L ỜI CẢM ƠN
3.1.3.4. Kỹ thuật nuôi ấu trùng
Chuẩn bị nước thả Nauplius:
Trại sản xuất giống đã được chuẩn bị sẵn sàng cho sản xuất, nước được cấp trước khi thả ấu trùng 1 ngày, khoảng 60% dung tích bể nuôi, sau đó cấp thêm từ từ ở giai đoạn Zoea 2 và Zoea 3.
Chuẩn bị thức ăn:
Thức ăn nuôi ấu trùng gồm nhiều loại phù hợp với từng giai đoạn ấu trùng khác nhau như tảo tươi, tảo khô, thức ăn tổng hợp, thức ăn chế biến, Artemia.
Tảo tươi là thành phần thức ăn bắt buộc trong giai đoạn Zoea 1 - Zoea 3 và được duy trì cho đến cuối giai đoạn Mysis.
Mật độ nuôi ấu trùng
Mật độ nuôi ấu trùng được tính cho toàn bộ 100% dung dịch bể nuôi. Mật độ ấu trùng thưa sẽ dư thừa thức ăn, mật độ nuôi quá dày thỉ sẽ khó chăm sóc, chất lượng tôm giống kém. Nên nuôi với mật độ từ 90-130 ấu trùng/lít.
Thuần hóa, xử lý và thả ấu trùng (Nauplius)
Ấu trùng trước khi đưa vào thả nuôi cần được cân bằng các yếu tố môi trường (nhiệt độ, nồng độ muối...) giữa trại tôm mẹ và trại ương nuôi ấu trùng. Nếu môi trường chênh lệch không lớn lắm có thể thả Nauplius vào thùng, chậu, duy trì sục khí lấy nước trong bể nuôi thêm từ từ cho đến khi nhiệt độ cân bằng nhau.
Xử lý ấu trùng: Xử lý ấu trùng trước khi thả vào bể nuôi để ngăn ngừa mầm bệnh. Cách xử lý tắm ấu trùng trong nước có chứa Formalin nồng độ 200 - 300ppm (200 - 300ml formallin/1m3nước) trong thời gian 30 giây hoặc tắm bằng Iodine nồng độ 0,1ppm trong 15 phút (lưu ý cách tính toán - pha nồng độ các hóa chất xử lý). Trong quá trình thuần hóa, xử lý, cần thay đổi toàn bộ nước đựng ấu trùng từ trại tôm mẹ, mọi thao tác phải được thực hiện nhanh gọn, nhẹ nhàng, hạn chế tối đa việc đưa ấu trùng ra khỏi môi trường nước.
Quản lý bể nuôi ấu trùng.
Đòi hỏi kỹ thuật viên áp dụng đúng quy trình chăm sóc của cơ sở và đầu tư thời gian thích đáng để kiểm tra, kiểm soát toàn bộ hoạt động sống và phát triển của ấu trùng, thực hiện nghiêm ngặt các bước chăm sóc và có những điều chỉnh khi cần thiết.
Chăm sóc Nauplius: Giai đoạn ấu trùng Nauplius dinh dưỡng noãn hoàn nên
chưa phải cung cấp thức ăn. Việc chăm sóc chỉ cần cấp sục khí nhẹ, đều, không để ấu trùng chìm xuống đáy bể và thường xuyên quan sát khi thấy xuất hiện ấu trùng Zoea thì bắt đầu cho ăn.
Chăm sóc ấu trùng Zoea:
Ở giai đoạn này, ấu trùng có tính ăn lọc liên tục, vì vậy mật độ tảo trong bể nuôi phải được duy trì thường xuyên, mỗi ngày cho ăn 4-5 lần tảo tươi. Tảo được cho ăn từ giai đoạn Zoea 1 tăng dần dần ở cuối Zoea 1 đến Zoea 2, tăng tối đa ở giai đoạn Zoea 3 và giảm dần ở giai đoạn Mysis.
Trong giai đoạn Zoea 2, Zoea 3 có thể bổ sung thêm tảo khô, thức ăn tổng hợp 2-3 lần/ngày. Chú ý thường xuyên theo dõi trong bể ương lượng thức ăn thừa hay thiếu để điều chỉnh. Phải xi - phông ngay mỗi khi nhận thấy phân ấu trùng đã vón cục chìm xuống đáytránh gây ô nhiễm nước nuôi trong giai đoạn này ta chỉ cần thêm nước.
