Mục tiêuXác định được loại chế phẩm vi sinh giúp cây cam sành giảm mật độ sâu bệnh, tăng mật số vi sinh vật có lợi trong đất và sinh trưởng tốt.. Một kết quả nghiên cứu khác của Dương Mi
Một số nghiên cứu về việc sử dụng nam Trichoderma trên cây trồng
Nghiên cứu của Dương Minh và cộng sự (2006) cho thấy việc xử lý bệnh do Phytophthora palmivora trên sầu riêng bằng các chủng Trichoderma (T-BM2a, T-CB8c, T-CTTG6b và T-mix) giúp cây phục hồi nhanh chóng chỉ sau 53 ngày Ngược lại, nông dược chuyên biệt Curzate M-8 72WP không mang lại hiệu quả trong việc điều trị bệnh trên sầu riêng Bên cạnh đó, việc bón phân hữu cơ (phân chuồng hoai) kết hợp với Trichoderma cũng giúp kiểm soát bệnh Phytophthora, đồng thời cải thiện tỷ lệ cơm và năng suất trái sầu riêng một cách đáng kể.
Nghiên cứu của Dương Minh và cộng sự (2010) chỉ ra rằng việc ứng dụng vi sinh vật có lợi, đặc biệt là Trichoderma, trong phòng trừ bệnh cây đã mang lại hiệu quả bảo vệ cây trồng và thân thiện với môi trường Phương pháp này không chỉ cải thiện chất lượng đất canh tác mà còn kết hợp hiệu quả với phân bón hữu cơ, từ đó nâng cao giá trị nông sản.
Kết quả nghiên cứu của Vũ Xuân Tạo và Trần Văn Tuấn (2020) cho thấy trong
Mười chủng nấm Trichoderma đã được phân lập và đánh giá khả năng đối kháng với nấm P digitatum gây hỏng cam, trong đó các chủng Tr.6, Tr.7 và Tr.8 cho thấy hoạt tính kháng vượt trội, đạt từ 95-100% Ngoài ra, ba chủng nấm này cũng có khả năng kháng mạnh đối với hai loài nấm bệnh phổ biến khác là Fusarium oxysporum và Phytophthora capsici, cho thấy tiềm năng ứng dụng trong sản xuất chế phẩm sinh học để phòng trừ vi nấm gây bệnh trên cây cam và các cây trồng khác.
Nghiên cứu của Vũ Xuân Tạo và cộng sự (2021) đã chỉ ra khả năng kháng nấm Penicillium digitatum của các chủng Trichoderma, cho thấy tiềm năng của chi này trong việc phát triển chế phẩm sinh học Trong nghiên cứu, 20 mẫu Trichoderma (Tr.HGI - Tr.HG20) được phân lập từ đất trồng cam tại tỉnh Hà Giang.
2 mau nam là Tr.HG6 và Tr HG11 được đánh giá là có khả năng kháng mạnh với nam
P digitatum gây thối quả cam.
Nghiên cứu của Nguyễn Tiến Dũng và cộng sự (2022) chỉ ra rằng việc sử dụng Trichoderma trên cây có múi không chỉ cải tạo đất mà còn hiệu quả trong việc phòng ngừa các bệnh do Fusarium sp và Phytophthora sp gây ra, đặc biệt là bệnh vàng lá và thối rễ.
1.5.3 Sơ lược về chế phẩm vi sinh Mycorrhiza
Chế phẩm nam rễ sinh học cộng sinh Mycorrhiza, được phát triển bởi Viện Thổ nhưỡng nông hóa thuộc Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn, là sản phẩm lý tưởng cho cây trồng cạn Sản phẩm này phù hợp với nhiều loại cây như bầu ươm giống chất lượng cao, cây ngắn ngày, cây công nghiệp dài ngày và cây ăn quả.
Bài viết đề cập đến thành phần vi sinh vật trong chế phẩm bao gồm các loài nấm như Glomus spp., Gigaspora spp., và Aucaulospora spp Ngoài ra, nhóm vi sinh vật có ích gồm vi khuẩn đối kháng khuẩn như Bacillus sp., vi khuẩn cố định đạm như Azotobacter sp., vi khuẩn phân giải lân như Bukholderia sp., và xạ khuẩn phân giải xenlulozơ Chất mang của chế phẩm bao gồm than bùn hoạt hóa, cát sạch, bùn giấy và một số phụ gia khác Độ âm của sản phẩm nhỏ hơn 15% và mật độ nấm Mycorrhiza đạt trên 100 bào tử/g chế phẩm.
Công dụng của sản phẩm bao gồm việc ức chế và tiêu diệt mầm bệnh vi khuẩn gây bệnh héo xanh, héo vàng và lở cổ rễ trong đất Sản phẩm giúp tăng cường khả năng chống chịu của cây đối với các loại bệnh khác, đồng thời hạn chế sự phá hoại của tuyến trùng đối với rễ non Ngoài ra, nó còn nâng cao khả năng chịu hạn và cải thiện điều kiện sống cho cây trồng Sản phẩm cũng giúp hạn chế rụng quả, mang lại quả có màu sắc sáng đẹp và tăng độ ngọt, giảm vị đắng Hơn nữa, nó hỗ trợ sự phát triển của bộ rễ, tạo ra nhiều lông và sợi hút nước cùng các chất dinh dưỡng Cuối cùng, sản phẩm tăng độ phì nhiêu của đất, giúp đất tơi xốp và thoát nước tốt.
1.5.3.1 Giới thiệu về nắm Mycorrhiza
Trong tự nhiên, hiện tượng cộng sinh (symbiosis) diễn ra khi các sinh vật khác nhau sống và hỗ trợ lẫn nhau để tồn tại Nấm có thể hình thành mối quan hệ cộng sinh với các sinh vật khác, được gọi là nấm cộng sinh Mycorrhiza là một ví dụ điển hình, thể hiện mối quan hệ cộng sinh giữa nấm và rễ thực vật, với thuật ngữ này xuất phát từ tiếng Hy Lạp "Mykes" (nấm) và "Rhiza" (rễ) Hiện tượng này rất phổ biến trong tự nhiên, giúp các sinh vật hỗ trợ nhau phát triển Nếu nấm không có rễ, chúng không thể phát triển; tương tự, cây không có nấm sẽ sinh trưởng yếu ớt.
