Nghiên cứu đặc điểm giải phẫu, sinh lý của một số giống hoa cúc nuôi cấy mô giai đoạn vườn ươm và hoàn thiện qui trình nhân giống bằng giâm chồi

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƢỜNG ĐẠI HỌC SƢ PHẠM HÀ NỘI NGUYỄN THỊ OANH NGHIÊN CỨU ĐẶC ĐIỂM GIẢI PHẪU, SINH LÝ CỦA MỘT SỐ GIỐNG HOA CÚC NI CẤY MƠ GIAI ĐOẠN VƢỜN ƢƠM VÀ HỒN THIỆN QUI TRÌNH NHÂN GIỐNG BẰNG GIÂM CHỒI LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC SINH HỌC HÀ NỘI, NĂM 2017 BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƢỜNG ĐẠI HỌC SƢ PHẠM HÀ NỘI NGUYỄN THỊ OANH NGHIÊN CỨU ĐẶC ĐIỂM GIẢI PHẪU, SINH LÝ CỦA MỘT SỐ GIỐNG HOA CÚC NI CẤY MƠ GIAI ĐOẠN VƢỜN ƢƠM VÀ HỒN THIỆN QUI TRÌNH NHÂN GIỐNG BẰNG GIÂM CHỒI Chuyên ngành: Sinh học thực nghiệm Mã số: 60.42.01.14 LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC SINH HỌC Ngƣời hƣớng dẫn khoa học: PGS TS NGUYỄN VĂN ĐÍNH HÀ NỘI, NĂM 2017 LỜI CẢM ƠN Để hồn thành luận văn này, tơi Ďã nhận Ďƣợc nhiều giúp Ďỡ Trƣớc hết, tơi xin chân thành bày tỏ lịng biết ơn sâu sắc kính trọng tới thầy hƣớng dẫn PGS.TS.Nguyễn Văn Đính Ďã tận tình bảo, hƣớng dẫn tơi suốt trình thực luận văn Trong thời gian thực Ďề tài nhận Ďƣợc giúp Ďỡ tận tình thầy TS La Việt Hồng – Khoa Sinh KTNN; Mai Thị Hồng – Phịng thí nghiệm Sinh lý thực vật; thầy T.S Hà Minh Tâm- Khoa Sinh KTNN sinh viên Lê Thu Hằng – K39 sinh Ďã giúp Ďỡ, Ďóng góp ý kiến Ďể tơi hồn thành Ďề tài khóa luận, nhân Ďây xin chân thành cảm ơn Tôi xin Ďƣợc cảm ơn: Phịng thí nghiệm Sinh lý thực vật trƣờng ĐHSP Hà Nội 2; Phịng thí nghiệm thực vật; Tập thể cán Viện Nghiên Cứu Khoa học Và Ứng dụng - trƣờng ĐHSP Hà Nội Ďã tạo Ďiều kiện thuận lợi thiết bị, phƣơng tiện Ďể hồn thành luận văn Tơi xin bày tỏ lịng biết ơn tới thầy, Ban Giám hiệu trƣờng ĐHSP Hà Nội 2; Ban Chủ nhiệm khoa Sinh – KTNN trƣờng ĐHSP Hà Nội 2; Phòng Sau Ďại học trƣờng ĐHSP Hà Nội Ďã tạo Ďiều kiện thời gian học tập chƣơng trình thạc sĩ Tơi xin chân thành cảm ơn gia Ďình bạn bè ngƣời Ďã ln Ďộng viên, góp ý cho tơi thời gian qua Hà Nội, tháng năm 2017 Học viên NGUYỄN THỊ OANH LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam Ďoan Ďề tài “Nghiên cứu đặc điểm giải phẫu, sinh lý số giống hoa cúc nuôi cấy mô giai đoạn vườn ươm hồn thiện qui trình nhân giống giâm chồi” cơng trình nghiên cứu tơi số kết cộng tác với cộng khác Những số liệu kết nghiên cứu luận văn trung thực không trùng lặp với Ďề tài khác Tôi xin cam Ďoan giúp Ďỡ cho việc thực luận văn Ďã Ďƣợc cảm ơn thơng tin trích dẫn luận văn Ďã Ďƣợc rõ nguồn gốc Tác giả Nguyễn Thị Oanh MỤC LỤC MỞ ĐẦU 1 Lý chọn Ďề tài Mục Ďích nghiên cứu 3 Nội dung nghiên cứu Ý nghĩa khoa học thực tiễn Ďề tài NỘI DUNG CHƢƠNG TỔNG QUAN TÀI LIỆU NGHIÊN CỨU 1.1 Giới thiệu hoa cúc 1.1.1 Nguồn gốc hoa cúc 1.1.2 Vị trí phân loại hoa cúc 1.1.3 Đặc Ďiểm hình thái 1.1.4 Yêu cầu Ďặc Ďiểm ngoại cảnh hoa cúc 1.1.5 Yêu cầu dinh