: Mechanisms and control of pain, New York, 1979, Masson Publishing USA 39 Brännström M, Aström A: A study of the mechanism of pain elicited from the dentin J Dent Res 43:619, 1964 40 Breschi L, Lopes M, Gobbi P, Mazzotti G, Falconi M, Perdigao J: Dentin proteoglycans: an immunocytochemical FEISEM study J Biomed Mater Res 61:40, 2002 41 Brown AC, Yankowitz D: Tooth pulp tissue pressure and hydraulic permeability Circ Res 15:42–50, 1964 42 Butler WT, D’Sousa RN, Bronckers AL, Happonen RP, Somerman MJ: Recent investigations on dentin specific proteins Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):369, 1992 43 Butler WT, Ritchie H: The nature and functional significance of dentin extracellular matrix proteins Int J Dev Biol 39:213–222, 1995 44 Byers MR: Dynamic plasticity of dental sensory nerve structure and cytochemistry Arch Oral Biol 39(suppl):13S, 1994 45 Byers MR: Neuropeptide immunoreactivity in dental sensory nerves: variations related to primary odontoblast function and survival In Shimono M, Takahashi K, editors: Dentin/Pulp Complex, Tokyo, 1996, Quintessence Publishing Co 46 Byers MR, Chudler EH, Iadarola MJ: Chronic tooth pulp inflammation causes transient and persistent expression of Fos in dynorphin-rich regions of rat brainstem Brain Res 861:191–207, 2000 47 Byers MR, Närhi MVO: Dental injury models: experimental tools for understanding neuroinflammatory interactions and polymodal nociceptor functions Crit Rev Oral Biol Med 10:4, 1999 48 Byers MR, Närhi MVO: Nerve supply of the pulpodentin complex and response to injury In Hargreaves K, Goodis H, editors: Seltzer and Bender’s dental pulp, Chicago, 2002, Quintessence Publishing Co 49 Byers MR, Narhi MV, Mecifi KB: Acute and chronic reactions of dental sensory nerve fibers to cavities and desiccation in rat molars Anat Rec 221:872–883, 1988 50 Byers MR, Schatteman GC, Bothwell MA: Multiple functions for NGF-receptor in developing, aging and injured rat teeth are suggested by epithelial, mesenchymal and neural immunoreactivity Development 109:461, 1990 51 Byers MR, Sugaya A: Odontoblast process in dentin revealed by fluorescent Di-I J Histochem Cytochem 43:159, 1995 52 Byers MR, Suzuki H, Maeda T: Dental neuroplasticity, neuro-pulpal interactions and nerve regeneration Microsc Res Tech 60:503, 2003 53 Byers MR, Taylor PE: Effect of sensory denervation on the response of rat molar pulp to exposure injury J Dent Res 72:613, 1993 54 Byers MR, Wheeler EF, Bothwell M: Altered expression of NGF and P75 NGF-receptor by fibroblasts of injured teeth precedes sensory nerve sprouting Growth Factors 6:41–52, 1992 55 Camps J, Pashley DH: In vivo sensitivity to air blasts and scratching of human root dentin J Periodontol 74:1589, 2003 56 Camps J, Salomon JP, Van Meerbeek B, Tay F, Pashley D: Dentin deformation after scratching with clinically-relevant forces Arch Oral Biol 48:527, 2003 57 Carter JM, Sorensen SE, Johnson RR, Teitelbaum RL, Levine MS: Punch shear testing of extracted vital and endodontically treated teeth J Biomech 16:841, 1983 58 Casasco A, et al: Immunohistochemical localization of endothelin-like immunoreactivity in human tooth germ and mature dental pulp Anat Embryol (Berl) 183:515–520, 1991 59 Chaudhary P, Martenson ME, Baumann TK: Vanilloid receptor expression and capsaicin excitation of rat dental primary afferent neurons J Dent Res 80:1518, 2001 60 Chu SC, et al: Induction of vascular endothelial growth factor gene expression by proinflammatory cytokines in human pulp and gingival fibroblasts J Endod 30:704–707, 2004 61 Coffey CT, Ingram MJ, Bjöandal AM: Analysis of dentinal fluid Oral Surg 30:835, 1970 62 Costos CAS, Hebling J, Hanks CT: Current status of pulp capping with dentin adhesive systems: a review Dent Mater 16:188, 2000 63 Coure E: Ultrastructural changes during the life cycle of human odontoblasts Arch Oral Biol 31:643, 1986 64 Cox CF, Bogen G, Kopel HM, Ruby JP: Repair of pulpal injury by dental materials Chap 14 In Hargreaves K, Goodis H, editors: Seltzer and Bender’s dental pulp, Chicago, 2002, Quintessence Publishing Co 65 Cox CF, White KC, Ramus DL, Farmer JB, Snuggs HM: Reparative dentin: factors affecting its deposition Quintessence Int 23:257, 1992 66 Csillag M, Berggreen E, Fristad I, Haug SR, Bletsa A, Heyeraas KJ: Effect of electrical tooth stimulation on blood flow and immunocompetent cells in rat dental pulp after sympathectomy Acta Odontol Scand 62:305–312, 2004 67 Cuicchi B, Bouillaguet S, Holz J, Pashley D: Dentinal fluid dynamics in human teeth, in vivo J Endod 21:191, 1995 68 Cvek M, Granath L, Lundberg M: Failures and healing in endodontically treated non-vital anterior teeth with posttraumatically reduced pulpal lumen Acta Odontol Scand 40:223–228, 1982 CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex 69 Dahl E, Major IA: The fine structure of the vessels in the human dental pulp Acta Odontol Scand 31:223–230, 1973 70 Dahl T, Sabsay B, Veis A: Type I collagen-phosphophoryn interactions: specificity of the monomer-monomer binding J Struct Biol 123:162, 1998 71 Dia XF, ten Cate AR, Limeback H: The extent and distribution of intratubular collagen fibrils in human dentine Arch Oral Biol 36:775, 1991 72 Diamond J: The effect of injecting acetylcholine into normal and regenerating nerves J Physiol (Lond) 145:611, 1959 73 Diamond RD, Stanley HR, Swerdlow H: Reparative dentin formation resulting from cavity preparation J Prosthet Dent 16:1127, 1966 74 Diogenes A, Akopian AN, Hargreaves KM: NGF upregulates TRPA1: implications for orofacial pain J Dent Res 86:550–555, 2007 75 D’Souza RN, Bachman T, Baumgardner KR, Butler WT, Litz M: Characterization of cellular responses involved in reparative dentinogenesis in rat molars J Dent Res 74:702, 1995 76 Ebihara A, Tokita Y, Izawa T, Suda H: Pulpal blood flow assessed by laser Doppler flowmetry in a tooth with a horizontal root fracture Oral Surg Oral Med Oral Path 81:229, 1996 77 Eda S, Saito T: Electron microscopy of cells displaced into the dentinal tubules due to dry cavity preparation J Oral Pathol 7:326, 1978 78 Edwall L, Kindlová M: The effect of sympathetic nerve stimulation on the rate of disappearance of tracers from various oral tissues Acta Odontol Scand 29:387, 1971 79 Edwall B, et al: Neuropeptide Y (NPY) and sympathetic control of blood flow in oral mucosa and dental pulp in the cat Acta Physiol Scand 125:253–264, 1985 80 Eissmann HF, Radke RA: Postendodontic restoration In Cohen S, Burns RC, editors: Pathways of the pulp, ed 4, St Louis, 1987, Mosby 81 El-Backly RM, et al: Regeneration of dentine/pulp-like tissue using a dental pulp stem cell/poly(lactic-co-glycolic) acid scaffold construct in New Zealand white rabbits Aust Endod J 34:52–67, 2008 82 Embery G: Glycosaminoglycans of human dental pulp J Biol Buccale 4:229–236, 1976 83 Embery G, Hall R, Waddington R, Septier D, Goldberg M: Proteoglycans in dentinogenesis Crit Rev Oral Biol Med 12:331, 2001 84 England MC, Pellis EG, Michanowicz AE: Histopathologic study of the effect of pulpal disease upon nerve fibers of the human dental pulp Oral Surg Oral Med Oral Pathol 38:783, 1974 85 Engström C, Linde A, Persliden B: Acid hydrolases in the odontoblast-predentin region of dentinogenically active teeth Scand J Dent Res 84:76, 1976 86 Evans D, Reid T, Strang R, Stirrups D: A comparison of laser Doppler flowmetry with other methods of assessing vitality in traumatized anterior teeth Endod Dent Traumatol 15:284, 1999 87 Fearnhead RW: Innervation of dental tissues In Miles AEW, editor: Structural and chemical organization of the teeth, vol 1, New York, 1967, Academic Press 88 Ferrara N: Vascular endothelial growth factor Eur J Cancer 32A:2413–2422, 1996 89 Ferrari M, Mason PN, Goracci C, Pashley DH, Tay FR: Collagen degradation in endodontically-treated teeth after clinical function J Dent Res 88:414, 2004 90 Finkelman RD, Mohan S, Jennings JC, Taylor AK, Jepsen S, Baylink DJ: Quantitation of growth factors IGF-1, SGF/ IGF-11 and TGF-b in human dentin J Bone Miner Res 5:717, 1990 91 Firestone AR, Wheatley AM, Thüer UW: Measurement of blood perfusion in the dental pulp with laser Doppler flowmetry Int J Microcirc Clin Exp 17:298, 1997 92 Fish WE: An experimental investigation of enamel, dentine and the dental pulp, London, 1932, John Bale, Sons and Danielson 93 Fisher AK: Respiratory variations within the normal dental pulp J Dent Res 46:424, 1967 94 Fisher AK, Schumacher ER, Robinson NR, Sharbondy GP: Effects of dental drugs and materials on the rate of oxygen consumption in bovine dental pulp JDent Res 36:447, 1957 95 Fisher AK, Walters VE: Anaerobic glycolysis in bovine dental pulp J Dent Res 47:717, 1968 96 Fitzgerald M, Chiego DJ, Heys DR: Autoradiographic analysis of odontoblast replacement following pulp exposure in primate teeth Arch Oral Biol 35:707, 1990 97 Fogel HM, Marshall FJ, Pashley DH: Effects of distance of the pulp and thickness on the hydraulic conductance of human radicular dentin J Dent Res 67:1381, 1988 98 Fraser JR, et al: Uptake and degradation of hyaluronan in lymphatic tissue Biochem J 256:153–158, 1988 99 Fried K: Changes in pulp nerves with aging Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):517, 1992 100 Fried K, et al: Target finding of pain nerve fibers: neural growth mechanisms in the tooth pulp Physiol Behav 92:40– 45, 2007 101 Fristad I, Heyeraas KJ, Kvinnsland I: Nerve fibres and cells immunoreactive to neurochemical markers in developing rat molars and supporting tissues Arch Oral Biol 39:633– 646, 1994 102 Fristad I, Jacobsen EB, Kvinnsland IH: Coexpression of vasoactive intestinal polypeptide and substance P in reinnervating pulpal nerves and in trigeminal ganglion neurones after axotomy of the inferior alveolar nerve in the rat Arch Oral Biol 43:183–189, 1998 103 Fristad I, Kvinnsland IH, Jonsson R, Heyeraas KJ: Effect of intermittent long-lasting electrical tooth stimulation on pulpal blood flow and immunocompetent cells: a hemodynamic and immunohistochemical study in young rat molars Exp Neurol 146:230–239, 1997 104 Fuss Z, Trowbridge H, Bender IB, Rickoff B, Sorin S: Assessment of reliability of electrical and thermal pulp testing agents J Endod 12:301, 1986 105 Gani O, Visvisian C: Apical canal diameter in the first upper molar at various ages J Endod 10:689, 1999 106 Garant PR: The organization of microtubules within rat odontoblast processes revealed by perfusion fixation with glutaraldehyde Arch Oral Biol 17:1047, 1972 107 Garberoglio R, Brännström M: Scanning electron microscopic investigation of human dentinal tubules Arch Oral Biol 21:355, 1976 108 Gaucher C, Boukpessi T, Septier D, et al: Dentin noncollagenous matrix proteins in familiar hypophosphatemic rickets Cells, Tissues, Organs 189:219–223, 2009 109 George A, Bannon L, Sabsay B, et al: The carboxyl-terminal domain of phosphophoryn contains unique extended triplet amino acid repeat sequences forming ordered carboxylphosphate interaction ridges that may be essential in the biomineralization process J Biol Chem 271:32869–32873, 1996 110 George CH, Kendall JM, Evans WH: Intracellular trafficking pathways on assembly of connexins into tight junctions J Biol Chem 274:8678, 1999 111 Gibbs JL, Hargreaves KM: Neuropeptide Y Y1 receptor effects on pulpal nociceptors J Dent Res 87:948–952, 2008 112 Gilbert TM, Pashley DH, Anderson RW: Response of pulpal blood flow to intra-arterial infusion of endothelin J Endod 18:228–231, 1992 113 Gloe T, Pohl U: Laminin binding conveys mechanosensing in endothelial cells News Physiol Sci 17:166, 2002 114 Gold M: Tetrodotoxin-resistant Na currents and inflammatory hyperalgesia Proc Natl Acad Sci U S A 96:7645, 1999 115 Goldberg M, Lasfargues J-J: Dentin-pulpal complex revisited J Dent 23:15, 1995 116 Goldberg M, Six N, Decup F, Lasfargues JJ, Salih E, Tompkins K, et al: Bioactive molecules and the future of pulp therapy Am J Dent 16:66, 2003 117 Goldberg M, Takagi M: Dentine proteoglycans: composition, ultrastructure and functions Histochem J 25:781, 1993 513 118 Goldberg M, et al: Inflammatory and immunological aspects of dental pulp repair Pharmacol Res 58:137–147, 2008 119 Gotjamanos T: Cellular organization in the subodontoblastic zone of the dental pulp II Period and mode of development of the cell-rich layer in rat molar pulps Arch Oral Biol 14:1011, 1969 120 Gregg JM, Dixon AD: Somatotopic organization of the trigeminal ganglion Arch Oral Biol 18:487, 1973 121 Grossman ES, Austin JC: Scanning electron microscope observations on the tubule content of freeze-fractured peripheral vervet monkey dentine (Cercopithecus pygerythrus), Arch Oral Biol 28:279, 1983 122 Gunji T: Morphological research on the sensitivity of dentin Arch Histol Jpn 45:45, 1982 123 Guzy CE, Nicholls JI: In vitro comparison of intact endodontically-treated teeth with and without endo-post reinforcement J Prosthet Dent 42:39, 1979 124 Hahn C-L, Falkler WA Jr, Siegel MA: A study of T cells and B cells in pulpal pathosis J Endod 15:20, 1989 125 Hahn C-L, Overton B: The effects of immunoglobulins on the convective permeability of human dentin in vivo Arch Oral Biol 42:835, 1997 126 Hals E, Tonder KJ: Elastic pseudoelastic tissue in arterioles of the human and dog dental pulp Scand J Dent Res 89:218–227, 1981 127 Hamersky PA, Weimer AD, Taintor JF: The effect of orthodontic force application on the pulpal tissue respiration rate in the human premolar Am J Orthod 77:368, 1980 128 Han SS: The fine structure of cells and intercellular substances of the dental pulp In Finn SB, editor: Biology of the dental pulp organ, Birmingham, 1968, University of Alabama Press, p 103 129 Hargreaves KM: Pain mechanisms of the pulpodentin complex In Hargreaves KM, Goodis HE, editors: Seltzer and Bender’s dentin pulp, Chicago, 2002, Quintessence Publishing Co 130 Hargreaves KM, Bowles WR, Jackson DL: Intrinsic regulation of CGRP release by dental pulp sympathetic fibers J Dent Res 82:398–401, 2003 131 Harris R, Griffin CJ: Fine structure of nerve endings in the human dental pulp Arch Oral Biol 13:773, 1968 132 Hartmann A, Azerad J, Boucher Y: Environmental effects on laser Doppler pulpal blood-flow measurements in man Arch Oral Biol 41:333, 1996 133 Hashioka K, et al: Relationship between clinical symptoms and enzyme-producing bacteria isolated from infected root canals J Endod, 20:75–77, 1994 134 Hattler AB, Listgarten MA: Pulpal response to root planing in a rat model J Endod 10:471, 1984 135 Haug SR, Heyeraas KJ: Effects of sympathectomy on experimentally induced pulpal inflammation and periapical lesions in rats Neuroscience 120:827–836, 2003 136 Haug SR, Heyeraas KJ: Modulation of dental inflammation by the sympathetic nervous system J Dent Res 85:488– 495, 2006 137 Helfer AR, Melwick S, Schilder H: Determination of the moisture content of vital and pulpless teeth Oral Surg Oral Med Oral Pathol 34:661, 1972 138 Hermanstyne TO, Markowitz K, Fan L, Gold MS: Mechanotransducers in rat pulpal afferents J Dent Res 87:834–838, 2008 139 Herr P, Holz J, Baume LJ: Mantle dentine in man: a