Tác dụng của Mycorrhiza đối với cây trồng:
Hệ sợi nấm cộng sinh xung quanh vùng rễ giúp tăng diện tích bề mặt tiếp xúc, từ đó nâng cao khả năng hút nước và các chất dinh dưỡng cho cây trồng Đặc biệt, đối với những chất dinh dưỡng kém di động như ion phosphat, đồng và kẽm, cây thường hút nhanh hơn tốc độ khuếch tán của chúng trong dung dịch đất, dẫn đến việc hình thành vùng cạn kiệt quanh rễ Hệ sợi nấm nhanh chóng mở rộng để vượt qua vùng cạn kiệt này, tìm đến các khu vực có đủ phospho để tiêu thụ Với đường kính nhỏ hơn lông hút của rễ, sợi nấm có thể len lỏi vào những khoảng trống nhỏ trong đất mà rễ không thể tiếp cận, từ đó cung cấp dinh dưỡng cần thiết cho cây.
Nấm rễ có khả năng tăng cường khả năng chống chịu hạn cho cây trồng bằng cách cải thiện tốc độ thoát hơi nước, giúp cây hấp thu nước hiệu quả hơn trong môi trường đất khô Nghiên cứu của Allerm cho thấy nấm rễ đóng vai trò quan trọng trong việc tăng cường khả năng chịu hạn và tốc độ truyền nước trong cây Theo Berea và cộng sự (1982), nấm rễ cũng cải thiện cấu trúc đất và nâng cao lượng nước trong đất, từ đó giúp cây hấp thu nước tốt hơn.
Nấm cộng sinh ở rễ cây có khả năng bảo vệ cây chống lại các vi sinh vật gây bệnh như Phytophthora infestans, một loại tảo tương tự nấm Nhờ vào hệ sợi nấm, Phytophthora infestans không thể xâm nhập vào rễ cây, giúp cây tăng cường sức đề kháng với bệnh tật (Nguyễn Đình Quyến, 2004).
+ Ngăn chặn co hoc sự xâm nhập cua nguồn bệnh bằng cau trúc sợi nam đan xen trong rễ cây.
+ San sinh các hợp chất kháng sinh (antibiotic).
+ Cạnh tranh dinh dưỡng với vi sinh vật gây bệnh, góp phan làm tăng sức dé kháng cho cây chủ.
1.5.3.2 Một số nghiên cứu về việc sử dụng nắm Mycorrhiza trên cây trồng
Nghiên cứu của Lê Thị Thuỷ (2012) cho thấy cây cam con có khả năng sinh trưởng và phát triển tốt hơn về chiều dài thân, chiều dài rễ và số lượng rễ khi được nhiễm nấm Mycorrhiza so với cây đối chứng.
Nghiên cứu của Vũ Quý Đông và Lê Quốc Huy (2015) cho thấy việc sử dụng chế phẩm Mycorrhiza dạng bột đã mang lại những tác động tích cực đến môi trường đất, cải thiện các chỉ số lý hóa và vi sinh vật Sau một năm áp dụng, số lượng vi sinh vật trong đất, đặc biệt là bào tử Mycorrhiza, tại Doan Hùng đã tăng đáng kể.
492 bào tử/ 100 gam đất cao hơn đối chứng 112%.
Nghiên cứu của Trần Thị Tuyết Thu và cộng sự (2017) về sự phân bố bào tử nấm rễ nội cộng sinh AM trong đất trồng cam tại huyện Cao Phong, tỉnh Hòa Bình cho thấy trung bình có 252 bào tử nấm Mycorrhiza trên 100g đất, với số lượng cao nhất được ghi nhận.
496 + 309 bào tử/ 100g đất ở vườn cam 3 năm, chu kỳ 1 và thấp nhất là 145 + 55 bào tử/ 100g đất ở vườn trồng cam V2 xen canh cam 3 năm, đã trồng cam chu chu kì | từ
Sơ lược về chế phâm vi sinh MycorrhiZa - 2-22 s2 S2E£2E+2E2E+zEzEzxzzse2 13
NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
Vật liệu và phương pháp thí nghiém + 52 SE E22 E22 22 re, 18 20ml: Vat et thi HGHIỆTÍ nứnnennnobitieionistgSEGESIDHSIEESESHSSISESNSSENSHSHNSESHHMSISINGIO-ERSSNIG.SG.18S450538080088 18
- Chế phẩm vi sinh Trichoderma dạng nước, được sản xuất từ chủng nam Trichoderma với mật độ 1 x 108 CFU/mL Lượng khuyến cáo sử dụng là 1L dung dịch/
- Chế pham vi sinh Mycorrhiza dạng bột, được sản xuất từ chủng nắm Mycorrhiza, lượng khuyến cáo sử dụng là 150 - 200 g/30 - 50 lít nước/cây.
Dụng cụ thí nghiệm cần thiết bao gồm thước dây, thước cuộn, giấy, bút, máy chụp ảnh, khoang lấy mẫu đất và một số dụng cụ khác để phân tích hóa tính và vi sinh vật trong đất.
Trong thí nghiệm, các hóa chất quan trọng bao gồm KH2PO4, KNO3, NaCl, MgSO4.7H2O, FeSO4, CMC, thạch bột, manitol, K2HPO4, K2SO4, CaCO3, glucoza, Ca3(PO4)2, (NH4)2SO4, KCl, trypan blue, glugol, dextroza, pepton và một số hóa chất khác Những hóa chất này đóng vai trò quan trọng trong việc thực hiện các thí nghiệm và nghiên cứu khoa học.
