VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP Nguyên liệu

Một phần của tài liệu CÔNG NGHỆ BIẾN ĐỔI SINH HỌC pdf (Trang 116 - 124)

- Cuống nang và nang bào tử của Mucor sp.

ẢNH HƯỞNG CỦA CÁC THÀNH PHẦN amylase,

VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP Nguyên liệu

Nguyên liệu

 Tinh bột sắn của hãng Vedan, amylose và amylopect in tách từ tinh bột sắn theo phương pháp của Balagopalan (1988).

 -amylase tinh sạch từ mơi trường lên men bán rắn của vi khuẩn B. subtilis, - amylase và glucoamylase (GA) tinh sạch từ mơi trường nuơi cấy bề mặt gạo lức các

chủng nấm mốc A. oryzae và A. kawasaki (các chủng cĩ trong bảo tàng giống của

Viện Sinh họcNhiệt đới).

Phương pháp

Thủy phân các dạng cơ chất khác nhau: Tinh bột sắn đã hồ hố, tinh bột sắn dạng

hạt sống, amylose và amylopectin tách từ tinh bột sắn theo phương pháp của Balagopalan được chuẩn bị với nồng độ 1%, enzyme đ ược thêm vào với hàm lượng 15đv/1g cơ chất (-amylase), 20đv/1g cơ ch ất (GA) và sau đĩ thuỷ phân ở các điều kiện

pH, nhiệt độ thích hợp. Khả năng thuỷ phân c ơ chất được tính bằng phần trăm lượng đường khử tạo ra so với l ượng chất khơ ban đầu.

Thuỷ phân hạt tinh bột sống: Tinh bột sắn dạng hạt nồng độ 1% khơng qua hồ hố

được thuỷ phân bằng các amylase nấm mốc và vi khuẩn tại những điều kiện pH và t0 tối ưu. Sau mỗi 2 giờ, mẫu được ly tâmở 12.000g trong 10 phút bằng thiết bị ly tâm Sigma 2K15. Lượng đường khử tạo ra trong phần dung dịch b ên trên được xác định bằng phương pháp so màu v ới thuốc thử DNS. Phần tinh bột cịn lại được rửa bằng cồn và

nước cất vài lần, sau đĩ sấy đơng khơ hoặc sử dụng trực tiếp để kiểm tra các thay đổi về

hình thái của hạt tinh bột bằng SEM.

Sử dụng kính hiển vi điện tử quét để quan sát sự biến đổi cấu trúc và những thay đổi hình dạng khác của hạt tinh bột: Cấu trúc hạt tinh bột và các thay đổi hình dạng khác của hạt dưới tác động của amylase được phân tích trên kính hiển vi điện tử thuộc phịng thí nghiệm SEM &

EDS, Trung tâm Khoa học Vậtliệu, Khoa Vậtlý, Đại học Khoa học Tựnhiên, Hà Nội. Các

hạt tinh bột được gắn lên đế mẫu bằng keo dán các bon cĩ tính dẫn điện và tiếp đĩ phủ một

lớp vàng với chiều dầy 20nm bằng thiết bị Sputter JFC-1600. Mẫu được quan sát bằng kính

hiển vi điện tử quét JSM 5410 LV với điện áp 10-30kV.

Hấp phụ enzyme lên bề mặt hạt tinh bột: Enzyme được cho vào dung dịch tinh bột

sắn nồng độ 10mg/ml với lượng 8,0 đv/1mg tinh bột trong đệm phosphate pH 5,7 đối

với-amylase, 2,0 đv/1mg tinh b ột trong đệm acetate pH 4,5 đối với GA (Thí nghiệm 1)

và 50mg protein/1mg tinh bột đối với cả hai 2 loại enzyme (Thí nghiệm 2). Hỗn hợp được lắc nhẹ ở 40C trong 1 giờ, sau đĩ ly tâm 10 phút ở 12.000g. Nồng độ protein và hoạt tính enzyme cịn lại trong phần dung dịch sau khi lắc với tinh bột sắn đ ược xác định

và so sánh với nồng độ ban đầu để tính l ượng protein hấp phụ lên tinh bột. Khả năng

enzyme hấp phụ lên bề mặt hạt tinh bột cũng đ ược kiểm tra bằng SEM.

KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN

Khả năng thuỷ phân của amylase đối với các dạng c ơ chất khác nhau

Kết quả thuỷ phân các dạng c ơ chất khác nhau sau 3 giờ ở các điều kiện tối ưu thể

hiện ở Bảng 1.

Bảng 1: Kết quả thuỷ phân các dạng tinh bột sắn bằng amylase từ các nguồn khác nhau

Lượng đường khử tạo ra (% so với l ượng cơ chất ban đầu) Cơ chất Termamyl 120L -amylase

(B. subtilis) -amylase (A. oryzae) GA Novo GA từ A. kawasaki Tinh bột sắn đã hồ hố 2,66 1,9 44,6 30,5 21,9 Tinh bột sắn chưa hồ hố 0,31 0,57 3,88 0,23 3,21 Amylose 0,49 0,31 44,4 25,0 10,9 Amylopectin 5,31 4,85 44,0 21,7 11,7

Pandey (2000) cĩ thơng báo về khả năng thuỷ phân kém các liên kết nhánh trong phân

tử tinh bột của GA, cũng như việc sử dụng kết hợp GA và các enzyme như pullulanase hay isoamylase để tăng hiệu suất quá trình thuỷ phân. Tuy nhiên, trong thí nghiệm này, GA từ

nấm mốc A. niger (hãng Novo) chỉ thuỷ phân amylopectin yếu h ơn một chút so với

amylose, cịn GA từA. kawasaki thuỷ phân 2 cơ chất trên với tốc độ ban đầu gần như nhau.

Các enzyme này thuỷ phân rất tốt tinh bột sắn đã hồ hố, lượng đường khử thu được khi

thuỷ phân tinh bột sắn đã hồ hố cao nhất so với các cơ chất khác. GA từA. kawasaki thu

phân tinh bột sắn dạng hạt sống thấp hơn 7 lần so với tinh bột sắn đã hồ hố cịn GA từA. niger gần như khơng cĩ khả năng thuỷ phân dạng cơ chất này.

Do cơ chế tác động khác nhau mà các -amylase vi khuẩn bị chi phối nhiều h ơn bởi

thành phần và tính chất của phân tử cơ chất. Kết quả cho thấy, đối với -amylase, khả năng thuỷ phân amylopectin là cao nhất và khả năng thuỷ phân hạt tinh bột sống là thấp

nhất. Trong khi GA nấm mốc thuỷ phân amylose tốt h ơn một chút so với amylopectin

thì-amylase vi khuẩn lại tấn cơng amylopectin với t ốc độ nhanh gấp 10 lần (Termamyl

120L) và 15 lần (-amylase từB. subtilis) so với amylose. Tốc độ thuỷ phân amylose rất

thấp, tương đương với tốc độ thuỷ phân tinh bột sống ch ưa hồ hố.

Nếu như GA nấm mốc thuỷ phân tinh bột sắn đã hồ hố tốt nhất thì đối với cả 2 trường hợp sử dụng Termamyl và -amylase từ vi khuẩn B. subtilis, hàm lượng đường

khử tạo ra khi thuỷ phân tinh bột sắn đã hồ hố chỉ bằng 1/2 lượng đường khử thu được khi cơ chất chỉ chứa amylopectin. Khả năng thuỷ phân tinh bột phụ thuộc vào tỷ lệ

amylose, amylopectin trong thành phần; do hàm lượng amylopectin cao (85%) nên tinh bột sắn là một trong những loại tinh bột dễ bị thuỷ phân bởi -amylase. Termamyl 120L thuỷ phân yếu tinh bột sắn ch ưa hồ hố, khả năng thuỷ phân dạng c ơ chất này cao hơn đối với enzyme từ B. subtilis.