quantitative study microradiographic study J Biol Buccale 14:139, 1986 140 Heyeraas KJ: Pulpal hemodynamics and interstitial fluid pressure: balance of transmicrovascular fluid transport J Endod 15:468–472, 1989 141 Heyeraas KJ, Berggreen E: Interstitial fluid pressure in normal and inflamed pulp Crit Rev Oral Biol Med 10:328, 1999 142 Heyeraas KJ, Jacobsen EB, Fristad I: Vascular and immunoreactive nerve fiber reactions in the pulp after stimulation and denervation: proceedings of the International Conference on Dentin/Pulp Complex In Shimono M, Maeda 500 143 144 145 146 147 148 149 150 151 152 153 154 155 156 157 158 159 160 161 162 163 164 165 166 167 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS T, Suda H, Takahashi K, editors: Tokyo, 1996, Quintessence Publishing Co, p 162 Heyeraas KJ, Kvinnsland I: Tissue pressure and blood flow in pulpal inflammation Proc Finn Dent Soc 88(Suppl 1):393– 401, 1992 Heyeraas KJ, et al: Effect of electrical tooth stimulation on blood flow, interstitial fluid pressure and substance P and CGRP-immunoreactive nerve fibers in the low compliant cat dental pulp Microvasc Res 47:329–343, 1994 Hikiji A, Yamamoto H, Sunakawa M, Suda H: Increased blood flow and nerve firing in the cat canine tooth in response to stimulation of the second premolar pulp Arch Oral Biol 45:53, 2000 Hildebrand C, et al: Teeth and tooth nerves Prog Neurobiol, 45:165–222, 1995 Hirakawa S, Detmar M: New insights into the biology and pathology of the cutaneous lymphatic system J Dermatol Sci 35:1–8, 2004 Hirvonen T, Närhi M, Hakumäki M: The excitability of dog pulp nerves in relation to the condition of dentine surface J Endod 10:294, 1984 Holland GR: Morphological features of dentine and pulp related to dentine sensitivity Arch Oral Biol 39(suppl):3S, 1994 Holland GR: The extent of the odontoblast process in the cat Am J Anat 121:133, 1976 Holland GR: The odontoblast process: form and function J Dent Res 64(special issue):499, 1985 Howe CA, McKendry DJ: Effect of endodontic access preparation on resistance to crown-root fracture J Am Dent Assoc 121:712, 1990 Ibricevic H, et al: Identification of alpha adrenoceptors in the blood vessels of the dental pulp Int Endod J 24:279– 289, 1991 Ikeda H, Tokita Y, Suda H: Capsaicin-sensitive A fibers in cat tooth pulp J Dent Res 76:1341, 1997 Inoue H, Kurosaka Y, Abe K: Autonomic nerve endings in the odontoblast/predentin border and predentin of the canine teeth of dogs J Endodon 18:149, 1992 Isidor F, Odman P, Brondum K: Intermittent loading of teeth restored using prefabricated carbon fiber posts Int J Prosthodont 9:131, 1996 Itthagarum A, Tay FR: Self-contamination of deep dentin by dentinal fluid Am J Dent 13:195, 2000 Jacobsen EB, Heyeraas KJ: Pulp interstitial fluid pressure and blood flow after denervation and electrical tooth stimulation in the ferret Arch Oral Biol 42:407–415, 1997 Jernvall J, et al: Evidence for the role of the enamel knot as a control center in mammalian tooth cusp formation: non-dividing cells express growth stimulating Fgf-4 gene Int J Dev Biol 38:463–469, 1994 Johnsen DC, Harshbarger J, Rymer HD: Quantitative assessment of neural development in human premolars Anat Rec 205:421, 1983 Johnsen D, Johns S: Quantitation of nerve fibers in the primary and permanent canine and incisor teeth in man Arch Oral Biol 23:825, 1978 Johnson G, Brännström M: The sensitivity of dentin: changes in relation to conditions at exposed tubule apertures Acta Odontol Scand 32:29, 1974 Jones PA, Taintor JF, Adams AB: Comparative dental material cytotoxicity measured by depression of rat incisor pulp respiration J Endod 5:48, 1979 Jontell M, Okiji T, Dahlgren U, Bergenholtz G: Immune defense mechanisms of the dental pulp Crit Rev Oral Biol Med 9:179, 1998 Katoh Y, Yamaguchi R, Shinkai K, et al: Clinicopathological study on pulp-irritation of adhesive resinous materials (report 3) Direct capping effects on exposed pulp of Macaca fascicularis Jpn J Conserv Dent 40:163, 1997 Kayaoglu G, Orstavik D: Virulence factors of Enterococcus faecalis: relationship to endodontic disease Crit Rev Oral Biol Med, 15:308–320, 2004 Kaye H, Herold RC: Structure of human dentine I Phase contrast, polarization, interference, and bright field micro- 168 169 170 171 172 173 174 175 176 177 178 179 180 181 182 183 184 185 186 187 188 scopic observations on the lateral branch system Arch Oral Biol 11:355, 1966 Kelley KW, Bergenholtz G, Cox CF: The extent of the odontoblast process in rhesus monkeys (Macaca mulatta) as observed by scanning electron microscopy Arch Oral Biol 26:893, 1981 Kerezoudis NP, Olgart L, Edwall L: CGRP(8–37) reduces the duration but not the maximal increase of antidromic vasodilation in dental pulp and lip of the rat Acta Physiol Scand 151:73–81, 1994 Kerezoudis NP, Olgart L, Edwall L: Involvement of substance P but not nitric oxide or calcitonin gene-related peptide in neurogenic plasma extravasation in rat incisor pulp and lip Arch Oral Biol 39:769–774, 1994 Kerezoudis NP, et al: Activation of sympathetic nerves exerts an inhibitory influence on afferent nerve-induced vasodilation unrelated to vasoconstriction in rat dental pulp Acta Physiol Scand 147:27–35, 1993 Kettunen P, Thesleff I: Expression and function of FGFs-4, -8, and -9 suggest functional redundancy and repetitive use as epithelial signals during tooth morphogenesis Dev Dyn 211:256–268, 1998 Kettunen P, et al: Coordination of trigeminal axon navigation and patterning with tooth organ formation: epithelialmesenchymal interactions, and epithelial Wnt4 and Tgfbeta1 regulate semaphorin 3a expression in the dental mesenchyme Development 132:323–334, 2005 Khullar SM, Fristad I, Brodin P, Kvinnsland IH: Upregulation of growth associated protein 43 expression and neuronal co-expression with neuropeptide Y following inferior alveolar nerve axotomy in the rat J Peripher Nerv Syst 3:79–90, 1998 Kim S, Edwall L, Trowbridge H, Chien S: Effects of local anesthetics on pulpal blood flow in dogs J Dent Res 63:650, 1984 Kim S, Schuessler G, Chien S: Measurement of blood flow in the dental pulp of dogs with the 133xenon washout method Arch Oral Biol 28:501, 1983 Kim S, Trowbridge HO, Dorscher-Kim JE: The influence of 5-hydroxytryptamine (serotonin) on blood flow in the dog pulp J Dent Res 65:682–685, 1986 Kim SK, et al: Antagonistic effect of D-myo-inositol-1,2,6trisphosphate (PP56) on neuropeptide Y-induced vasoconstriction in the feline dental pulp Arch Oral Biol 41:791–798, 1996 Kim S, et al: Effects of selected inflammatory mediators on blood flow and vascular permeability in the dental pulp Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):387–392, 1992 Kim S, et al: Functional alterations in pulpal microcirculation in response to various dental procedures and materials Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):65–71, 1992 Kim S, Dorscher-Kim JE, Liu M: Microcirculation of the dental pulp and its autonomic control Proc Finn Dent Soc 85:279–287, 1989 Kimberly CL, Byers BR: Inflammation of rat molar pulp and periodontium causes increased calcitonin-gene-related peptide and axonal sprouting Anat Rec 222:289, 1988 Kinney JH, Balooch M, Marshall SJ, Marshall GW Jr, Weihs TP: Hardness and Young’s modulus of human peritubular and intertubular dentin Arch Oral Biol 41:9–13, 1996 Kinney JH, Marshall SJ, Marshall GW: The mechanical properties of human dentin: a critical review and reevaluation of the dental literature Crit Rev Oral Biol Med 14:13, 2003 Kinney JH, Pople JA, Driessen