Thí nghiệm đơn yếu tố được thiết kế theo kiểu khối đầy đủ ngẫu nhiên (Randomized Complete Block Design - RCBD) với 3 lần lặp lại và 4 nghiệm thức, mỗi ô thí nghiệm bao gồm 4 cây cam sành Tổng số cây sử dụng trong thí nghiệm là 12 cây.
NTI: Đối chứng (Nước lã)
NT2: Chế phẩm vi sinh chứa Trichoderma
NT3: Chế phẩm vi sinh chứa Mycorrhiza
NT4: Kết hợp hai loại chế phẩm chứa Trichoderma va Mycorrhiza
Hướng biến thiên theo độ dốc
Hinh 2.1 So dé bé tri thi nghiém 2.3.2.2 Phuong phap tién hanh
Sau khi thu hoạch, cần bón vôi xung quanh vùng rễ cây Sau 2 tuần xử lý vôi, bổ sung chế phẩm Mycorrhiza với liều lượng 150g cho mỗi cây Tiếp theo, sau 2 tuần xử lý Mycorrhiza, tiến hành bổ sung Trichoderma với lượng 6mL cho mỗi cây.
Phương pháp xử lý: Hoà tan chế phẩm với nước, tưới xung quanh vùng rễ, tưới nước lã với lượng bằng lượng xử lý chế phẩm (3L/ cây).
2.4 Các chỉ tiêu và phương pháp theo đõi
Chọn 2 cây/ 6 thí nghiệm dé theo đõi các chỉ tiêu Chỉ tiêu sinh trưởng và đỉnh dưỡng trong đất được theo đõi 2 lần (trước và sau thí nghiệm), các chỉ tiêu về sâu bệnh hai theo dõi định kỳ 1 thang/ lần.
Để đo đường kính gốc của cây, bạn cần sử dụng thước dây để đo chu vi gốc tại vị trí cách mặt đất 5 cm Sau đó, áp dụng công thức C=D x 7z để tính toán đường kính gốc cây.
+ Chiều cao cây (m): Dùng thước cuộn đo chiều cao cây cách mắt ghép 5 em đến đỉnh tán ở vị trí cao nhất.
+ Đường kính tán (m): Dùng thước cuộn đo 2 đường kính vuông góc của tán trên một cây, lay giá trị trung bình.
- Tỷ lệ rễ thối (%) = Theo dõi trong mẫu dat thu thập [(Sé rễ thối/100g đất)/ (Tông số rễ /100g đất)] x 100.
- Chỉ số điệp lục tố (SPAD): được đo bằng máy Chlorophyll meter SPAD-502 Plus Nhật Bản Chọn ngẫu nhiên 4 cành cấp 1 phân bố đều 4 hướng, mỗi cành điều tra
10 lá trưởng thành, màu xanh đậm, không có triệu chứng bệnh, đo ở giữa lá, không đo phần gân lá.
Theo TCVN 12561:2022, các chỉ tiêu về sâu bệnh hại được theo dõi và đánh giá Đối với sâu vẽ bùa, mỗi cây cần điều tra 10 chồi phân bố đều theo 4 hướng Tỷ lệ phần trăm lá bị sâu vẽ bùa được tính bằng công thức: (Tổng số lá bị hại / Tổng số lá điều tra) x 100.
Bọ trĩ là một loại sâu hại cần được theo dõi trên cây điều Để đánh giá mức độ thiệt hại, mỗi cây cần điều tra 10 chỗ hồi phân bố đều theo 4 hướng Tỷ lệ phần trăm lá bị bọ trĩ được tính bằng công thức: (Tổng số lá bị hại / Tổng số lá điều tra) x 100.
Rệp sáp là một loại sâu bệnh ảnh hưởng đến cây trồng Để khảo sát, mỗi cây được điều tra 8 cành cấp cao nhất, phân bố đều theo 4 hướng Việc đếm số lượng rệp sống trên các cành giúp tính toán mật độ và số con trung bình trên mỗi cành.
Bệnh loét trên cây điều được điều tra bằng cách kiểm tra các cành cấp cao nhất, phân bố đều theo 4 hướng Mỗi cành được khảo sát có 5 lá, và tỷ lệ phần trăm số lá bị bệnh được tính bằng công thức: (Tổng số lá bệnh / Tổng số lá điều tra) x 100.
Các chỉ tiêu va phương pháp theo dõi cecceeeceeceeeeeeeeeeeeeeeeeeeeeeenees 20 Sài CAAY ie serena cures anes te SESE TSE EES ES SS ESTO SCE OSE 20 >”ênn ố ẽẽ ẽốố
2.4.2.1 Phương pháp thu thập mẫu đất
Mẫu đất được thu thập sau 4 tháng xử lý chế phẩm, trước khi cây ra hoa Tổng cộng cần thu thập 12 mẫu tương ứng với 12 ô thí nghiệm Mẫu được lấy bằng khoan lấy mẫu ở độ sâu 0 - 30 cm, tại vị trí 2/3 tán của cây Trên mỗi ô thí nghiệm, mẫu đất được lấy tại
Để thu thập mẫu đất, bạn cần lấy 5 điểm theo quy tắc đường chéo, mỗi điểm khoảng 1kg Sau đó, trộn đều 5 mẫu lại trên bề mặt giấy, băm nhỏ và chia thành 4 phần đều nhau theo đường chéo Tiếp theo, lấy 2 phần đối diện nhau để trộn lại, rồi tiếp tục chia thành 4 phần Cuối cùng, lấy 2 phần đối diện và cho vào túi zip Mẫu đất nên được bảo quản ở nhiệt độ thường cho các chỉ tiêu hóa tính, trong khi các chỉ tiêu vi sinh vật cần được bảo quản lạnh ở 4°C.
2.4.3.2 Các chỉ tiêu và phương pháp phân tích
+ pH đất: Phân tích theo TCVN 5979:2007 (ISO 10390:2005).
