ảnh hưởng của khoáng đa lượng pkmg lên chu kỳ lột xác của tôm thẻ chân trắng (litopenaeus vannamei) ở các giai đoạn khác nhau khi nuôi trong môi trường có độ mặn thấp

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ KHOA THUỶ SẢN BÙI ĐOÀN LUÂN ẢNH HƯỞNG CỦA KHOÁNG ĐA LƯỢNG P-K-Mg LÊN CHU KỲ LỘT XÁC CỦA TÔM THẺ CHÂN TRẮNG Litopenaeus vannamei Ở CÁC GIAI ĐOẠN KHÁC NHAU KHI NU

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ KHOA THUỶ SẢN

BÙI ĐOÀN LUÂN

ẢNH HƯỞNG CỦA KHOÁNG ĐA LƯỢNG P-K-Mg LÊN CHU KỲ LỘT XÁC CỦA TÔM THẺ CHÂN TRẮNG

(Litopenaeus vannamei) Ở CÁC GIAI ĐOẠN KHÁC NHAU

KHI NUÔI TRONG MÔI TRƯỜNG CÓ ĐỘ MẶN THẤP

LUẬN VẶN TỐT NGHIỆP ĐẠI HỌC NGÀNH NUÔI TRỒNG THỦY SẢN

12/2013

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ

KHOA THUỶ SẢN

BÙI ĐOÀN LUÂN

ẢNH HƯỞNG CỦA KHOÁNG ĐA LƯỢNG P-K-Mg LÊN

CHU KỲ LỘT XÁC CỦA THẺ CHÂN TRẮNG (Litopenaeus vannamei) Ở CÁC GIAI ĐOẠN KHÁC NHAU KHI NUÔI

TRONG MÔI TRƯỜNG CÓ ĐỘ MẶN THẤP

LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP ĐẠI HỌC NGÀNH NUÔI TRỒNG THỦY SẢN

CÁN BỘ HƯỚNG DẪN HUỲNH TRƯỜNG GIANG

12/2013

LỜI CẢM TẠ

Trước hết tôi xin gửi lời cảm ơn chân thành đến Ban giám hiệu Trường Đại học Cần Thơ, Ban chủ nhiệm Khoa thủy sản; Bộ môn Thủy sinh học ứng dụng, các thầy cô đã rất nhiệt tình, tạo điều kiện thuận lợi cho tôi hoàn thành chương trình học tập và nghiên cứu tại trường

Tôi xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc đến thầy hướng dẫn Huỳnh Trường Giang, trong những tháng qua đã ân cần, quan tâm, hướng dẫn, giúp đỡ và tạo mọi điều kiện thuận lợi cho tôi học tập, nghiên cứu để chăm bồi kiến thức và hoàn thành luận văn này

Xin chân thành cảm ơn gia đình cùng bạn bè các anh chị làm việc trong khoa (Phan Thị Cẩm Tú, Trần Thị Bé Gấm, Trần Trung Giang) đã động viên, giúp đỡ tôi rất nhiều trong quá trình phân tích mẫu thực hiện luận văn

Bùi Đoàn Luân

TÓM TẮT

Ảnh hưởng của khoáng đa lượng P-K-Mg lên chu kì lột xác của thẻ chân

trắng (Litopenaeus vanamei) ở các giai đoạn khác nhau trong môi trường độ mặn

2‰ được nghiên cứu tại Khoa Thủy sản, Trường Đại học Cần Thơ Thí nghiệm trên 4 mức khoáng: đối chứng (không bổ sung); mức bổ sung 5-5-10; mức bổ sung 10-10-20 và mức bổ sung 20-20-40 Giai đoạn PL15 thí nghiệm ảnh hưởng của 4 mức khoáng P-K-Mg lên chu kì lột xác và tỉ lệ các giai đoạn lột xác Giai đoạn 0,5-1 g, đánh giá ảnh hưởng của 4 mức khoáng bổ sung lên thời gian của chu kì chu kì lột xác, tăng trưởng, tăng trọng và tỉ lệ lột xác Tương tự cho giai đoạn 4-5 g Kết quả nghiên cứu cho thấy tôm thẻ chân trắng giống PL15 nuôi trong môi trường độ mặn 2‰, có chu kì lột xác ở 4 mức khoáng: đối chứng, 5-5-

10, 10-10-20 và 20-20-40 khác biệt nhau không có ý nghĩa thống kê (p >0,05) và

so sánh tỉ lệ các giai đoạn của chu kì lột xác ở 4 nghiệm thức đều dao động ở mức rất thấp không có ý nghĩa

Bổ sung khoáng P-K-Mg có ý nghĩa nâng cao tăng trưởng và tăng trọng,

cở tôm 0,73±0,02 g (chiều dài 4,47±0,05 cm), mức khoáng bổ sung 10-10-20 và mức 20-20-40 cho tăng trưởng về chiều dài cao hơn đối chứng và mức khoáng 5-5-10 Mức khoáng 10-10-20 cho tăng trưởng chiều dài tốt nhất cao hơn 3 mức

còn lại khác biệt có ý nghĩa thống kê (p <0,05) Tăng trọng về khối lượng, cao

nhất ở mức 10-10-20 tuy nhiên chỉ có WG cao nhất khác biệt có ý nghĩa thống

kê (p <0,05) với 3 nghiệm thức thí nghiệm Các mức hàm lượng khoáng bổ sung

chưa có tác dụng rút ngắn chu kì lột xác của tôm, nhưng ở mức bổ sung 20-20-40

có tác dụng nâng cao tỉ lệ lột xác của tôm thẻ chân trắng

Thí nghiệm cỡ tôm 4,7±0,02 g (chiều dài 8,2±0,15 cm) cho kết quả tương

tự, bổ sung khoáng P-K-Mg thúc đẩy tăng trưởng và tăng trọng của tôm, mức bổ sung 10-10-20 cho kết quả tốt nhất, tăng trưởng về chiều dài, tăng trưởng tuyệt

đối và tương đối đều cao hơn đối chứng khác biệt có ý nghĩa thống kê (p <0,05),

đồng thời ở mức khoáng này cũng cho tăng trọng về khối lượng (WG) và tăng

trọng tuyệt đối (DWG) cao hơn đối chứng khác biệt có ý nghĩa thống kê (p

<0,05) Các mức hàm lượng khoáng bổ sung chưa rút ngắn được chu kì lột xác

và tỉ lệ lột xác của tôm thí nghiệm

MỤC LỤC

LỜI CẢM TẠ i

TÓM TẮT ii

MỤC LỤC iii

DANH SÁCH HÌNH vi

DANH SÁCH BẢNG vii

DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT viii

Chương 1: ĐẶT VẤN ĐỀ 1

1.1 Giới thiệu 1

1.2 Mục tiêu đề tài 2

1.3 Nội dung nghiên cứu 2

Chương 2: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 3

2.1 vài nét về đặc điểm sinh học của thẻ chân trắng (Litopenaeus Vannamei) 3

2.1.1 Hệ thống phân loại 3

2.1.2 Phân bố 3

2.1.3 Môi trường sống 4

2.1.4 Dinh dưỡng 4

2.1.5 Sinh trưởng 4

2.1.6 Sinh sản 5

2.2 Sinh lí lột xác và nhu cầu một số chất khoáng 5

2.2.1 Điều hòa áp suất thẩm thấu 8

2.2.2 Vai trò của một số chất khoáng đa lượng 9

2.2.3 Nhu cầu oxy trong quá trình lột xác 11

2.2.4 Độ mặn ảnh hưởng đến tăng trưởng của tôm 12

2.2.5 Một số nghiên cứu nuôi tôm thẻ trong độ mặn thấp có bổ sung khoáng chất 14

2.3 Tình hình nuôi và xuất khẩu tôm thẻ chân trắng ở Việt Nam và trên thế giới 15

Chương 3: VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 18

3.1 Thời gian và địa điểm thí nghiệm 18

3.1.1 Thời gian thực hiện 18

3.1.2 Địa điểm thí nghiệm 18

3.2 Vật liệu và thiết bị nghiên cứu 18

3.2.1 Thiết bị và hóa chất: 18

3.2.2 Đối tượng thí nghiệm: 19

3.2.3 Nguồn nước thí nghiệm 19

3.2.4 Thức ăn sử dụng cho thí nghiệm 19

3.3 Phương pháp nghiên cứu 19

3.3.1 Bố trí thí nghiệm: 19

3.3.2 Phương pháp phân tích mẫu 23

3.3.2.1 Phương pháp phân tích môi trường nước 23

3.3.2.2 Theo dõi các chỉ tiêu tăng trưởng, tăng trọng và tỉ lệ sống 23

3.3.3 Phương pháp xử lý số liệu 24

Chương 4: KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 25

4.1 Ảnh hưởng của khoáng P-K-Mg lên chu kì lột xác của thẻ chân trắng L vannamei giai đoạn PL15-PL26 nuôi ở độ mặn 2‰ 25

4.1.1 Các yếu tố môi trường nước 25

4.1.1.1 Nhiệt độ và pH 25

4.1.1.2 TAN, NO2-, PO43- 25

4.1.1.3 Độ kiềm và độ cứng, Ca2+, Mg2+ và tỉ lệ Mg/Ca 26

4.1.2 Chu kì lột xác 27

4.1.3 Tỉ lệ các giai đoạn trong chu kì lột xác 27

4.2 Ảnh hưởng của khoáng P-K-Mg lên sự lột xác của thẻ chân trắng L vannamei ở độ mặn 2‰, trong giai đoạn 0,5-1 g 30

4.2.1 Các yếu tố môi trường trong thí nghiệm 30

4.2.1.1 Nhiệt độ và pH 30

4.2.1.2 TAN, NO2-, PO43- 30

4.2.1.3 Độ kiềm và độ cứng, Ca2+, Mg2+ và tỉ lệ Mg/Ca 31

4.2.3 Tăng trưởng của tôm thẻ chân trắng 33

4.2.3.1 Tăng trưởng về chiều dài sau khi lột 33

4.2.3.2 Tăng trưởng chiều dài sau 3 chu kỳ lột 33

4.2.3.3 Tăng trưởng về khối lượng sau khi lột 34

4.2.3.4 Tăng trưởng khối lượng sau 3 chu kỳ lột 35

4.2.4 Tỉ lệ lột xác 36

4.2.5 Sự tăng trưởng tịnh tuyến của khối lượng và chiều dài sau mỗi chu kì lột xác 37

4.3 Ảnh hưởng của khoáng P-K-Mg lên sự lột xác và tăng trưởng của thẻ chân trắng L vannamei ở độ mặn 2‰ trong giai đoạn 4-5 39