Chăm sóc ấu trùng Mysis:
Ấu trùng giai đoạn này có tập tính bắt mồi chủ động, thức ăn là động vật phù du. Hiện nay thức ăn sử dụng để nuôi ấu trùng Mysis chủ yếu là ấu trùng Nauplius của Artemia, đây là thức ăn thích hợp nhất và thuận tiện cho người sử dụng. Thức ăn tổng hợp được bổ sung xen kẽ với Artemia.
Mỗi ngày cho ăn 8 lần, xen kẽ giữa ấu trùng Artemia và thức ăn tổng hợp.
Ấu trùng Mysis có nhu cầu dưỡng khí cao và có tập tính bơi lội dạng treo nên dễ bị lắng đáy. Do đó phải theo dõi kỹ càng để kịp thời có những điều chỉnh giúp ấu trùng bơi lội đều trong nước (như dùng vòi sục khí hoặc khuấy đảo nước để nâng ấu trùng lên). Phân của ấu trùng Mysis dạng rời rạc, lơ lửng trong nước nên phải thay nước để giữổn định môi trường.
Thời gian biến thái của ấu trùng Mysis tùy thuộc vào nhiệt độ nước thông thường 4-6 ngày ở nhiệt độ 27 - 290C thì chuyển qua giai đoạn Postlarvae.
Chăm sóc hậu ấu trùng (Postlarvae)
Kỹ thuật chăm sóc Postlarvae tương tự như chăm sóc Mysis. Postlarvae thường bám vào thành, đáy bể và có khả năng bơi lội chủ động ngược dòng sục khí để bắt mồi, chúng có thể ăn thịt lẫn nhau khi đói. Vì vậy trong giai đoạn này phải cho tôm ăn thật đầy đủ, thức ăn chủ yếu là Artemia và thức ăn tổng hợp. Cũng có thể dùng thêm thức ăn chế biến như: thịt hàu, tôm bóc vỏ, trứng xay nhuyễn, hấp chín, chà qua lưới, lọc lấy phần hợp cỡ để cho ăn. Sau mỗi lần cho ăn phải kiểm tra xiphong đáy thức ăn chế biến dư thừa trong bể.
Quản lý chất lượng nước:
Trong quá trình sống và phát triển ấu trùng sẽ thải phân và vỏ (do lột xác) làm dơ bẩn nước nuôi. Vì vậy muốn giữ ổn định môi trường nuôi, hàng ngày phải tiến hành vệ sinh, thay nước.
Xiphong đáy: Giảm nhẹ sục khí, dùng ống xiphong hút ra toàn bộ đáy bể, loại bỏ hết cặn bả, thức ăn dư thừa, vỏ và xác ấu trùng chết ra ngoài qua vợt hoặc ống hermet thu ấu trùng còn sống thả lại bể nuôi.
Thay nước: Dùng dụng cụ thay nước hút nước ra ngoài đến mức cần thay, sau đó cấp nước mới có cùng điều kiện thủy lý, hóa vào (để tránh xảy ra sự thay đổi đột ngột về môi trường).
Thu hoạch và vận chuyển Postlarvae
Thu hoạch:
Rút cạn nước trong bể nuôi, dùng vợt vớt Postlarvae ra thùng, chậu. Tiến hành định lượng Postlarvae bằng cách đong mẫu hoặc đếm so màu mẫu để tính số lượng Postlarvae bằng cách đong mẫu hoặc đếm so màu mẫu để tính số lượng Postlarvae xuất cho người ương, nuôi đồng thời tính được kết quả sản xuất và tỷ lệ sống cho từng đợt sản xuất giống, hạch toán lỗ, lãi.
Vận chuyển Postlaevae:
Đóng tôm vào túi nilon có nước và oxy. Mật độ tôm, trong bao tùy thuộc vào quãng đường và thời gian vận chuyển. Mật độ vận chuyển thông thường. 300 - 500 PL/lít (với thời gian vận chuyển trên 10 giờ) 500 - 800 PL/lít (với thời gian vận chuyểndưới 10 giờ) Giữ nhiệt độ trong bao khoảng 22 - 24 0C có tác dụng làm tôm ít hoạt động giảm lượng tiêu hao oxy, không ăn thịt lẫn nhau do vậy, giảm được sự hao hụt trong quá trình vận chuyển.