CH, Breunig TM, Marshall GW, Marshall SJ: Intrafibrillar mineral may be absent in dentinogenesis imperfecta type II (D1–11) J Dent Res 80:1555, 2001 Kollar EJ, Lumsden AG: Tooth morphogenesis: the role of the innervation during induction and pattern formation J Biol Buccale 7:49–60, 1979 Kontturi-Nähri V, Närhi M: Testing sensitive dentin in man Int Endod J 26:4, 1993 Kramer IRH: The distribution of blood vessels in the human dental pulp In Finn SB, editor: Biology of the dental pulp 189 190 191 192 193 194 195 196 197 198 199 200 201 202 203 204 205 206 207 208 209 210 211 212 Organ, Birmingham, 1968, University of Alabama Press, p 361 Kroeger DC, Gonzales F, Krivoy W: Transmembrane potentials of cultured mouse dental pulp cells Proc Soc Exp Biol Med 108:134, 1961 Kvinnsland IH, Luukko K, Fristad I, Kettunen P, Jackson DL, Fjeld K, et al: Glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) from adult rat tooth serves a distinct population of large-sized trigeminal neurons Eur J Neurosci 19:2089– 2098, 2004 Langeland K, Langeland LK: Histologic study of 155 impacted teeth Odontol Tidskr 73:527, 1965 Langeland K, Langeland LK: Pulp reactions to cavity and crown preparations Aust Dent J 15:261, 1970 Lantelme RL, Handleman SL, Herbison RJ: Dentin formation in periodontally diseased teeth J Dent Res 55:48, 1976 Laurent TC, et al: The catabolic fate of hyaluronic acid Connect Tissue Res 15:33–41, 1986 Lechner JH, Kalnitsky G: The presence of large amounts of type III collagen in bovine dental pulp and its significance with regard to the mechanism of dentinogenesis Arch Oral Biol 26:265–273, 1981 Lesot H, Osman M, Ruch JV: Immunofluorescent localization of collagens, fibronectin and laminin during terminal differentiation of odontoblasts Dev Biol 82:371, 1981 Lesot H, et al: Epigenetic signals during odontoblast differentiation Adv Dent Res 15:8–13, 2001 Levi-Montalcini R: The nerve growth factor: its mode of action on sensory and sympathetic nerve cells Harvey Lect 60:217–259, 1966 Lewinstein I, Grajower R: Root dentin hardness of endodontically treated teeth J Endod 7:421, 1981 Lilja J: Innervation of different parts of the predentin and dentin in a young human premolar Acta Odontol Scand 37:339, 1979 Lilja J, Noredenvall K-J, Brännström M: Dentin sensitivity, odontoblasts and nerves under desiccated or infected experimental cavities Swed Dent J 6:93, 1982 Linde A: The extracellular matrix of the dental pulp and dentin J Dent Res 64(special issue):523, 1985 Linde A: A study of the dental pulp glycosamino-glycans from permanent human teeth and rat and rabbit incisors Arch Oral Biol 18:49–59, 1973 Linde A, Goldberg M: Dentinogenesis Crit Rev Oral Biol Med 4:679–728, 1993 Linde A, Lundgren T: From serum to the mineral phase The role of the odontoblast in calcium transport and mineral formation Int J Dev Biol 39:213–222, 1995 Liu L, Simon SA: Capsaicin, acid and heat-evoked currents in rat trigeminal ganglion neurons: relationship to functional VR1 receptors Physiol Behav 69:363, 2000 Lohinai Z, Szekely AD, Benedek P, Csillag A: Nitric oxide synthetase containing nerves in the cat and dog dental pulps and gingiva Neurosci Lett 227:91, 1997 Lohinai Z, et al: Evidence for the role of nitric oxide in the circulation of the dental pulp J Dent Res 74:1501–1506, 1995 Lumsden AG: The developing innervation of the lower jaw and its relation to the formation of tooth germs in mouse In TEETH; Form, function and evolution, Columbia University Press, 1982, New York, pp 32–43 Lundberg JM, Änggård A, Fahrenkrug J, Hökfelt T, Mutt V: Vasoactive intestinal polypeptide in cholinergic neurons of exocrine glands: functional significance of coexisting transmitters for vasodilation and secretion Proc Natl Acad Sci U S A 77:1651–1655, 1980 Lundberg JM, Fried G, Fahrenkrug J, Holmstedt B, Hökfelt T, Lagercrantz H, et al Subcellular fractionation of cat submandibular gland: comparative studies on the distribution of acetylcholine and vasoactive intestinal polypeptide (VIP) Neuroscience 6:1001–1010, 1981 Lundgren T, Nannmark U, Linde A: Calcium ion activity and pH in the odontoblast-predentin region: ion-selective microelectrode measurements Calcif Tissue Int 50:134, 1992 CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex 213 Luthman J, Luthman D, Hökfelt T: Occurrence and distribution of different neurochemical markers in the human dental pulp Arch Oral Biol 37:193, 1992 214 Luukko K, Kvinnsland IH, Kettunen P: Tissue interactions in the regulation of axon pathfinding during tooth morphogenesis Dev Dyn 234:482–488, 2005 215 Luukko K, et al: Identification of a novel putative signaling center, the tertiary enamel knot in the postnatal mouse molar tooth Mech Dev 120:270–276, 2003 216 Luukko K, et al: Secondary induction and the development of tooth nerve supply Ann Anat 190:178–187, 2008 217 Madison S, Whitsel E, Suarez-Roca H, Maixner W: Sensitizing effects of leukotriene B4 on intradentinal primary afferents Pain 49:99, 1992 218 Maeda T, Honma S, Takano Y: Dense innervation of radicular human dental pulp as revealed by immunocytochemistry for protein gene-product 9.5 Arch Oral Biol 39:563, 1994 219 Maita E, Simpson MD, Tao L, Pashley DH: Fluid and protein flux across the pulpodentin complex of the dog, in vivo Arch Oral Biol 36:103, 1991 220 Maltos KL, et al: Vascular and cellular responses to proinflammatory stimuli in rat dental pulp Arch Oral Biol 49:443–450, 2004 221 Mangkornkarn C, Steiner JC: In vivo and in vitro glycosaminoglycans from human dental pulp J Endod 18:327–331, 1992 222 Marbach JJ, Raphael KG: Phantom tooth pain: a new look at an old dilemma Pain Med 1:68–77, 2000 223 Marfurt CF, Zaleski EM, Adams CE, Welther CL: Sympathetic nerve fibers in rat orofacial and cerebral tissues as revealed by the HRP-WGA tracing technique: a light and electron microscopic study Brain Res 366:373–378, 1986 224 Marion D, Jean A, Hamel H, Kerebel LM, Kerebel B: Scanning electron microscopic study of odontoblasts and circumferential dentin in a human tooth Oral Surg Oral Med Oral Pathol 72:473, 1991 225 Martin-de las Heras S, Valenzuela A, Overall CM: The matrix metalloproteinases gelatinase A in human dentine Arch Oral Biol 45:757, 2000 226 Martinez-Insua A, de Silva L, Rilo B, Santana U: Comparison of the fracture resistance of pulpless teeth restored with a cast post and core or carbon-fiber post with a composite core J Prosthet Dent 80:527, 1998 227 Matsuo S, Ichikawa H, Henderson TA, Silos-Santiago I, Barbacid M, Arends JJ, et al trkA modulation of developing somatosensory neurons in oro-facial tissues: tooth pulp fibers are absent in trkA knockout mice Neuroscience 105:747–760, 2001 228 Matthews B, Andrew D: Microvascular architecture and exchange in teeth Microcirculation 2:305–313, 1995 229 Matthews B, Andrew D, Amess TR: The functional properties of intradental nerves: proceedings of the International Conference on Dentin/Pulp Complex, ed by Shimono M 230 Matthews B, Vongsavan N: Interactions between neural and hydrodynamic mechanisms in dentine and pulp Arch Oral Biol 39(suppl 1):87S, 1994 231 McGrath PA, Gracely RH, Dubner R, Heft MW: Non-pain and pain sensations evoked by tooth pulp stimulation Pain 15:377–388, 1983 232 Meyer MW, Path MG: Blood flow in the dental pulp of dogs determined by hydrogen polarography and radioactive microsphere methods Arch Oral Biol 24:601, 1979 233 Michelich V, Pashley DH, Whitford GM: Dentin permeability: a comparison of functional versus anatomical tubular radii J Dent Res 57:1019, 