dƣỡng hoa cúc 1.1.6 Thời vụ trồng hoa cúc 1.1.7 Giá trị hoa cúc 1.1.7.1 Giá trị tài nguyên 1.1.7.2 Giá trị kinh tế hoa cúc 10 1.2 Giá trị kinh tế ngành sản xuất hoa giới Việt Nam 11 1.2.1 Sản xuất hoa giới 11 1.2.2 Sản xuất hoa Việt Nam 13 Những thuận lợi, khó khăn trồng cúc nƣớc ta 17 1.3 Ứng dụng kỹ thuật nuôi cấy mô tế bào thực vật nhân giống hoa cảnh 18 1.3.1 Nhân giống chồi chồi bên 19 1.3.2 Nhân giống chồi bất Ďịnh 20 1.3.3 Các nghiên cứu giai Ďoạn 22 1.3.4 Hƣớng nghiên cứu kỹ thuật nhân giống giâm cành thực vật 24 CHƢƠNG ĐỐI TƢỢNG VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 26 2.1 Vật liệu, hóa chất thiết bị nghiên cứu 26 2.1.1 Vật liệu thực vật 26 2.1.2 Hóa chất thiết bị nghiên cứu 27 2.2 Địa Ďiểm, thời gian nghiên cứu 29 2.3 Phƣơng pháp nghiên cứu 29 2.4 Phƣơng pháp xử lý số liệu 36 CHƢƠNG KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN 37 3.1 Kết nhân giống in vitro tạo giống hoa cúc hoàn chỉnh từ Ďoạn thân 37 3.1.1 Nghiên cứu ảnh hƣởng BAP kết hợp với Kinetin Ďến khả chồi chiều cao chồi cuả giống cúc 37 3.1.2 Ra rễ - tạo cúc in vitro hoàn chỉnh 39 3.2 Nghiên cứu biến Ďổi sinh lí, hóa sinh giải phẫu giống cúc giai Ďoạn rèn luyện vƣờn ƣơm 40 3.2.1 Đánh giá tỉ lệ sống sót giống cúc giai Ďoạn rèn luyện 40 3.2.2 Nghiên cứu khả sinh trƣởng giống cúc giai Ďoạn rèn luyện 41 3.2.3 Nghiên cứu số tiêu quang hợp giống cúc giai Ďoạn rèn luyện 48 3.2.4 Nghiên cứu hàm lƣợng nƣớc, khả giữ nƣớc mô giống cúc giai Ďoạn rèn luyện 55 3.2.5 Nghiên cứu số Ďặc Ďiểm giải phẫu giống cúc giai Ďoạn rèn luyện 58 3.3 Nhân giống ex vitro giống cúc kỹ thuật giâm chồi 63 3.3.1 Ảnh hƣởng chế phẩm Atonik 1,8DD Ďến trình phát sinh chồi bên 64 3.3.2 Ảnh hƣởng N3M α-NAA Ďến khả rễ chồi bên 65 3.3.3 Quy trình nhân giống cúc giâm chồi 67 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 68 TÀI LIỆU THAM KHẢO 71 PHỤ LỤC 80 DANH MỤC CÁC CHỮ VIẾT TẮT MS : Murashige & Skoog BAP : 6-Benzylaminopurine Kinetin : 6- Furfurylaminopurinne NAA : 1- Naphthaleneacetic acid NXB : Nhà xuất DANH MỤC BẢNG Bảng 1: Ảnh hƣởng BAP kết hợp với Kinetin Ďến tái sinh nhân nhanh chồi in vitro từ Ďốt thân hoa Cúc 38 Bảng 2: Tỉ lệ sống giống cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm sau 14 ngày 40 Bảng Chiều cao giống cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm 41 Bảng Đƣờng kính thân giống cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm 43 Bảng Chiều dài rễ số giống cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm 44 Bảng Số lƣợng rễ số giống cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm 46 Bảng7 Khối lƣợng tƣơi số giống cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm 47 Bảng Khối lƣợng khô số giống cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm 47 Bảng Sự thay Ďổi chiều rộng, chiều dài diện tích giống cúc giai Ďoạn rèn luyện 49 Bảng 10 Sự thay