Nghiên cứu ảnh hưởng của thức ăn, chế độ cho ăn lên sinh trưởng, tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài (Lutraria rhynchaena Jonas, 1844) giai đoạn sống nổi đến con giống 5 mm

Thí nghiệm 4: Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5mm.. 7: Sơ đồ nội dung nghiên cứu ảnh hưởng của thức ăn lên sinh

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO

TRƯỜNG ĐẠI HỌC NHA TRANG





PHAN THỊ THƯƠNG HUYỀN

NGHIÊN CỨU ẢNH HƯỞNG CỦA THỨC ĂN, CHẾ ĐỘ CHO

ĂN LÊN SINH TRƯỞNG, TỶ LỆ SỐNG CỦA ẤU TRÙNG

TU HÀI (Lutraria rhynchaena Jonas, 1844) GIAI ĐOẠN

SỐNG NỔI ĐẾN CON GIỐNG 5 mm

LUẬN VĂN THẠC SĨ

Khánh Hòa - 2014

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO

TRƯỜNG ĐẠI HỌC NHA TRANG





PHAN THỊ THƯƠNG HUYỀN

NGHIÊN CỨU ẢNH HƯỞNG CỦA THỨC ĂN, CHẾ ĐỘ CHO

ĂN LÊN SINH TRƯỞNG, TỶ LỆ SỐNG CỦA ẤU TRÙNG

TU HÀI (Lutraria rhynchaena Jonas, 1844) GIAI ĐOẠN

SỐNG NỔI ĐẾN CON GIỐNG 5 mm

LUẬN VĂN THẠC SĨ

Ngành đào tạo: Nuôi trồng thủy sản

Mã số: 60 62 03 01

Người hướng dẫn khoa học: TS Ngô Anh Tuấn

CHỦ TỊCH HỘI ĐỒNG KHOA SAU ĐẠI HỌC

Khánh Hòa - 2014

LỜI CAM ĐOAN

Tôi xin cam đoan đây là đề tài nghiên cứu do chính bản thân tôi thực hiện Các

số liệu và kết quả nghiên cứu trong luận văn này là hoàn toàn trung thực Các thông tin trong và ngoài nước được chú thích đầy đủ và trích dẫn rõ ràng khi sử dụng

Người viết

Phan Thị Thương Huyền

LỜI CẢM ƠN

Trong quá trình thực hiện đề tài, ngoài sự nỗ lực của bản thân, tôi đã nhận được nhiều sự giúp đỡ khác Qua đây tôi xin được bày tỏ lòng biết ơn chân thành đến những

sự giúp đỡ quý báu đó

Tôi xin chân thành cảm ơn Ban lãnh đạo Viện Nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản III, Phòng Sinh học thực nghiệm, nơi đã tạo mọi điều kiện cho tôi trong qúa trình thực hiện đề tài

Qúa trình học tập và thực hiện đề tài tôi được nhận học bổng từ dự án hợp tác với Chính phủ Bỉ, Trường Đại học Gent: “Đảm bảo cung cấp giống các loài động vật hai mảnh vỏ có giá trị thương mại tại miền Trung Việt Nam bằng cách tối ưu hóa sản xuất ấu trùng” Nhân đây tôi xin cảm ơn Ban điều hành dự án Đặc biệt, Tiến sĩ Nancy Nevejan và ThS Phùng Bảy đã hướng dẫn tận tình cho tôi trong quá trình thực hiện đề tài và hoàn thành luận văn

Tôi xin được bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc tới thầy giáo - Tiến sĩ Ngô Anh Tuấn

đã tận tình hướng dẫn, giúp đỡ tôi trong suốt quá trình học tập, thực hiện đề tài và hoàn thành luận văn này

Xin chân thành cảm ơn các thầy cô giáo trong Viện Nuôi trồng thuỷ sản và Khoa Sau đại học - Trường Đại Học Nha Trang - những người đã dạy dỗ và truyền đạt kiến thức và tạo mọi điều kiện cho tôi trong quá trình học tập và thực hiện đề tài

Tôi xin gửi lời cảm ơn đến các anh chị em, bạn bè, đồng nghiệp những người đã luôn bên cạnh tôi, giúp đỡ tôi trong quá trình thực đề tài và hoàn thành luận văn này

Và tôi xin dành sự biết ơn đến gia đình- bố mẹ, chồng, các anh chị em và con, những người luôn cổ vũ động viên cho tôi vượt qua mọi khó khăn trong cuộc sống và đặc biệt là trong quá trình học tập, thực hiện đề tài này