1978 234 Michelich VJ, Schuster GS, Pashley DH: Bacterial penetration of human dentin in vitro J Dent Res 59:1398, 1980 235 Mitsiadis TA, De Bari C, About I: Apoptosis in developmental and repair-related human tooth remodeling: a view from the inside Exp Cell Res 314:869–877, 2008 236 Mjör IA, Nordahl I: The density and branching of dentinal tubules in human teeth Arch Oral Biol 41:401, 1996 237 Moe K, et al: Development of the pioneer sympathetic innervation into the dental pulp of the mouse mandibular first molar Arch Oral Biol 53:865–873, 2008 238 Mohamed SS, Atkinson ME: A histological study of the innervation of developing mouse teeth J Anat 136(Pt 4):735–749, 1983 239 Mullaney TP, Howell RM, Petrich JD: Resistance of nerve fibers to pulpal necrosis Oral Surg 30:690, 1970 240 Murray PE, About I, Lumley PJ, Franquin JC, Remusat M, Smith AJ: Human odontoblast cell numbers after dental injury J Dent 28:277, 2000 241 Murray PE, Hafez AA, Windsor LJ, Smith AJ, Cox CF: Comparison of pulp responses following restoration of exposed and non-exposed cavities J Dent 30:213, 2002 242 Murray PE, Lumley PJ, Ross HF, Smith AJ: Tooth slice organ culture for cytotoxicity assessment of dental materials Biomaterials 21:1711, 2000 243 Naftel JP, et al: Course and composition of the nerves that supply the mandibular teeth of the rat Anat Rec 256:433– 447, 1999 244 Nagaoka S, Miyazaki Y, Liu HJ, Iwamoto Y, Kitano M, Kawagoe M: Bacterial invasion into dentinal tubules of human vital and nonvital teeth J Endod 21:70, 1995 245 Nair PN, et al: Histological, ultrastructural and quantitative investigations on the response of healthy human pulps to experimental capping with mineral trioxide aggregate: a randomized controlled trial Int Endod J 41:128–150, 2008 246 Nakamura O, Gohda E, Ozawa M, et al: Immunohistochemical studies with a monoclonal antibody on the distribution of phosphophoryn in predentin and dentin Calcif Tissue Int 37:491–500, 1985 247 Nalla RK, Imberi V, Kinney JH, Staininec M, Marshall SJ, Richie RO: In vitro fatigue behavior of human dentin with implications for life predictions J Biomed Mater Res 64A:10, 2003 248 Nalla RK, Kinney JH, Marshall SJ, Richie RO: On the in vitro fatigue behavior of human dentin: effect of mean stress J Dent Res 83:211, 2004 249 Närhi M: Activation of dental pulp nerves of the cat and the dog with hydrostatic pressure Proc Finn Dent Soc 74(suppl 5):1, 1978 250 Närhi M, Jyväsjärvi E, Hirronen T: Activation of heat-sensitive nerve fibers in the dental pulp of the cat Pain 14:317, 1982 251 Närhi M, Jyväsjärvi E, Virtanen A, Huopaniemi T, Ngassapa D, Hirvonen T: Role of intradentinal A- and C-type nerve fibers in dental pain mechanisms Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):507, 1992 252 Närhi M, Virtanen A, Kuhta J, Huopaniemi T: Electrical stimulation of teeth with a pulp tester in the cat Scand J Dent Res 87:32, 1979 253 Närhi M, Yamamoto H, Ngassapa D: Function of intradental nociceptors in normal and inflamed teeth In Shimono M, Maeda T, Suda H, Takahashi K, editors: Dentin/pulp complex, Tokyo, 1996, Quintessence Publishing Co, p 136 254 Närhi M, Yamamoto H, Ngassapa D, Hirvonen T: The neurophysiological basis and the role of inflammatory reactions in dentine hypersensitivity Arch Oral Biol 39(suppl):23S, 1994 255 Nawroth PP, Stern DM: Modulation of endothelial cell hemostatic properties by tumor necrosis factor J Exp Med 163:740–745, 1986 256 Ngassapa D, Närhi M, Hirvonen T: The effect of serotonin (5-HT) and calcitonin gene-related peptide (CGRP) on the function of intradental nerves in the dog Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):143, 1992 257 Nicol GD, Vasko MR: Unraveling the story of NGF-mediated sensitization of nociceptive sensory neurons: ON or OFF the Trks? Molecular interventions 7:26–41, Feb 2007 258 Nishioka M, Shiiya T, Ueno K, Suda H: Tooth replantation in germ-free and conventional rats Endod Dent Traumatol 14:163, 1998 259 Nitzan DW, Michaeli Y, Weinreb M, Azaz B: The effect of aging on tooth morphology: a study on impacted teeth Oral Surg Oral Med Oral Pathol 61:54, 1986 260 O’Neil RG, Brown RC: The vanilloid receptor family of calcium-permeable channels: molecular integrators of microenvironmental stimuli News Physiol Sci 18:226, 2003 501 261 Ochoa JL, Torebjork E, Marchettini P, Sivak M: Mechanism of neuropathic pain: cumulative observations, new experiments, and further speculation In Fields HL, Dubner R, Cervero F, editors: Advances in pain research and therapy, New York, 1985, Raven Press, p 431 262 Oehmke MJ, Knolle E, Oehmke H-J: Lymph drainage in the human dental pulp Microsc Res Tech 62:187, 2003 263 Ogawa K, Yamashita Y, Ichijo T, Fusayama T: The ultrastructure and hardness of the transparent layer of human carious dentin J Dent Res 62:7, 1983 264 Okiji T, Kawashima N, Kosaka T, Matsumoto A, Kobayashi C, Suda H: An immunohistochemical study of the distribution of immunocompetent cells, especially macrophages and Ia antigen-presenting cells of heterogeneous populations, in normal rat molar pulp J Dent Res 71:1196, 1992 265 Okiji T, et al: Involvement of arachidonic acid metabolites in increases in vascular permeability in experimental dental pulpal inflammation in the rat Arch Oral Biol, 34:523–528, 1989 266 Olgart LM, Edwall L, Gazelius B: Involvement of afferent nerves in pulpal blood-flow reactions in response to clinical and experimental procedures in the cat Arch Oral Biol 36:575–581, 1991 267 Olgart LM, Edwall L, Gazelius B: Neurogenic mediators in control of pulpal blood flow J Endod 15:409–412, 1989 268 Olgart LM, Gazelius B, Brodin E, Nilsson G: Release of substance P-like immunoreactivity from the dental pulp Acta Physiol Scand 101:510, 1977 269 Olgart L, Kerezoudis NP: Nerve-pulp interactions Arch Oral Biol 39(suppl):47S, 1994 270 Orchardson R, Cadden SW: An update on the physiology of the dentine-pulp complex Dent Update 28:200–206, 2001, 208–209, 2001 271 Orchardson R, Gillam DG: Managing dentin hypersensitivity J Am Dent Assoc 137:990–998; quiz 1028–1029, 2006 272 Oxlund H, Manschot J, Viidik A: The role of elastin in the mechanical properties of skin J Biomech 21:213–218, 1988 273 Parsons RJ, McMaster PD: The effect of the pulse upon the formation and flow of lymph J Exp Med 68:353–376, 1938 274 Pashley DH: Dentin conditions and disease In Lazzari G, editor: CRC handbook of experimental dentistry, Boca Raton, FL, 1983, CRC Press, p 97 275 Pashley DH: Dentin permeability and dentin sensitivity Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):31, 1992 276 Pashley DH: Dentin permeability: theory and practice In Spangberg L, editor: Experimental endodontics, Boca Raton, FL, 1990, CRC Press, p 19 277 Pashley DH: Dynamics of the pulpodentin complex Crit Rev Oral Biol Med 7:104, 1996 278 Pashley DH: Potential treatment modalities for dentin hypersensitivity—in office products In Addy M, Orchardson R, editors: Tooth wear and sensitivity, London, 2000, Martin-Dunitz Publishers, p 351 279 Pashley DH, Matthews WG: The effects of outward forced convective flow on inward diffusion in human dentin in vitro Arch Oral Biol 38:577, 1993 280 Pashley DH, Pashley EL, Carvalho RM, Tay FR: Effects of dentin permeability on restorative dentistry Dent Clin North Am 46:211, 2002 281 Pashley DH, Tay FR, Yiu C, Hashimoto M, Breschi B, Carvalho RM, et al: Collagen degradation by host-derived enzymes during aging J Dent Res 83:216, 2004 282 Pashley DH, Zhang Y, Agee KA, Rouse CJ, Carvalho RM, Russell CM: Permeability