Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống
1
/ 21 trang
THÔNG TIN TÀI LIỆU
Thông tin cơ bản
Định dạng
Số trang
21
Dung lượng
638,17 KB
Nội dung
ẢNHHƯỞNGCỦAVIỆCBẢOQUẢNLẠNHĐÔNGĐẾNTÍNHCHẤTHÓAHỌCVÀTÍNHTẠOGELCỦACÁTRONGSẢNXUẤTSURIMIỞTHÁILAN Soottawat Benjakula,*, Wonnop Visessanguanb, Chutima Thongkaewa, Munehiko Tanakac Bộ môn Công nghệ Thực phẩm, Khoa Công Nông nghiệp, Đại học Prince of Songkla, Hat Yai, Songkhla 90112, Trung tâm Công nghệ di truyền công nghệ sinh học quốc gia Thái Lan, Cơ quan Khoa học Phát triển Công nghệ quốc gia, 113 Phaholyothin Road, Klong 1, Klong Luang, Pathumthani 12120 , Sở Khoa học Công nghệ thực phẩm Thái Lan, Đại học Thủy sản, Konan 4, Minato, Tokyo 108-8477, Nhật Bản Nhận ngày 13 Tháng 10 năm 2003; sửa đổi ngày 02 Tháng năm 2004; chấp nhận ngày 11 Tháng năm 2004 TÓM TẮT Ảnhhưởngbảoquảnlạnhđôngđếntínhtạogelcá sọc, cá vàng mắt to, cá mối cá đù -18 0C vòng tháng nghiên cứu Protein mô trải qua biến tính thể qua giảm liên tục Ca 2+-ATPase độ tan KCl 0,6M suốt trình bảoquản (P < 0.05) Cá mối tạo formaldehyde cao hơn, so với loài khác, dẫn đến nhiều protein bị biến tính thể qua giảm đáng kể độ hòa tan Quá trình oxy hóa lipid bảoquảnlạnh xảy với mức độ khác nhau, tùy thuộc vào loài Cả hai phá vỡ biến dạng gel surimi, sảnxuất từ cáđônglạnh giảm liên tục tăng thời gian bảoquảnđônglạnh (P < 0.05) Độ ẩm tăng lên, độ sáng giảm bảoquản lâu (P < 0.05) Sự suy giảm khả tạogel có liên quan với việc giảm Ca2+-ATPase chủ yếu hình thành formaldehyde Nghiên cứu cấu vi phát phần nhỏ mạng gelsurimi hình thành bảoquảnlạnh 2004 Elsevier Ltd Tất bảo lưu Từ khóa: Surimi; bảoquảnđông lạnh; biến tính; formaldehyde; khả tạogel GIỚI THIỆU Surimi protein sợi ổn định thu nhận phương pháp khoa học từ thịt cá không xương rửa với nước lạnhSurimi nguyên liệu tiềm cho nhiều sản phẩm, ngày trở nên phổ biến cấu trúc độc đáo giá trị dinh dưỡng cao (Park & Morrissey, 2000) Độ tươi cá coi nhân tố quantrọng định chất lượng surimi (Benjakul, Visessanguan, Riebroy, Ishizaki, & Tanaka, 2002; MacDonald, Lelièvre, & Wilson, 1990) Cá tươi đônglạnh thường sử dụng để sảnxuấtsurimi giới Do khai thác mức nguồn tài nguyên, ngư dân phải xa hơn, dẫn đến nguyên liệu có chất lượng thấp Nếu không xử lý sau đánh bắt cách, cá nhanh bị hư hỏng, kết hợp với suy giảm biến tính protein sợi Như là, tạosurimichất lượng (Benjakul et al, 2002; Benjakul, Visessangaun, & Tueksuban, 2003) Để giảm bớt hư hỏng gây vi sinh vật, đônglạnh biện pháp tốt để ngăn chặn biến đổi, nguyên nhân cho thoái biến protein Kết là, việc sử dụng tất biện pháp thực Tuy nhiên, protein sợi báo cáo phải trải qua biến tính trình bảoquảnlạnhlạnh đông, dẫn đến số chức protein, đặc biệt khả tạogel (Matsumoto, 1980; Sikorski, Olley, & Kostuch, 1976) Bảoquảnđônglạnh làm giảm khả tạogel protein từ Hoki, cá biển Alaska cá mối (Kurokawa, 1979; MacDonald, Lelièvre, & Wilson, 1992; Scott Porter, Kudo, Miller, & Koury, 1988) Mức