4.3.1 Các yếu tố môi trường trong thí nghiệm 39

4.3.1.1 Nhiệt độ và pH 39

4.3.1.2 TAN, NO2-, PO43- 39

4.3.1.3 Độ kiềm và độ cứng, Ca2+, Mg2+ và tỉ lệ Mg/Ca 40

4.3.2 Chu kỳ lột xác 41

4.3.3 Tăng trưởng của tôm thẻ chân trắng 42

4.3.3.1 Tăng trưởng về chiều dài sau khi lột 42

4.3.3.2 Tăng trưởng chiều dài sau 3 chu kỳ lột 42

4.3.3.3 Tăng trưởng về khối lượng sau khi lột 43

4.3.3.4 Tăng trưởng khối lượng sau 3 chu kỳ lột 44

4.3.4 Tỉ lệ lột xác 45

4.3.5 Sự tăng trưởng tịnh tuyến của khối lượng và chiều dài sau mỗi chu kì lột xác 46

Chương 5: KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT 48

5.1 kết luận 48

5.2 Đề xuất 48

TÀI LIỆU THAM KHẢO 49

PHỤ LỤC 56

DANH SÁCH HÌNH

Hình 2.1: Tôm thẻ chân trắng (FAO, 2012) 3

Hình 3.1: Lồng lưới dùng trong thí nghiệm 20

Hình 3.2: Hệ thống thí nghiệm 20

Hình 3.3: Vị trí chân đuôi quan sát để xác định giai đoạn lột xác 21

Hình 4.1: Tần số dao động các giai đoạn của chu kì xác nghiệm thức đối chứng 28 Hình 4.2: Tần số dao động các giai đoạn của chu kì xác nghiệm thức 5-5-10 29

Hình 4.3: Tần số dao động các giai đoạn của chu kì xác nghiệm thức 10-10-20 29 Hình 4.4: Tần số dao động các giai đoạn của chu kì xác nghiệm thức 20-20-40 29 Hình 4.5: Biến động tỉ lệ Mg2+/Ca2+ trong thí nghiệm 2 32

Hình 4.6: Thời gian lột xác trung bình mỗi chu kì 32

Hình 4.7: Tăng trưởng chiều dài sau mỗi chu kì lột xác 33

Hình 4.8: Sự tăng trọng về trọng lượng sau mỗi chu kì lột xác 35

Hình 4.9: Tỉ lệ lột xác của tôm thí nghiệm sau 4 chu kì lột ở 4 nghiệm thức 36

Hình 4.10: Tăng chiều của tôm ở thí nghiệm 2 37

Hình 4.11: Tăng trọng lượng của tôm ở thí nghiệm 2 37

Hình 4.12: Biến động tỉ lệ Mg2+/Ca2+ trong thí nghiệm 3 41

Hình 4.13: Ảnh hưởng của khoáng đa lượng P-K-Mg lên thời gian lột xác thí nghiệm 3 41

Hình 4.14: Ảnh hưởng của khoáng P-K-Mg lên tăng trưởng chiều dài sau chu kì lột xác 42

Hình 4.15: Ảnh hưởng của khoáng P-K-Mg lên tăng trọng về khối lượng sau chu mỗi kì lột 44

Hình 4.16: Ảnh hưởng của P-K-Mg lên tỉ lệ lột xác của tôm thí nghiệm sau 3 chu kì lộ xác 45

Hình 4.17: Tăng trưởng chiều dài liên tục của tôm sau 3 chu kì lột xác 46

Hình 4.18: Tăng trọng về khối lượng liên tục của tôm sau 3 chu kì lột xác 47

DANH SÁCH BẢNG

Bảng 2.1: Đặc điểm của các giai đoạn trong quá trình lột xác trên tôm thẻ chân

trắng L vannamei (15 g) 7

Bảng 2.2: Các dạng phốt pho hấp thụ của thẻ chân trắng 9

Bảng 2.3: Nhu cầu khoáng đối với thẻ chân trắng 11

Bảng 2.4: Thành phần một số ion của nước biển và nước ngọt 12

Bảng 3.1: Theo dõi các chỉ tiêu và phương pháp phân tích chất lượng nước 23

Bảng 4.1: Nhiệt độ và pH trong thí nghiệm 1 25

Bảng 4.2: Biến động hàm lượng TAN, NO2-, PO43- trong thí nghiệm 1 26

Bảng 4.3: Một số yếu tố môi trường quan trọng trong thí nghiệm 1 26

Bảng 4.4: Chu kì lột xác (ngày) của tôm thẻ chân trắng giai đoạn PL15-PL25 27

Bảng 4.5: Nhiệt độ và pH sáng chiều giữa 4 nghiệm thức 30

Bảng 4.6: Biến động hàm lượng TAN, NO2-, PO43- trong thí nghiệm 2 31

Bảng 4.7: Một số yếu tố môi trường quan trọng trong thí nghiệm 2 31

Bảng 4.8: Tăng trưởng về chiều dài của tôm 0,73±0,02 g ở các nghiệm thức 34

Bảng 4.9: Ảnh hưởng của khoáng bổ sung lên tăng trọng về khối lượng 4 nghiệm thức 36

Bảng 4.10: Nhiệt độ và pH trong thí nghiệm 39

Bảng 4.11: Biến động hàm lượng TAN, NO2-, PO43- trong thí nghiệm 3 40

Bảng 4.12: Một số chỉ tiêu môi trường quan trọng trong thí nghiệm 3 40

Bảng 4.13: Tăng trưởng của tôm ở 4 nghiệm thức thí nghiệm 3 43

Bảng 4.14: Tăng trọng khối lượng của tôm ở 4 nghiệm bố trí 45

DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT

ASTT: Áp suất thẩm thấu

NN&PTNN: Nông nghiệp và phát triển Nông thôn

FAO: Food and Agriculture Organization (Tổ chức Lương thực và

Nông nghiệp Liên Hợp Quốc

Chương 1:

ĐẶT VẤN ĐỀ 1.1 Giới thiệu

Trong nghề nuôi trồng thủy sản những năm gần đây, Việt Nam và trên thế giới tình hình nuôi, phát triển và nghiên cứu khoa học về đối tượng tôm thẻ chân

trắng (Litopenaeus vannamei) ngày càng được nhiều quốc qia, tổ chức và các

công ty quan tâm thực hiện Dù ở nước ta thời gian cho phép thả nuôi đại trà tôm thẻ chân trắng trên cả nước chỉ mới bắt đầu năm 2008, nhưng tôm thẻ chân trắng

có vai trò vị thế quan trọng trong cơ cấu sản xuất, xuất khẩu tôm của Việt Nam, góp phần không nhỏ trong việc ổn định nguồn cung cấp nguyên liệu cho chế biến, duy trì và đẩy mạnh giá trị xuất khẩu tôm nói riêng và kim ngạch xuất khẩu thủy sản của cả nước nói chung Theo VASEP, giá trị xuất khẩu của riêng tôm chân trắng năm 2010 đã đạt 414,6 triệu USD, tăng gấp rưỡi so với năm 2009, bằng 20% giá trị xuất khẩu tôm nói chung và bằng 8% tổng giá trị xuất khẩu tất

cả các sản phẩm thủy sản; trong 6 tháng đầu năm nay, xuất khẩu tôm chân trắng đạt 31.014 tấn và 248,4 triệu USD, tăng 37,7% về khối lượng và 72,5% về giá trị

lệ sống trong quá trình nuôi

Thẻ chân trắng tăng trưởng theo hình bậc thang theo chu kì lột xác, sự lột xác mặc dù chỉ chiếm một tỉ lệ ngắn của toàn thể chu kỳ nuôi, nhưng là thời kỳ rất quan trọng, và tử vong thì thường cao Trước sự lột xác tôm phải tích lũy một lượng lớn vật chất, năng lượng, đặc biệt là khoáng chất Sau lột xác tôm bị mất hầu hết lượng khoáng của cơ thể, cơ thể tôm giãn ra và được lấp đầy bằng nước Tôm thẻ chân trắng sống trong một môi trường ưu trương và liên tục uống một lượng nước nhỏ và do đó tôm có thể hấp thụ một số khoáng chất trực tiếp từ nước (Tacon, 1987) Để bù lại lượng khoáng bị mất tôm sẽ lấy khoáng của môi trường, trong môi trường nước có độ mặn thấp khoáng chiếm tỉ lệ thấp hơn nhiều lần so với lợ mặn

Khoáng đa lượng magiê, phốt pho và kali trong môi trường nước là những chất có ảnh hưởng lớn đến sự sinh trưởng và quá trình lột xác của tôm Nhằm bổ sung thêm nồng độ của một số chất khoáng cần thiết cho môi trường nuôi tôm có

độ mặn thấp, đề tài ”Ảnh hưởng của khoáng đa lượng P-K-Mg lên chu kỳ lột

xác của thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei) ở các giai đoạn khác nhau

khi nuôi trong môi trường có độ mặn thấp” được thực hiện.

1.2 Mục tiêu đề tài

Đánh giá tác dụng của khoáng P-K-Mg bổ sung vào nước có độ mặn thấp lên chu kỳ lột xác của tôm thẻ chân trắng Nghiên cứu mức khoáng phù hợp, và

cở tôm cần bổ sung khoáng Từ đó đưa ra đề xuất, góp phần làm cơ sở lí luận

cho việc sử dụng bổ sung khoáng P-K-Mg cho nuôi tôm thẻ chân trắng L

vannamei trong môi trường nuôi có độ mặn thấp để nâng cao năng suất và phòng

bệnh cho tôm nuôi ở ĐBSCL

1.3 Nội dung nghiên cứu

Nghiên cứu ảnh hưởng của các mức nồng độ khoáng P-K-Mg khác nhau

trên chu kỳ lột xác tăng trưởng và tỉ lệ lột xác của tôm thẻ trắng L vannamei ở

các giai đoạn khác nhau (PL15, 0,5-1 g và 4-5 g)

Chương 2:

TỔNG QUAN TÀI LIỆU

2.1 Vài nét về đặc điểm sinh học của thẻ chân trắng (Litopenaeus Vannamei)

Loài: Litopenaeus vannamei (Boone, 1931)

Tên tiếng Anh: Whiteleg leg shrimp

Hình 2.1: Tôm thẻ chân trắng (FAO, 2012)

2.1.2 Phân bố

Tôm chân trắng phân bố ở vùng ven bờ Đông Thái Bình Dương, từ Bắc Mexico đến Peru Tôm trưởng thành sống ở biển sâu (0-72 m) đáy bùn, trưởng thành ở biển giai đoạn giống phân bố vùng cửa sông Hiện nay do việc di nhập giống nên tôm chân trắng đã được phân bố khá rộng trên thế giới như Trung Quốc, Thái Lan, Philippines, Indonesia, Malaysia và Việt Nam (Trần Ngọc Hải

và Nguyễn Thanh Phương, 2009)

