hỗn hợp chủng VNC1, VNY3 Mật độ tế bào của hai chủng VNC1, VNC53 tăng khá song song với nhau. Chủng VNC1, trong 5 giờ đầu, phát triển rất mạnh, mật độ tăng từ 1,19x106 đến 1,05x108(CFU/ml), sau đó tăng chậm trong 2 giờ tiếp theo và đạt tới mật độ 1,43x109 (CFU/ml) ở cuối giai đoạn lên men. Tƣơng tự, mật độ tế bào chủng VNC53 tăng nhanh từ 1,11x106 đến 1x108 (CFU/ml) trong 5 giờ đầu và tăng chậm trong 2 giờ tiếp theo. Kết thúc giai đoạn lên men, mật độ chủng VNC53 đạt
8,36x108 CFU/ml. Nhƣ vậy, sự kết hợp của 2 chủng với vai trị là giống khởi động cho q trình lên men sữa, khơng tạo ra sự cạnh tranh giữa hai chủng.
Theo sự tăng về mật độ tế bào 2 chủng VNC1, VNC53 trong quá trình lên men, giá trị pH và độ axit của mẫu phomat cũng thay đổi. Dịch sữa lên men có giá trị pH cao và độ axit thấp trong 4 giờ đầu quá trình lên men, giai đoạn tiếp theo 5 – 7 giờ, sự thay đổi pH và độ axit của sữa diễn ra một cách rõ ràng, pH giảm từ 5,9 – 4,80, độ axit tăng 0,19 – 0,44, thời gian đông tụ là 7 giờ.
Với tỷ lệ tiếp giống ban đầu của hỗn hợp VNC1/VNC53 là 1,19x106 và 1,11x106 CFU/ml, sữa đông tụ sau 7 giờ. Kết quả này nhanh hơn so với thí nghiệm trƣớc đó với tỷ lệ 1,26x106
/ 2,06x106 CFU/ml (thời gian đông tụ 9h30phút). Điều này có thể là do tần suất sử dụng tủ nuôi cấy 30oC lớn, tủ đƣợc mở ra nhiều, nhiệt độ trong tủ bị ảnh hƣởng từ nhiệt độ phịng (36- 37oC). Do đó, q trình lên men có thể đã diễn ra nhanh hơn khi ở nhiệt độ cao hơn 30oC.
Đặc tính động học của hỗn hợp VNC 1/VNY3: trong 2 giờ đầu cả hai chủng đều phát triển chậm, mật độ tế bào chủng VNY3 tăng không nhiều, đạt 2x106
CFU/ml ở giờ thứ 2. Sau đó, mật độ tế bào của cả hai chủng tăng lên nhanh chóng trong giai đoạn từ 2 – 8 giờ. Cuối giai đoạn lên men, mật độ tế bào của chủng VNC1 và VNY3 tƣơng ứng đạt 1,31x109
và 6,95x108 CFU/ml. pH của sữa hầu nhƣ không thay đổi nhiều trong 6 giờ đầu, nhƣng 2 giờ sau đó, có sự tăng đáng kể về độ axit của sữa từ 0,391 đến 0,711 mmol/100g. Điều này có thể đƣợc giải thích là do 6 giờ đầu là khoảng thời gian cần cho sinh trƣởng của chủng giống, nên chƣa tích tụ nhiều axit lactic ra mơi trƣờng.
3.3.5. Đặc tính của phomat làm từ hỗn hợp chủng
Kết thúc quá trình lên men tiến hành các bƣớc cần thiết tạo sản phẩm phomat tƣơi. Mẫu phomat đƣợc đánh giá cảm quan, kiểm tra hoạt tính chống oxy hóa và hàm lƣợng exopolysaccharide. Kết quả đƣợc thể hiê ̣n ta ̣i Bảng 3.13.