MỤC LỤC

LỜI CAM ĐOAN i

LỜI CẢM ƠN ii

MỤC LỤC iii

DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU, CÁC CHỮ VIẾT TẮT vi

DANH MỤC BẢNG vii

DANH MỤC HÌNH viii

MỞ ĐẦU 1

CHƯƠNG 1 - TỔNG QUAN TÀI LIỆU 3

1.1 Một số đặc điểm sinh học của tu hài 3

1.1.1 Vị trí phân loại 3

1.1.2 Đặc điểm hình thái 3

1.1.3 Phân bố địa lý và môi trường sống 4

1.1.4 Vòng đời của tu hài, tập tính và môi trường sống 4

1.1.5 Đặc điểm dinh dưỡng 5

1.1.6 Đặc điểm sinh trưởng 5

1.1.7 Đặc điểm sinh sản 6

1.2 Tình hình nghiên cứu về tu hài trên thế giới và Việt Nam 7

1.2.1 Tình hình nghiên cứu trên thế giới 7

1.2.2 Tình hình nghiên cứu ở Việt Nam 8

1.2.2.1 Sản xuất giống nhân tạo tu hài 8

1.2.2.2 Nuôi thương phẩm tu hài 10

1.2.2.3 Nghiên cứu về bệnh tu hài 11

1.3 Sử dụng vi tảo trong sản xuất giống các đối tượng ĐVTM 12

Chương 2 - PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 18

2.1 Đối tượng, thời gian và địa điểm nghiên cứu 18

2.2 Phương pháp nghiên cứu 18

2.2.1 Bố trí thí nghiệm ương nuôi ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 19

2.2.1.1 Thí nghiệm 1: Ảnh hưởng của thức ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 19

2.2.1.2 Thí nghiệm 2: Ảnh hưởng cuả chế độ cho ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ

sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 21

2.2.2 Bố trí thí nghiệm ương nuôi ấu trùng tu hài spat đến con giống 5 mm 22

2.2.2.1 Thí nghiệm 3: Ảnh hưởng của thức ăn lên lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống đáy (spat) đến con giống 5mm 22

2.2.2.2 Thí nghiệm 4: Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống đáy (spat) đến con giống 5mm 23

2.3 Phương pháp thu thập và phân tích, xử lý số liệu 24

2.3.1 Phương pháp thu thập số liệu 24

2.3.2 Phương pháp xử lý số liệu 25

Chương 3 - KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN 26

3.1 Một số yếu tố môi trường trong quá trình thí nghiệm 26

3.2 Kết quả thí nghiệm ương nuôi ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 27

3.2.1 Thí nghiệm 1: Ảnh hưởng của thức ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 27

3.2.1.1.Ảnh hưởng của thức ăn lên tăng trưởng của ấu trùng tu hài 27

3.2.1.2.Ảnh hưởng của thức ăn lên tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 30

3.2.2 Thí nghiệm 2: Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 32

3.2.2.1.Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên tăng trưởng của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 32

3.2.2.2 Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 35

3.3 Kết quả thí nghiệm ương nuôi ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5mm 36

3.3.1 Thí nghiệm 3: Ảnh hưởng của thức ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5mm 36

3.3.1.1 Ảnh hưởng của thức ăn lên tăng trưởng của ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5mm 36

3.3.1.2 Ảnh hưởng của thức ăn lên tỷ lệ sống của tu hài giai đoạn ấu trùng spat đến con giống kích cỡ 5mm 39

3.3.2 Thí nghiệm 4: Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống

của ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5mm .41

3.3.2.1 Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên tăng trưởng của tu hài giai đoạn spat đến con giống 5mm 41

3.3.2.2 Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên tỷ lệ sống của tu hài từ giai đoạn spat đến con giống 5mm .43

KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 46

Kết luận 46

Kiến nghị 46

TÀI LIỆU THAM KHẢO 47 PHỤ LỤC

DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU, CÁC CHỮ VIẾT TẮT

L Kích thước chiều dài

TLS Tỉ lệ sống

I.gabana Isochrysis gabana

C calcitrans Chaetoceros calcitrans

Dic.sp Dicrateria sp

S.costatum Skeletonema costatum

T.chuii Tetraselmis chuii

DANH MỤC BẢNG

Bảng 1 1 Mức độ sử dụng phổ biến của các loài tảo trong sản xuất giống động vật

thân mềm 13

Bảng 1 2: Kích thước và chất lượng dinh dưỡng của một số loài các vi tảo 14

Bảng 1 3: Số lượng tế bào tảo ăn mỗi ngày cho mỗi ấu trùng của ba loài hai mảnh vỏ so với kích thước chiều dài vỏ của chúng 15