+ Hàm lượng chất hữu cơ (%): Phân tích theo TCVN 8941-2011
+ Hàm lượng N tổng số (%): Phân tích theo TCVN 6498-1999
+ Hàm lượng PzOs tổng số (%): Phân tích theo TCVN 8940-2011
+ Hàm lượng K20 tổng số (%): Phân tích theo TCVN 8660-2011
+ Hàm lượng P dé tiêu (mg/kg): Phân tích theo TCVN 8942-2011
+ Hàm lượng K* dễ tiêu (mg/kg): Phân tích theo TCVN 8662-2011
+ Hàm lượng Ca?" (meq/100g): Phân tích theo TCVN 8569-2010
+ Hàm lượng Mg”* (meq/100g): Phân tích theo TCVN 8569-2010
+ Khả năng trao đổi cation (CEC): Phương pháp sử dụng Sodium axetat dựa theo
Vi sinh vật trong đất:
+ Vi sinh vật tổng số (CFU/g dat): Phân tích theo TCVN 4884-2:2015
+ Nam Trichoderma (CFU/g dat): Phân tích theo TCVN 2019.
+ Vi khuẩn cố định dam (CFU/g dat): Phan tích theo TCVN 6166:2002
+ Vi sinh vat phan giai lan (CFU/g dat): Phan tich theo TCVN 6167:1996
+ Vi sinh vat phân giải xenlulozo (CFU/g dat): Phân tích theo TCVN 6168:2002
Mật độ bào tử VAM (bt/100g đất) được xác định bằng cách đếm số lượng bào tử trong 100g đất qua kính hiển vi Phân lập nấm cộng sinh được thực hiện theo tiêu chuẩn TCVN 12560-1:2018 bằng phương pháp sàng ướt và ly tâm nổi.
Phương pháp nhuộm rễ bằng thuốc nhuộm Trypan blue theo TCVN 12560-2:2018 cho phép quan sát rễ dưới kính hiển vi để ghi nhận sự cộng sinh của nấm Tỷ lệ rễ có nấm cộng sinh (%) được tính bằng công thức: (Số rễ có sự cộng sinh / Tổng số rễ quan sát) x 100.
2.5 Phương pháp xử lý số liệu
Số liệu được ghi nhận và tính toán, xử lý phân tích ANOVA và trắc nghiệm phõn hạng kiểu Duncan ở mức ý nghĩa ứ = 0,05 hoặc ứ = 0,01 bằng phần mềm
KET QUA VÀ THẢO LUẬN
Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến sinh trưởng của cây cam sảnh 23 1 Đặc điểm của cam sành trước thí nghiệm -2- 22 +S2E+2E+2E2E+2E22Ezzzz2ze2 23
3.1.1 Đặc điểm của cam sành trước thí nghiệm
Cây cam sành trong thí nghiệm đạt 8 năm tuổi đã cho quả 5 năm Đặc điểm của cây cam sảnh sử dụng trong thí nghiệm được trình bay trong Bảng 3.1.
Bảng 3.1 Đặc điểm của cây cam sành trước thí nghiệm
Nghiệm thức Chiều cao cây (m) Đường kính gốc (cm) Đường kính tán (m)
Trong cùng một cột, các số có cùng kí tự đi kèm thê hiện sự khác biệt không có ÿ nghĩa thông kê ở mức a = 0,05; ”*: khác biệt không có ý nghĩa.
Kết quả từ Bảng 3.1 cho thấy rằng cây cam sành trong thí nghiệm có chiều cao, đường kính gốc và đường kính tán không có sự khác biệt đáng kể về mặt thống kê giữa các nghiệm thức Điều này chứng tỏ rằng các cây được sử dụng khá đồng đều và phù hợp cho việc thí nghiệm Cụ thể, chiều cao cây dao động từ 3,37 đến 3,70 m, đường kính gốc từ 11,6 đến 13,9 cm, và đường kính tán từ 3,03 đến 3,37 m.
3.1.2 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến sinh trưởng của cây cam sành sau 4 tháng xử lý chế phẩm
Kết quả khảo sát sinh trưởng của cam sành sau 4 tháng xử lý chế phẩm vi sinh cho thấy không có sự ảnh hưởng đến chiều cao cây, đường kính gốc, đường kính tán và chỉ số điệp lục tố (SPAD), như được trình bày trong Bảng 3.2.
Bảng 3.2 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến sinh trưởng của cây cam sảnh sau 4 tháng xử lý chế phẩm
Nghiệm thức Chiều cao cây Phing kính Đường kính KH số điệp lục
(m) gôc (cm) tán (m) tô (SPAD)
Nước lã 4,01 13,7 3,56 46,77 Trichoderma 3,49 13,5 3,23 50,38 Mycorrhiza 3,78 12.7 3,66 51,49 Tricho + Mycorr 3,69 14,0 3,42 54,22
"5: khác biệt không có ý nghĩa.
Chiều cao cây cam sành dao động từ 3,49 - 4,01 m, tăng 0,12 - 0,31 m so với trước thí nghiệm, trong khi đường kính gốc cây từ 12,7 - 14,0 cm, tăng 0,1 - 1,1 cm Đường kính tán cây đạt từ 3,23 - 3,66 m, với mức tăng 0,2 - 0,29 m Chỉ số điệp lục tố (SPAD) trên lá ở giai đoạn 4 tháng sau khi xử lý chế phẩm dao động từ 46,77 - 54,22 Mặc dù cam sành là loại cây ăn quả lâu năm, nhưng kết quả cho thấy sinh trưởng của cây không có sự thay đổi đáng kể và không tạo ra sự khác biệt khi xử lý các chế phẩm vi sinh khác nhau Tuy nhiên, chỉ số điệp lục tố trong lá cam sành có xu hướng tăng giữa các nghiệm thức xử lý chế phẩm vi sinh so với nghiệm thức đối chứng, mặc dù sự khác biệt này không có ý nghĩa thống kê.
Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến tình hình sâu bệnh hại trên cây cam sảnh trong quả trình: thi Esa\ed CV (<)10 eee ee ee ee a 25
trong quá trình thí nghiệm
Chế phẩm vi sinh có ảnh hưởng đáng kể đến tỷ lệ lá bị sâu vẽ bùa, bọ trĩ, mật độ rệp sáp và bệnh loét, như được thể hiện trong các Bảng 3.3, 3.4, 3.5.