Cĩ thể thấy cơ chất mạch thẳng cĩ ái lực kém đối với -amylase vi khuẩn. Tuy nhiên độ phân nhánh của cơ chất lại khơng cĩ ảnh hưởng gì tới khả năng tấn cơng tinh

bột sắn của -amylase từ nấm mốc A. oryzae. Hàm lượng đường khử tạo ra ở cả 3 trường hợp cơ chất tinh bột sắn đã hồ hố, amylose và amylopectin đều như nhau và đạt

mức 450mg/ml, cao hơn nhiều so với lượng tạo ra bởi -amylase vi khuẩn. -amylase từ nấm mốc là enzyme đường hố với sản phẩm chính của quá trình thuỷ phân là

maltose nên lượng đường khử tạo ra trong sản phẩm tinh bột sắn sau thuỷ phân cao. Kết

quả trên cũng cho thấy 2 loại -amylase vi khuẩn và nấm mốc cĩ cơ chế tấn cơng phân

tử cơ chất khác nhau. -Amylase từ nấm mốc A. oryzae cũng cĩ khả năng thuỷ phân

tinh bột sắn chưa hồ hố khá tốt, tuy nhi ên lượng đường khử tạo ra cũng mới chỉ đạt 1/10 lượng đường khử tạo ra khi enzyme này thuỷ phân các dạng cơ chất khác.

Nghiên cứu tác động thuỷ phân của amylase đối với tinh bột sắn sống ch ưa hồ hố bằng kính hiển vi điện tử quét.

Cấu trúc hạt tinh bột sắn

Các quan sát trên SEM về một số đặc điểm nh ư hình dạng, kích thước và cấu trúc

bên trong hạt tinh bột sắn được thể hiện trong hình 1. Kết quả thu được về hình dạng và

Tinh bột sắn của hãng Vedan (chủ yếu thuộc giống sắn KM, đ ược trồng tại Tây Ninh,

Phạm Văn Biên 2001) cĩ nhiều hình dạng, chủ yếu hình trịn và hình quả táo, cĩ một

chỗ lõm và núm ở giữa (Hình A). Kích thước của hạt tinh bột n ằm trong giới hạn từ 5- 15mm. Bề mặt hạt tinh bột nhẵn (hình B), khi hạt tinh bột sắn bị vỡ, cĩ thể thấy các rãnh tạo cấu trúc xốp của hạt (Hình C). Các rãnh vơ định hình kéo dài từ bề mặt tới tâm của

hạt tạo thành các lỗ xốp được Kossmann (2000) đề cập khá kỹ trong bài viết tổng quan

về tinh bột. Chính các lỗ xốp n ày giúp nước thâm nhập làm trương nở tinh bột, phá vỡ

các liên kết hydro giữa các phân tử trong cấu trúc tinh thể, tạo điều kiện cho tác dụng

phân huỷ của enzyme. Tinh bột sắn cĩ cấu trúc hạt t ương đối xốp, liên kết giữa các phần

tử trong cấu trúc tinh thể yếu, vì vậy nĩ dễ bị phân huỷ bởi các tác nhân nh ư acid, enzyme hơn so với các loại hạt khác nh ư bắp, gạo.

Khả năng thuỷ phân tinh bột sắn sống của amylase

Một số vi sinh vật cĩ khả năng tạo amylase thuỷ phân tinh bột sống khi đ ược nuơi

bằng phương pháp bề mặt, trong khi enzyme thu đ ược khi nuơi bằng ph ương pháp bề

sâu lại khơng cĩ hoạt tính này. Chính vì vậy, amylase thu được từ một số chủng cơng

nghiệp của Viện SHNĐ khi nuơi cấy bề mặt đ ược sử dụng để nghiên cứu khả năng thuỷ

phân tinh bột sắn sống chưa hồ hố. Dù khả năng thuỷ phân dạng c ơ chất này của

amylase cĩ thể cịn thấp nhưng nĩ mở ra triển vọng giảm chi phí sản xuất v à đặc biệt là

giúp đơn giản hố quy trình cơng nghệ.

-amylase từ vi khuẩn B. subtilis và nấm mốc A. oryzae (so sánh với Termamyl

120L) và GA từ nấm mốc A. kawasaki (so sánh với GA từ A. niger của hãng Novo)

được sử dụng để thuỷ phân tinh bột sắn ch ưa hồ hố như đã mơ tả trong phần phương pháp. Dưới đây là các kết quả thuỷ phân được xác định dựa trên lượng đường khử tạo ra (Đồ thị 1) và bằng các quan sát trên kính hiển vi điện tử quét SEM (Hình 1).