Hàm lƣợng EPS của mẫu phomat đƣợc làm từ hỗn hợp chủng VNC1/VNC53 đạt 99,15(mg/l). Hàm lƣợng EPS của mẫu phomat làm từ hỗn hợp chủng
VNC1/VNY3 đạt 155,13 (mg/l). Kết quả này cao hơn so với mẫu phomat làm từ hỗn hợp chủng Lactococcus lactis. subsp. cremoris M11 và Streptococcus thermophilus
T21 101,91 (mg) [13]. Hàm lƣợng EPS ảnh hƣởng đến cấu trúc mịn và độ đàn hồi của phomat, ở một số quốc gia việc bổ sung chất ổn định bị yêu cầu rất khắt khe, vì thế việc chủng giống có khả năng thay thế tác dụng của chất ổn định đƣợc đánh giá rất cao.
Bảng 3.13. Đặc tính của sữa lên men bởi hỗn hợp chủng Chủng khởi Chủng khởi
động pH Độ axit
Độ ẩm
(%) Cảm quan
VNC1/VNC53 4,8 0,44 56,82 Màu trắng ngà, thơm mùi bơ, sữa, mềm, vị chua dịu
VNC1/VNY3 4,38 0,711 60,58
Mẫu màu trắng ngà, có mùi thơm của bơ, kem, vị chua vừa, ngậy, vị
mặn hài hòa, cấu trúc mềm, mịn
Hoạt tính chống oxy hóa của phomat làm từ hỗn hợp chủng ƣa ấm VNC1/VNC53 và kết hợp ƣa ấm và ƣa nhiệt VNC 1/VNY3 theo phƣơng pháp DPPH có hiê ̣u quả bắt gốc tƣ̣ do lần lƣợt là 68,59 và 84,87% cao hơn so với phomat làm bởi chủng ƣa ấm Lactococcus lactis. subsp. cremoris M11 58,13%, cao hơn so
với mẫu phomat sử dụng hỗn hợp chủng Lactococcus lactis. subsp. cremoris M11 và
Streptococcus thermophilus T21 71,3% [13]. Các gốc tự do có thể đƣợc hình thành từ
hoạt động của các quá trình trao đổi chất hoặc có trong thực phẩm, khi tồn tại trong cơ thể có thể gây ra sự oxy hóa các phân tử sinh học, làm chết tế bào hoặc tổn thƣơng mô. Theo Halliwell và cs., (1984) [30], các bệnh ung thƣ, xơ gan, xơ vữa động mạch, viêm khớp có mối tƣơng quan với sự oxy hóa mà các gốc tự do gây ra.
KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ Kết luận
1. Đã tuyển cho ̣n đƣơ ̣c 3 chủng VNC1, VNC53, VNY3 có đặc điểm cần thiết của giống khởi đô ̣ng cho sản xuất phomat:
Đặc điểm chủng VNC 1, VNC53: ƣa ấm , lên men đồng hình , dải nhiệt độ sinh trƣởng từ 15-37oC, chủn hóa đƣợc citrate , thờ i gian đơng tu ̣ sƣ̃a nhanh từ 8-10h. Sử dụng tốt các nguồn đƣờng galactose, glucose, fructose, mannose, maltose, lactose, N-Acetyl-Glucosamine, cellobiose, trehalose, gentiobiose. Các enzym có hoạt tính mạnh: axit phosphatase và leucine arylamidase, có khả năng tạo EPS trong mơi trƣờng sƣ̃a lần lƣợt là 129,47 mg/l và 101,82 mg/l.
Đặc điểm chủng VNY 3: ƣa nhiê ̣t , dải nhiệt độ sinh trƣởng từ 28-45o
C, lên men đồng hình , không chuyển hóa đƣợc citrate , thời gian đông tu ̣ sƣ̃a nhanh tƣ̀ 6- 7h. Sử dụng tốt các loại đƣờng: glucose, lactose. Các enzym có hoạt tính mạnh: leucine arylamidase và β-galactosidase, có khả năng tạo EPS trong môi trƣờ ng sƣ̃a là 68,50 mg/l.