formaldehyde cá sử dụng số suy giảm lưu trữ đônglạnh Protein sợi phản ứng với formaldehyde trở nên biến tính hình thành protein tổng hợp xảy Sự hình thành formaldehyde có liên quanđến giảm khả tạogel Hoki bảoquảnlạnhđông -290C (MacDonald et al.) Hơn nữa, trình oxy hóa lipid cábảoquảnlạnhđông cho thấy ảnhhưởng xấu đến cấu trúc chức protein (Saeed & Howell, 2002) TháiLan nước sảnxuấtsurimi Hầu hết cá thường sử dụng làm nguyên liệu để sảnxuấtsurimibao gồm cá vàng mắt to, cá sọc, cá mối, cá đù, vv Do thiếu cá tươi vịnh TháiLan Ấn Độ Dương, có quan tâm ngày tăng việc sử dụng cáđônglạnh nguyên liệu để sảnxuất surimi, trình chế biến không bị giới hạn thời gian sau đánh bắt Hơn nữa, cáđônglạnh sử dụng nguyên liệu tiềm quanh năm để sảnxuấtsurimi Cho đến nay, thông tin liên quanđếntínhchấtgelsurimisảnxuất từ cáđônglạnh nhiệt đới báo cáo Cuộc điều tra nhằm nghiên cứu tác độngbảoquảnlạnhđếntínhchấthóahọc khả tạogel bốn loài cá thường sử dụng để sảnxuấtsurimiTháiLan VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP 2.1 Chuẩn bị cáCábao gồm cá sọc (Nemipterus bleekeri), cá vàng (Priacanthus tayenus), cá mối (Sauruda icropectoralis) cá đù (Pennahai macrophthalmus) mua từ bến tàu Trang, TháiLanCá khoảng 36 - 48 sau đánh bắt, cá ướp đá vận chuyển với tỷ lệ cá/đá 1:2 (w/w) đến Cục Công nghệ Thực phẩm, Đại học Prince of Songkla, Hat Yai, TháiLanCá rửa để nước Sau cáđóng gói túi nhựa polyethylene với trọng lượng xấp xỉ kg Các mẫu đônglạnh khí lạnh giữ -18 0C với thời gian khác (0, 1, 2, 4, 6, 8, 10, 12, 16, 20 24 tuần) Đồng thời định, cáđônglạnh giải đông sử dụng nước sinh hoạt (25 - 260C), nhiệt độ đạt - 20C Phần thịt sau cắt từ vật mẫu để chuẩn bị phân tích hóa lý gelsurimi 2.2 Xác định hoạt tính Ca2+-ATPase Hoạt tính Ca2+-ATPase xác định phương pháp Benjakul, Seymour, Morrissey, An (1997) Actomyosin tự nhiên (NAM) chuẩn bị mô tả Benjakul et al 1997 pha loãng đến 2,5 - mg/ml với 0,6 M KCl, pH 7,0 Dung dịch NAM pha loãng (1 ml) thêm vào 0,6 ml dung dịch 0,5 M tris-maleat, pH 7,0 Hỗn hợp bổ sung dung dịch CaCl2 để thu 10 mM CaCl2 với tổng thể tích 9,5 ml Để kiểm nghiệm phương pháp, 0,5 ml ATP 20 mM thêm vào để bắt đầu phản ứng Phản ứng thực phút 25 0C kết thúc cách thêm ml dung dịch trichloroacetic acid 15% (w/v) lạnh Hỗn hợp phản ứng ly tâm 3500g phút phosphate vô giải phóng mặt đo phương pháp Fiske Subbarow (1925) Hoạt tính đặc trưng thể số mg phosphate vô giải phóng/mg protein/phút Một dung dịch trắng chuẩn bị cách thêm axit tricloaxetic lạnh trước thêm ATP 2.3 Xác định formaldehyde Hàm lượng formaldehyde cá xác định theo phương pháp Nash (1953) Cơ cá (5g) cho cốc 50 ml thêm 20 ml dung dịch axit tricloaxetic 5% Hỗn hợp đồng (IKA Labortechnik, Salangor, Malaysia) phút Các đồngchất sau lọc giấy Whatman No.41 Việc trích ly lặp lại đồng cặn lại với 10 ml dung dịch axit tricloaxetic 5%, đem lọc Dịch lọc kết hợp trung hòađến pH 6,0 - 6,5 Thể tích cuối đạt 50 ml cách thêm nước