Đồ thị 1: Lượng đường khử tạo ra khi thuỷ phân tinh bột sắn ch ưa hồ hĩa

0 1 2 3 4 5 6 0 2.5 5 7.5 10 15

Th êi gian , giê

§ ­ ê n g k h ư , m g /m l B a c . su b tilis G A N ovo A sp. ory za e T e rm a m y l A sp. k a wa sa k i

A

B C

D E F

G H I

Hình 1: Hạt tinh bột khi bị các amylase tấn cơng.

A: Bề mặt hạt tinh bột sắn khi ch ưa bị enzyme tấn cơng, B: Hình dạng đặc trưng

của hạt tinh bột sắn, C: Cấu trúc xốp bên trong hạt tinh bột sắn khi enzyme xâm nhập. D,

E, F: Hạt tinh bột sắn bị tấn cơng bởi -amylase của nấm mốc A. oryzae, vi khuẩn B. licheniformis (Termamyl 120L) và B. subtilis. G, H, I: Hạt tinh bột sắn bị tấn cơng bởi

GA của hãng Novo và GA củaA. kawasaki.

Theo kết quả trên đồ thị 1, cả 5 loại amylase sử dụng ít hoặc nhiều đều cĩ khả năng thuỷ phân hạt tinh bột sắn ch ưa hồ hố. Tuy nhiên, khả năng thuỷ phân của

amylase từ các chủng vi khuẩn B. subtilis, A. oryzae và A. kawasaki của Viện SHNĐ

- biểu hiện bằng lượng đường khử tạo ra trong phần dung dịch bên trên - đều cao hơn

rất nhiều so với 2 enzyme đối chứng là Termamyl 120L và AGM 200L của hãng

Novo, Đan Mạch.

Bên cạnh đĩ, kết quả quan sát trên SEM cho thấy, -amylase và GA tấn cơng

hạt tinh bột theo hai cách khác nhau. -Amylase vi khuẩn tấn cơng hạt tinh bột sắn,

tạo thành nhiều lỗ nhỏ trên bề mặt, sau 24h thuỷ phân, bề mặt hạt bị rỗ nh ư tổ ong

amylase từ B. subtilis). Đối với -amylase từ nấm mốc A. oryzae, lượng đường khử

tạo ra nhanh trong thời gian 3h đầu nh ưng sau đĩ, tác động thuỷ phân lên hạt tinh bột

sắn tăng khơng đáng kể do -amylase nấm mốc chịu nhiệt kém h ơn so với -amylase vi khuẩn. Trong ba loại -amylase đã sử dụng enzyme từ B. subtilis cĩ tác dụng phá

huỷ cấu hình hạt tinh bột sắn mạnh nhất.

GA từ các chủng Aspergillus sp. dường như khơng tấn cơng hạt tinh bột sắn theo

diện rộng bằng cách tạo nhiều lỗ nhỏ nh ư trong trường hợp của -amylase mà cĩ xu

hướng tạo những lỗ lớn và sâu trên bề mặt hạt tinh bột (Hình G, H tương ứng với hạt

tinh bột sắn bị tấn cơng bởi GA của hãng Novo và GA từ A. kawasaki). Lượng đường khử tạo ra trong dung dịch cao h ơn so với trường hợp sử dụng a-amylase vi khuẩn và đạt mức cao nhất 5,5mg/ml khi sử dụng GA từ A. kawasaki (Đồ thị). Trong

hai loại GA, enzyme từ A. kawasaki cĩ khả năng thuỷ phân hạt tinh bột sắn mạnh hơn hẳn so với GA của hãng Novo, Đan mạch.

Theo thơng báo của Colonna (1988), enzyme tấn cơng tinh bột từng hạt một cịn acid thì lại tấn cơng đồng thời tất cả các hạt. Trong điều kiện thực nghiệm, các quan

sát trên kính hiển vi điện tử cũng cho thấy, d ường như các amylase khơng t ấn cơng

các hạt tinh bột sắn đồng thời cùng một lúc. Cĩ thể thấy nhiều hạt tinh bột với những

dấu hiệu bị thuỷ phân rõ ràng bên cạnh những hạt tinh bột cịn gần như nguyên vẹn

(Hình I). Tuy nhiên, kết quả trên cĩ thể được giải thích - một cách chính xác h ơn - bởi bản chất của “tính tiếp cận”, hay sự tiếp cận ch ưa đồng đều trong dung dịch; do

phân tử lượng của amylase lớn h ơn acid quá nhi ều nên sự tiếp cận của phân tử

enzyme với cơ chất bị hạn chế.