2. Đã xây dựng hồ sơ chủng giống cho 3 chủng vi khuẩn lên men phomat
Streptococcus thermophilus VNY3, Lactococcus lactis subsp. lactis VNC1, và
Lactococcus lactis subsp. cremoris VNC53.
3. Đã cho ̣n ra đƣơ ̣c hai sƣ̣ kết hơ ̣p tối ƣu các chủng ấm VNC 1/VNC53 và các chủng ƣa ấm và ƣa nhiê ̣t VNC1/VNY3 để ứng dụng trong sản xuất phomat tƣơi với mật độ tế bào tiếp giống 106:106 CFU/ml.
Kiến nghị
1. Tiến hành thí nghiệm phân tích hƣơng với mẫu phomat lên men từ hỗn hợp chủng để có kết quả cảm quan chính xác hơn.
2. Có thể tiến hành chọn lọc các tỷ lệ tiếp giống khác với các mật độ tế bào thấp hơn để lên men phomat đạt lợi ích kinh tế cao mà vẫn đảm bảo các ƣu điểm vốn có của bộ chủng giống kết hợp.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Tiếng Việt
1. Nguyễn La Anh, Đặng Thu Hƣơng, Dƣơng Văn Khải, Quách Thị Việt (2013), “Hợp tác nghiên cứu công nghệ sản xuất thực phẩm chức năng từ vi khuẩn probiotics”, Đề tài nghị định thư với Thái Lan.
2. Nguyễn La Anh, Đặng Thu Hƣơng, Dƣơng Văn Khải (2010), “Báo cáo đề tài nhánh: Nghiên cứu công nghệ sản xuất chế phẩm lactic dùng cho tôm chua”, Đề tài cấp nhà nước KC 07, 12/06-10, 51tr.
3. Nguyễn La Anh , Đinh Mỹ Hằng , Vũ Quỳnh Hƣơng , Nguyễn Hƣơng Giang, Nguyễn Thi ̣ Lô ̣c (2003), “Đặc điểm chủng vi khuẩn Lactobacillus plantarum có ƣ́ng du ̣ng trong công nghê ̣ sản xuất nƣớc CVAS ”, Tuyển tập báo cáo tại Hội nghị Cơng nghệ Sinh học tồn quốc năm 2003, pp. 159-
161.
4. Công ty Cổ phần chứng khốn Bảo Việt (2009), Báo cáo phân tích cơng ty
cổ phần sữa Việt Nam – Vinamilk, Hà Nội.
5. Cơng ty Cổ phần Phân tích và Dự báo thị trƣờng Việt Nam (2010), Chuyên đề thị trường sữa 2010, Hà Nội.
6. Nguyễn Thi ̣ Hồng Hà , Lê Thiên Minh, Nguyễn Thùy Châu (2003), “Nghiên cƣ́u công nghê ̣ sản xuất chế phẩm vi khuẩn lactic probiotic ”, Tuyển tập báo cáo tại Hội nghị Cơng nghệ Sinh học tồn quốc năm 2003, pp. 251-
255.
7. Nguyễn Hoài Hƣơng, Dƣơng Thúy Vy, Trần Linh Châu, Đoàn Kim Nhƣ (2011), “Phân lập tuyển chọn vi khuẩn lactic từ nem chua truyền thống làm giống khởi động nem chua probiotic”, Kỷ yếu hội nghị Khoa học Môi
trường và Công nghệ sinh học năm 2011, pp. 149-155.
8. Trần Thị Ngọc Mai (2010), “Nghiên cứu ổn định giống Kefir cho sản xuất sữa chua”, Kỷ yếu Hội nghị Khoa học và Công nghệ lần thứ 1 ISS_ HUTECH, pp. 507 - 514.
9. Lê Thị Liên Thanh, Lê Văn Hồng (2002), Cơng nghệ chế biến sữa và các sản phẩm từ sữa, Nhà xuất bản Khoa học và kỹ thuật, Hà Nội.
10. Lâm Xuân Thanh (2002), Giáo trình cơng nghệ chế biến sữa và các sản phẩm từ sữa, Nhà xuất bản Khoa học và kỹ thuật, Hà Nội.