2.1.3 Môi trường sống

Tôm chân trắng là loài tôm nhiệt đới, có khả năng thích nghi với giới hạn rộng về độ mặn và nhiệt độ Ở vùng biển tự nhiên, tôm thẻ chân trắng thích nghi nơi vùng đáy bùn, độ sâu khoảng 72 m, có thể sống ở độ mặn 0-50‰, thích hợp

ở độ mặn 20-35‰, và tăng trưởng tốt ở độ mặn khá thấp: 10-15‰, thích hợp phát triển nuôi trồng thủy sản ở vùng nội địa, pH từ 7-8,4, nhiệt độ: 27-31oC Nhiệt độ tối ưu cho tôm lúc nhỏ (1 g) là 30 oC và cho tôm lớn (12-18 g) là 27 oC, oxy hòa tan: 3,7-5,3 mg/l, độ kiềm ở khoảng 80-156 mgCaCO3/L và TAN < 2,5

mg/l (Nyan et al., 2009) (trích dẫn bởi Trần Ngọc Hải và Nguyễn Thanh Phương,

2009)

2.1.4 Dinh dưỡng

Nhu cầu dinh dưỡng của tôm đã được nghiên cứu ngày càng nhiều và phân tích cụ thể hơn để tạo thức ăn thích hợp và đáp ứng cho từng giai đoạn phát triển, tôm thẻ chân trắng là loài ăn tạp, giống như nhiều loài tôm khác thức ăn của tôm thẻ chân trắng cũng bao gồm các thành phần: Protid, Lipid, Glucid, Muối khoáng Tuy nhiên nhu cầu thức ăn có hàm lượng Protein tương đối, khoảng 30% đạm cho cỡ tôm 0,03 g/con (Colvin và Bran, 1977) (trích dẫn bởi Trần Ngọc Hải và Nguyễn Thanh Phương, 2009) Nhu cầu protein trong khẩu phần thức ăn cho tôm chân trắng (20–35%), thấp hơn so với các loài tôm nuôi cùng họ khác (36–42%), tôm chân trắng là loài ăn tạp thiên về động vật, phổ thức ăn rộng, cường độ bắt mồi khỏe, tôm sử dụng được nhiều loại thức ăn tự nhiên có kích cỡ phù hợp từ mùn bã hữu cơ đến các động thực vật thủy sinh Tình trạng thiếu hay không cân đối dưỡng chất trong thức ăn đều ảnh hưởng đến sức khỏe và tốc độ lớn của tôm Khả năng chuyển hoá thức ăn của tôm rất cao, trong điều kiện nuôi bình thường lượng cho ăn chỉ cần 5% trọng lượng tôm, trong ao nuôi thâm canh, hệ số chuyển hóa thức ăn (FCR) dao động từ 1,1-1,3 (Sở NN&PTNN TP Hồ Chí Minh, 2009)

2.1.5 Sinh trưởng

Tôm chân trắng có tốc độ tăng trưởng nhanh (cỡ tôm nhỏ hơn 20 g tăng trưởng 3 g/tuần), chúng lớn nhanh hơn tôm sú ở giai đoạn nhỏ (20 g) Tôm có tập tính ăn tạp, thành phần thức ăn đa dạng bao gồm thức ăn viên, động vật sống, phiêu sinh, lab lab Tốc độ tăng trưởng của tôm phụ thuộc vào các yếu tố như: giai đoạn sinh trưởng, tình trạng sinh lí, điều kiện dinh dưỡng và điều kiện môi trường sống Trong điều kiện tự nhiên, từ tôm bột đến khoảng 40 g/con mất khoảng thời gian 120 ngày, hoặc từ cỡ 0,1 g lớn đến 15 g mất khoảng 90-120 ngày Trong điều kiện sinh thái tự nhiên, nhiệt độ nước 30 – 32 oC, độ mặn 20-40‰ từ tôm bột đến thu hoạch khoảng 180 ngày (Thái Bá Hồ và Ngô Trọng Lư,

2004) Tôm tăng trưởng nhanh hơn trong 60 ngày nuôi đầu, sau đó, mức tăng trọng giảm dần theo thời gian nuôi Nhờ đặc tính ăn tạp, bắt mồi khỏe, linh hoạt, nên tôm chân trắng trong quần đàn có khả năng bắt mồi như nhau, vì thế tôm nuôi tăng trưởng khá đồng đều, ít bị phân đàn (Sở NN&PTNN TP Hồ Chí Minh, 2009) Tại châu Á, tôm được nuôi thương phẩm bằng ao đất, Thái Lan và Inđônêxia nuôi thâm canh với mật độ 60-150 con/m2 đạt tốc độ tăng trưởng 1-1,5g/tuần, tỷ lệ sống 80-90% (trong khi tốc độ tăng trưởng của tôm sú chỉ là 1-1,2g/tuần và tỷ lệ sống chỉ khoảng 45-54%) Philippin nuôi thâm canh với mật

độ cao hơn 100-200 con/m2, hệ số thức ăn 1,3-1,5, tỷ lệ sống đạt 65-85%, năng suất đạt 7-12 tấn/ha/vụ sau 90-120 ngày nuôi (http://Tư vấn thủy sản.com)

2.1.6 Sinh sản

Tôm chân trắng có thelycum hở, tôm thành thục sớm, con đực trưởng thành từ 20 gam, con cái 28 gram cỡ 6-7 tháng tuổi, tôm mẹ có khối lượng 30-35 gram có sức sinh sản 100.000-250.000 trứng/lần đẻ, sức sinh sản tương đối thấp Trứng có đường kính 0,22 mm, trứng nở khoảng 16 giờ sau khi đẻ trứng và thụ tinh Ấu trùng Nauplius trong giai đoạn đầu tiên, bơi liên tục và hướng quang mạnh, nauplius không ăn thức ăn ngoài, sống nhờ dinh dưỡng noãn hoàng Các giai đoạn phát triển tiếp theo của ấu trùng là: Zoea, Mysis và Postlarvae Giai đoạn Zoea chúng ăn thực vật phù du, có tính hướng quang mạnh, tính ăn lọc và bơi tự do trong môi trường nước, cuối giai đoạn Zoea chúng có khả năng ăn động vật phù du, sang giai đoạn Mysis ăn động vật phù du Giai đoạn Postlarvae sau khoảng 5 ngày thì lột xác thành hậu ấu trùng, di chuyển gần bờ và bắt đầu ăn các mảnh vụn hữu cơ, sinh vật tần đáy, nhuyễn thể hai mảnh vỏ và động vật giáp xác (FAO, 2012)

2.2 Sinh lí lột xác và nhu cầu một số chất khoáng

Sự tăng trưởng về kích thước và trọng lượng của giáp xác có dạng bậc thang, nó thể hiện sự sinh trưởng không liên tục Kích thước và trọng lượng trong thời gian chuẩn bị lột xác hầu như không tăng hoặc tăng không đáng kể và

sẽ tăng vọt sau mỗi lần lột xác, quá trình lột xác được diều kiển bởi hormone kích thích lột xác (nằm ở cơ quan Y) và hormone ức chế lột xác (nằm ở tuyến xoang X) (Đỗ Thị Thanh Hương và Nguyễn Văn Tư, 2010)

Trong quá trình tăng trưởng, khi khối lượng và khích thước tăng lên đến mức độ nhất định, tôm phải lột bỏ lớp vỏ cũ để lớn lên, lột xác thường xảy ra vào ban đêm và đôi khi cả ban ngày, sự lột xác đi đôi với việc tăng thể trọng, cũng có trường hợp lột xác nhưng không tăng thể trọng Hiện tượng lột xác xảy ra như sau: màng giữa khớp đầu ngực và phần bụng nứt ra, phần đầu ngực và các phần phụ trước rút ra, theo sau là phần bụng và phần phụ phía sau rút ra khỏi vỏ cứng,

với động tác uốn cong mình toàn cơ thể Lớp vỏ mềm sẽ cứng lại sau 1-2 giờ với tôm nhỏ, 1-2 ngày với tôm lớn chu kì lột xác xảy ra nhanh ở giai đoạn ấu trùng

và giảm dần ở các giai đoạn sau (Tình, 2004) Tôm sau khi lột xác vỏ còn mềm nên rất dể bị sốc và là chỉ thị tốt của môi trường bất lợi hay điều kiện dinh dưỡng trong một điều kiện mật độ nuôi nào đó (Wickins, 1976)

Theo Ramxel (2010) tần số lột xác trên tôm thẻ chân trắng giảm cùng với

sự gia tăng kích thước của tôm, giai đoạn ấu trùng, tôm thẻ chân trắng lột xác sau

40 giờ ở 28 oC, trong khi tôm chưa thành niên có trọng lượng 1-5 gram, lột xác mỗi 4-6 ngày, tiếp theo trên trọng lượng 15 gram tôm ở giai đoạn lột xác này xảy

ra khoảng 2 tuần một lần

Tôm thẻ lột xác có 4 giai đoạn: giai đoạn tiền lột xác, giai đoạn hậu lột xác, giai đoạn trung gian lột xác, giai đoạn lột xác (Đỗ Thị Thanh Hương và Nguyễn Văn Tư, 2010) Các giai đoạn của chu kỳ lột xác được phân biệt bởi lớp biểu bì và lớp tơ trong chân đuôi của tôm thẻ chân trắng, quan sát sự hình thành phát triển của nó dưới kính hiển vi Năm giai đoạn phát triển của lớp biểu bì và lớp tơ được xác định là: đầu và cuối thay tơ (A và B), giữa chu kì thay tơ (C) và đầu và cuối trước khi thay tơ (D1, D2 và D3) Tổng thời gian của chu kỳ thay tơ

ở tôm cỡ 2 g là khoảng 5 ngày với tôm thẻ chân trắng và 6,5 ngày với tôm sú, với cỡ tôm 15 g chu kì thay tơ là 11 ngày với tôm thẻ chân trắng và 12 ngày đối tôm sú Nhìn chung, thời gian tương đối của các giai đoạn hình thành lớp vỏ trong chu kỳ là 5-10% cho giai đoạn A, 9-16% cho giai đoạn B, 12-20% cho giai

đoạn C, 28 - 36% cho giai đoạn D1 và 30-38% cho giai đoạn D2 (Corteel et al.,

2012)

Lớp vỏ, các lớp biểu bì của hầu hết các động vật giáp xác chứa các khoáng chất chủ yếu là CaCO3 với một lượng nhỏ magiê, phốt pho và lưu huỳnh Khoảng 99% các thành phần hữu cơ của lớp vỏ khác nhau giữa các loài, các bộ phận trong cơ thể và thay đổi giữa các giai đoạn lột xác (Conklin, 1981)

Trong giai đoạn cuối trước khi lột xác và giai đoạn đầu sau khi lột xác, xảy ra những thay đổi trong cấu trúc biểu bì vỏ và hoạt động của bơm Na +/K +-ATPase diễn ra trong mang sau, cho phép nước và các ion vào các mô, mà một trong những kết quả đó là tăng khối lượng cơ thể trong thời gian ngắn