Bảng 3.3 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến tỷ lệ lá bị sâu vẽ bùa gây hại (%) trên cây cam sành trong quá trình thí nghiệm từ thang 9 - 12/2023.
Nước lã 42,66 38,46 42.40 42/28a Trichoderma 48,96 44,50 40,23 37,99 be Mycorrhiza 52,39 46,52 41,47 40,24 ab Tricho + Mycorr 46,86 41,73 36,72 36,44 ¢
Trong cùng một cột, các số có cùng ký tự cho thấy sự khác biệt không có ý nghĩa thống kê ở mức a = 0,05 Dấu "*": biểu thị sự khác biệt không có ý nghĩa; trong khi dấu "*": chỉ ra sự khác biệt có ý nghĩa ở mức a = 0,05.
Trong thời gian thực hiện thí nghiệm, kết qua cho thay vườn cam sành xuất hiện
Bài viết đề cập đến bốn đối tượng sâu bệnh hại chính bao gồm sâu vẽ bùa (Phyllocnistic cetrella), bọ trĩ (Scirtothrips dorsalis), rệp sap (Pseudococcus citri) và bệnh loét (Xanthomonas campestris) Trong số này, rệp sap và bệnh loét không có sự khác biệt có ý nghĩa thống kê giữa các nghiệm thức, trong khi tỷ lệ lá bị sâu vẽ bùa và bọ trĩ gây hại có sự khác biệt rõ rệt Sâu vẽ bùa được xác định là đối tượng gây hại nặng nhất Kết quả xử lý thống kê cho thấy việc sử dụng các chế phẩm vi sinh giúp giảm tỷ lệ lá bị sâu vẽ bùa và bọ trĩ so với đối chứng, với sự khác biệt có ý nghĩa thống kê ở mức a = 0,05.
Sâu vẽ bùa gây hại trên cam sành (Phyllocnistic cetrella) chủ yếu khi cây có đọt non, lá non và lá bánh tẻ Khi bị tấn công, lá sẽ xuất hiện những vệt trắng dài ngoằn ngoèo, làm biến dạng và cong queo phiến lá, thậm chí gây rụng lá Các đường vẽ bùa cắt nhau ở cả hai mặt lá, ảnh hưởng nghiêm trọng đến sức khỏe của cây.
Sâu vẽ bùa gây hại quanh năm, nhưng tập trung mạnh vào tháng 8 và 9 khi cây ra đọt non Trong giai đoạn đầu, tỷ lệ sâu bệnh giữa các nghiệm thức không có sự khác biệt đáng kể Tuy nhiên, sau 4 tháng xử lý chế phẩm, tỷ lệ lá bị sâu hại giảm từ 4,29% đến 5,84% so với nghiệm thức đối chứng, đặc biệt ở nghiệm thức có chứa Trichoderma và khi kết hợp cả hai loại chế phẩm Sự khác biệt này có ý nghĩa thống kê, do cây bắt đầu giai đoạn ra hoa, giảm đọt non và giúp giảm tỷ lệ sâu bệnh, đặc biệt khi sử dụng chế phẩm vi sinh kết hợp, giúp cây khỏe mạnh và tăng sức đề kháng.
Bang 3.4 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến tỷ lệ 14 bi bọ trĩ (%) gây hại trên cây cam sảnh trong quá trình thí nghiệm từ tháng 9 - 12/2023.
Nước lã 35,24 36,60 35,22 37,44 a Trichoderma 38,91 37,10 34,56 35,28 ab Mycorrhiza 34,90 36,36 35357 32,41 b Tricho + Mycorr 38,93 36,16 35,26 34,38 ab
Trong cùng một cột, các số có cùng ký tự di kèm thể hiện sự khác biệt không có ý nghĩa thống kê ở mức a = 0,05; dấu “:” chỉ sự khác biệt không có ý nghĩa, trong khi dấu “*” biểu thị sự khác biệt có ý nghĩa ở mức a = 0,05.
Bọ trĩ (Scirtothrips dorsalis) là một loại sâu hại thường gặp, đặc biệt trong điều kiện khô nóng, chúng chủ yếu tấn công vào lá non, gây ra hiện tượng biến màu và cong queo (Nguyễn Thanh Hoài, 2021) Trong thời gian thí nghiệm, tỷ lệ lá bị hại do bọ trĩ có sự biến động nhưng không đáng kể, do thí nghiệm diễn ra vào giai đoạn cuối mùa mưa và đầu mùa khô Sau 4 tháng xử lý chế phẩm, tỷ lệ lá bị hại giảm so với đối chứng, với tỷ lệ thấp nhất ở nghiệm thức sử dụng chế phẩm chứa Mycorrhiza, tuy nhiên sự khác biệt này không có ý nghĩa thống kê so với nghiệm thức đối chứng.
Bảng 3.5 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến mật độ rệp sáp (con/cành) của cây cam sảnh trong quá trình thí nghiệm từ tháng 9 - 12/2023.
"> khác biệt không có ý nghĩa.
Rệp sáp là một loại sâu bệnh thường xuất hiện ở mặt dưới lá, đặc biệt trong giai đoạn cây ra bông và xổ nhị Chúng có hình dáng nhỏ, với 6 rệp được bao phủ bởi lớp phấn trắng, gây ảnh hưởng đến sức khỏe của cây, đặc biệt là khi cây đang phát triển trái non.
Rệp có chu kỳ sinh trưởng ngắn khoảng 4 tháng, sau khi xử lý chế phẩm, mật độ rệp ở các nghiệm thức dao động từ 64,67 đến 83,67 con/canh Mặc dù mật độ rệp có xu hướng giảm, nhưng sự khác biệt giữa các nghiệm thức không đạt ý nghĩa thống kê.
Bảng 3.6 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến tỷ lệ lá bị bệnh loét (%) của cây cam sảnh trong quá trình thí nghiệm từ tháng 9 - 12/2023.