of demineralized dentin to HEMA Dent Mater 16:7, 2000 283 Pimenta FJ, Sa AR, Gomez RS: Lymphangiogenesis in human dental pulp Int Endod J 36:853–856, 2003 284 Pissiotis E, Spängberg L: Dentin permeability to bacterial proteins in vitro J Endod 20:118, 1994 285 Poggi P, et al: Ultrastructural localization of elastin-like immunoreactivity in the extracellular matrix around human small lymphatic vessels Lymphology 28:189–195, 1995 286 Pohto P, Antila R: Innervation of blood vessels in the dental pulp Int Dent J 22:228–239, 1972 502 PART I I • THE ADVANCED SCIENCE OF ENDODONTICS 287 Prati C, Cervellati F, Sanasi V, Montebugnoli L: Treatment of cervical dentin hypersensitivity with resin adhesives: week evaluation Am J Dent 14:378, 2001 288 Prescott RS, et al: In vivo generation of dental pulp-like tissue by using dental pulp stem cells, a collagen scaffold, and dentin matrix protein after subcutaneous transplantation in mice J Endod 34:421–426, 2008 289 Qian XB, Naftel JP: Effects of neonatal exposure to antinerve growth factor on the number and size distribution of trigeminal neurones projecting to the molar dental pulp in rats Arch Oral Biol 41:359–367, 1996 290 Qin C, Baba O, Butler WT: Post-translational modifications of SIBLING proteins and their roles in osteogenesis and dentinogenesis Crit Rev Oral Biol Med 15:126–136, 2004 291 Rapp R, el-Labban NG, Kramer IR, Wood D: Ultrastructure of fenestrated capillaries in human dental pulps Arch Oral Biol 22:317, 1977 292 Reader A, Foreman DW: An ultrastructural qualitative investigation of human intradental innervation J Endod 7:493, 1981 293 Renton T, Yiangou Y, Plumpton C, Tate S, Bountra C, Anand P: Sodium channel Nav1.8 immunoreactivity in painful human dental pulp BMC Oral Health 5:5, 2005 294 Roberts-Clark D, Smith AJ: Angiogenic growth factors in human dentine matrix Arch Oral Biol 42:1013, 2000 295 Rodd HD, Boissonade FM: Comparative immunohistochemical analysis of the peptidergic innervation of human primary and permanent tooth pulp Arch Oral Biol 47:375, 2002 296 Rodd HD, Boissonade FM: Innervation of human tooth pulp in relation to caries and dentition type J Dent Res 80:389– 393, Jan 2001 297 Rodd HD, Boissonade FM, Day PF: Pulpal status of hypomineralized permanent molars Pediatr Dent 29:514–520, 2007 298 Rutherford B: BMP-7 gene transfer into inflamed ferretdental pulps Eur J Oral Sci 109:422, 2001 299 Rutherford B, Fitzgerald M: A new biological approach to vital pulp therapy Crit Rev Oral Biol Med 6:218, 1995 300 Rutherford RB, Spanberg L, Tucker M, Rueger D, Charette M: The time-course of the induction of reparative dentine formation in moneys by recombinant human osteogenic protein-1 Arch Oral Biol 39:833, 1994 301 Ryan TJ, Mortimer PS, Jones RL: Lymphatics of the skin Neglected but important Int J Dermatol 25:411–419, 1986 302 Sakamoto N, et al: Identification of hyaluronidase activity in rabbit dental pulp J Dent Res 60:850–854, 1981 303 Sakurai K, Okiji T, Suda H: Co-increase of nerve fibers and HLA-DR- and/or factor XIIIa-expressing dendritic cells in dentinal caries-affected regions of the human dental pulp: an immunohistochemical study J Dent Res 78:1596, 1999 304 Sasaki S: Studies on the respiration of the dog tooth germ J Biochem (Tokyo) 46:269, 1959 305 Sasano T, Kuriwada S, Sanjo D: Arterial blood pressure regulation of pulpal blood flow as determined by laser Doppler J Dent Res 68:791, 1989 306 Sasano T, Kuriwada S, Shoji N, Sanjo D, Izumi H, Karita K: Axon reflex vasodilatation in cat dental pulp elicited by noxious stimulation of the gingiva J Dent Res 73:1797, 1994 307 Sasano T, Shoji N, Kuriwada S, Sanjo D, Izumi H, Karita K: Absence of parasympathetic vasodilatation in cat dental pulp J Dent Res 74:1665–1670, 1995 308 Schmid-Schonbein GW: Microlymphatics and lymph flow Physiol Rev 70:987–1028, 1990 309 Schüpbach P, Lutz F, Finger WT: Closing of dentin tubules by Gluma desensitizer Eur J Oral Sci 105:414, 1997 310 Scott JN, Weber DF: Microscopy of the junctional region between human coronal primary and secondary dentin J Morphol 154:133, 1977 311 Seltzer S, Bender IB, Ziontz M: The interrelationship of pulp and periodontal disease Oral Surg 16:1474, 1963 312 Senger DR, et al: Tumor cells secrete a vascular permeability factor that promotes accumulation of ascites fluid Science 219:983–985, 1983 313 Sessle BJ: Recent developments in pain research: central mechanisms of orofacial pain and its control J Endod 12:435–444, 1986 314 Sessle BJ: The neurobiology of facial and dental pain: present knowledge, future directions J Dent Res 66:962, 1987 315 Shortland PJ, Jacquin MF, De Maro JA, Kwan CL, Hu JW, Sessle BJ: Central projections of identified trigeminal primary afferents after molar pulp differentiation in adult rats Somatosens Mot Res 12:227, 1995 316 Shulman K, et al: Expression of vascular permeability factor (VPF/VEGF) is altered in many glomerular diseases J Am Soc Nephrol 7:661–666, 1996 317 Shuttleworth CA, Ward JL, Hirschmann PN: The presence of type III collagen in the developing tooth Biochim Biophys Acta 535:348–355, 1978 318 Sigal MJ, Pitaru S, Aubin JE, Ten Cate AR: A combined scanning electron microscopy and immunofluorescence study demonstrating that the odontoblast process extends to the dentinoenamel junction in human teeth Anat Rec 210:453, 1984 319 Smith AJ, Garde C, Cassidy N, Ruch JV, Lesot H: Solubilization of dentin extracellular matrix by calcium hydroxide J Dent Res 74:829, 1995 (abstract) 320 Smith AJ, Sloan AJ, Matthews JB, Murray PE, Lumley P: Reparative processes in dentine and pulp In Addy M, Embery G, Edger WM, Orchardson R, editors: Tooth wear and sensitivity: clinical advances in restorative dentistry, 2000, Martin Dunitz Publishers 321 Smith AJ, Tobias RS, Cassidy N, Plant CG, Browne RM, Begue-Kirn C, et al: Odontoblast stimulation in ferrets by dentine matrix components Arch Oral Biol 39:13, 1994 322 Souza PP, et al: Regulation of angiotensin II receptors levels during rat induced pulpitis Regul Pept 140:27–31, 2007 323 Stanley HR, White CL, McCray L: The rate of tertiary (reparative) dentin formation in the human tooth Oral Surg 21:180, 1966 324 Stenvik A, Iverson J, Mjör IA: Tissue pressure and histology of normal and inflamed tooth pulps in Macaque monkeys Arch Oral Biol 17:1501, 1972 325 Stern D, et al: An endothelial cell-dependent pathway of coagulation Proc Natl Acad Sci U S A 82:2523–2527, 1985 326 Sunakawa M, Tokita Y, Suda H: Pulsed Nd:YAG laser irradiation of the tooth pulp in the cat II Effect of scanning lasing Lasers Surg Med 26:477–488, 2000 327 Swift ML, Byers MR: Effects of aging responses of nerve fibers to pulpal inflammation in rat molars analyzed by quantitative immunohistochemistry Arch Oral Biol 37:901, 1992 328 Tagami J, Hosoda H, Burrow MF, Nakajima M: Effect of aging and caries on dentin permeability Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):149, 1992 329 Takahashi K, Kishi Y, Kim S: A scanning electron microscope study of the blood vessels of dog pulp using corrosion resin casts J Endodon 8:131, 1982 330 Tanaka T: The origin and localization of dentinal fluid in developing rat molar teeth studied with lanthanum as a tracer Arch Oral Biol 25:153–162, 1980 331 Telles PD, et al: Lipoteichoic acid up-regulates VEGF expression in macrophages and pulp cells J Dent Res 82:466–470, 2003 332 Thesleff I: The genetic basis of tooth development and dental defects Am J Med Genet A 140:2530–2535, 2006 333 Thomas HF: The extent of the odontoblast process in