11. Ngân hàng TMCP Việt Nam Thịnh Vƣợng (2014), Báo cáo ngành thực phẩm và đồ uống Việt Nam, Hà Nội.
12. Tiêu chuẩn quốc gia TCVN 9633:2013 ISO 27205:2010 (2013), Sản phẩm sữa lên men – Giống vi khuẩn khởi động – Tiêu chuẩn nhận dạng.
13. Đinh Huy Sơn (2014), Nghiên cứu tuyển chọn chủng giống khởi động cho lên men pho mát, Luận văn tốt nghiệp cao học ngành Vi sinh vật học,
Trƣờng Đại học khoa học tự nhiên, Hà Nội.
Tiếng Anh
14. Atasoy, A.F. (2007), “Determination of pH change kinetics during different stages of Kashar Cheese manufacturing from raw and pasteurized milk with addition of Thermophilic, Mesophilic and mix Thermophilic culture”, Sanliurfa Vocational High School Department of Food Technology Harran University 63010, Sanliurfa, Turkey
15. Bassyouni, R.H., Walla S. Abdel-all, Mostafa G. Fadl, Saed Abdel-all and Zeinat kamel (2012), “Characterization of Lactic Acid Bacteria Isolated from Dairy Products in Egypt as a Probiotic”, Life Science Journal, 9(4), pp. 2924 – 2933.
16. Bulut, C. (2003), Isolation and molecular characterization of lactic acid bacteria from cheese, Izmir Institute of Technology, Turkey.
17. Carroll, R. (2002), Home Cheese Making Recipes for 75 Home made Cheese, 3rd Edition, Kindle Edition.
18. Christensen J.E., Dudley E.G., Pederson J.A., and Steele J.L. (1999), “Peptidases and aminoacid catabolism in lactic acid bacteria”. Ant. Leeuwenhoek, 76, pp. 217–246.
19. Cogan T. M., Barbosa M., Beuvier e., Branchi-Salvodari B., Cocconcelli P.S., FernandesbI., Gomez J., Gomez R., Kalantzopoulos G., Ledda A., Medina M., Rea M C: and Rodriguez E. (1997), “Characterization of the lactic acid bacteria in artisanal dairy products”, International of Dairy Research, 64, pp. 409 – 421.
(2009), Microbiological risk assessment of raw milk cheeses. Food
Standards Australia, New Zealand.
21. Dias B. and Weimer B. (1998), “Conversion of methionine to thiols by lactococci, lactobacilli and brevibacteria”, Applied and Environmental Microbiology, 64, pp. 3320 - 3326.
22. Degraeve P., Martial-Gros A. (2003), “Purification and partial characterisation of X-prolyl dipeptidyl aminopeptidase of Lactobacillus helveticus ITG LH1”, International Dairy Journal, 13(7),
pp. 497-507.
23. Dubois M., K. Gillie s, I. Hamilton, P. Peters and E. Smith (1956), “Colometric method for determination of sugars and related substances”,
Analytical Chemistry, 28, pp. 350 - 356.
24. Dudley E.G and J.L Steele (2005), “Succinate production and citrate calabolism by Cheddar cheese nonstarter lactocilli”. Journal of Applied
Microbiology, 98, pp. 14 – 23.
25. Fellows, P. (2008), Cheese making, Practical Action, United Kingdom.
26. Fernandes, R. (2008), Microbiology handbook dairy products, Biddles Ltd.,
United Kingdom.
27. Frengovaa, G.I., Emilina D. Simovaa, Dora M. Beshkovaa and Zhelyasko I. Simov (2002), “Exopolysaccharides produced by lactic acid bacteria of Kefir grains”, Z. Naturforsch, 57c, p. 805 - 810.
28. Fox, P.F., Paul L.H. McSweeney, Timothy M. Cogan and Timothy P. Guinee (2004), Cheese Chemistry, Physics and Microbiology, Volume 1 General
Aspects, Elsevier Ltd., United Kingdom.