(Charmantier et al., 1994)

Giáp xác sử dụng hormone tăng đường huyết giáp xác (CHH) gây ra hoạt động bơm năng lượng cho quá trình lột xác, bằng cách tăng mức D-glucose trong hemolymph qua huy động D-glucose từ gan tụy và cơ bắp dự trữ dưới dạng glycogen (Lucu và Towle, 2003).Theo Cheng et al (2002) từ giai đoạn D1, A, hyporegulation tăng hấp thu nước và hấp thụ các ion trước khi lột xác Tiêu hao

năng lượng cho điều hòa áp suất thẩm thấu trong tôm chân trắng thường cao hơn

ở độ mặn cao trong điều kiện đẳng trương (Cheng et al., 2002)

Bảng 2.1: Đặc điểm của các giai đoạn trong quá trình lột xác trên tôm thẻ chân trắng L vannamei (15 g) (Chan et al., 1988)

gian

Bắt mồi/hoạt động

thường/Bình thường

Cứng Hạt dầy đặt

D0 1-2 ngày Giảm ăn/Bình

thường

Chưa hình thành lớp

vỏ cu-tin mới

Hạt co lại 73,2±0,3

D1 1-2 ngày Giảm ăn/Bình

thường

Lớp vỏ tin mới xuất hiện

cu-Invaginates Hạt co lại trong ống tơ

72,1±0,4

thường

Có khoảng trống giữa 2 lớp vỏ cu- tin cũ và mới

71,0±0,7

E Lột xác 1-2 phút Không ăn/Cơ

thể lớn lên về mặt thể tích

Lớp vỏ tin cũ bên ngoài bung

cu-ra

2.2.1 Điều hòa áp suất thẩm thấu

Hầu hết các loài giáp xác biển điều hòa áp suất thẩm thấu (ASTT) trong dịch máu ngang bằng với ASTT của môi trường Điều hòa ASTT là cơ chế duy trì ổn định sự cân bằng nồng độ thẩm thấu bên trong cơ thể sinh vật và bên ngoài môi trường Sự duy trì nồng độ thẩm thấu huyết tương cao hơn hoặc thấp hơn so với môi trường được gọi là điều hòa thẩm thấu ưu trương hay nhược trương (Wurt, 1987) Các cơ chế có liên quan đến điều hòa thẩm thấu ở giáp xác bao gồm các quá trình hấp thu chủ động hoặc bài tiết các ion qua bề mặt cơ thể, qua ống dạ dày-ruột, mang và các cơ quan bài tiết Nếu nồng độ thẩm thấu của máu

là ưu trương với môi trường thì sinh vật hấp thu nước theo cơ chế thấm lọc vào

cơ thể, kèm theo đó là sự mất muối do sự khuếch tán qua vách cơ thể Ngược lại, nếu máu là nhược trương với môi trường thì có khuynh hướng xảy ra sự mất nước do thấm lọc và hấp thu muối bởi khuếch tán, sự duy trì tình trạng ưu trương hay nhược trương của máu so với môi trường tùy thuộc vào sự chênh lệch nồng

độ giữa máu và môi trường và tính thấm của bề mặt cơ quan trên Những loài rộng muối, hoặc loài sống ở điều kiện nước ngọt hay nửa cạn có khuynh hướng giảm tính thấm của bề mặt cơ thể (Lockwood, 1962 trích bởi Đỗ Thị Thu Hương

và Nguyễn Văn Tư, 2009) Những loài sống trong nước ngọt hoặc nước lợ, đều phải đối mặt với vấn đề quan trọng là duy trì nồng độ ASTT dịch cơ thể cao hơn

ASTT môi trường Tôm thẻ chân trắng (L vannamei) nuôi ở độ mặn 1‰, nồng

độ ion Na+ giảm từ 380 mmol/L chuyển xuống 200 mmol/L sau 6 giờ Hoạt tính của men Na+/K+ ATPase cao nhất trong tôm khi ở độ mặn 7‰ là 6,5±1,6 µmol ADP/mg protein/ Tôm không thể sống sót ở độ mặn thấp (<1‰), vì mất khả năng điều hòa áp suất thẩm thấu trong máu, khi chuyển ấu trùng tôm thẻ từ 28‰ xuống 3‰ thì áp suất thẩm thấu của tôm giảm khá nhanh từ 800 mOsm xuống

560 mOsm trong 6 giờ và duy trì 1 ngày, sau 3 ngày ở độ mặn 3‰ ASTT của tôm phục hồi trở lại đạt 600 mOsm, duy trì ổn định trong suốt thời gian tiếp theo (Đỗ Thị Thanh Hương và Wilder, 2008) Khi vừa mới lột xác, áp suất thẩm thấu

và các yếu tố, Na+, K+ trong máu cũng giảm đáng kể Chính vì điều này mà giai đoạn vừa mới lột xác tôm không bắt mồi và ít hoạt động và mãi đến sau 24 giờ mới phục hồi, cứng vỏ và hoạt động bắt mồi bình thường

Sự điều hòa áp suất thẩm thấu khi tôm sống trong môi trường có nồng độ muối thấp liên quan đến sự sử dụng khẩu phần protein trong thức ăn Protein cung cấp nguồn acid amin được sử dụng như là nhân tố ảnh hưởng đến điều hòa

áp suất thẩm thấu và liên quan đến hàm lượng protein trong máu (Pierce, 1982)

Sau lột xác (giai đoạn A) hàm lượng Ca2+ trong máu cao nhất sau đó giảm dần trong giai đoạn B và C do sự chuyển hóa Ca2+ vào vỏ, làm vỏ trở nên cứng

2+

khác nhau như: vỏ, gan tụy, máu và cơ, trong đó Ca2+ trong vỏ và gan tụy là cao nhất Trong chu kỳ lột xác thì hàm lượng Ca2+ tăng cao trong máu và gan tụy ở giai đoạn tiền lột xác (giai đoạn D), trong khi lại giảm thấp trong vỏ và cơ (Li và Cheng, 2012)

2.2.2 Vai trò của một số chất khoáng đa lượng

Chất khoáng có vai trò quan trọng trong quá trình phát triển của động vật thủy sản như xây dựng cơ thể, tham gia vào các quá trình trao đổi chất, duy trì chức năng sinh lí Tham gia thành phần cấu tạo cơ thể như các khoáng đa lượng

Ca, P, Mg tham gia cấu tạo khung cơ thể (Trần Thị Thanh Hiền, 2009)

Ngoài ra còn là thành phần thiết yếu của xương, răng, và bộ xương ngoài Nó cần thiết để duy trì áp suất thẩm thấu, cân bằng acid-base, do đó nồng độ khoáng quy định về độ pH của máu, số lượng bạch cầu, khoáng trong nước tiểu và trong dịch

cơ thể, là thành phần của men, một số vitamin, kích thích tố và các sắc tố hô hấp

và rất cần thiết cho sự co cơ và truyền xung động thần kinh (Davis, 1996)

 Phốt pho: Phốt pho là một tôm yếu tố không tìm thấy trong số tiền chất

của nước biển Canxi được cơ thể hấp thu chủ yếu từ môi trường, nhưng phốt pho được hấp thu vào cơ thể qua chủ yếu qua con đường ăn uống, sự hấp thu phốt pho theo sự khác biệt độ pH ở phần trước dạ dày và nó còn liên quan đến bản chất của các muối phosphate Là một thành phần của các chất sinh học quan trọng, phốt pho đóng vai trò trung tâm trong quá trình chuyển hóa năng lượng và hoạt động, ngoài ra phốt pho có vai trò trong quá trình biến dưỡng các chất dinh dưỡng trong cơ thể Phốt pho là chất cấu thành hợp chất cao năng Adenosine triphosphate (ATP), Phospholipid, AND, ARN và một số coenzime Vì vậy P tham gia vào quá trình trao đổi năng lượng, điều khiển sinh sản, sinh trưởng… Tham gia vào việc duy trì ổn định pH trong cơ thể động vật thủy sản (Trần Thị Thanh Hiền, 2009)

Bảng 2.2: Các dạng phốt pho hấp thụ của thẻ chân trắng (Trần Thị Thanh Hiền, 2009)

Mono basic Calcium phosphate Ca(H 2 PO4) 2 · H 2 O 46.5

 Magiê: Magiê đóng vai trò làm ổn định sự trao đổi chất và là yếu tố

tham gia một lượng lớn các phản ứng enzyme chất đường trong cơ thể (Davis và Lawrence, 1993) Nồng độ magiê trong nước biển cao, được bài tiết bởi giáp xác

và cá vì vậy lượng magiê trong máu thấp hơn của môi trường ngoài (Dall và Moriarty, 1983)

Ở môi trường nồng độ muối thấp hoặc môi trường nước ngọt thì tôm cá cần được cung cấp magiê từ thức ăn Tôm nuôi trong nước có hàm lượng Mg2+cao, tỉ lệ hô hấp cao và tỉ lệ sống cao hơn tôm nuôi có hàm lượng Mg 2+ thấp (Roy etal, 2007) Can-xi và Ma-giê là các loại ion hóa trị 2 ưu thế trong gần như tất cả loại nước ao Trong hầu hết nguồn nước, tổng độ cứng và tổng độ kiềm tương đương nhau (Boyd, 1998 dịch bởi Trương Quốc Phú và Vũ Ngọc Út) Nước có hàm lượng Ca2+ từ 100-500ppm và Mg2+ từ 100-1.500ppm là thích hợp

cho nuôi tôm (Whetstone etal., 2002) (trích dẩn bởi Lê Trí Tính 2004)

Ở tôm thẻ chân trắng khi bổ sung 0,12% thức ăn tôm sẽ sinh trưởng tốt

hơn (Liu, 1997) Theo Roy et al (2007) sử dụng magie bổ sung vào thức ăn cho

tôm Tại Mexico nồng độ của nó sử dụng dao động từ 29 mg/L đến 98 mg/L Mức Mg2+ có trong nguồn nước cấp tương đối cao, nó phù hợp cho việc nuôi tôm trong khu vực nội địa

 Kali: Kali là cation nội bào chính và quan trọng cho sự phát triển bình

thường và chức năng điều hòa áp suất thẩm thấu ở động vật giáp xác (Mantel et

al, 1983) Nồng độ K+ được đề nghị bổ sung trong ao nuôi tôm ít nhất 30 mg/L

để cải thiện sự sống trong thời gian nuôi và giai đoạn sinh trưởng Theo

McNevin et al (2004) đề nghị bổ sung KCl vào ao khi ao nuôi khi có độ mặn

1‰ Ở Alabama nuôi tôm trong điều kiện độ mặn thấp, thì sử giải pháp bằng cách tăng mức độ của K+ (6,2 mg/L) và Mg2+ (4.6 mg/L) đến 40 và 20 mg/L Ngoài ra K+ có vai trò quang trọng trong quá trình trao đổi chất của tôm, khi nuôi tôm trong môi trường có K+ thấp tôm thẻ chân trắng có biểu hiện biếng