cất Để trung hòa dịch lọc (3 ml), ml Acetylacetone thêm vào lắc Hỗn hợp phản ứng trì 60 0C 15 phút làm lạnh vòi nước chảy Độ hấp thụ đo 412 nm Trống thực cách sử dụng axit tricloaxetic 5% thay dịch lọc Hàm lượng formaldehyde tính toán thể mg/g mẫu 2.4 Độ hòa tan protein Độ hòa tan protein xác định mô tả Benjakul Bauer (2000) với số thay đổi Để 2g mẫu, 18 ml KCl 0,6M thêm vào hỗn hợp đồng 30 s Các đồngchất khuấy nhiệt độ phòng (25-27 0C) giờ, sau ly tâm 12,000g 20 phút 0C Để 10 ml mặt, trichloroacetic acid 50% (w/v) lạnh bổ sung để có nồng độ cuối 10% Kết tủa rửa với axit tricloaxetic 10% hòa tan NaOH 0,5 M Hàm lượng protein xác định cách sử dụng phương pháp Biuret (Robinson & Hodgen, 1940) 2.5 Sự xác định TBARS Phản ứng chất acid Thiobarbituric xác định mô tả Benjakul Bauer (2001) 0,5 g thịt phân tán 2,5 ml dung dịch gồm có 0,0375 % acid Thiobarbituric, 15 % acid Trichloroacetic 0,25 N HCl Hỗn hợp đun nóng sôi với nước 10 phút, làm mát nước điều tiết Hỗn hợp li tâm 3600 vòng 20 phút nhiệt độ phòng Độ hấp thu bề mặt đo máy đo quang phổ bước sóng 532 nm (Hitachi,Tokyo,Japan) TBARS tính toán đơn vị mg malondialdehyde/kg mẫu 2.6 Surimi chuẩn bị gelsurimi Sau rã đông, cá loại xương tay Băm nhỏ sau rửa với nước lạnh (5oC), tỉ lệ cá xay nhuyễn/nước rửa 1:3 (w/w) Hỗn hợp khuấy nhẹ phút hỗn hợp xay nhuyễn rửa với nước sau lọc lớp màng lọc nilon Quá trình rửa thực lần Cuối rửa hỗn hợp xay nhuyễn, đem li tâm máy li tâm Model CE 21K có thùng li tâm (Grandiumpiant, Belluno, Italy) với tốc độ 700 vòng 15 phút Hỗn hợp xay nhuyễn rửa đem trộn kĩ với 4% sorbitol 4% sucrose Hỗn hợp giữ -18 oC đônglạnh để làm surimiSurimiđônglạnh đem phân tích khoảng ngày tồn trữ lạnh Chuẩn bị gel surimi: surimi thêm vào 2,5 % muối điều chỉnh hàm lượng ẩm 80 % Hỗn hợp nghiền phút 4oC thu “sol” Sol nguyên liệu để bọc vỏ Polyvinylidine với đường kính 2,5 cm kín chặt Hai bước gia nhiệt gel chuẩn bị điều chỉnh 40oC 30 phút, gia nhiệt 90 oC 20 phút Sau gel làm lạnh nước đá lưu trữ 24 h 4oC để phân tích 2.7 Xác định tínhchấtgelsurimiTínhchấtgelsurimi để phân tích cấu trúc mô tả Benjakul, Visessanguan Srivilai (2001) Phá gãy lực liên kết (độ bền gel) biến dạng (độ đàn hồi/độ biến dạng) đo máy đo cấu trúc Model TA-XT2 (Stable Micro Systems, Surrey, England) với pittong hình trụ (đường kính mm, tốc độ 60 mm/phút) Độ ẩm gel xác định theo phương pháp Benjakul etal (2001) Độ trắng gelsurimi đo máy đo màu JP710 (Juki Corpn, Tokyo, Japan) Đo L*,a*,b* thực lần Độ trắng tính toán theo phương trình (Lanier, Hart &Martin, 1991) Độ trắng=100-[(100-L*)2+a*2+b*2]1/2 2.8 Vi cấu trúc gelsurimiGelsurimi chuẩn bị từ thịt cá tươi thịt cáđônglạnh đối tượng xác định vi cấu trúc Cá đù, cá sọc, cá vàng giữ -18 oC tháng tháng cá mối đônglạnh sử dụng để chuẩn bị gelGelsurimi (0,5 x 0,5 x 0,3 cm) ổn định với 2,5 % Glutaraldehyde dung dịch đệm 0,1 M phosphate, pH 7,2 tiếng nhiệt độ phòng Ổn định mẫu cách loại nước dung dịch