29. Fox P. F. and Paul L.H. McSweeney (1998), Dairy chemistry and biochemistry, Great Britain.
30. Halliwell B., Gutteridge JMC. (1984), “Oxygen toxicity, oxygen radicals, transition metals and disease”, Biochemical Juornal, (219): 1 – 4.
31. Hassan, F.A.M., Mona A.M. Abd El – Gawad, A.K. Enab (2013). “Flavour Compounds in Cheese (Review)”. Research on Precision Instrument and
Machinery, 2, pp. 15 – 29.
32. Garrault, P., J. M. Faurie, J. Mengaud, A. Druesne, and G. Quere-Chassang. (2006), “Souche de Streptococcus thermophilus AMI déficiente à post-
acidification réduite”, Intl. Pat. No. PCT/EP2005/055443, International Publ. No. WO 2006/042862 A1.
33. Garvie E.I. (1984), “Taxonomy and Identification of Bacteria Important in Cheese and Fermented Dairy Products”, Advances in The Microbiology and Biochemistry of Cheese and Fermented Milk, pp. 35 - 67.
34. Gelais D. St-, J. Lessard, C. P. Champagne and J.- C. Vuillemard (2009), “Production of fresh Cheddar cheese curds with controlled postacidification and enhanced flavor”, Journal of Dairy Science, 92, pp. 1856-1863.
35. Kempler G.M. and L.L. McKay (1980), “Improved medium for detection of citrate – fermenting Streptococcus lactics subsp. Deacetylactis”, Applied and Environmental Microbiology 39 (4): pp. 926
36. Lahtinen, S., Seppo Salminen, Atte von Wright, Arthur Ouwehand (2011),
Lactic acid bacteria: microbiological and functional aspects, CRC Press.
37. Lees G.J. and Jago G.R. (1976), “Formation of acetaldehyde from threonine by lactic acid bacteria”, Journal of Dairy Research, 43, pp. 75 – 83. 38. Lindner, Juliano D.D. (2008), Traditional and innovative approaches to
evaluate microbial contribution in long ripened fermented foods: the case of Parmigiano Reggiano cheese, University of Parma, Italia.
39. Ling W.H., M. Saxelin, O. Hanninens and S. Salminen (1994), “Enzyme Profile of Lactobacillus Strain GG by a Rapid API ZYM System: A
Comparison of Intestinal Bacterial Strains, Microbial ecology in health and disease, 7, pp. 99-104.
40. Lopez-Diaz T.M., Alonso C.,Roman, C. Garcia-Lopez M.L., and Moreno, B. (2000), “Lactic acid bacteria isolated from a hand-made blue cheese”,
Food Microbiology, 17, pp. 23 - 32.
41. McSweeney, Paul L.H. (2004), “Biochemistry of cheese ripening”,
International Journal of Dairy Technology, 57, pp. 127 – 144.
42. Paul L.H.McSweeney (2000), “Biochemical pathways for the production of flavour compounds in cheeses during ripening: Areview”, INRA, EDP
Sciences, Lait 80, pp. 293 - 324.
43. Noni, I.D, Richard J. FitzGerald, Hannu J. T. Korhonen, Yves Le Roux, Chris T. Livesey, Inga Thorsdottir, Daniel Tomé, Renger Witkamp
related peptides”, EFSA Scientific Report, 231, pp. 1-107.
44. Oberg, C. J., and J. R. Broadbent (1993), “Thermophilic starter cultures - Another set of problems”, J. Dairy Sci. (76): 2392–2406.
45. Okuklu, B. (2005). Investigation of chromosomal and plasmid DNA profiles
of Lactococcus lactis ssp. Lactis, Izmir Institute of Technology, Turkey.
46. Puchades R. Lemieux L., Simard R.E (1989), “Evolution of free amino acids during ripening of Cheddar cheese containing added lactobacilli strains”,
Journal of Food Science and Technology, 54, 885 – 888.