ăn, hoạt động kém tăng trưởng chậm thậm chí chết

Trong hầu hết động vật giáp xác nồng độ kali trong huyết thanh gần như bằng với iso-ion kali để bên ngoài môi trường, trừ một số trường hợp nó chiếm tỉ

lệ nhỏ hơn (McFarland và Lee 1963) Trong môi trường có độ mặn thay đổi nồng

độ kali trong cơ thể có xu hướng được điều chỉnh để đạt mức giá trị cân bằng (McFarland và Lee 1963; Dall và Smith 1981) Môi trường nước có lượng kali thấp, thì việc bổ sung kali vào chế độ ăn uống được coi là cần thiết, không chỉ để cung cấp kali cho môi trường trong, mà còn tạo thuận lợi cho chức năng điều hòa

ổn của muối natri clorua trong tôm

Thông thường tỉ lệ Ca trong khẩu phần ăn khoảng từ 2-3% và và P tối thiểu là dao động từ 1-2% Tỉ lệ Ca/P 1:1 là có thể cung cấp đủ cho tôm phát triển tốt của tôm, tuy nhiên cần bổ xung đầy đủ các chất khoáng Theo Davis và Gatlin (1996) có 6 chất khoáng được xem là thiết yếu đối với tôm là Ca, Cu, P,

Mg, K, Se, Zn Nồng độ trung bình của Ca2+ trong các ao nuôi tôm ở Mexico là

166 mg/L, thuận lợi cho sự phát triển bình thường của tôm Theo Scarpa và Vaughan (1998) báo cáo rằng độ cứng cao hơn 150 mg/L của CaCO3 là cần thiết cho nuôi tôm thẻ chân trắng trong môi trường độ mặn thấp Bởi đặc điểm tôm thẻ chân trắng liên tục hấp thụ Ca2+ từ môi trường do chu kì lột xác ngắn (Robertson 1953)

Bảng 2.3: Nhu cầu khoáng đối với thẻ chân trắng (Davis và Gatlin,1996)

mang và qua da (Deshimaru et al., 1978; NRC, 1993)

2.2.3 Nhu cầu oxy trong quá trình lột xác

Hàm lượng oxy hòa tan trong nước thấp ảnh hưởng đến tần số hô hấp, hoạt động hệ tuần hoàn, quá trình trao đổi chất, làm giảm tỷ lệ sống cũng như quá trình lột xác, có sự giảm hoạt động cơ và tỷ lệ tiêu hóa và giảm tăng trưởng của các loài tôm nước lợ (Seidman và Lowrence, 1985; Clark, 1986) Ở tôm

L vannamei ở giai đoạn giống nuôi trong hàm lượng oxy hòa tan thấp hơn 2

mg/L Trong chu kỳ lột xác của tôm, nhu cầu tiêu thụ oxy cũng khác nhau Giai đoạn lột và hậu lột xác (giai đoạn E và A, B) phần trăm oxy gia tiêu thụ gia tăng đến 86,2%, giai đoạn giữa chu kỳ (C) không có sự gia tăng về oxy tiêu thụ, giai đoạn đầu của tiền lột xác (D1 và D2) lượng oxy tiêu thụ gia tăng khoảng 7%, và

giai đoạn cuối của tiền lột xác (D3) giá trị này tăng lên 12% (Martinez-Cordova

et al., 1998)

Theo Trần Ngọc Hải và Nguyễn Thanh Phương (2009) hàm lượng oxy hòa tan tốt nhất cho tăng trưởng và tỷ lệ sống của tôm biển trong khoảng giữa 3,5 mg/L đến bảo hòa Oxy hòa tan quá bảo hòa cũng gây nguy hiểm cho tôm

2.2.4 Độ mặn ảnh hưởng đến tăng trưởng của tôm

Độ mặn là tổng lượng (tính theo gram) các chất hòa tan chứa trong 1

kg nước, bao gồm các muối khoáng các ion hòa tan trong nước Độ mặn ảnh hưởng trực tiếp đến điều hòa ASTT, sự thay đổi độ mặn vượt ngoài giới hạn thích ứng của tôm nuôi đều gây sốc và làm giảm khả năng kháng bệnh của tôm (Nguyễn Văn Hảo, 1995)

Bảng 2.4: Thành phần một số ion của nước biển và nước ngọt

Theo nghiên cứu của Roy et al (2007) đề nghị khi nuôi tôm L

vannamei trong điều kiện độ mặn thấp tỷ lệ Mg:Ca nên được đảm bảo xấp xỉ

với tỉ lệ tìm thấy trong nước biển tự nhiên (3,1:1)

Nồng độ muối khoáng trong nước mặn cao hơn nhiều lần so với nước ngọt, tỉ lệ từ cao xuống thấp, nước càng mặn nồng độ muối khoáng càng cao Theo Đỗ Thị Thanh Hương (2008) giáp xác biển cần sử dụng năng lượng cho quá trình điều hòa áp suất thẩm thấu để duy trì thành phần ion của máu và dịch tế bào khi ở trong môi trường nước có nồng độ muối thấp hơn Giống Penaeus có khả năng điều hòa ASTT trong môi trường nước ngọt và mặn Mặc dù có sự khác biệt về ASTT của máu tôm nuôi ở các nồng độ muối khác nhau, nhưng ASTT của máu tôm luôn cao hơn ASTT môi trường Khi giảm nồng độ muối của môi trường thì sẽ có sự xâm nhập của nước và khuếch tán các ion ra ngoài môi trường ngan qua bề mặt cơ thể (Linda và Farmer, 1983 trích dẫn bởi Lâm Ánh

Tiên, 2009) Li et al (2007) nhận định rằng tôm chân trắng có thể thích nghi với

khoảng độ mặn rộng (3-32‰), nhưng tiêu hao nhiều năng lượng hơn để điều hòa

áp suất thẩm thấu ở điều kiện độ mặn 3‰ Đoàn Xuân Diệp (2012) đã nghiên cứu ảnh hưởng của độ mặn lên thay đổi sinh lí và sinh trưởng của tôm sú, ở các mức độ mặn 3, 15, 25, 35‰ Kết quả tôm sú thí nghiệm (102 g) không có khả năng điều hòa ASTT ở độ mặn 0‰ Ở độ mặn 3‰ và 15‰ thời gian sử dụng thức ăn của tôm ngắn hơn 25‰ và 35‰ Tổng thời gian thức ăn lưu trong dạ dày của tôm ở độ mặn 3‰ là ngắn nhất (3-4 giờ sau cho ăn) Cũng theo nghiên cứu trên ở độ mặn 3‰ tiêu hao oxy cơ sở của tôm là thấp nhất, sinh trưởng của tôm nhanh nhất nhưng tỉ lệ sống lại thấp Điều này phù hợp với nghiên cứu trên tôm

thẻ chân trắng của Bray et al (1994) nuôi tôm từ 5-15‰ tôm tăng trưởng tốt hơn

khi nuôi tôm ở nồng độ muối cao hơn và Ngô Thị Thu Thảo (2011) Tỷ lệ sống của tôm khi nuôi trong điều kiện duy trì độ mặn 15‰ (69,5%) cao hơn so với giảm độ mặn xuống 10‰ (59,5%) và 5‰ (46,2%)

Dương Thúy Yên và ctv (2004) đã nghiên cứu về ương ấu trùng tôm sú (P.monodon) ở độ mặn thấp cho biết, ở độ mặn trong bể ương ấu trùng là 15‰

sau đó hạ xuống với tốc độ 2‰/ngày Sau 8 ngày thuần hóa TLS của tôm đạt rất cao (82,8-97,0%) và sau đó tôm tăng trưởng tốt ở độ mặn thấp đến 0,56‰ nhưng TLS thấp hơn so với độ mặn  1‰ (73,0-83,1%) ở độ mặn 0‰ tôm không thể sống sau 45 ngày

Tôm thẻ chân trắng L vannamei có khả năng điều hòa tình trạng ASTT

tốt, thích ứng với điều kiện độ mặn trên lệch 5‰/ngày Thí nghiệm chuyển tôm thẻ chân trắng vào môi trường nước 3‰, trong thời gian đầu sau vài giờ một vài con đã không có khả năng điều hòa kịp ASTT, lượng nước vào cơ thể quá nhiều, tôm bị mất một lương ion khá lớn nên gây chết Khi vào môi trường có độ muối quá thấp 0,5‰ (15 mOsm) và 1‰ (28 mOsm), ASTT giữa máu và môi trường chênh lệnh quá lớn tôm bị hiện tượng trương nước và mất một lượng ion khá lớn

ra môi trường ngoài, ASTT và nồng độ ion giảm đột ngột trong 6 giờ thí nghiệm, kết quả là tôm không có khả năng sống sót trong môi trường độ mặn quá thấp

như vậy L vannamei đòi hỏi thời gian thích nghi trong vòng 1 đến 3 ngày khi

chuyển vào môi trường có độ mặn thấp (Đỗ Thị Thanh Hương và Wilder, 2008)

Nồng độ muối thấp làm giới hạn khả năng của tôm trong việc duy trì áp suất thẩm thấu hay cân bằng môi trường trong máu tôm, kết quả có thể gây chết khi lột xác, dấu hiệu là tôm lớn từ 18-20 g có thể bị chết nhiều hơn tôm nhỏ Khả

năng điều hòa áp suất thẩm thấu của tôm thẻ L vannamei bị giảm khi tôm phát

triển đến giai đoạn tiền hoặc trưởng thành Nguyên nhân là: (1) tôm nhỏ có khả năng điều hào áp suất thẩm thấu tốt hơn tôm lớn (Vargas-Albores và Ochoa, 1992); (2) tỉ lệ tôm chết do mềm vỏ cao hơn tỉ lệ tôm không lột xác được

(Ferraris et al., 1987)

Nguyên nhân tại sao độ mặn thấp là thích hợp cho sự sinh trưởng của thẻ

chân trắng L vannamei Nó liên quan đến nguồn và bản chất của quá trình trao

đổi chất protein Khi tôm sống trong môi trường có độ mặn thấp, tôm bắt buộc phải sử dụng tổng acid axit amin tự do (free amino acid pool) (FAAP) để bù đắp cho những thay đổi về thể tích của tế bào Các tổng axid amin tự do có thể sử dụng bằng 3 con đường: (1) được sử dụng như một nguồn năng lượng và chức năng như là những nguồn năng lượng thêm vào, hoàn thiện sự sản xuất năng lượng thông qua sự cân bằng năng lượng trong cơ thể (Dall, 1975; Pierce, 1982;