ethanol với dãy nồng độ 50, 60, 70, 80, 90 100 % Mẫu phủ lớp vàng quan sát kính hiển vi điện tử Jeol (Tokyo,Japan) 2.9 Phân tích thống kê Dữ liệu phương sai đối tượng để phân tích (ANOVA) So sánh biện pháp thực khoảng bội số kiểm tra Duncan’s (Steel & Torrie, 1980) KÊT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 3.1 Những thay đổi hoạt động Ca2+- ATPase Hoạt động Ca2+- ATPase actomyosin tự nhiên từ tất loài giảm liên tục suốt tháng bảoquảnđônglạnh (Hình 1) Hoạt động tương tự ngày (dao động từ 0,21 đến 0,33 mmol Pi/mg protein/phút) quan sát thấy tất loài Cơ cá vàng mắt to tìm thấy để biễu diễn hoạt động nhỏ Sự khác biệt tính toàn vẹn protein loài cá gây nhạy cảm khác để biến tính protein bắp suốt trình xử lý Như thời gian bảoquảnđônglạnh tăng, hoạt động Ca2+- ATPase quan sát giảm đáng kể Tốc độ giảm sút hoạt động Ca2+- ATPase khác nhau, tùy thuộc vào loài Trong số loài thử nghiệm, cá mối có tốc độ giảm sút lớn hoạt động Sau tháng bảoquảnđông lạnh, hoạt động giảm 72,1% so với thu cá tươi Đối với cá đù, cá sọc, cá vàng mắt to hoạt độngCa 2+-ATPase giảm tương ứng 51,7, 53,4 42,8 % , sau tháng bảoquảnđônglạnh Hoạt độngCa 2+- ATPase sử dụng số cho toàn vẹn phân tử myosin ( theo Benjakul năm 1997) Từ kết này, có ý kiến cho myosin bị biến tính trình bảoquảnđônglạnh kéo dài Dựa giảm sút hoạt độngCa 2+- ATPase, myosin từ cá mối bị biến tínhđến mức độ cao nhất, so với loài khác thử nghiệm Nambudiri Gopakumar ( năm 1992) tìm thấy sụt giảm hoạt động ATPase cá nước cá nước lợ gần 70 - 90% sau tháng bảoquảnđônglạnh -20 oC Sự sụt giảm 24% hoạt động Ca2+-ATPase cá biển Alaska quan sát thấy sau 226 ngày kể từ ngày bảoquảnđônglạnh -29 oC (theo Scott, năm 1988) Sự mát hoạt động ATPase thay đổi cấu trúc bậc ba gây tinh thể nước đá gia tăng cường độ ion máy làm đá ( trích Benjakul & Bauer, Năm 2000) Sự xếp lại protein thông qua tương tác protein-protein cho đóng góp vào mát hoạt động ATPase ( theo Benjakul & Bauer, năm2000) Từ kết quả, tìm thấy protein, đặc biệt myosin bị biến tính qua trình bảoquảnđônglạnh Mức độ biến tính phụ thuộc vào loài cá, mà kết hợp với yếu tố bên định thay đổi Hình.1 Sự thay đổi Ca2+- ATPase actomyosin tự nhiên chiết xuất từ bốn loài cá trình bảoquảnđônglạnh -18oC tháng Thanh biểu thị độ lệch chuẩn 3.2 Những thay đổi formaldehyde Formaldehyde hình thành tất loài cá trình bảoquảnđônglạnh theo dõi -180C tháng Hàm lượng formaldehyde cá mối tăng mạnh theo thời gian lưu trữ (Hình 2) Đối với loài khác, formaldehyde phát với lượng nhỏ Vào tháng 6, ghi nhận formaldehyde tăng gấp 12,7 lầncá mối, gia tăng nhỏ khác từ 1,4 - 2,4 lần tìm thấy cá đù, cá sọc cá vàng mắt to Formaldehyde sảnxuất số loài cá, chủ yếu cá sọc trình bảoquảnđônglạnh cách làm giảm trimethylamine oxide để dimetylamin formaldehyde lượng cân (Yamada & Amano, 1965) Phản ứng gây demethylase trimethylamine oxide, phân bố quan khác (Benjakul, Visessanguan, & Tanaka, 2003; Rehbein & Schreiber, 