human dentin J Dent Res 58(D):2207, 1979 334 Thomas HF, Payne RC: The ultrastructure of dentinal tubules from erupted human premolar teeth J Dent Res 62:532, 1983 335 Thomas JJ, Stanley HR, Gilmore HW: Effects of gold foil condensation on human dental pulp J Am Dent Assoc 78:788, 1969 336 Tokita Y, Sunakawa M, Suda H: Pulsed ND: YAG laser irradiation of the tooth pulp in the cat I Effect of spot lasing Lasers Surg Med 26:477, 2000 337 Tönder KJ: Blood flow and vascular pressure in the dental pulp Summary Acta Odontol Scand 38:135–144, 1980 338 Tönder KJ: Effect of vasodilating drugs on external carotid and pulpal blood flow in dogs: “stealing” of dental perfusion pressure Acta Physiol Scand 97:75–87, 1976 339 Tönder KJH, Kvininsland I: Micropuncture measurements of interstitial fluid pressure in normal and inflamed dental pulp in cats J Endod 9:105, 1983 340 Tönder KH, Naess G: Nervous control of blood flow in the dental pulp in dogs Acta Physiol Scand 104:13–23, 1978 341 Torebjörk HE, Hanin RG: Perceptual changes accompanying controlled preferential blocking of A and C fiber responses in intact human skin nerves Exp Brain Res 16:321, 1973 342 Torneck CD: Dentin-pulp complex In Ten Cate AR, editor: Oral histology: development, structure, and function, ed 5, St Louis,1998, Mosby, p 150 343 Torneck CD, Kwan CL, Hu JW: Inflammatory lesions of the tooth pulp induce changes in brainstem neurons of the rat trigeminal subnucleus oralis J Dent Res 75:553, 1996 344 Trantor IR, Messer HH, Birner R: The effects of neuropeptides (calcitonin-gene-related peptide and substance P) on cultured human pulpal cells J Dent Res 74:1066, 1995 345 Trowbridge HO: Pathogenesis of pulpitis resulting from dental caries J Endod 7:52, 1981 346 Trowbridge HO, Franks M, Korostoff E, Emling R: Sensory response to thermal stimulation in human teeth J Endod 6:405, 1980 347 Trowbridge HO, Shibata F: Mitotic activity in epithelial rests of Malassez Periodontics 5:109, 1967 348 Trowbridge HO, Silver DR: Review of current approaches to in-office management of tooth hypersensitivity Dent Clin North Am 16:561, 1990 349 Trowbridge HO, Stewart JCB, Shapiro IM: Assessment of indurated, diffusely calcified human dental pulps In Proceedings of the International Conference on Dentin/Pulp Complex, Tokyo, 1996, Quintessence Publishing Co, p 297 350 Turner DF: Immediate physiological response of odontoblasts Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):55, 1992 351 Turner D, Marfurt C, Sattelburg C: Demonstration of physiological barrier between pulpal odontoblasts and its perturbation following routine restorative procedures: a horseradish peroxidase tracing study in the rat J Dent Res 68:1262, 1989 352 Uddman R, et al: Occurrence of VIP nerves in mammalian dental pulps Acta Odontol Scand 38:325–328, 1980 353 Vaahtokari A, et al: The enamel knot as a signaling center in the developing mouse tooth Mech Dev 54:39–43, 1996 354 Vainio S, et al: Identification of BMP-4 as a signal mediating secondary induction between epithelial and mesenchymal tissues during early tooth development Cell 75:45–58, 1993 355 van Amerongen JP, Lemmens IG, Tonino GJ: The concentration, extractability and characterization of collagen in human dental pulp Arch Oral Biol, 28:339–345, 1983 356 Van Hassel HJ: Physiology of the human dental pulp Oral Surg Oral Med Oral Path 32:126, 1971 357 Van Hassel HJ, Brown AC: Effect of temperature changes on intrapulpal pressure and hydraulic permeability in dogs Arch Oral Biol 14:301–315, 1969 358 Vashishth D, Tanner KE, Bonfield W: Experimental validation of a microcracking-based toughening mechanism for cortical bone J Biomech 36:121, 2003 359 Veis A: Mineral-matrix interactions in bone and dentin J Bone Miner Res Suppl 2:S493-S497, 1993 360 Vickers ER, Cousins MJ: Neuropathic orofacial pain part 1–prevalence and pathophysiology Aust Endod J 26:19– 26, 2000 361 Vongsavan N, Matthews B: Fluid flow through cat dentine in vivo Arch Oral Biol 37:175–185, 1992 362 Vongsavan N, Matthews B: The permeability of cat dentine in vivo and in vitro Arch Oral Biol 36:641, 1991 363 Vongsavan N, Matthews B: The relation between fluid flow through dentine and the discharge of intradental nerves Arch Oral Biol 39(suppl):140S, 1994 CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex 364 Vongsavan N, Matthews B: The vascularity of dental pulp in cats J Dent Res, 71:1913–1915, 1992 365 Wakisaka S: Neuropeptides in the dental pulp: their distribution, origins and correlation J Endod 16:67, 1990 366 Wakisaka S, Ichikawa H, Akai M: Distribution and origins of peptide- and catecholamine-containing nerve fibres in the feline dental pulp and effects of cavity preparation on these nerve fibres J Osaka Univ Dent Sch 26:17–28, 1986 367 Wakisaka S, Sasaki Y, Ichikawa H, Matsuo S: Increase in c-fos-like immunoreactivity in the trigeminal nucleus complex after dental treatment Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):551–555, 1992 368 Wall PD: Alterations in the central nervous system after deafferentation: connectivity control In Bonica JJ, Lindblom U, Iggo A, editors: Advances in pain research and therapy, vol 5, New York, 1983, Raven Press, p 677 369 Wang RZ, Weiner S: Strain-structure relations in human teeth using Moire fringes J Biomech 31:135, 1998 370 Warfvinge J, Dahlen G, Bergenholtz G: Dental pulp response to bacterial cell wall material J Dent Res 64:1046, 1985 371 Weber DF: Human dentine sclerosis: a microradiographic study Arch Oral Biol 19:163, 1974 372 Weber DK, Zaki AL: Scanning and transmission electron microscopy of tubular structure presumed to be human odontoblast processes J Dent Res 65:982, 1986 373 Weiger R, Axmann-Kremar D, Lost C: Prognosis of conventional root canal treatment reconsidered Endodon Dent Traumatol 14:1, 1998 374 Weiner S, Vies A, Beniash E, Arad T, Dillon JW, Sabsay B, et al: Peritubular dentin formation: crystal organization and the macromolecular constituents in human teeth J Struct Biol 126:27, 1999 375 Weinstock M, Leblond CP: Synthesis, migration and release of precursor collagen by odontoblasts as visualized by radioautography after 3H-proline administration J Cell Biol 60:92, 1974 376 Weinstock A, Weinstock M, Leblond CP: Autoradiographic detection of 3H-fucose incorporation into glycoprotein by odontoblasts and its deposition at the site of the calcification front in dentin Calcif Tissue Res 8:181, 1972 377 Wiig H, Aukland K, Tenstad O: Isolation of interstitial fluid from rat mammary tumors by a centrifugation method Am J Physiol Heart Circ Physiol 284:H416-H424, 2003 378 Wiig H, et al: The role of the extracellular matrix in tissue distribution of macromolecules in normal and pathological tissues: potential therapeutic consequences Microcirculation 15:283–296, 2008 379 Winter HF, Bishop JG, Dorman HL: Transmembrane potentials of odontoblasts J Dent Res 42:594, 1963 380 Woodnutt DA, Wager-Miller J, O’Neill PC, Bothwell M, Byers MR: Neurotrophin receptors and nerve growth factor are differentially expressed in adjacent nonneuronal cells 381 382 383 384 385 386 387 388 503 of normal and injured tooth pulp Cell Tissue Res 299:225– 236, 2000 Yamada T, Nakamura K, Iwaku M, Fusayama T: The extent of the odontoblast process in normal and carious human dentin J Dent Res 62:798, 1983 Yamaguchi M, Kojima T, Kanekawa M, Aihara N, Nogimura A, Kasai K: Neuropeptides stimulate production of interleukin-1 beta, interleukin-6, and tumor necrosis factor-alpha in human dental pulp cells Inflamm Res 53:199–204, 