Rosas et al., 1999), (2) được lưu giữ như hemocyanin được sử dụng như một

nguồn năng lượng của amin axit cho sự phát triển hoặc như một nguồn năng

lượng sử dụng (Chen và Cheng, 1995; Gellissen et al., 1991), hoặc (3) được vận

chuyển đến niêm mạc dạ dày trong hệ thống tiêu hóa và được loại thải ra ngoài cùng với phân (Dall, 1975)

2.2.5 Một số nghiên cứu nuôi tôm thẻ trong độ mặn thấp có bổ sung khoáng chất

Độ mặn có lẽ không phải là yếu tố hạn chế duy nhất cho sự tăng trưởng

trong nuôi tôm thẻ chân trắng Van-Wyk et al (1999) báo cáo rằng độ mặn dưới

0,5‰ là nằm trong giới hạn sinh lý của tôm và nó sử dụng phần lớn năng lượng của nó trong điều tiết thẩm thấu, do đó tôm hạn chế tăng trưởng Các nghiên cứu khác chỉ ra rằng tôm tăng trưởng có thể phụ thuộc nhiều vào một số các thông số chất lượng nước cần thiết, chẳng hạn cụ thể như nồng độ của các anion và cation chính: bicarbonate, sunfat, clorua; canxi, magiê, kali và natri Cũng theo Van

Wyk et al., (1999); Boyd et al., (2002) và Balbi et al., (2005) nghiên cứu nuôi

tôm ở độ mặn thấp bổ sung các anion và cation cần thiết, tôm phát triển bình thường trong điều kiện duy trì độ cứng của nước (CaCO3) và độ kiềm lớn hơn hoặt bằng mức đề nghị (150 mg/l và 75 mg/l) ở mức đó nó có thể đảm bảo được các điều kiện sinh lý, điều hòa áp suất thẩm thấu cho cơ quan của tôm và thích hợp hình thành bộ xương ngoài, đủ khoáng chất cho cứng vỏ sau mỗi lần lột xác, thúc đẩy sự tăng trưởng bình thường của tôm (McGraw và Scarpa, 2003), nhưng

báo cáo của Ong Mộc Quý và ctv (2011) thí nghiệm với 4 nghiệm thức, mỗi

nghiệm thức được lặp lại 3 lần với những độ kiềm tương ứng khác nhau là 40,

60, 80 và 100 mgCaCO3/L, cho thấy ở các mức độ kiềm 40, 60, 80 và 100 mgCaCO3/L không ảnh hướng đến sự tăng trưởng, tỉ lệ sống và hiệu quả sử

dụng thức ăn của tôm Tôm thẻ chân trắng penaeus vannamei có thể tăng trưởng

và phát triển tốt ở vùng nuôi nước lợ (4‰) có độ kiềm thấp (40 mg CaCO3/L)

Theo Roy et al, (2007) trong môi trường nuôi tôm có độ mặn thấp 4‰ có

bổ sung K+ ở các hàm lượng (5, 10, 20, và 40 mg/l) thử nghiệm tốc độ tăng trưởng trong 6 tuần của tôm thẻ chân trắng có khối lượng khoảng 1g thì tỉ lệ sống của tôm 23,3%; 95,0%; 96,7%; 93,3%; 93,3% Trong khi đó cũng cùng độ mặn

trên bổ sung Mg2+ ở các hàm lượng (10, 20, 40, 80, 160 mg/L), thì tỉ lệ sống tương ứng của tôm là 60,2%; 90,0%; 96,5%; 93,2%; 95,0%

Van-Wyk et al (1999) báo cáo tỷ lệ tăng trưởng thấp hơn một chút khi

tôm thẻ chân trắng nuôi trong nhiệt độ nước dưới 26 oC, và không tăng trưởng khi dưới 22 oC Trong quá trình nuôi thương phẩm nông dân ở phía tây Alabama

có đã thành công trong việc nâng cao sản lượng tôm chân trắng nuôi trong nội địa có độ mặn thấp, bằng việt bổ sung khoáng vào trong nước tăng K+ và Mg2+

đến ngưỡng lý tưởng hơn (Davis et al 2005) Theo kết quả điều tra của McNevin et al (2004) sản lượng tôm ở Alabama tăng khi nuôi trong nước mặn

thấp bằng cách nâng cao khoáng K+ (6,2 mg/L) và Mg2+ (4,6 mg/l), đến 40 và 20 mg/l, bổ sung P-K-Mg vào thành phần ion nước, để tăng đến mức tương tự mức pha loãng nước biển

Trung Quốc là nước nuôi đầu tiên ở Châu Á, tôm thẻ thích nghi tốt với thay đổi độ mặn từ môi trường nước biển sang nuôi ngọt, Trung Quốc áp dụng

nuôi nước ngọt và rất thành công, nghiên cứu tôm thẻ L vannamei trong nước

ngọt (độ mặn 0‰) với ba mật độ (90, 130 và 180 con/m2) cho thấy mô hình nuôi tôm chân trắng trong nước ngọt là khả thi Ở mật độ nuôi 130con/m2 tôm đồng

cỡ và tăng trưởng đồng nhất (www.mekongfish.net)

2.3 Tình hình nuôi và xuất khẩu tôm thẻ chân trắng ở Việt Nam và trên thế giới

Tôm chân trắng có nguồn gốc từ Nam Mỹ, có nhiều ưu điểm sinh học, có khả năng kháng bệnh cao, dễ sinh sản và gia hoá, nên được nhiều nước ưu tiên phát triển (nhất là các nước châu Á) Hiện sản lượng tôm thế giới có tốc độ tăng bình quân là 20%/năm - đạt 3,2 triệu tấn với giá trị 11 tỷ USD Các nước phát triển rất ưa chuộng mặt hàng tôm chân trắng vì sức hấp dẫn về giá 7 tháng đầu năm 2013, trong khi xuất khẩu tôm sú chỉ tăng 1,3% so với cùng kỳ năm 2012 (đạt xấp xỉ 680 triệu USD) thì xuất khẩu tôm chân trắng đạt 609 triệu USD, tăng 51,5% so với cùng kỳ năm 2012, chiếm 43,7% trong tổng kim ngạch xuất khẩu tôm của nước ta Trong tương lai tôm chân trắng có khả năng trở thành đối tượng nuôi chủ lực của Việt Nam

Việt Nam cũng là một trong những nước đầu tiên ở khu vực Đông Nam Á

du nhập giống thẻ chân trắng, nhưng lại là nước phát triển nuôi chậm trong khu vực, đến năm 2001-2002 Bộ Thủy sản mới cho 3 doanh nghiệp 100% vốn nước ngoài là Công ty Duyên Hải (Bạc Liêu), Công ty Việt Mỹ (Quảng Ninh) và Công

ty Asia Hawaii (Phú Yên) được nhập con giống SPF để nuôi thử nghiệm Tại công ty Duyên Hải (Bạc Liêu) đã nuôi tôm chân trắng sinh trưởng tốt và đã cho sinh sản nhân tạo thành công vào ngày 6/4/2002 Đồng thời, Công ty xuất khẩu

thủy sản Quảng Ninh 2 đã nuôi tôm thẻ chân trắng ở xã Tân An, huyện Yên Hưng (Quảng Ninh) đạt 5,5 tấn/ha (08/2002) (Thái Bá Hồ và Ngô Trọng Lư, 2004)

Trước năm 2003, các nước có sản lượng tôm nuôi lớn nhất thế giới (như Thái Lan, Trung Quốc, Inđônêxia, Ấn Độ) chủ yếu nuôi tôm sú hay tôm bản địa, nhưng sau đó đã tập trung phát triển mạnh đối tượng tôm chân trắng Sản lượng tôm chân trắng của Trung Quốc năm 2003 đạt 600 nghìn tấn (chiếm 76% tổng sản lượng tôm nuôi tại nước này), đến năm 2008 tôm chân trắng đạt sản lượng 1,2 triệu tấn (trong tổng số 1,6 triệu tấn tôm nuôi) Inđônêxia nhập tôm chân trắng về nuôi từ năm 2002 và năm 2005 đạt 40 nghìn tấn, năm 2007 là 120 nghìn tấn (trong tổng sản lượng 320 nghìn tấn) Năm 2004 tôm chân trắng dẫn đầu về sản lượng tôm nuôi, đóng góp trên 50% tổng sản lượng tôm nuôi trên thế giới Năm 2007, tôm chân trắng chiếm 75% tổng sản lượng tôm nuôi toàn cầu và là đối tượng nuôi chính ở 3 nước châu Á (Thái Lan, Trung Quốc, Inđônêxia) Ba nước này cũng chính là những quốc gia dẫn đầu thế giới về nuôi tôm

Về giá trị, năm 1997 sản lượng tôm nuôi đạt 700 nghìn tấn, tương đương với 3,5 tỷ USD, giá trung bình khoảng 5 USD/kg Trong 10 năm lại đây, tốc độ tăng về sản lượng tôm thế giới khoảng 20%/năm, đã đem lại cho thế giới 3,2 triệu tấn tôm với giá trị tôm nuôi hiện nay là 11 tỷ USD, giá tôm trung bình rơi vào khoảng 3,4-3,5 USD/kg (tuvanthuysan.com)

Ở nước ta thẻ chân trắng bắt đầu nuôi muộn, từ năm 2002 do bị thiệt hại trong nuôi tôm sú, nhiều địa phương ở phía bắc và miền trung đã chuyển sang nuôi thẻ chân trắng và thu được kết quả tốt, đến đầu năm 2008 với chỉ thị số 228 của Bộ trưởng Bộ Nông nghiệp và Phát triển Nông thôn ngày 25/1/2008, đối tượng này mới được phép đưa vào nuôi ở các tỉnh phía Nam trong các vùng quy hoạch và theo những điều kiện nhất định (agroviet.gov) Bộ NN&PTNT đã có công văn yêu cầu những địa phương có diện tích nuôi tôm sú chết vì dịch bệnh

có thể chuyển sang nuôi Tôm thẻ chân trắng, như vậy định hướng đến năm 2015 diện tích nuôi thẻ chân trắng là 40.000 ha, sản lượng 200.000 tấn đến năm 2020

là 60.000 ha sản lượng 310.000 tấn (chinhphu.vn)

Năm 2012 cả nước có tới 106 nghìn ha diện tích tôm nuôi nước lợ bị thiệt hại Sang năm 2013 (tính đến ngày 27/4), diện tích tôm nuôi bị thiệt hại khoảng 14,6 nghìn ha; trong đó diện tích tôm chân trắng bị thiệt hại là 666 ha (chiếm gần 9% diện tích thả nuôi Bệnh chủ yếu hội chứng hoại tử gan tụy xảy ra chủ yếu ở các vùng nuôi tôm thân canh và bán thâm canh, xảy ra ở hầu hết các tháng trong năm, nhưng mức độ dịch bệnh trầm trọng nhất từ tháng 4 đến tháng 7, chiếm