1984) (Kimura, Seki, & Kimura, 2000; Phillippy & Hultin, 1993) Tốc độ phản ứng phụ thuộc vào số yếu tố nhiệt độ bảo quản, loài, tình trạng điều kiện khử (xe & Hultin, 1982) Formaldehyde biết đến để phản ứng với nhóm chức khác chuỗi protein tạo thành cầu methylen phân tử Vai trò formaldehyde biến tính protein cá làm rõ trình bảoquảnđônglạnh (Parking & Hultin, 1982) Perez- Villarreal Howgate (1991) tìm thấy gia tăng formaldehyde trình bảoquảnđônglạnhcá tuyết phi lê Kể từ toàn cáđônglạnh nghiên cứu, TMAOase đưa tới quan nội tạng đưa vào chế biến, đặc biệt có tính tan Kết là, TMAOase từ quan nội tạng phối hợp việc hình thành formaldehyde Bao bì không khí tìm thấy có ảnhhưởngđến hình thành formaldehyde cá tuyết đỏ (Lundstrom, Correia, & Wilhelm, 1982) Từ nghiên cứu này, toàn cá loài đóng gói điều kiện (sử dụng túi polyetheylene mà không cần loại bỏ không khí) Vì vậy, khác biệt việc hình thành formaldehyde chủ yếu khác biệt hoạt động TMAOase loài Từ kết này, formaldehyde tăng trùng hợp ngẫu nhiên với sụt giảm hoạt động Ca2+-ATPase (Hình 1) Formaldehyde hình thành liên kết ngang gây 10 làm thay đổi cấu tạo myosin, đặc biệt vùng đầu, dẫn đến sụt giảm Ca 2+ -ATPase hoạt động Hình 2: Những thay đổi hàm lượng formaldehyde bốn loài cá trình bảoquảnđônglạnh -180C tháng Thanh biểu thị độ lệch chuẩn (cá đù, cá mối, cá sọc, cá vàng mắt to) 3.3 Những thay đổi độ hòa tan Độ hòa tan protein 0,6 M KCl liên tục giảm thời gian bảoquản lâu dài (Hình 3) Khả hòa tan thấp quan sát thấy cá mối, đặc biệt thời gian lưu trữ tăng lên Sau tháng bảoquảnđông lạnh, độ hòa tan cá mối giảm xuống 18,7%, khả hòa tan từ cá đù, cá sọc vàng cá vàng mắt to giảm xuống 33,7, 46,8 48,0%, tương ứng Khả hòa tan cá mối giảm đáng kể có liên quan tới lượng lớn formaldehyde hình thành trình bảoquảnđônglạnh (Hình 2) Trongcá sọc, tổn thất protein hòa tan khả gắn kết nước hình thành liên kết ngang polypeptide liền kề formaldehyde có nguồn gốc từ trimethylamine oxide (Sotelo, Pineiro, & Perez-Martub, 1995) 11 Ngoài cá mối, mát độ hòa tan quan sát thấy loài khác, với mức độ thấp Hình thành disulfide, hydro liên kết kỵ nước gây tổng hợp trình bảoquảnđônglạnh (Jiang, Hwang, & Chen, 1988) Liên kết disulfide hình thành dẫn đến mát extractability protein trình bảoquảnđônglạnhcá bơn cắt nhỏ (Lim & Haard, 1984) Benjakul, Visessanguan, Ishizaki, Tanaka (2000) tìm thấy sụt giảm liên tục nhóm sulfhydryl đồng thời gia tăng liên kết disulfide tất loài bao gồm cá mối, cá đù, cá sọc cá vàng mắt to trình bảoquảnđônglạnh kéo dài Srikar Reddy (1991) báo cáo trình bảoquảnđônglạnh làm giảm độ hòa tan protein cá vàng Jiang et al (1998) tìm thấy độ hòa tan actomyosin cá măng 0,6 M KCl giảm đônglạnh Kết hợp trình bảoquảnđônglạnh tuyết băm nhuyễn chủ yếu liên kết tương tác disulfide cầu thứ cấp (Tejada et al., 1996) Trong thời gian đóng băng kho lạnh, biến tính tổng hợp protein hình thành liên kết disulfide, theo sau xếp lại vùng kỵ nước tạo