2004 Yamamura T: Differentiation of pulpal wound healing J Dent Res 64(special issue):530, 1985 Yang BH, Piao ZG, Kim Y-B: Activation of vanilloid receptor (VR1) by eugenol J Dent Res 82:781, 2003 Yu CY, Boyd NM, Cringle SJ: An in vivo and in vitro comparison of the effects of vasoactive mediators on pulpal blood vessels in rat incisors Arch Oral Biol 47:723–732, 2002 Yu CY, Boyd NM, Cringle SJ, Alder VA, Yu DY: Oxygen distribution and consumption in rat lower incisor pulp Arch Oral Biol 47:529, 2002 Zerlotti E: Histochemical study of the connective tissue of the dental pulp Arch Oral Biol 9:149, 1964 Zhang J, Kawashima N, Suda H, Nakano Y, Takano Y, Azuma M: The existence of CD11c+ sentinel and F4/80+ interstitial dendritic cells in dental pulp and their dynamics and functional properties Int Immunol 18:1375–1384, 2006 SUGGESTED READINGS Baker JH: Lymphatic vessels on human alveolar bone Lymphology 15:1, 1982 Brodin P, Linge L, Aars H: Instant assessment of pulpal blood flow after orthodontic force application J Orofac Ortho 57:306, 1996 Casasco A, Casasco M, Ciuffreda M, Springall DR, Calligaro A, Bianchi S, et al: Immunohistochemical evidence for the occurrence of endothelin in the vascular endothelium of normal and inflamed human dental pulp J Dent Res 71:475, 1992 Di Nardo Di Maio FDN, Lohinai Z, D’Arcangelo C, De Fazio PE, Speranza L, De Luttiis MA, et al: Nitric oxide synthase in healthy and inflamed human dental pulp J Dent Res 83:312, 2004 Foldi M: Tissue channels, prelymphatics and lymphatics Experimentia 38:1120, 1982 Heyeraas KJ: Vascular and immunoreactive nerve fibre reactions in the pulp after stimulation and denervation In Proceedings of the International Conference on Dentin/Pulp Complex Japan, 1995, Quintessence Publishing Co., Ltd Ikawa M, Fujiwara M, Horiuchi H, Shimauchi H: The effect of short-term tooth intrusion on human pulpal blood flow measured by laser Doppler flowmetry Arch Oral Biol 46:781, 2001 Karjalainen S, et al: Immunohistochemical localization of types I and III collagen and fibronectin in the dentine of carious human teeth Arch Oral Biol 31:801–806, 1986 Kettunen P, et al: Fgfr2b mediated epithelial-mesenchymal interactions coordinate tooth morphogenesis and dental trigeminal axon patterning Mech Dev 124:868–883, 2007 Kettunen P, et al: Regulering av utvikling av tannens form og sensorisk nerveforsyning er samordnet Nor Tannlaegeforen Tid 119:162–166, 2009 Kim S: Neurovascular interactions in the dental pulp in health and inflammation J Endod 14:48, 1990 Kim S, Liu M, Simchon S, Dorscher-Kim JE: Effects of selected inflammatory mediators in blood flow and vascular permeability in the dental pulp Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):387, 1992 Kinney JH, Balooch M, Marshall GW, Marshall SJ: A micromechanics model of the elastic properties of human dentine Arch Oral Biol 44:813, 1999 Kraintz L, Tyler CD, Ellis BR: Lymphatic drainage of teeth in dogs demonstrated by radioactive colloidal gold J Dent Res 38:198, 1959 Linde A, et al: Localization of fibronectin during dentinogenesis in rat incisor Arch Oral Biol 27:1069–1073, 1982 Maeda T, Suda H, Takahashi K, Tokyo, 1996, Quintessence Publishing Co, p 146 Marchetti C, Piacentini C, Menghini P: Lymphatic vessels in inflamed human dental pulp Bull Group Int Rech Sci Stomatol Odontol 33:155, 1990 Matsumoto Y, Zhang B, Kato S: Lymphatic networks in the periodontal tissue and dental pulp as revealed by histochemical study Microsc Res Tech 56:50, 2002 Naftel JP, Qian XB, Bernanke JM: Effects of postnatal anti-nerve growth factor serum exposure on development of apical nerves of the rat molar Brain Res Dev Brain Res 80:54–62, 1994 Nakata K, et al: Anaerobic bacterial extracts influence production of matrix metalloproteinases and their inhibitors by human dental pulp cells J Endod 26:410–413, 2000 Orlowski WA: A potential for high collagen turnover in the molar pulp independent of eruption J Dent Res, 56:1488, 1977 Panagakos FS, O’Boskey JF Jr, Rodriguez E: Regulation of pulp cell matrix metalloproteinase production by cytokines and lipopolysaccharides J Endod 22:358–361, 1996 Ruch JV, Lesot H, Begue-Kirn C: Odontoblast differentiation Int J Dev Biol 39:51–68, 1995 Stanley HR, Pereira JC, Spiegel E, Broom C, Schultz M: The detection and prevalence of reactive and physiologic sclerotic dentin, reparative dentin and dead tracts beneath various types of dental lesions according to tooth surface and age J Oral Pathol 12:257, 1983 Stein TJ, Corcoran JF: Anatomy of the root apex and its histologic changes with age Oral Surg Oral Med Oral Pathol 69:238, 1990 Stevens A, Zuliani T, Olejnik C, Leroy H, Obriot H, Kerr-Conte J, et al: Human dental pulp stem cells differentiate into neural crest–derived melanocytes and have label-retaining and sphere-forming abilities Stem Cells Dev 17:1175–1184, 2008 Tamura M, Nagaoka S, Kawagoe M: Interleukin-1 alpha stimulates interstitial collagenase gene expression in human dental pulp fibroblast J Endod 22:240–243, 1996 Thesleff I, Vaahtokari A: The role of growth factors in determination and differentiation of the odontoblast cell lineage Proc Finn Dent Soc 88(suppl 1):357, 1992 Thomas GI, Speight PM: Cell adhesion molecules and oral cancer Crit Rev Oral Biol Med 12:479, 2001 Tjäderhane L, Palosaari H, Sulkala M, et al: The expression of matrix metalloproteinases (MMPs) in human odontoblasts In Ishikawa T, Takahashi K, Maeda T, Suda H, Shimono M, Inoue T, editors: Proceedings of the international conference on dentin/pulp complex, Chicago, 2002, Quintessence Publishing Co, p 45 Todoki K: [Effect of vasoactive substances and electrical stimulation of the inferior alveolar nerve on blood flow in the dental pulp in dogs.] Nippon Yakurigaku Zasshi 92:61–67, 1988 Tönder KJ: The effects of variations in arterial blood pressure and baroreceptor reflexes on blood flow in dogs Arch Oral Biol 20:345, 1975 Topham RT et al: Effects of epidermal growth factor on tooth differentiation and eruption In Davidovitch Z, editor: The biological mechanisms of tooth eruption and root resorption, Birmingham, AL, Ebsco Media, 1988 Trowbridge HO: Intradental sensory units: physiological and clinical aspects J Endod 11:489, 1985 van Amerongen JP, Lemmens IG, Tonino GJ: Immunofluorescent localization and extractability of fibronectin in human dental pulp Arch Oral Biol 29:93–99, 1984 Walton RE, Langeland K: Migration of materials in the dental pulp of monkeys J Endod 4:167, 1978 Westrum LE, Canfield RC, Black RG: Transganglionic degeneration in the spinal trigeminal nucleus following removal of tooth pulps in adult cats Brain Res 101:137, 1976 Yu CY, Boyd NM, Cringle SJ: Agonist-induced vasoactive responses in isolated perfused porcine dental pulp arterioles Arch Oral Biol 47:99–107, 2002 Yu CY, Boyd NM, Cringle SJ, Su EN, Yu DY: Vasoactive response of isolated pulpal arterioles to endothelin-1 J Endod 30:149, 2004 ... trung mơ lân cận Chức ngà thứ 459 ba bảo vệ tủy từ ảnh hưởng độc hại Ngà sửa chữa khơng có tổ chức cấu trúc so với ngà sơ khởi thứ cấp Bó Ngà Vỏ Lớp ngà sơ khởi lắng đọng lớp vỏ ngà Nó sản xuất... hoạt động chức Khi collagens tiết vào chất ngà hình thành, CH APTER 12 • Structure and Functions of the Dentin-Pulp Complex 60 vào bảo vệ ngà men Như vậy, động lực tích hợp phức hợp tủy- ngà ngụ... hòa tăng trưởng tinh thể ngà quanh tủy, không xuất lớp vỏ ngà. 246 Ngà Chung Quanh Tủy Ngà quanh tủy hình thành sau lớp ngà vỏ lắng đọng, tạo thành phần chủ yếu ngà sơ khởi ngà thứ cấp Các tế bào