3.1.3.5. Quản lý bệnh trong trại tôm giống
Phòng bệnh:
Trong sản xuất giống có hai loại nấm thường gặp, có thể gây chết 100%, đó là nấm Lagenidium callinectes và Sirolpidium. Thực hiện phòng 2 loại nấm này bằng dung dịch Treflan theo bảng sau:
Bảng 3.1.3.5 . Nồng độ dung dịch Treflan phòng nấm trong trại giống
Giai đoạn Nồng độ(ppm) Lần cho/ngày
Nauplius 0,01 1
Zoea 0,03 2
Mysis 0,06 2
PL1 PL4 0,08 2
PL5 0,1 2
Ghi chú: Cách pha dung dịch Treflan:
- Treflan thương phẩm là loại Triflurali Elanco 44%
- Lấy 10ml Treflan pha vào 1000ml nước cất ta có dung dịch A
- Để Treflan 0,01ppm, ta lấy 1ml dung dịch A cho vào 1m3 nước bể nuôi ấu trùng.
Trị bệnh:
Bệnh vi khuẩn dạng sợi (Filamentous bacteria)
Bệnh này thường gặp ở giai đoạn Postlarvae, các sợi nấm bám đầy các phần phụ của tôm, làm cho Postlarvae khó bơi, ăn yếu và sẽ xuất hiện các bệnh khác kèm
theo như hoại tử (necrosis), nếu phát hiện sớm có thể trị bệnh có hiệu quả. Trị bệnh bằng Sunfat đồng (CuSO4) với nồng độ 0,15 - 0,25ppm trong 24h.
Bệnh hoại tử (necrosis)
Bệnh hoại tử có 2 dạng: Vi khuẩn ăn mòn các phần phụ hoặc các phần phụ bị chết (chẳng hạn như hoại tử các nhánh chân bụng). Trong 2 dạng nhiễm bệnh trên, dạng thứ 2 khó trị hơn. Nếu phát hiện sớm có thể điều trị có hiệu quả bằng cách sử dụng, hay Oxytetracylin 5 - 10ppm, hay Furazon 2-3ppm, trị liên tiếp 3 ngày sẽ khỏi. Nếu phát hiện chậm, tỷ lệ sống PL5 sẽ thấp. Nguyên nhân gây bệnh chủ yếu là do môi trường không thuận lợi.
Bệnh Vibrio phát sáng (Luminescent vibriosis)
Bệnh phát sáng trên tôm, thường xảy ra trong tất cả các giai đoạn.
Cần phân biệt rõ sự phát triển trên tôm. Nếu trong bể tôm có các đốm sáng lớn trên những con tôm chết, đó là do các tập đoàn Coccobacilli tấn công vào các con gây chết phát sáng, thì hiện tượng lâm sàng này không quan trọng.
Khi nước biển xử lý không tốt sẽ thường gặp hiện tượng này. Nếu phát sáng trên các con sống, đốm sáng rất nhỏ và nhiều trên phần cơ thịt của tôm thì đó là bệnh Vibrio harveyi và Vibrio splendidus gây nên.
Do bản thân các loại Vibrio này có nguồn gốc từ nước biển nên việc phòng bệnh sẽ thông qua việc xử lý thật kỹ nguồn nước nuôi.
Bệnh do nguyên sinh động vật (Protozoea)
Bệnh này do một số loài nguyên sinh động vật như Zoothammium, Apistylis, Vorticella, Acineta... chúng bám vào mắt, mang, các phần phụ của tôm,.. làm cho tôm yếu, bơi lội kém, kén ăn và di chuyển khó khăn rồi chết.
Nguyên nhân sinh bệnh chủ yếu do chăm sóc kém, làm cho môi trường nuôi bị xấu, hàm lượng các chất hữu cơ trong bể cao, tạo điều kiện thuận lợi cho nguyên sinh động vật phát triển.
Điều trị bằng Chloroquin disphosphate 1.1ppm liên tục trong 2 ngày, hay tắm Formaline 25 - 30 ppm trong 15 - 20 phút. Để phòng trừ bệnh này phương pháp chủ yếu vẫn là biện pháp quản lý môi trường nuôi tốt.