Ďổi hàm lƣợng diệp lục a, diệp lục b diệp lục tổng số 52 Bảng 11 Hàm lƣợng nƣớc mô giống cúc giai Ďoạn rèn luyện 55 Bảng 12 Khả giữ nƣớc mô giống cúc giai Ďoạn rèn luyện 57 Bảng 13 Đặc Ďiểm giải phẫu giống hoa cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm 60 Bảng 14 Ảnh hƣởng Atonik Ďến khả chồi giống cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm 64 Bảng 15 Ảnh hƣởng N3M α-NAA Ďến khả rễ chồi bên 66 DANH MỤC HÌNH ẢNH Hình 1: Chồi cúc Đỏ Cờ in vitro tuần 39 Hình 2: Cây cúc ngày tuổi có rễ Ďủ Ďiều kiện Ďƣa vƣờn ƣơm 39 Hình Chiều cao giống cúc Thạch Bích ngày – 14 ngày 42 Hình Chiều dài rễ giống cúc Thạch Bích ngày – 14 ngày 46 Hình Hình ảnh giải phẫu số giống cúc in vitro giai Ďoạn vƣờn ƣơm 59 Hình Khả rễ chồi giống cúc giai Ďoạn vƣờn ƣơm 65 74 [29] Ďurkovič, J., Čaňová, I., & Pichler, V (2009) Water loss and chlorophyll fluorescence during ex vitro acclimatization in micropropagated black mulberry (Morus nigra L.) Propag Ornam Plants, 9, 107-112 [30] Emek Y, Erdag B (2007) “In vitro propagation of Gladiolus anatolicus (boiss.)stapf” Pak J Bot.39(1):23-30 [30] Gow W.P, Chen J.T, Chang W.C (2008) “Influence of growth regulators on direct embryo formation from leaf explants of Phalaenopsis orchids” Acta Physiol.Plantarum 30:507-512 [31] Getu M (2009) “Ethiopia floriculture and its impact on the environment.Regulations, Supervision and Compliance”.Mizan Law Rev 3(2):242 [32] Guohua M, Jaime A, Teixeira S, Wu G (2011) “Direct adventitious shoot formation from apical shoot explants of Euphorbia tirucalli” J Plant Growth Regul 30:114-116 [33] Haouala F, Salhi I (2012) “Axillary budding and rooting of Gladiolus (Gladiolus grandiflorus Hort.) in salt stress conditions” Afr J Hort Sci 6:101-110 [34] Hofman, P., Haisel, D., Komenda, J., Vágner, M., Tichá, I., Schäfer, C., & Čapková, V (2002) Impact of in vitro Cultivation Conditions on Stress Responses and on Changes in Thylakoid Membrane Proteins and Pigments of Tobacco during ex vitro Acclimation Biologia Plantarum, 45(2), 189-195 doi:10.1023/A:1015180219628 [35] Harry R., and A Wren, 1983 Growing chrysanthemum A book Croom Helm Ltd, Provident House, Burell Row, Beckenha, Kent BR3 1AT.Pp: 13-17 [36] ival, A., Beulé, T., Lavergne, D., Nato, A., Havaux, M., & Puard, M (1997) Development of photosynthetic characteristics in oil palm during in vitro micropropagation Journal of plant physiology, 150(5), 520-527 [37] Ismail, S., Naqvi, B., Anwar, N., Zeberi, R., 2003 In vitro multiplication of Coffea Arabica Pak J Bot 35 (5), 829-834 75 [38] Kadleček, P., Tichá, I., Haisel, D., Čapková, V., & Schäfer, C (2001) Importance of in vitro pretreatment for ex vitro acclimatization and growth Plant Science, 161(4), 695-701 [39] Kaňuchová, A., & Ďurkovič, J (2013) Wood ontogeny during ex vitro acclimatization in micropropagated hybrid