47. Quintans N. G., Blancato V., Repizo G., Magni C. and Paloma López P. (2008), “Molecular aspects of lactic acid bacteria for traditional and new application”, Applied Microbiology and Biotechnology, (51): 422 – 430. 48. Rimada, Pablo S. and Analía G. Abraham (2003), “Comparative study of
different ethodologies to determine the exopolysaccharide produced by kefir grains in milk and whey”, Lait, 83, pp. 79 - 87.
49. Ross, R.P., Stanton, C., Hill, C., Fitzgerald, G.F. and Coffey, A. (2000), “Novel Cultures for cheese improvement”, Trends in Foood Science and Technology, 11, pp. 96 -104.
50. Savadogo, A., Cheik A. T. Ouattara, Paul W. Savadogo, Nicolas Barro, Aboubacar S. Ouattara, Alfred S. Traoré (2004), “Identification of exopolysaccharides - producing lactic acid bacteria from Burkina Faso fermented milk samples”, African Journal of Biotechnology, 3(3),
pp. 189-194.
51. Sgarbi, E. (2012), Non stater lactic acid bacteria during cheese ripening:
survival, growth and production of molecules potentially involved in aroma formation, University of Parma, Italia.
52. Smit G. and W.J.M Engels (2005), “Flavour formation by lactic acid bacteria and biochemical flavour profiling of cheese products”, FEMS Microbiology Review, 29, pp. 591 – 610.
53. Tison, W., M. F. Ratcliff, A. J. Hillier, and G. R. Jago. (1982), “Metabolism of Streptococcus thermophilus. III. Influence of the level of bacterial
metabolites in Cheddar cheese”. Aust. J. Dairy Technol. (37):17–21. 54. Wallace J.M. and P.F Fox (1997), "Effect of adding free amino acids to
cheddar cheese curd on proteolysis, flavour and texture development”, .International Journal of Dairy Technology, 7, pp. 157 – 167.
55. Walstra, P.; Jan T.M. Wouters, Tom J. Geurts (2006), Dairy Science and Technology, Second Edition, Taylor and Francis Group, USA
56. Winn, W.C., Elmer William Koneman (2006), Koneman's Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology, Lippincott Williams & Wilkins,
Philadelphia.
57. Yvon, M., and Rijnen, L. (2001), “Cheese flavor formation by amino acid catabolism”, International Dairy Journal, 11, pp. 185-201.
Tài liệu Website
58. www.healthyeating.org 59. www.ctahr.hawaii.edu 60. http://www.fao.org 61. www.blmedien.de 62. http://www.customs.gov.vn/ 63. www.eufic.org 64. http://www.dairyscience.info/index.php/cheese-starters/49-cheese- starters.html