3.1.3.6. Kết quả sản xuất tôm giống tại trại giống của Công ty Huy Thuận.
Bảng 3.1.3.6. Hiệu quả sản xuất giống qua các năm tại Công ty Huy Thuận
Năm
Chỉ tiêu
2006 2007 2008 2009
Số lượng bể ấu trùng (bể) 80 100 140 140
Sản lượng Postlarvae (triệu con) 135 168 193 245 Sản lượng Postlarvae của tỉnh Bến tre (triệu
con) 314 430 398 500
Tỷ lệ sản lượng so với toàn tỉnh (%) 43 39,1 48,5 49 Qua bảng trên cho thấy, trong 4 năm từ 2006 - 2009, số lượng bể nuôi ấu trùng và sản lượng postlarvae của Công ty có xu hướng tăng theo thời gian. Sản lượng postlarvae tăng nhanh đạt gần 50% sản lượng Postlarvae của tỉnh Bến tre. Điều này chứng tỏ, sản lượng Postlarvae của công ty sản xuất hàng năm là rất lớn và có vai trò quan trọng trong quá trình sản xuất tôm giống tại chỗ nhằ đáp ứng nhu cầu phát triển bền vững nghề nuôi tôm của địa phương. Tuy nhiên so với tổng lượng Postlarvae cần cung ứng cho người nuôi là còn hạn chế. Vì vậy, trong thời gian tới, Công ty cần có kế hoạch mở rộng trại sản xuất và nâng cao chất lượng giống nhằm đáp ứng đủ nhu cầu cho thị trường trong tỉnh và có thể cung cấp giống cho các tỉnh lân cận tại đồng bằng sông Cửu Long.
3.2. Các nhân tốảnh hưởng đến chất lượng sinh sản của tôm mẹ tại Công ty Huy Thuận Thuận
Đối với một cơ sở sản xuất giống thủy sản nói chung và tôm sú giống nói riêng, hiệu quả sản xuất kinh doanh phụ thuộc vào rất nhiều yếu tố khách quan lẫn chủ quan, cả về điều kiện tự nhiên lẫn điều kiện kinh tế xã hội của địa phương; cả về quản lý kinh tế lẫn quản lý kỹ thuật. Tuy nhiên, xuất phát điểm của sự thành bại của các cơ sở này trước hết là đàn tôm cá bố mẹ. Vì vậy, điểm mấu chốt mà mọi cơ sở sản xuất giống cần quan tâm là xây dựng được đàn bố mẹ đầy đủ về số lượng, đảm bảo về chất lượng phục vụ cho quá trình sản xuất của mình.
Racotta et al. (2003) cho rằng việc dùng tôm bố mẹ gia hóa đang có xu hướng gia tăng do những ưu điểm so với tôm hoang dại như an toàn sinh thái và vệ sinh, tính tiện lợi của chương trình cải tiến di truyền và tính khả dụng quanh năm [5]. Trên thế giới đã có những chương trình gia hóa tôm sú trên thế giới như ở Tahiti, Pháp, Polynesia, Philippin, Thái Lan, Nhật Bản, Malaysia,… và cả Việt Nam [49]. Theo
Hoàng Tùng (2003), ở nước ta một số nghiên cứu sử dụng tôm bố mẹ nhân tạo trong sản xuất của Viện Hải dương học, Trung tâm Nghiên cứu Thủy sản 3, Viện Hải sản Hải Phòng, Đại học Thủy sản và Trung tâm khuyến ngư Ninh Thuận. Kết quả theo báo cáo là khả quan nhưng việc ứng dụng các nghiên cứu này vào sản xuất còn rất hạn chế [9], các trại sản xuất tôm giống Việt Nam nói chung và Công ty Huy Thuận nói riêng vẫn dựa vào nguồn tôm mẹ tự nhiên đánh bắt từ biển và trong các đầm nuôi tôm quảng canh.