poplar clones Biologia Plantarum, 57(1), 144-148 doi:10.1007/s10535-012-0122-2 [40] Kaviani B, Hesar A.A, Kharabian-Masouleh A (2011) “In vitro propagation of Matthiola incana (Brassicaceae) - An ornamental plant”.Plant Omics Journal 4(7):435-440 [41] Kantia A, Kothari S (2002) “High efficiency adventitious shoot bu formation and plant regeneration from leaf explants of Dianthus chinensis L.” Scientia Horticulturae.96:205- 212 [42] Karats M, Aasim M, Cinar A, Dogan M (2013) “Adventitious shoot regeneration from leaf explants of dwarf hygro (Hygrophilis polysperma Roxb.)” The Scientific World Journal [43] Karami O, Deljou A, Kordestani G (2007) “Secondary somatic embryogenesis of Carnation (Dianthus caryophyllus L.)”.Plant Cell Tissue and Organ culture 92:273-280 [44] Kere Bremer (1994), Asteraceae clasdistic and classification, New York [45] Kumar A, Palni L.M, Sood A, Sharma M (2002) “Heat-shock induced somatic embryogenesis in callus cultures of gladiolus in the presence of high sucrose” J Hortic Sci Biotechol 77:73-78 [46] Khan, P., Evers, D., & Hausman, J F (1999) Stomatal characteristics and water relations of in vitro grown Quercus robur NL 100 in relation to acclimatization Silvae genetica, 48(2), 83-86 [47] Kadlecek, P., Ticha, I., Capkova, V., & Schafer, C (1998) Acclimatization of micropropagated tobacco plantlets Photosynthesis: mechanisms and effects, 5, 3853-3856 76 [48] Kadleček, P (1997) Effect of pretreatment by irradiance and exogenous saccharose under in vitro conditions on photosynthesis and growth of tobacco (Nicotiana tabacum L.) plants during acclimatization after transfer to soil Diploma work, Charles University, Department of Plant Physiology, Praha [49] Lee M.M, Nam K, Kyoung E, Hi S, Park Y (1997) “Biochemical character stics of S-adenosylmethionine decarboxylase from Carnation(Dianthus caryophyllus L.) petals” J.Plant Biol 40(2):80-88 [50] Nautiyal, S., Badola, H K., Pal, M., & Negi, D S (1994) Plant responses to water stress: changes in growth, dry matter production, stomatal frequency and leaf anatomy Biologia Plantarum, 36(1), 91-97 [51] Nali ni R (2012) “Micropropagation of Chrysanthemum(Chrysanthemum morifolium) using shoot tip as explants” Internatioal Journal of Food, Agriculture and Veterinary Sciences 2(2):62-66 [52] Langton, F.A (1989), „‟Inheritance in chrysanthemum morifolium Ramat‟‟, Heredity, 419 – 423 [53] Martin K.P, Joseph D, Madassery J, Philip V.J (2003) “Direct shoot regeneration from lamina explants of two commercial cut flower cultivars of Anthurium andraeanum Hort In Vitro Cellular & Developmental Biologyplant 39(5):500-504 DOI: 10.1079/IVP2003460 [54] Murashige T and Skoog F (1962), “A revised medium for rupid growth and bioassays with tobacco tissue culture”, Physiol Plant 15: 473 – 479 [55] Oradee Sahavacharin (1998), Cut Flower