75% tổng diện tích báo cáo bị bệnh trong cả năm Các vùng nuôi có độ mặn thấp

tỷ lệ mắc bệnh ít hơn so với vùng nuôi có độ mặn cao (tuvanthuysan.com)

Tình hình sản xuất giống cuối năm 2012, cả nước có 185 cơ sở sản xuất giống tôm chân trắng, sản xuất được gần 30 tỷ con Sang năm 2013 (tính đến hết tháng 5), cả nước có 103 cơ sở sản xuất giống tôm chân trắng cung cấp cho thị trường 3,5 tỷ con Số trại sản xuất tôm chân trắng và tôm sú chủ yếu tập trung tại các tỉnh Nam Trung Bộ, trong đó Ninh Thuận, Bình Thuận, Khánh Hoà và Phú Yên chiếm khoảng 40% trong tổng số trại sản xuất giống tôm của cả nước (tương đương với 623 trại) Sản lượng giống tôm nước lợ ở khu vực này chiếm khoảng 70% tổng sản lượng giống tôm của cả nước Bên cạnh đó các tỉnh Bạc Liêu, Cà Mau, Kiên Giang cũng là những địa phương sản xuất giống tôm chân trắng cung cấp lượng lớn tôm giống cho thị trường Tuy nhiên chất lượng tôm giống hiện nay không đồng đều, tại những cơ sở có uy tín, con giống được tiêu thụ tốt giá cao Nửa đầu năm 2013 giá tôm giống nhìn chung ổn định tại các tỉnh phía nam Song tại các tỉnh phía bắc như Quảng Ninh, Thái Bình, Nam Định, do chi phí vận chuyển tăng cao, giá tôm giống cũng tăng lên, giá giống tôm chân trắng dao động trong khoảng 80-90 đồng/con (tuvanthuysan.com)

Chương 3:

VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

3.1 Thời gian và địa điểm thí nghiệm

3.1.1 Thời gian thực hiện

Từ tháng 08/2013 đến tháng 12/2013

3.1.2 Địa điểm thí nghiệm

Thí nghiệm được bố trí tại khu thí nghiệm Bộ môn Thủy sinh học ứng dụng Mẫu thu được trữ và phân tích tại phòng thí nghiệm phân tích chất lượng nước Khoa Thủy Sản, Trường Đại học Cần thơ

3.2 Vật liệu và thiết bị nghiên cứu

• Thiết bị: Máy sục khí, bể 4 m3, bể 1 m3, thùng 500L, xô, cân, thước cây, vợt lưới, máy bơm, nhiệt kế, kính hiển vi ZX21, khúc xạ kế, máy đo pH YSI

556, quang phổ UV-Vis nhiệt Helios (Hoa Kỳ), cuvette thạch anh 1 cm, máy ảnh

kỹ thuật số,

• Phương pháp chuẩn bị bổ sung khoáng vào nước:

Bổ sung khoáng P-K-Mg (mg/L) vào môi trường nước, lượng nước thêm vào bể được định lượng bằng xô 20 lít, xác định mức nước của xô bằng bình 1 lít, cấp nước mỗi bể 250 lít/bể

Bổ sung khoáng hòa tan MgCl2.6H2O theo cách tính

3.2.2 Đối tượng thí nghiệm:

Tôm thẻ chân trắng (L.vannamei) dùng cho bố trí thí nghiệm được Bộ

môn Thủy sinh học ứng dụng nuôi và thuần dưỡng trong hệ thống tuần hoàn nước chảy, nguồn tôm này từ một trại giống tại Cần Thơ Tôm được nuôi độ mặn 15‰, sau đó tôm thuần hóa xuống 2‰ và giữ nhiệt độ phù hợp, thuần 3 ngày trong thùng chứa Chọn tôm có trọng lượng phù hợp để bố trí thí nghiệm, song song nuôi một số tôm khoảng 1/3 số tôm bố trí, nuôi ở độ mặn 2‰ để bổ sung vào nghiệm thức khi có xảy ra hao hụt trong tuần đầu tiên Trong thời gian thuần, tôm sẽ được cho ăn ba lần mỗi ngày với thức ăn 40% protein

3.2.3 Nguồn nước thí nghiệm

Nguồn nước ngọt sử dụng cho thí nghiệm là nước máy từ trại thực nghiệm khoa thủy sản và nước mặn là nước ót có độ mặn (80‰) được mua từ Vĩnh Châu (tỉnh Sóc Trăng) Nước được pha ở độ mặn 2‰ trongbể 4 m3, nước được sử lí bằng chlorine 30ppm, sục khí trong 3 ngày sau đó test lại chlorine bằng DPD, nếu dư lượng chlorine trung hòa lại bằng Natrithiosunfat, sục khí liên tục Kiểm tra độ kiềm nước nếu độ kiềm thấp sử dụng Sodium bicarbonate (NaHCO3) để nâng kiềm đến khoảng 100 mgCaCO3/L sau đó cấp nước cho 4 bể thí nghiệm, lượng nước cấp vào bể là như nhau

3.2.4 Thức ăn sử dụng cho thí nghiệm

Thức ăn sử dụng cho thí nghiệm là thức ăn viên nhãn hiệu VANNAMEI (do công ty công ty TNHH GROBEST industrial Việt Nam sản xuất, thành phần 39-40% độ đạm thô, chất béo tối thiểu 4-5%, chất xơ tối đa 3-4%, ẩm độ 11%), mỗi ngày cho ăn 3 lần (sáng, trưa, chiều) với thí nghiệm 1,2, cho ăn ngày 4 lần với thí nghiệm 3

3.3 Phương pháp nghiên cứu

3.3.1 Bố trí thí nghiệm:

3 thí nghiệm đều sử dụng 4 bể 500 lít tương ứng với 4 nghiệm thức Thí nghiệm 2 và 3, trong mỗi bể đặt 1 lồng tròn được chia làm 14 lồng nhỏ (50×20×40 cm), lồng được đặt nổi 5 cm còn lại 35 cm trong nước, bố trí hệ thống sục khí phân bổ điều ở 4 hướng của lồng, lồng cách đáy bể 1 khoảng 5-7

cm Thể tích nước trung bình mỗi ngăn cho mỗi tôm là 20 lít/tôm

Hình 3.1: Lồng lưới dùng trong thí nghiệm Hình 3.2: Hệ thống thí nghiệm

+ Thí nghiệm 1: Ảnh hưởng của khoáng P-K-Mg lên chu kì lột xác của thẻ chân trắng L vannamei giai đoạn PL15 nuôi ở độ mặn 2‰:

a) Ảnh hưởng của P-K-Mg lên chu kì lột xác giai đoạn PL 15.— PL 25

Thí nghiệm có 4 nghiệm thức, mỗi nghiệm thức bổ sung khoáng

- Nghiệm thức 1: Không bổ sung P-K-Mg (đối chứng)

và buổi chiều quan sát kiểm tra vỏ lột của tôm Cho tôm ăn ngày 2 lần, thu thức

ăn thừa và thu vỏ sau mỗi chu kì lột xác

b) Ảnh hưởng của P-K-Mg lên tỉ lệ các giai đoạn của chu kì lột xác PL 15

Thí nghiệm song song với thí nghiệm a, thời gian bố trí 11 ngày

Thí nghiệm có 4 nghiệm thức, mỗi nghiệm thức sử dụng 1 bể 500 lít

- Nghiệm thức 1: Không bổ sung P-K-Mg (đối chứng)

- Nghiệm thức 2: P-K-Mg ở mức 5-5-10 (mg/L)

- Nghiệm thức 3: P-K-Mg ở mức 10-10-20 (mg/L)

- Nghiệm thức 4: P-K-Mg ở mức 20-20-40 (mg/L)

Sử dụng nguồn tôm thí nghiệm a, sau đó bố trí vào bể composite 500 lít (được chuẩn bị mức nước 250 lít) bố trí mật độ 300 PL/bể Sáng 7-8 giờ hàng ngày 15 con tôm được thu để quan sát giai đoạn lột xác/nghiệm thức Xác định

giai đoạn lột xác theo Cesar et al (2006) các tơ của chân đuôi được quan sát

dưới kính hiển vi vật kính có độ phóng đại 40X (Hình 4) ghi nhận lại các giai đoạn phát triển của lông cứng trên đuôi, tính tỉ lệ các giai đoạn quan sát được Trong quá trình thí nghiệm tôm được cho ăn thức ăn công nghiệp dành cho tôm thẻ chân trắng ở giai đoạn PL15 Thí nghiệm bố trí sục khí liên tục, không thay nước trong quá trình nuôi, khi có thức ăn thừa thì siphon loại bỏ

Nguồn nước trong thí nghiệm được pha ở độ mặn 2‰, test clo và kiểm tra chất lượng nước: Nhiệt độ, độ pH, độ mặn, TAN, NO2-, PO43-, Ca2+, Mg2+

Hình 3.3: Vị trí chân đuôi quan sát để xác định giai đoạn lột xác

+ Thí nghiệm 2: Ảnh hưởng của khoáng P-K-Mg lên sự lột xác của thẻ chân trắng L vannamei ở độ mặn 2‰, trong giai đoạn 0,5-1 g

Thí nghiệm có 4 nghiệm thức, mỗi nghiệm thức bố trí lập lại 14 lần

- Nghiệm thức 1: Không bổ sung P-K-Mg (đối chứng)

Nguồn tôm thẻ chân trắng L vannamei được sử dụng trong thí nghiệm, là

tôm post được nuôi ở độ mặn 25‰, trong khoảng 1 tháng, trước khi bố trí ta chọn tôm cỡ 0,73±0,02g (chiều dài 4,47±0,05cm), chọn 130 con nuôi và thuần

xuống độ mặn 2‰ (phương pháp thuần như thí nghiệm 1 nhưng thời gian lâu

hơn khoảng 7 ngày), chọn tôm tương đối đồng cỡ để tránh khác nhau giữa khối lượng của các lồng như các nghiệm thức, tôm khỏe (không có dấu hiệu bệnh, thương tật, không mềm vỏ) Tôm được bố trí mỗi ngăn 1 con riêng biệt, mỗi nghiệm thức có 1 lồng 14 ngăn nhỏ Bố trí riêng biệt nhằm thuận tiện cho việc quan sát tôm lột xác, tránh ăn nhau khi lột, và có thể theo dõi sinh trưởng của riêng từng cá thể trong thời gian thí nghiệm (Hình 2.1 và Hình 2.2) Sục khí cung cấp oxy cho tôm đầy đủ, nước trong bể thí nghiệm được thay hàng tuần hoặc khi chất lượng nước suy giảm, mỗi lần thay 20-30% lượng nước trong bể Nước thay cũng được pha nồng độ khoáng theo nồng độ của nghiệm thức