*: khác biệt không có ý nghĩa ở mức a = 0,05.
Bệnh loét do vi khuẩn Xanthomonas campestris gây ra, xuất hiện trên lá hoặc trái với các đốm tròn màu nâu và viền vàng, bề mặt bị sần sùi Sau 4 tháng xử lý chế phẩm, tỷ lệ bệnh dao động từ 39,31% đến 43,23%, không có sự khác biệt có ý nghĩa giữa các nghiệm thức thí nghiệm.
3.3 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến mật số vi sinh vật trong đất trồng cây cam sành
Bang 3.7 Vi sinh vật trong dat trồng cam sành khu vực thí nghiệm
Chỉ tiêu vi sinh vật Đơn vị Kết quả
Vi sinh vật tổng số CFU/g đất 12,85 x 10°
Vi sinh vat phân giải lân CFU/g đất 9,25 x 104
Vi sinh vật phân giải xenlulozo CFU/g dat 9,55 x 104
Vi khuẩn cố định dam CFU/g đất 4,6 x 104
Mật độ bao tử VAM Bào tử/100g đất 9]
Tỷ lệ nắm cộng sinh % 51,79
Kết quả theo dõi Bang 3.7 cho thấy mật số vi sinh vật trong đất trước thí nghiệm tương đối thấp, với 91 bào tử Mycorrhiza/100g đất và tỷ lệ nam cộng sinh đạt 51,79 %/1g rễ Để tăng cường mật số vi sinh vật trong đất, cần bổ sung phân hữu cơ và chế phẩm vi sinh.
Bang 3.8 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến mật số vi sinh vat (CFU/g đất) trong đất trồng cam sành sau 4 tháng xử lý chế phẩm.
Vị sinh vật Vi sinh vat
Vi sinh vat Vi khuẩn cố
, , Trichoderma phân giải phân giải Nghiệm tông sô định đạm
Trong cùng một cội, các số có cùng ký tự cho thấy sự khác biệt không có ý nghĩa thống kê ở mức a = 0,05; "°" biểu thị sự khác biệt không có ý nghĩa, trong khi "**" cho thấy sự khác biệt rất có ý nghĩa ở mức a = 0,05.
Kết quả từ Bảng 3.8 cho thấy rằng các chế phẩm vi sinh được sử dụng trong thí nghiệm đã làm thay đổi đáng kể mật số vi sinh vật trong đất Phân tích thống kê và trắc nghiệm phân hạng cho thấy sự khác biệt về mật số vi sinh vật là rất có ý nghĩa, trong đó nghiệm thức đối chứng xử lý nước 14 ghi nhận mật số vi sinh vật thấp nhất.
Việc xử lý cam sành bằng chế phẩm vi sinh kết hợp Trichoderma và Mycorrhiza đã dẫn đến sự gia tăng đáng kể lượng vi sinh vật tổng số trong đất, với mật số cao nhất đạt 31,42 x 10° CFU/g, khác biệt rõ rệt so với các nghiệm thức khác Nghiệm thức bổ sung Mycorrhiza có mật số vi sinh vật tổng số là 27,16 x 10° CFU/g, trong khi nghiệm thức sử dụng Trichoderma đạt 20,9 x 10° CFU/g Tất cả các nghiệm thức này đều có sự khác biệt thống kê có ý nghĩa so với nghiệm thức đối chứng, nơi có mật số vi sinh vật thấp nhất là 15,42 x 10° CFU/g.
- Trichodema: khi xử ly cam sành bằng hai loại chế phẩm có chứa Trichoderma va Mycorrhiza cũng làm cho mật số nam Trichoderma trong đất cao nhất là 14,04 x 10°
Các nghiệm thức bổ sung chế phẩm Trichoderma và Mycorrhiza cho thấy sự khác biệt có ý nghĩa thống kê về mật số CFU/g so với nghiệm thức đối chứng Cụ thể, nghiệm thức Trichoderma đạt mật số 11,97 x 10° CFU/g, trong khi nghiệm thức Mycorrhiza đạt 7,97 x 10° CFU/g, cả hai đều cao hơn đáng kể so với nghiệm thức đối chứng có mật số thấp nhất là 6,57 x 10° CFU/g.
Kết quả này tương tự với kết quả nghiên cứu của Nguyễn Ngọc Thanh va ctv.
Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến VAM vùng rễ cây cam sành
Bảng 3.9 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến VAM vùng rễ cây cam sành sau 4 tháng xử lý chế phẩm.
Mật độ bt VAM (bt/, Tỷlệrễcónãmcộng Tỷ lệ rễ thối
Nước lã 100,0b 52,9 ¢ 17,0 a Trichoderma 126,7 b 65,2 b 10,1 be Mycorrhiza 237,0a 76,3 a 12,3 b Tricho + Mycorr 260,0 a 80,4 a 8,7 ¢
Trong cùng mot cột, các số có cùng ki tự di kèm thé hiển sự khác biệt không có ý nghĩa thong; **: khác biệt rất có ý nghĩa ở mức a = 0.01.
Kết quả số liệu Bảng 3.8 cho thấy:
Việc bổ sung chế phẩm vi sinh, đặc biệt là Mycorrhiza, đã làm tăng mật độ bào tử VAM trong đất một cách đáng kể Cụ thể, mật độ bào tử ở nghiệm thức bổ sung Mycorrhiza đạt 237 bào tử/100 g đất, trong khi nghiệm thức kết hợp Trichoderma và Mycorrhiza có mật độ bào tử lên tới 260 bào tử/100 g đất, tăng 160% so với đối chứng Kết quả này tương đồng với nghiên cứu của Vũ Quý Đông và Lê Quốc Huy (2015), cho thấy việc áp dụng Mycorrhiza trong đất rừng trồng Keo và Bạch đàn sau một năm đã giúp tăng thêm 492 bào tử/100 g đất, cao hơn 112% so với đối chứng.