liên kết hydro sở liên phân tử (Buttkus, 1974) Từ kết quả, độ hòa tan giảm cho thấy kết hợp biến tính protein gây cách làm lạnhbảoquảnđônglạnhViệc tổng hợp formaldehyde hình thành rõ rệt loài Tuy nhiên, biến tính tập hợp protein quan sát thấy loài khác, disulfide tương tác kỵ nước đóng góp lớn thay đổi 12 Hình 3:Những thay đổi độ hòa tan protein 0,6 M KCl bốn loài cá trình bảoquảnđônglạnh -180C tháng Thanh biểu thị độ lệch chuẩn ( cá đù, cá mối, cá sọc vàng, cá vàng mắt to) 3.4 Thay đổi oxy hóachất béo TBARs (thiobarbituric acid reactive substances ) tăng lên thời gian bảoquản tăng lên, tỉ lệ tăng đa dạng tùy thuộc vào giống loài Sau thời gian bảoquản tháng TBARs cá đù tăng lên 7,9 lần lặp lại, …tăng 1.8 lần lặp lại, với hàm lượng cất béo cá đù cá mối nhỏ (3,16 – 3,38 %), mức độ oxy hóachất béo khác Oxy hóachất béo khác thay khác axit béo Axit béo không bãohòa đa dễ bị oxy hóa so với axit béo bãohòa Perez villarredl Howgate (1991) chứng minh tăng TBARs giá trị peroxide cá thu châu âu suốt trình bảoquản Oxy hóachất béo xảy suốt trình bảoquảnlạnh nguyên nhân trình biến tính protein Protein tiếp xúc với môi trường không khí dễ làm oxy hóa làm thay đổi thành phần hóa học, làm phá hủy axit amin, cắt liên kết peptide, hình thành phức protein – lipit Nhóm cacbonhydrate tham gia vào oxy hóachất 13 béo tham gia vào liên kết hóa trị Sự phản ứng protein với sản phẩm oxy hóachất béo hình thành gốc protein trung tâm Nhiếu sản phẩm thất thoát có khả liên kết ngang với polypeptit, mối kiên kết thành protein không tan Kết phần protein hòa tan, đặc biệt thời gian bảoquản tăng Saced Howell xác nhận yếu tố ảnhhưởngsản phẩm oxy hóachất béo cấu trúc protein enzyme chất béo cálạnhđông Do thực tế hầu hết loài sử dụng nghiên cứu cá nạc, chúng chứa hàm lượng acid béo thấp, oxy hóachất béo góp phần làm biến tính protein, hình thành formaldehyde Tuy nhiên yếu tố ảnhhưởngchất béo formaldehyde chưa chác chắn 3.5 Những thay đổi đặc tính hình thành gelsảnxuấtsurimi từ cáđônglạnh Làm vỡ lực ( độ bền gel) biến dạng surimi từ bốn loài giảm với gia tăng thời gian bảoquảnđônglạnhcá (Figs 5) Sự suy giảm rõ rệt hai độ bền gel biến dạng theo dõi surimi từ cá mối, sau tuần bảoquảnđônglạnh Độ bền gel biến dạng surimi từ cá mối giảm 43.8 71.8%, tương ứng, so với thu từ mẫu tươi Đối với loài khác, dộ bền gel biến dạng giảm 8,5 13,6 11,9 - 17,7%, tương ứng, sau tuần bảoquảnđônglạnh Sự khác biệt khả tạogelcáđônglạnh công nhận khác biệt ổn định protein trình làm lạnhbảoquảnđônglạnh Từ kết đó, người ta cho formaldehyde hình thành cá mối đóng góp lớn cho biến tính tập hợp protein, dẫn đến khả tạogel thấp Kết phù hợp với sụt giảm đáng kể hoạt độngCa 2+ - ATPase mát khả hòa tan cá mối, so với loài khác Tình trạng nguyên vẹn myosin điều kiện tiên cho đông lại protein (Benjakul, Visessanguan, Thongkeaw, & Tanaka, 2003) Sự suy giảm liên tục hai độ bền gel biến dạng xảy thời gian lưu trữ tăng lên đến tháng Đây cho