Vì vậy, trước khi tiến hành các nghiên cứu về tình hình cảm nhiễm MBV và biện pháp khắc phục trên đàn tôm giống tại công ty, đề tài này đã xem xét hiệu quả sinh sản và các nhân tố ảnh hưởng đến hiệu quả sinh sản của tôm bố mẹ để từ đó có thể xây dựng các chỉ tiêu lựa chọn tôm bố mẹ chất lượng tốt phục vụ sản xuất và phù hợp với điều kiện thực tế của cơ sở. Các tiêu chí đánh giá chất lượng sinh sản tôm mẹ bao gồm: sức sinh sản tuyệt đối, sức sinh sản tương đối, và tỷ lệ nở của trứng do từng cá thể tham gia đẻ trứng trong thời gian nghiên cứu tại công ty.
3.2.1. Quan hệ giữa nguồn gốc với chất lượng sinh sản của tôm mẹ
Trong thời gian từ tháng 06 năm 2008 đến tháng 05 năm 2009, đề tài đã theo dõi kết quả sinh sản của 67 tôm mẹ đánh bắt tại vùng biển Tây Nam Bộ được thu gom về Rạch Gốc (Cà Mau) và 61 tôm mẹ đánh bắt từ các đầm nuôi quảng canh tại Cà Mau. Kết quả so sánh chất lượng sinh sản của hai nhóm tôm mẹ có nguồn gốc khai thác tự nhiên khác nhau này được trình bày tại bảng 3.2.1.
Bảng 3.2.1: Ảnh hưởng của nguồn gốc đến hiệu quả sinh sản của tôm mẹ tại Công ty Huy Thuận
Nguồn gốc tôm mẹ
Chỉ tiêu Đơn vị
Biển khơi Đầm nuôi quảng canh
Số lượng tôm mẹ con 67 61
Khối lượng thân (BW) g 358,40a±4,65 120,78b±5,48
Chiều dài thân (L) cm 33,07a±0,23 21,53b±0,30
Tỷ lệ L/BW - 10,8144a ±0,08 5,5907b±0,18
Sức sinh sản tuyệt đối 106trứng/con 3,862a±0,195 0,579b±0,072 Sức sinh sản tương đối 103trứng/g 10,6976a±0,51 4,7667b±0,50
Tỷ lệ trứng nở % 89,47a±0,60 66,17b±4,16
Ghi chú: Số liệu trình bày trong bảng là giá trị trung bình ± sai số chuẩn. Số liệu cùng hàng có các chữ số mũ khác nhau thể hiện sai khác có ý nghĩa thống kê (p< 0,05).
Kết quả tổng hợp tại Bảng 3.2.1 cho thấy, có sự sai khác có ý nghĩa giữa hai nhóm tôm mẹ đánh bắt từ biển và từ đầm nuôi quảng canh về kích thước, sức sinh sản và tỷ lệ nở của trứng. Chất lượng sinh sản của nhóm tôm biển cao hơn hẳn so với tôm mẹ thành thục trong đầm nuôi quảng canh.
Theo kỹ sư Trình Văn Liễn, người có nhiều năm kinh nghiệm về sản xuất tôm giống nhân tạo thuộc Trường Đại học Nha Trang, do giá tôm mẹ có nguồn gốc tự nhiên cao, nhiều trại sản xuất đã sử dụng tôm có nguồn gốc nuôi đầm làm tôm bố mẹ nhưng hiệu quả không cao. Hoàng Tùng (2003) cho rằng một trong những nguyên nhân chủ yếu dẫn đến thất bại của các chương trình gia hóa tôm sú được triển khai là khả năng sinh sản kém, tỷ lệ phát dục và đẻ trứng, tỷ lệ nở, sức chịu đựng của ấu trùng đều rất thấp và không ổn định [9]. Có thể trong điều kiện nuôi nhốt, tôm trưởng thành không được cung cấp đầy đủ các dưỡng chất thiết yếu đảm bảo cho quá trình phát dục thành thục, hệ quả là sức sinh sản và chất lượng sản phẩm sinh dục của tôm thấp hơn nhiều so với tôm sống trong tự nhiên có thể chủ động lựa chọn sinh cảnh và các nguồn dưỡng chất phù hợp hơn.
Tuy hiệu quả sinh sản của tôm mẹ từ đầm nuôi quảng canh thấp hơn tôm biển nhưng đây là nguồn tôm mẹ quan trọng phục vụ nhu cầu sản xuất tôm giống ở Việt