Hình 3.1 Bào tử VAM trong đất vùng rễ cam sảnh (xem ở vật kính 40X)
Tỷ lệ rễ có nam cộng sinh (%) đóng vai trò quan trọng trong việc tăng diện tích bề mặt tiếp xúc của rễ, từ đó nâng cao khả năng hút nước và chất dinh dưỡng Sự hiện diện của nam cộng sinh cũng giúp cạnh tranh dinh dưỡng với vi sinh vật gây bệnh, góp phần tăng cường sức đề kháng cho cây ký chủ.
Tỷ lệ rễ có nắm cộng sinh ở nghiệm thức bổ sung chế phẩm vi sinh chứa Mycorrhiza cho thấy sự khác biệt đáng kể so với đối chứng và nghiệm thức bổ sung chế phẩm Trichoderma Cụ thể, tỷ lệ rễ có nắm cộng sinh ở nghiệm thức bổ sung Mycorrhiza đạt 76,28%, trong khi ở nghiệm thức kết hợp Trichoderma và Mycorrhiza là 80,43%, tăng từ 23,41% đến 27,56% so với đối chứng.
Anh hưởng của chế phẩm vi sinh đến các chỉ tiêu hoá tinh trong dat trồng cây cam sành sau 4 tháng xử lý chế phẩm 22 2 S2E22EE22E22E12211221221222127122112212122 2e 33
a) Dang túi (Vesicules); b) Dang bụi (Arbuscular); c) Dang sợi (hyphae)
Hinh 3.2 Cac dang nam cộng sinh bên trong rễ cam sành (xem ở vật kính 40X)
Việc sử dụng chế phẩm vi sinh, đặc biệt là sự kết hợp giữa Trichoderma và Mycorrhiza, đã chứng minh hiệu quả trong việc giảm tỷ lệ rễ thối Cụ thể, tỷ lệ rễ thối ở nghiệm thức Trichoderma là 10,05%, trong khi ở nghiệm thức Mycorrhiza là 12,28% Đặc biệt, nghiệm thức kết hợp cả hai loại chế phẩm này cho tỷ lệ rễ thối thấp nhất, chỉ 8,65%, giảm 8,34% so với nghiệm thức đối chứng.
3.5 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến các chỉ tiêu hoá tính trong dat trồng cây cam sành sau 4 tháng xử lý chế phẩm
3.5.1 Anh hưởng của chế phẩm vi sinh đến pH và tốc độ phân huỷ chất hữu cơ trong dat trồng cam sành
Bang 3.10 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến pH và tốc độ phân huỷ chất hữu co trong đất trồng cây cam sành
Nghiệm thức pHHao C (%) N tông sô (%) C/N
Nước 1a 4,77 2,04 0,133 d 15,37 Trichoderma 4,89 2,38 0,159 ¢ 14,93 Mycorrhiza 4,68 2,62 0,177 b 14,82 Tricho + Mycorr 4,79 2,80 0,193 a 14,53
Trong cùng một cội, các số có cùng ký tự di kèm thể hiện sự khác biệt không có ý nghĩa thống kê ở mức a = 0.05; ký hiệu "°" chỉ ra sự khác biệt không có ý nghĩa, trong khi ký hiệu "**" cho thấy sự khác biệt rất có ý nghĩa ở mức a = 0.01.
Sau 4 tháng xử lý chế phẩm, kết quả theo doi Bang 3.10 cho thấy:
Giá trị pH trong các nghiệm thức đã tăng so với trước thí nghiệm, nhưng vẫn ở mức thấp, cho thấy đất vẫn còn chua, với pH dao động từ 4,68 đến 4,89 Sự khác biệt này không có ý nghĩa thống kê.
Trong quá trình thí nghiệm, hàm lượng chất hữu cơ trong đất đã giảm so với trước thí nghiệm, với mức trung bình dao động từ 2,04 - 2,80% Các nghiệm thức sử dụng chế phẩm vi sinh chứa Trichoderma và Mycorrhiza cho thấy khả năng phân huỷ chất hữu cơ và cung cấp dinh dưỡng cho đất, dẫn đến hàm lượng chất hữu cơ cao hơn so với nghiệm thức đối chứng Tuy nhiên, sự khác biệt giữa các nghiệm thức khác không có ý nghĩa thống kê.
Sau 4 tháng xử lý chế phẩm, hàm lượng đạm tông số dao động từ 0,133 - 0,193 % tăng hơn so với trước thí nghiệm Việc xử lý chế phẩm vi sinh, đặc biệt là kết hợp xử lý cả hai loại chế phẩm vi sinh giúp tăng hàm lượng dam tổng số cao nhất là 0,193 % Tiếp đến là nghiệm thức xử lý chế phẩm Mycorrhiza có hàm lượng 0,177 %, nghiệm thức xử ly Trichoderma có hàm lượng 0,159 %, đều khác biệt có ý nghĩa về mặt thống kê so với nghiệm thức đối chứng. Ở các nghiệm thức được bổ sung xử lý chế phẩm có chứa vi sinh vật giúp phân huỷ chất hữu cơ, ty lệ C/N càng thấp, kha năng phân huỷ càng nhanh, các chất dinh dưỡng được giải phóng cung cấp cho cây trồng Việc xử lý chế phẩm vi sinh giúp làm tăng hàm lượng chất hữu cơ đồng thời cũng tăng đạm tổng số trong đất, nên khả năng cung cấp dinh dưỡng cho cây trồng cao hơn, ty lệ C/N thấp hơn Do đó ở các nghiệm thức xử lý chế phẩm vi sinh, tỷ lệ C/N có xu hướng thấp hơn so với đối chứng du kết quả xử lý thống kê cho thấy sự khác biệt không có ý nghĩa.