tăng biến tính protein, gây lưu trữ đônglạnh kéo dài thể gia tăng liên tục hoạt động Ca2+ - ATPase mát khả hòa tan Sau tháng lưu trữ - 18 0C, làm vỡ lực surimi từ cá đù, cá mối, cá sọc cá vàng mắt to giảm 56,8, 64,7, 14 65,3 58,9 %, tương Lưu trữ đônglạnh dẫn đến mát trình biến dạng gelsurimi Biến dạng surimi từ cá đù, cá mối, cá sọc cá vàng mắt to giảm 62,4, 71,8, 63,2 52,8%, tương ứng, sau tháng lưu trữ 15 Trong số surimisảnxuất từ bốn loài, lưu trữ đônglạnh trưng bày ảnhhưởng bất lợi đông lại surimisảnxuất từ cá mối, so với loài cá khác Do đó, sảnxuất formaldehyde đóng vai trò thiết yếu việc giảm khả tạogelcá mối Kết thỏa thuận với Kurokawa (1979) báo cáo cá mối lưu trữ tuần - 27 0C có 50 - 60% gelcá tươi Hơn nữa, MacDonald et al (1992) nhận thấy khả tạogel Hoki giảm với gia tăng đồng thời formaldehyde thời gian lưu trữ đônglạnh tăng Scott et al (1988) báo cáo surimisảnxuất từ loại cá biển Alaska đônglạnhtạogel giảm tăng thời gian lưu trữ -290C Ngoài hình thành formaldehyde, kết hợp protein 16 qua cầu nối disulfide, tương tác kị nước, vv trình oxy hóa lipid bảoquản đônh lạnh gây biến tính protein (Matsumoto, 1980, Sikorski et al, 1976) Điều dẫn đến khả tạogel thấp Tỷ lệ giảm khả tạogelbảoquảnđônglạnh xác định ổn định protein cơ, đặc biệt myosin Từ kết quả, protein cá sọc thường hay bị mát tạo, so với cá đù cá vàng mắt to Tuy nhiên, giảm hoạt độngCa 2+ - ATPase cá sọc nhỏ loại khác Kể từ đầu hình cầu myosin chịu trách nhiệm hoạt động ATPase, giảm hoạt động Ca2+ - ATPase dấu hiệu biến đổi tínhchất vùng đầu myosin Cả đầu lẫn đuôi đoạn phân tử myosin tham gia tạogel Từ kết quả, người ta công nhận phần đuôi myosin trải qua thay đổi cấu tạo, dẫn đến khả tạogel thấp Sự phát triển độ đàn hồi gel myosin phần đuôi phát triển thứ hai phần đầu (Sano, Noguchi, Matsumoto, & Tsuchiya, 1990a) Phần đuôi phân tử myosin đóng vai trò quantrọngđông nhiệt myosin actomyosin tự nhiên (Sano, Noguchi, Matsumoto, & Tsuchiya, 1990b) Ngoài biến tính myosin, mát hoạt động TGase gây lưu trữ đônglạnh giả định Trong thời gian thiết lập, TGase gây hình thành liên kết cộng hóa trị non-disulfide, đặc biệt liên kết - (-glutamyl) lysine (Kumazawa, Numazawa, Seguro, & Motoki, 1995) Theo đó, thiết lập bị cản trở kết bảoquảnđônglạnh kéo dài Vì vậy, làm lạnhbảoquảnđônglạnh trực tiếp ảnhhưởngđến khả tạogelsurimisảnxuất từ cáđônglạnh Độ ẩm biễu diễn gelsurimi tăng thời gian lưu trữ tăng (Bảng 1) Điều nước hấp thụ gel Protein bị biến tính gây bảoquảnđônglạnh kéo dài có lực nước thấp Ngoài ra, hình thành gel chiếm hữu khả giữ nước thấp Sau tháng bảoquảnđông lạnh, độ ẩm biễu diễn cao gelsurimi (28,70%) đạt gel từ cá mối, độ ẩm biễu diễn gelsurimi từ loại lại dao động 7,72 - 11,88% Khả giữ nước gelsurimi từ cá mối có liên quan với tăng formaldehyde, nguyên nhân gây cứng lại cá cách gây tạo liên 17 kết chéo protein (Connell, 1975) Ngoài ra, độ ẩm biễu diễn cao gelsurimi từ cá mối có liên quanchặt chẽ với