Khả năng hấp phụ của amylase lên bề mặt hạt tinh bột sắn

Kết quả nghiên cứu khả năng hấp phụ các amylase lên bề mặt hạt tinh bột sắn khi

thủy phân chúng thể hiện ở bảng 2 và hình 2.

Bảng 2: Kết quả hấp phụ enzyme l ên bề mặt hạt tinh bột sau 30 phút

Nguồn enzyme % enzyme hấp phụ lên hạt tinh bột trong thí nghiệm 1

% protein hấp phụ lên hạt tinh bột trong thí nghiệm 2

Termamyl 120L Khơng hấp phụ Khơng hấp phụ

-amylase từ

B. subtilis

Khơng hấp phụ Khơng hấp phụ

-amylase từA. oryzae Khơng hấp phụ Khơng hấp phụ

GA từA. kawasaki 8,69 5,13

Hình 2: Các quan sát trên kính hi ển vi điện tử quét về hiện t ượng hấp phụ enzyme trên bề mặt hạt tinh bột.

A: tinh bột sắn. B, C: hạt tinh bột sắn xử lý với -amylase từB. subtilis sau 6 giờ thuỷ

phân và GA của hãng Novo (từA. Niger) sau 24 giờ thuỷ phân (kích thước 5m). D, E, F: hạt tinh bột sắn xử lý với -amylase từ A. oryzae, Termamyl 120L và GA tA.

kawasaki(kích thước 10mm).

Theo kết quả ở bảng 3.7, GA từ nấm m ốc hấp phụ lên bề mặt hạt trong khi - amylase vi khuẩn và nấm mốc lại khơng hấp phụ lên bề mặt hạt khi thuỷ phân tinh bột

sắn chưa hồ hố. Ngoài ra, cĩ thể quan sát trên hình 2, C và F, khi xử lý dung dịch hạt

tinh bột sắn tương ứng với GA từ A. niger (GA Novo) và GA tA. kawasaki cĩ hiện tượng xuất hiện các chấm trắng với kích th ước khoảng 0,1m trên bề mặt hạt. Ngược

lại, trong quá trình thuỷ phân hạt tinh bột sắn bằng -amylase, khơng thấy cĩ hiện xuất

hiện các chấm trắng này (Hình 2 B, D, E tương ứng với hạt tinh bột sắn sau 6 giờ thuỷ

phân bởi -amylase từ B. subtilis, A. oryzae và Termamyl 120L). Những chấm trắng quan sát được trên bề mặt hạt tinh bột trong tr ường hợp thuỷ phân bằng GA từ A. niger

và A. kawasaki rất cĩ thể là các phân tử enzyme.

KẾTLUẬN

-Amylase vi khuẩn từ Bac. subtilis và Termamyl thuỷ phân amylopectin tốt h ơn

nhiều so với amylose, do đĩ khả năng thuỷ phân của chúng phụ thuộc vào tỷ lệ thành phần amylose/amylopectin trong tinh bột; trong khi đĩ, độ phân nhánh của c ơ chất

khơng thấy ảnh hưởng rõ rệt đến khả năng thuỷ phân của -amylase từA. oryzae và GA

từA. kawasaki.

A B C

Quan sát trên SEM cho thấy, hạt tinh bột sắn cĩ hình trịn hoặc hình quả táo, cĩ một

chỗ lõm và númở giữa. Tinh bột sắn cĩ thành phần amylopectin cao, cấu trúc bên trong hạt tương đối xốp nên dễ bị phân huỷ bởi acid hoặc enzyme. C ơ chế tấn cơng hạt tinh

bột sắn chưa hồ hĩa của amylase cĩ thể đ ược cĩ thể đề xuất như sau:

- -amylase tiếp cận hạt tinh bột theo diện rộng tại nhiều vị trí ngẫu nhiên trên bề

mặt hạt và cắt các liên kết -1,4 tạo ra các dextrin và đường oligo; riêng đối với -

Một phần của tài liệu CÔNG NGHỆ BIẾN ĐỔI SINH HỌC pdf (Trang 116 - 124)

Tải bản đầy đủ (PDF)

(124 trang)