ptoduction in Asia, Food and agriculture organization of the united nations, regional office for Asia and the pacific, Bangkok, Thailan [56] Pospíšilová, J., Synková, H., Haisel, D., & Semoradova, S (2007) Acclimation of Plantlets to Ex vitro Conditions: Effects of Air Humidity, Irradiance, CO2 Concentration and Abscisic Acid (a Review) Acta Horticulturae, 748, 29 77 [57] Pospíšilová, J., Wilhelmová, N a., Synková, H., Čatský, J., Krebs, D., Tichá, I., Snopek, J (1998) Acclimation of tobacco plantlets to ex vitro conditions as affected by application of abscisic acid Journal of Experimental Botany, 49(322), 863-869 [58] Pospóšilová, J., Tichá, I., Kadleček, P., Haisel, D., & Plzáková, Š (1999) Acclimatization of Micropropagated Plants to Ex vitro Conditions Biologia Plantarum, 42(4), 481-497 doi:10.1023/A:1002688208758 [59] Preece, J E., & Sutter, E G (1991) Acclimatization of micropropagated plants to the greenhouse and field Micropropagation (pp 71-93): Springer [60] racama, C V., Kane, M E., Wilson, S B., & Philman, N L (2008) Comparative growth, morphology, and anatomy of easy-and difficult-toacclimatize sea oats (Uniola paniculata) genotypes during in vitro culture and ex vitro acclimatization Journal of the American Society for Horticultural Science, 133(6), 830-843 [61] Romano, A., & Martins-Louỗóo, M A (2001, 2001) Water loss and morphological modifications in leaves during acclimatization of cork oak micropropagated plantlets [62] Sutter, E G., Shackel, K., & Diaz, J C (1991) Acclimatization of tissue cultured plants doi:10.17660/ActaHortic.1992.314.13 [63] Sciutti, R., & Morini, S (1995) Water loss and photosynthesis of plum plantlets is influenced by relative humidity during rooting in vitro Journal of Horticultural Science, 70(2), 221-228 [64] Smaranda V.T (2005) ““In vitro” multiplication of chrysanthemum morifolium ramat”.Scientific Annals of Alexandru Ioan Cuza University of Iasi New Series, Section Vegetal Biology [65] Shackel, K A., Novello, V., & Sutter, E G (1990) Stomatal function and cuticular conductance in whole tissue-cultured apple shoots Journal of the American Society for Horticultural Science, 115(3), 468-472 78 [66] Shirdel M, Azar A, Matloobi M, Nahandi F (2012) “Effect of nodal position and growth regulators on in vitro growth of Dog Rose (Rosa canina)”.Journal of Ornamental and horticulture plants 3(1):9-17 [67] Sheela Chandra, Rajib Bandopadhyay, Vijay Kumar, Ramesh Chandra, Acclimatization of tissue cultured plantlets: from laboratory to land [68] Stanton, K M., & Mickelbart, M V (2014) Maintenance of water uptake and reduced water loss contribute to water stress tolerance of Spiraea alba Du Roi and Spiraea tomentosa L Horticulture Research, 1, 14033 doi:10.1038/hortres.2014.33 [69].Starman T.W, Cerny T.A, MacKenzie A.J (1995) “Productivity and