PHỤ LỤC
Các trình tự 16S rADN của các chủng vi khuẩn lactic VNC53, VNC1, VNY3
>VNC53 (100% tƣơng đồng Lactococcus lactis. subsp. cremoris)
GACGAACGCTGGCGGCGTGCCTAATACATGCAAGTTGAGCGATGAAGATTGGTGCTTGCA CCAATTTGAAGAGCAGCGAACGGGTGAGTAACGCGTGGGGAATCTGCCTTTGAGCGGGGG ACAACATTTGGAAACGAATGCTAATACCGCATAACAACTTTAAACATAAGTTTTAAGTTT GAAAGATGCAATTGCATCACTCAAAGATGATCCCGCGTTGTATTAGCTAGTTGGTGAGGT AAAGGCTCACCAAGGCGATGATACATAGCCGACCTGAGAGGGTGATCGGCCACATTGGGA CTGAGACACGGCCCAAACTCCTACGGGAGGCAGCAGTAGGGAATCTTCGGCAATGGACGA AAGTCTGACCGAGCAACGCCGCGTGAGTGAAGAAGGTTTTCGGATCGTAAAACTCTGTTG GTAGAGAAGAACGTTGGTGAGAGTGGAAAGCTCATCAAGTGACGGTAACTACCCAGAAAG GGACGGCTAACTACGTGCCAGCAGCCGCGGTAATACGTAGGTCCCGAGCGTTGTCCGGAT TTATTGGGCGTAAAGCGAGCGCAGGTGGTTTATTAAGTCTGGTGTAAAAGGCAGTGGCTC AACCATTGTATGCATTGGAAACTGGTAGACTTGAGTGCAGGAGAGGAGAGTGGAATTCCA TGTGTAGCGGTGAAATGCGTAGATATATGGAGGAACACCGGTGGCGAAAGCGGCTCTCTG GCCTGTAACTGACACTGAGGCTCGAAAGCGTGGGGAGCAAACAGGATTAGATACCCTGGT AGTCCACGCCGTAAACGATGAGTGCTAGATGTAGGGAGCTATAAGTTCTCTGTATCGCAG CTAACGCAATAAGCACTCCGCCTGGGGAGTACGACCGCAAGGTTGAAACTCAAAGGAATT GACGGGGGCCCGCACAAGCGGTGGAGCATGTGGTTTAATTCGAAGCAACGCGAAGAACCT TACCAGGTCTTGACATACTCGTGCTATTCCTAGAGATAGGAAGTTCCTTCGGGACACGGG ATACAGGTGGTGCATGGTTGTCGTCAGCTCGTGTCGTGAGATGTTGGGTTAAGTCCCGCA ACGAGCGCAACCCCTATTGTTAGTTGCCATCATTAAGTTGGGCACTCTAACGAGACTGCC GGTGATAAACCGGAGGAAGGTGGGGATGACGTCAAATCATCATGCCCCTTATGACCTGGG CTACACACGTGCTACAATGGATGGTACAACGAGTCGCGAGACAGTGATGTTTAGCTAATC
> VNC1 (100% tƣơng đồng Lactococcus lactis subsp. lactis )
GGTTGGTACTTGTACCAACTGGATGAGCAGCGAACGGGTGAGTAACGCGTGGGGAATCTG CCTTTGAGCGGGGGACAACATTTGGAAACGAATGCTAATACCGCATAAAAACTTTAAACA CAAGTTTTAAGTTTGAAAGATGCAATTGCATCACTCAAAGATGATCCCGCGTTGTATTAG CTAGTTGGTGAGGTAAAGGCTCACCAAGGCGATGATACATAGCCGACCTGAGAGGGTGAT CGGCCACATTGGGACTGAGACACGGCCCAAACTCCTACGGGAGGCAGCAGTAGGGAATCT TCGGCAATGGACGAAAGTCTGACCGAGCAACGCCGCGTGAGTGAAGAAGGTTTTCGGATC GTAAAACTCTGTTGGTAGAGAAGAACGTTGGTGAGAGTGGAAAGCTCATCAAGTGACGGT AACTACCCAGAAAGGGACGGCTAACTACGTGCCAGCAGCCGCGGTAATACGTAGGTCCCG AGCGTTGTCCGGATTTATTGGGCGTAAAGCGAGCGCAGGTGGTTTATTAAGTCTGGTGTA AAAGGCAGTGGCTCAACCATTGTATGCATTGGAAACTGGTAGACTTGAGTGCAGGAGAGG AGAGTGGAATTCCATGTGTAGCGGTGAAATGCGTAGATATATGGAGGAACACCGGTGGCG