tạogel thấp hình 18 Độ trắng gelsurimi từ tất loài nói chung giảm thời gian lưu trữ tăng (Bảng 2) Đối với surimisảnxuất từ cá tươi, gelsurimi từ cá mối đưa độ trắng cao (82,0), so với loài khác (75,9 - 77,3) Từ kết quả, tìm thấy gelsurimi từ cá đù có xu hướng giảm tỉ lệ độ trắng lớn nhất, so với loài khác Sau tháng bảoquảnđông lạnh, độ trắng gel suirmi từ cá đù giảm 7,4% Độ trắng giảm thấp quan sát thấy surimi từ cá vàng mắt to Sự khác biệt thay đổi màu sắc gây khác hàm lượng sắc tố Giảm độ trắng 19 có lẽ diển dẩn protein sắc tố, đặc biệt bị oxy hóa sắc tố với protein Ngoài ra, trình oxy hóa lipid trong suốt trình bảoquảnđônglạnh gây liên kết chéo protein sắc tố protein thông qua trình gốc tự (Saeed et al., 1999) Như hệ quả, sắc tố gỡ bỏ cách hiệu trình rửa cuối giữ lại surimi Điều dẫn đến sụt giảm độ trắng gel 3.6 Vi cấu trúc gelsurimi chế biến từ cáđônglạnh Vi cấu trúc gelsurimi chế biến từ cáđônglạnh khác biểu hình Gelsurimi từ cá tươi có mạng lưới sợi tốt Cấu trúc tổng hợp thường xuyên với tổ chức mạng lưới ba chiều quan sát với gel chế biến từ cá tươi Tuy nhiên, vi cấu trúc gel có vài khác biệt từ loài khác dược ghi nhận Điều khả tạogel khác protein từ loài cá khác Sự thay đổi khác tínhchấthóa lý gelsurimi loài cáquan sát, giảm khả tạo gel, tùy vào thời gian lưu trữ Giảm 50% độ bền gel, cá đù, cá sọc cá vàng mắt to giữ đến khoảng tháng Tuy nhiên, có giảm tháng lưu trữ đônglạnh cho cá mối Do gel chuẩn bị từ cáđônglạnhbảoquản thời gian định so sánh Nói chung, gel từ cáđônglạnh thùng thô với khoảng trống lớn Một tập hợp lớn hình thành (hình 6) Thú vị, mạng lưới tổng hợp hạt tìm thấy gelsurimi từ cá mối đônglạnh Nó coi formaldehyde làm việc có hiệu liên kết chéo phân tử protein Kết quả, tổng hợp protein hình thành kèm khả giữ nước giảm đáng kể (bảng 1) Mạng lưới tổng hợp hạt quan sát loài cá khác Tuy nhiên, xảy mức độ thấp, so với tìm thấy gelsurimi từ cá mối đônglạnh Hiện nay, gelsurimi từ cáđônglạnh có mạng lưới tổ chức kém, so với cá tươi Cấu trúc gelsurimi chế biến từ cáđônglạnh xác nhận nghèo khả tạogel protein cáđônglạnh 20 KẾT LUẬN Mở rộng kho lạnh bốn loài cá -18C nguyên nhân gây khả tạogel kết hợp với biến tính protein Mức độ phụ thuộc vào loài thời gian lưu trữ Cá mối, trước formaldehyde, dễ bị biến tính mát đông đặc lưu trữ đônglạnh kéo dài, so với loài khác 21 ... thiết lập bị cản trở kết bảo quản đông lạnh kéo dài Vì vậy, làm lạnh bảo quản đông lạnh trực tiếp ảnh hưởng đến khả tạo gel surimi sản xuất từ cá đông lạnh Độ ẩm biễu diễn gel surimi tăng thời... tính chất gel surimi sản xuất từ cá đông lạnh nhiệt đới báo cáo Cuộc điều tra nhằm nghiên cứu tác động bảo quản lạnh đến tính chất hóa học khả tạo gel bốn loài cá thường sử dụng để sản xuất surimi. .. bảo quản lạnh đông -290C (MacDonald et al.) Hơn nữa, trình oxy hóa lipid cá bảo quản lạnh đông cho thấy ảnh hưởng xấu đến cấu trúc chức protein (Saeed & Howell, 2002) Thái Lan nước sản xuất surimi