Xác định giai đoạn lột xác: Sự lột xác của tôm được ghi nhận hàng ngày,

ở 7-8 giờ sáng khi thấy sự xuất hiện của vỏ tôm trong lồng nuôi Số liệu theo dõi khoảng 3 chu kì lột xác của tôm (4 lần lột xác) Sau khi tôm lột xác 12-16 giờ, cân lại khối lượng (g) và đo chiều dài (cm) của tôm, cân và đo lại tôm vào lần lột xác tiếp theo Trong quá trình thí nghiệm, tỉ lệ lột xác được theo dõi sau mỗi chu

3.3.2 Phương pháp phân tích mẫu

3.3.2.1 Phương pháp phân tích môi trường nước

Bảng 2.1: Theo dõi các chỉ tiêu và phương pháp phân tích chất lượng nước

(APHA et al., 1999)

al., 1999)

3.3.2.2 Theo dõi các chỉ tiêu tăng trưởng, tăng trọng và tỉ lệ sống

-Tăng trọng về khối lượng

Tăng trọng (Weight gain – WG)

WG (g) = Wf –Wi Tốc độ tăng trưởng tuyệt đối về khối lượng (g/ngày)

DLG

i f

i f

TT

WW)ngày/(g

Tăng trưởng chiều dài (LG)

LG (cm) = Lf –Li Tốc độ tăng trưởng tuyệt đối về chiều dài (cm/ngày)

DLG

i f

i f

TT

LL)ngày/(cm

Chương 4:

KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN

4.1 Ảnh hưởng của khoáng P-K-Mg lên chu kì lột xác của thẻ chân trắng L vannamei giai đoạn PL15-PL26 nuôi ở độ mặn 2‰

4.1.1 Các yếu tố môi trường nước

Bảng 4.2: Biến động hàm lượng TAN, NO 2 , PO 4 trong thí nghiệm 1

40 với trung bình đạt 200±72,2 mgCaCO3/L, thấp nhất ở nghiệm thức đối chứng (140±67,94 mg/L) Hàm lượng Ca2+ trung bình ở các nghiệm thức dao động từ 49,3-57,5 mg/L Tỉ lệ Mg/Ca tăng dần theo mức độ bổ sung, nghiệm thức đối chứng tỉ lệ Mg/Ca: 2,76, nghiệm thức 5-5-10; 10-10-20 và 20-20-40 có tỉ lệ Mg/Ca lần lượt: 3,04; 3,37 và 3,48 (Bảng 4.3)

Độ kiềm thích hợp cho nuôi tôm thẻ chân trắng thương phẩm ở độ mặn 15-25‰ dao động từ 80-150 mg/L (Trần Ngọc Hải, 2010) Ong Mộc Quý (2011) thì cho rằng độ kiềm từ 40 mgCaCO3/L trở lên không ảnh hưởng đến quá trình tăng trưởng như chiều dài, trọng lượng, tốc độ tăng trưởng hàng ngày và tỉ lệ sống của tôm thẻ chân trắng khi nuôi trong môi trường có độ mặn thấp 4‰

Nghiên cứu của Roy et al., (2007) đề nghị khi nuôi tôm L vannamei trong điều

kiện độ mặn thấp tỷ lệ Mg: Ca nên được đảm bảo xấp xỉ với tỉ lệ tìm thấy trong nước biển tự nhiên (3,1:1) Độ mặn thí nghiệm 2‰ tỉ lệ Mg/Ca của nghiệm thức 10-10-20 và 20-20-40 cao hơn tỉ lệ Mg/Ca trong nước biển Theo Limsuwan, (2009) trong ao nuôi có độ mặn ở mức từ trung bình đến cao, tỷ lệ Mg/Ca nên cân bằng ở mức 3,4:1, ao nuôi có độ mặn thấp và tỉ lệ này nên ở mức 5:1 Nghiệm thức đối chứng và nghiệm thức 5-5-10 có tỷ lệ Mg/Ca thấp

Bảng 4.3: Một số yếu tố môi trường quan trọng trong thí nghiệm 1

4.1.2 Chu kì lột xác

Tôm chân trắng giai đoạn PL15-PL25 có chu kỳ lột xác trung bình dao động từ 2,3-3,6 ngày Thời gian lột xác của tôm thẻ chân trắng giai đoạn này ở

các nghiệm thức qua các chu kỳ khác biệt không có ý nghĩa thống kê (p >0,05)

(Bảng 4.4) Điều này đã chỉ ra rằng việc bổ sung khoáng P-K-Mg ở giai đoạn này không cải thiện thời gian lột xác của tôm và chưa thực sự cần thiết

Bảng 4.4: Chu kì lột xác (ngày) của tôm thẻ chân trắng giai đoạn PL 15 -PL 25

Các giá trị trong bảng là giá trị trung bìnhSE Các giá trị trong cùng 1 cột có kí tự giống nhau

là khác biệt không có ý nghĩa thống kê (p >0,05)

4.1.3 Tỉ lệ các giai đoạn trong chu kì lột xác

Các giai đoạn của chu kì lột xác ở tôm thẻ chân trắng PL15, được thống kê trên từng nghiệm thức, mỗi nghiệm thức bố trí điều có tỉ lệ các giai đoạn dao động theo từng ngày thí nghiệm (Hình 4.1, 4.2, 4.3 và 4.4) Trong đó giai đoạn C của chu kì lột xác chiếm tỉ lệ cao trong các lần quan sát, nghiệm thức đối chứng, nghiệm thức 5-5-10, nghiệm thức 10-10-20, nghiệm thức 20-20-40 lần lượt là 35,75%; 41,81%; 44,8%; 36,3% sự biến động này ở các nghiệm thức gần như là hình sine và luôn tồn tại trong mỗi lần quan sát với tỉ lệ cao, cho thấy giai đoạn C

có thời gian tồn tại dài và là giai đoạn trung gian của chu kì lột xác

Giai đoạn A chiếm tỉ lệ thấp nhất trong thí nghiệm, ở nghiệm thức đối chứng, nghiệm thức 5-5-10, nghiệm thức 10-10-20 và nghiệm thức 20-20-40 có

tỉ lệ là 4,84%; 4,84%; 7,27% và 7,27% Trong bảng tần số các giai đoạn lột xác ở

4 nghiệm thức, giai đoạn đoạn A (Hình 4.1, 4.2, 4.3 và 4.4) chiếm tỉ lệ cao vào những ngày lột xác (Bảng 4.4), giai đoạn A biến động thấy rõ nó thường xuất hiện vào những ngày có lột xác và là giai đoạn đặc trưng thể hiện cho 1 chu kì lột xác Giai đoạn lột xác E có thời gian tồn tại ngắn và rất khó quan sát nên trong thí nghiệm không tìm gặp

Giai đoạn B thường đi liền với giai đoạn A, vì thời gian tồn tại của giai đoạn A tương đối ngắn, nên giai đoạn B có thể được xem là giai đoạn thể hiện sự lột xác của tôm khi không có mặt của giai đoạn A, tỉ lệ trung bình của giai đoạn

B ở nghiệm thức đối chứng, nghiệm thức 5-5-10, nghiệm thức 10-10-20 và

nghiệm thức 20-20-40 tương ứng 6,67%; 10,3%; 7, 27% và 10,9% Tỉ lệ này thấp hơn nhiều so với giai đoạn C nhưng tương đương với giai đoạn A

Giai đoạn D bao gồm: D0; D1; D2 và D3, giai đoạn D0; D1; D2, là giai đoạn chuẩn bị cho chu kì lột xác, cũng là những giai đoạn để quan sát trong thí nghiệm Giai đoạn D3 là giai đoạn đầu của chu kì lột xác, thể hiện sự sẵn sàng lột xác của tôm, so sánh với giai đoạn A tỉ lệ này ở 4 nghiệm thức lần lượt là: 9,09%; 10, 03 %; 7,27% và 10, 09%, tỉ lệ trung bình của giai đoạn D3 gần bằng

so với giai đoạn A Tỉ lệ các giai đoạn của chu kì lột xác của thí nghiệm phù hợp với nghiên cứu Lockwood (1967) trích bởi Đỗ Thị Thu Hương và Nguyễn Văn

Tư, 2009, giai đoạn A: chiếm 2%; giai đoạn B chiếm 8% giai đoạn C chiếm 71%; giai đoạn D chiếm 19%; Giai đoạn E không đáng kể

Việc thuần hóa tôm thẻ L.vannamei giống theo hai cách thuần hóa thích

nghi dần và thuần hóa đột ngột thì thấy rằng khả năng điều hòa ASTT của tôm khác biệt không có ý nghĩa giữa hai cách này, kể cả khi thuần hóa lên độ mặn

cao hay xuống độ mặn thấp, qua thí nghiệm tác giả nhận định tôm L.vannamei

giai đoạn giống có khả năng điều hòa ASTT tốt khi độ mặn môi trường thay đổi

(Hurtado et al., 2007 trích bởi Đoàn Xuân Diệp, 2012), chứng tỏ hoạt động điều

hòa ASTT ở tôm giống tốt và tôm giống kích thước nhỏ suy ra diện tích bề mặt

so với môi trường lớn có lợi cho sự vận chuyển các chất dinh dưỡng và sinh trưởng tốt hơn, nên khả năng hấp thu và sử dụng khoáng ở hàm lượng thấp là tốt hơn Quan sát tỉ lệ dao động của các giai đoạn lột xác tôm PL15-PL25 chênh lệch nhau không đáng kể, riêng ở nghiệm thức 10-10-20 và nghiệm thức 20-20-40 có

tỉ lệ Mg/Ca phù hợp nên tỉ lệ giai đoạn A cao hơn 2,42% so với đối chứng và nghiệm thức 5-5-10, tỉ lệ này quá nhỏ để có thể kết luận rằng việc bổ sung khoáng đa lượng P-K-Mg làm tăng dấu hiệu lột xác ở tôm thẻ chân trắng giai đoạn PL15-PL25

Bảng tần số các giai đoạn lột xác nghiệm thức đối chứng

Hình 4.1: Tần số dao động các giai đoạn của chu kì xác nghiệm thức đối chứng

Bảng tần số các giai đoạn lột xác nghiệm thức 5-5-10

Hình 4.2: Tần số dao động các giai đoạn của chu kì xác nghiệm thức 5-5-10

Bảng tần số các giai đoạn lột xác nghiệm thức 10-10-20

Hình 4.3: Tần số dao động các giai đoạn của chu kì xác nghiệm thức 10-10-20

Bảng tần số các giai đoạn lột xác nghiệm thức 20-20-40

Hình 4.4: Tần số dao động các giai đoạn của chu kì xác nghiệm thức 20-20-40