AAAGCGGCTCTCTGGCCTGTAACTGACACTGAGGCTCGAAAGCGTGGGGAGCAAACAGGA TTAGATACCCTGGTAGTCCACGCCGTAAACGATGAGTGCTAGATGTAGGGAGCTATAAGT TCTCTGTATCGCAGCTAACGCAATAAGCACTCCGCCTGGGGAGTACGACCGCAAGGTTGA AACTCAAAGGAATTGACGGGGGCCCGCACAAGCGGTGGAGCATGTGGTTTAATTCGAAGC AACGCGAAGAACCTTACCAGGTCTTGACATACTCGTGCTATTCCTAGAGATAGGAAGTTC CTTCGGGACACGGGATACAGGTGGTGCATGGTTGTCGTCAGCTCGTGTCGTGAGATGTTG GGTTAAGTCCCGCAACGAGCGCAACCCCTATTGTTAGTTGCCATCATTAAGTTGGGCACT CTAACGAGACTGCCGGTGATAAACCGGAGGAAGGTGGGGATGACGTCAAATCATCATGCC CCTTATGACCTGGGCTACACACGTGCTACAATGGATGGTACAACGAGTCGCGAGACAGTG ATGTTTAGCTAATCTCTTAAAACCATTCTCAGTTCGGATTGTAGGCTGCAACTCGCCTAC ATGAAGTCGGAATCGCTAGTAATCGCGGATCAGCACGCCGCGGTGAATACGTTCCCGGGC
>VNY3 (100% tƣơng đồng Streptococcus thermophilus ) TGCAAGTAGAACGCTGAAGAGAGGAGCTTGCTCTTCTTGGATGAGTTGCGAACGGGTGAG TAACGCGTAGGTAACCTGCCTTGTAGCGGGGGATAACTATTGGAAACGATAGCTAATACC GCATAACAATGGATGACACATGTCATTTATTTGAAAGGGGCAATTGCTCCACTACAAGAT GGACCTGCGTTGTATTAGCTAGTAGGTGAGGTAATGGCTCACCTAGGCGACGATACATAG CCGACCTGAGAGGGTGATCGGCCACACTGGGACTGAGACACGGCCCAGACTCCTACGGGA GGCAGCAGTAGGGAATCTTCGGCAATGGGGGCAACCCTGACCGAGCAACGCCGCGTGAGT GAAGAAGGTTTTCGGATCGTAAAGCTCTGTTGTAAGTCAAGAACGGGTGTGAGAGTGGAA AGTTCACACTGTGACGGTAGCTTACCAGAAAGGGACGGCTAACTACGTGCCAGCAGCCGC GGTAATACGTAGGTCCCGAGCGTTGTCCGGATTTATTGGGCGTAAAGCGAGCGCAGGCGG TTTGATAAGTCTGAAGTTAAAGGCTGTGGCTCAACCATAGTTCGCTTTGGAAACTGTCAA ACTTGAGTGCAGAAGGGGAGAGTGGAATTCCATGTGTAGCGGTGAAATGCGTAGATATAT GGAGGAACACCGGTGGCGAAAGCGGCTCTCTGGTCTGTAACTGACGCTGAGGCTCGAAAG CGTGGGGAGCGAACAGGATTAGATACCCTGGTAGTCCACGCCGTAAACGATGAGTGCTAG GTGTTGGATCCTTTCCGGGATTCAGTGCCGCAGCTAACGCATTAAGCACTCCGCCTGGGG AGTACGACCGCAAGGTTGAAACTCAAAGGAATTGACGGGGGCCCGCACAAGCGGTGGAGC ATGTGGTTTAATTCGAAGCAACGCGAAGAACCTTACCAGGTCTTGACATCCCGATGCTAT TTCTAGAGATAGAAAGTTACTTCGGTACATCGGTGACAGGTGGTGCATGGTTGTCGTCAG CTCGTGTCGTGAGATGTTGGGTTAAGTCCCGCAACGAGCGCAACCCCTATTGTTAGTTGC CATCATTCAGTTGGGCACTCTAGCGAGACTGCCGGTAATAAACCGGAGGAAGGTGGGGAT GACGTCAAATCATCATGCCCCTTATGACCTGGGCTACACACGTGCTACAATGGTTGGTAC AACGAGTTGCGAGTCGGTGACGGCGAGCTAATCTCTTAAAGCCAATCTCAGTTCGGATTG TAGGCTGCAACTCGCCTACATGAAGTCGGAATCGCTAGTAATCGCGGATCAGCACGCCGC GGTGAATACGTTCCCGGGCCTTGTACACACCGCCCGTCACACCACGAGAGTTTGTAACAC CCGAAGTCGGTGAGGTAACCT
So sánh độ tƣơng đồng trình tự ADN 16S của chủng VNC53 với một số chủng khác