profitability of some field-grown specialty cut flowers” HortScience 30:1217-1220 [70] Siddique, I., & Anis, M (2008) An improved plant regeneration system and ex vitro acclimatization of Ocimum basilicum L Acta Physiologiae Plantarum, 30(4), 493-499 [71] Tanaka Y, Kastumoto Y, Brugliera F, Mason J (2004) Plant Cell Tissue and Organ Culture 80:1-24 [72] Takhtajan, A.L (1987), Sysyema Magnoliophytorum, Leningrad Nauka [73] Teixeira Da Silva JA, 2014 Organogenesis from chrysanthemum (Dendranthema x grandiflora (Ramat.) Kitamura) petals (disc and ray florets) induced by plant growth regulators Asia-Pacific J Mol Biol Biotechnol 22(1): 145-151 [74].Teixeira da Silva JA, 2003 Research review paper: Chrysanthemum: advances in tissue culture, cryopreservation, postharvest technology, genetics and transgenic biotechnology Biotechnol Adv 21(8):715-766 [75].Udom N, Kanchanapoom K, Kamnoon K (2009) “Micropropagation from cultured nodal explants of rose (Rosa hybrid L cv.Perfume Delight, Songklanakarin” J Sci Technology 31(6):583-586 79 [76] Van Huylenbroeck, J M., & De Riek, J (1995) Sugar and starch metabolism during ex vitro rooting and acclimatization of micropropagated Spathiphyllum „Petite‟ plantlets Plant Science, 111(1), 19-25 doi:http://dx.doi.org/10.1016/0168-9452(95)04223-H [77] Waseem K, Khant M, Jaskant Q, Jilani M, Sohail M (2009) “Effect of different auxins on the regeneration capability of Chrysanthemum leaf discs” International Journal of agriculture and biology 11(4):468-472 [78] Wetzstein, H Y., & Sommer, H E (1982) Leaf anatomy of tissue-cultured Liquidambar styraciflua (Hamamelidaceae) during acclimatization American Journal of Botany, 1579-1586 [79] Xing W, Bao M, Qin H, Ning G (2010) “Microopropagation of Rosa rugosa through axillary shoot proliferation” Acta Biologica Cracoviensa Series Botanica 52(2):69-75 [80] Jain S.M (2002) “Feeding the world with induced mutations and biotechnology”.Proc Int Nuclear Conference 2002 – Global trends and Perspectives Seminar 1: Agriculture and Bioscience Bangi, Malaysia: MINT; 2002 p.1 [81] Jahan, A A., & Anis, M (2014) Changes in Antioxidative Enzymatic Responses during Acclimatization of In vitro Raised Plantlets of Cardiospermum halicacabum L against Oxidative Stress J Plant Physiol Pathol 2, 4, [82] Jaime A (2014), Novel Factors Affecting Shoot Culture of Chrysanthemum (Dendranthema x Grandiflora) [83] Jeon, M.-W., Ali, M B., Hahn, E.-J., & Paek, K.