3.5.2 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến hàm lượng lân và kali trong đất trồng cam sành sau 4 tháng xử lý chế phẩm
Bảng 3.11 Ảnh hưởng của chế pham vi sinh đến hàm lượng lân và kali trong đất trồng cây cam sành
Nghiệm thức P tổng số P dễ tiêu K tong số K dé tiéu
(%) (mg/kg) (%) (mg/kg) Nước 1a 0,129 353,87 0,041 156,54 Trichoderma 0,126 243,71 0,039 106,25 Mycorrhiza 0,113 243,80 0,037 131,44 Tricho + Mycorr 0,115 209,13 0,039 121,30
Trong cùng một cột, các số có cùng ki tự di kèm thể hiển sự khác biệt không có ý nghĩa thông kê ở mức a = 0,05; "*: khác biệt không có ý nghĩa.
Bảng 3.11 cho thấy rằng việc xử lý chế phẩm vi sinh dẫn đến hàm lượng lân tổng số, lân dễ tiêu, kali tổng số và kali dễ tiêu có xu hướng thấp hơn so với nhóm đối chứng, mặc dù sự khác biệt này không đạt ý nghĩa thống kê Cụ thể, hàm lượng lân tổng số dao động từ 0,115 - 0,129 %, lân dễ tiêu từ 209,13 - 353,87 mg/kg, kali tổng số từ 0,037 - 0,041 %, và kali dễ tiêu từ 106,25 - 156,54 mg/kg.
3.5.3 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến một số cation trao đỗi và kha năng trao đối cation (CEC) trong dat trồng cây cam sành sau 4 tháng xử lý chế phẩm
Bang 3.12 Ảnh hưởng của chế phẩm vi sinh đến một số cation trao đổi và khả năng trao đổi cation (CEC) trong đất trồng cây cam sành
Nghiệm thức Ca trao đôi Mg trao đôi CEC
Trong cùng một cột, các sô có cùng ki tự di kèm thé hiện sự khác biệt không có ÿ nghĩa thông kê ở mức a =0,05; ”: khác biệt không có ý nghĩa.
Kết quả theo doi Bang 3.12 cho thấy:
Hàm lượng canxi trao đổi trước thí nghiệm là 3,32 meq/100g, và sau thí nghiệm, mức này tăng lên dao động từ 3,77 đến 5,86 meq/100g nhờ vào việc bổ sung vôi dạng dolomite Kết quả xử lý thống kê cho thấy hàm lượng canxi trao đổi giữa các nghiệm thức tưới chế phẩm vi sinh và nghiệm thức tưới nước lã (đối chứng) không có sự khác biệt có ý nghĩa thống kê.
Hàm lượng magie trao đổi trước thí nghiệm là 0,947 meq/100g, và sau thí nghiệm, hàm lượng này tăng lên dao động từ 1,88 - 2,07 meq/100g, tương tự như canxi Kết quả xử lý thống kê cho thấy không có sự khác biệt có ý nghĩa thống kê về hàm lượng magie trao đổi giữa các nghiệm thức tưới chế phẩm vi sinh và nghiệm thức tưới nước lã (đối chứng).
Khả năng trao đổi cation (CEC) được đo trong khoảng từ 15,94 đến 20,81 meq/100 g sau khi thực hiện thí nghiệm Kết quả xử lý thống kê và trắc nghiệm phân hạng cho thấy không có sự khác biệt có ý nghĩa thống kê về hàm lượng CEC giữa các nghiệm thức sử dụng chế phẩm vi sinh và nghiệm thức tưới nước lã (đối chứng).
KẾT LUẬN VÀ ĐÈ NGHỊ
Việc bổ sung cả hai loại chế phẩm Trichoderma và Mycorrhiza cho cây cam sành trong giai đoạn sau thu hoạch không ảnh hưởng đến sinh trưởng, chỉ số diệp lục tố, mật độ rệp sáp, bọ trĩ, bệnh loét, hàm lượng lân và các cation trao đổi trong đất Tuy nhiên, phương pháp này giúp giảm tỷ lệ sâu vẽ bùa (giảm 5,84%) và tỷ lệ rễ thối (giảm 8,34%) so với đối chứng Kết quả cho thấy mật số vi sinh vật tổng số cao nhất đạt 31,42 x 10° CFU/g, Trichoderma cao nhất là 14,04 x 10° CFU/g, vi sinh vật phân giải lân cao nhất đạt 24,22 x 10^4 CFU/g, vi sinh vật phân giải xenlulo cao nhất là 29,15 x 10^4 CFU/g, và vi khuẩn cố định đạm cao nhất là 7,04 x 10^4 CFU/g Mật độ bào tử VAM trong đất cao nhất đạt 260 bào tử/100g đất, tỷ lệ rễ có nấm cộng sinh cao nhất là 80,43%, cùng với hàm lượng đạm tổng số trong đất cao nhất đạt 0,193%.
Sử dụng kết hợp chế phẩm vi sinh Trichoderma và Mycorrhiza là bước đầu quan trọng để tăng cường mật độ vi sinh vật và bào tử nấm có lợi trong đất.
Để nâng cao hiệu quả của các chế phẩm vi sinh trong đất, cần cải thiện pH và đảm bảo cây cam sành được cung cấp đầy đủ, cân đối các loại phân hữu cơ và hóa học.
Tiếp tục theo dõi thí nghiệm dé đánh giá năng suất và phẩm chat cuối cùng từ đó đưa ra khuyên cáo, kêt luận chính xác hơn.
Barea J.,1982 Production of plant growth — regulating substances by VAM fungusGlomus mosseae Applied and Environmental Microbiology Vol 43, No
Chi cục Thống kê khu vực Phú Giáo - Bắc Tân Uyên, tỉnh Bình Dương đã công bố báo cáo chính thức về diện tích, năng suất và sản lượng cây lâu năm trong năm 2021 Biểu số: 007.N/BCC-NLTS.
Chu Thị Thu Hà, Lê Thị Minh Thành và Hà Thị Quyến (2020) đã tiến hành điều tra vi sinh vật trong đất nông nghiệp và nước tưới tại một số xã thuộc tỉnh Hưng Yên Nghiên cứu này được công bố trong hội thảo CRES 2020, tập trung vào mối liên hệ giữa môi trường và phát triển bền vững.