-Y (2006) Photosynthetic pigments, morphology and leaf gas exchange during ex vitro acclimatization of micropropagated CAM Doritaenopsis plantlets under relative humidity and air temperature Environmental and Experimental Botany, 55(1–2), 183-194 Tài liệu Internet [84] http://en.wikipedia.org/wiki/Chrysanthemum [85] http://rauquavietnam.vn 80 PHỤ LỤC (Nguồn ảnh: Nguyễn Thị Oanh) PHỤ LỤC 1: MỘT SỐ HÌNH ẢNH MINH HỌA a Cây ngày b Cây ngày c Cây 14 ngày Hình 3.1a: Chiều dài rễ giống Cúc Đỏ Cờ ngày – 14 ngày a Cây ngày b Cây ngày c Cây 14 ngày Hình 3.1b: Chiều dài rễ giống Cúc Chi vàng ngày – 14 ngày 81 a Cây ngày b Cây ngày c Cây 14 ngày Hình 3.2a: Khối lƣợng tƣơi giống Cúc Đỏ Cờ ngày – 14 ngày a Cây ngày b Cây ngày c Cây 14 ngày Hình 3.2b: Khối lƣợng tƣơi giống Thạch bích ngày – 14 ngày a Cây ngày b Cây ngày c Cây 14 ngày Hình 3.2c: Khối lƣợng tƣơi giống Chi vàng ngày – 14 ngày 82 a Cây ngày b Cây ngày c Cây 14 ngày Hình 3.2d: Khối lƣợng khơ giống cúc Đỏ cờ ngày – 14 ngày a Cây ngày b Cây ngày c Cây 14 ngày Hình 3.2e: Khối lƣợng khơ giống cúc Thạch bích ngày – 14 ngày a Cây ngày b Cây ngày c Cây 14 ngày Hình 3.2f: Khối lƣợng khơ giống cúc Chi vàng ngày – 14 ngày 83 14 ngày Hình 3.2g: Diện tích giống Cúc Thạch Bích ngày - 14 ngày 84 PHỤ LỤC 2: MỘT SỐ HÌNH ẢNH GIẢI PHẪU LÁ a b c d a, b: Giải phẫu mô Chi vàng c, d: Lỗ khí giống Chi vàng Hình 3.2.5: Giải phâu giống Cúc Chi vàng ngày - 14 ngày 85 PHỤ LỤC 3: MỘT SỐ HÌNH ẢNH GIỐNG CÚC GIAI ĐOẠN RÈN LUYỆN Đỏ cờ Ďối chứng Thạch bích Ďối chứng Chi vàng Ďối chứng Đỏ cờ Atonik3ml/lit Thạch bích Atonik 3ml/lit Chi vàng Atonik 3ml/lit Đỏ cờ Atonik 5ml/lit Thạch bích Atonik 5ml/lit Chi vàng Atonik 5ml/lit 86 Hình 3.3.1 Ảnh hƣởng chế phẩm Atonik 1,8DD đến trình phát sinh chồi bên a Đỏ cờ Ďối chứng b.Đỏ cờ α-NAA c.Đỏ cờ chất kích thích rễ Hình 3.3.2a Khả rễ chồi giống cúc Đỏ cờ giai đoạn vƣờn ƣơm a Chi vàng Ďối chứng b.Chi vàng α-NAA c Chi vàng chất kích thích rễ Hình 3.3.2c Khả rễ chồi giống Chi vàng giai đoạn vƣờn ƣơm 87 PHỤ LỤC 4: MỘT SỐ HÌNH ẢNH NHÂN GIỐNG CÚC HÌNH ẢNH RA HOA TỪ CÂY MƠ RÈN LUYỆN NGỒI VƢỜN ƢƠM Hoa Đỏ cờ Hoa Thạch bích Hoa Chi vàng 88 PHỤ LỤC 5: THÀNH PHẦN MÔI TRƢỜNG DINH DƢỠNG MS (MURASHIGE AND SKOOG, 1962) STT Tên khoa học Nồng độ sử dụng (mg/l) I Các nguyên tố đa lƣợng KNO3 1900 NH4NO3 1650 MgSO4.7H2O 370 KH2 PO4 170 CaCl2.2H2O 440 II Các nguyên tố vi lƣợng H3BO3 6,2 MnSO4.4H2O 22,3 ZnSO4.4H2O 8,6 KI 0,83 Na2MoO4.2H2O 0,25 CuSO4.5H2O 0,025 CoCl2.6H2O 0,025 III Các vitamin Nicotinic acid 0,5 Thiamin 0,5 Pyridoxin 0,5 Glycine 2,0 Inositol 100 IV NaFeEDTA Na2 - EDTA 37,3 FeSO4.7H2O 27,8 ... xin cam Ďoan Ďề tài ? ?Nghiên cứu đặc điểm giải phẫu, sinh lý số giống hoa cúc nuôi cấy mô giai đoạn vườn ươm hồn thiện qui trình nhân giống giâm chồi? ?? cơng trình nghiên cứu tơi số kết cộng tác với... DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƢỜNG ĐẠI HỌC SƢ PHẠM HÀ NỘI NGUYỄN THỊ OANH NGHIÊN CỨU ĐẶC ĐIỂM GIẢI PHẪU, SINH LÝ CỦA MỘT SỐ GIỐNG HOA CÚC NI CẤY MƠ GIAI ĐOẠN VƢỜN ƢƠM VÀ HỒN THIỆN QUI TRÌNH NHÂN GIỐNG BẰNG GIÂM... lý số giống hoa cúc nuôi cấy mơ giai đoạn vườn ươm hồn thiện qui trình nhân giống giâm chồi? ?? Mục đích nghiên cứu - Hoàn thiện nhân giống in vitro từ Ďốt thân giống cúc (Đỏ Cờ, Thạch Bích, Chi Vàng