Bảng 1 4: Thể tích nước và thức ăn hàng ngày của ấu trùng spat ĐVTM hai mảnh vỏ các kích cỡ khác nhau khi nuôi ở 200 gam khối lượng tươi/ 1000 lít (0,2 kg/m3) .17

Bảng 3 1: Một số yếu tố môi trường trong các thí nghiệm 26

Bảng 3 2: Tăng trưởng về kích thước chiều dài của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi ở các nghiệm thức thức ăn 28

Bảng 3 3: Tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài ở các nghiệm thức thức ăn khác nhau 30

Bảng 3 4: Tăng trưởng về kích thước chiều dài của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi ở các chế độ cho ăn khác nhau 33

Bảng 3 5: Tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài ở các chế độ cho ăn khác nhau 35

Bảng 3 6: Tăng trưởng chiều dài của ấu trùng tu hài spat đến con giống 5mm 37

Bảng 3 7: Tỷ lệ sống của tu hài từ ấu trùng spat đến con giỗng kích cỡ 5mm 39

Bảng 3 8: Tăng trưỏng chiều dài của tu hài ở các chế độ cho ăn khác nhau 42

Bảng 3 9: Tỷ lệ sống của tu hài ở các chế độ cho ăn khác nhau 44

DANH MỤC HÌNH

Hình 2 1: Hình thái bên ngoài của tu hài ( Lutraria rhynchaena Jonas,1844) 18

Hình 2 2 Sơ đồ nội dung nghiên cứu 18 Hình 2 3: Bố trí thí nghiệm ương nuôi ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 19 Hình 2 4: Sơ đồ khối nội dung nghiên cứu ảnh hưởng của thức ăn lên sinh trưởng và

tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 20 Hình 2 5: Sơ đồ khối nội dung nghiên cứu ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên sinh trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi 21 Hình 2 6: Hệ thống nước trồi (upwelling) nuôi ấu trùng tu hài spat đến con giống 22 Hình 2 7: Sơ đồ nội dung nghiên cứu ảnh hưởng của thức ăn lên sinh trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống đáy (spat) đến con giống 5 mm 23 Hình 2 8: Sơ đồ nội dung nghiên cứu ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên sinh trưởng và

tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5 mm 24 Hình 3 1: Tăng trưởng chiều dài của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi ở các nghiệm thức thức ăn 27 Hình 3 2: Tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi ở các nghiệm thức thức ăn khác nhau 31 Hình 3 3:Tăng trưởng kích thước chiều dài của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi ở các chế độ cho ăn khác nhau 34 Hình 3 4:Tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài ở các chế độ cho ăn khác nhau 35 Hình 3 5:Tăng trưởng chiều dài của ấu trùng tu hài spat đến con giống 5mm 38 Hình 3 6: Tỷ lệ sống của tu hài giai đoạn ấu trùng spat đến con giống kích cỡ 5mm 40 Hình 3 7: Tăng trưởng chiều dài của tu hài ở các chế độ ăn khác nhau 43 Hình 3 8: Tỷ lệ sống của tu hài ở các chế độ ăn khác nhau 44

MỞ ĐẦU

Thủy sản là một ngành kinh tế mũi nhọn của nước ta, đã mang lại giá trị kim ngạch xuất khẩu to lớn và tăng liên tục hàng năm, giải quyết nhiều vấn đề xã hội như xóa đói giảm nghèo, tăng thu nhập, hạn chế tình trạng thất nghiệp, góp phần thúc đẩy nhanh quá trình công nghiệp hóa và đô thị hóa nông thôn Thủy sản phát triển còn là một trong những phương tiện mở ra xu hướng hợp tác quốc tế, đẩy nhanh tiến trình hội nhập kinh tế nước ta với các nước trên thế giới Tuy nhiên, các hoạt động đánh bắt và nuôi trồng thủy sản diễn ra ồ ạt, thiếu quy hoạch đã làm cạn kiệt nhiều nguồn lợi thủy sinh vật ven biển, gây ô nhiễm môi trường nuôi, vật nuôi dễ bị bệnh, thất thóat, rủi ro cao, sản phẩm có chất lượng kém, và dẫn đến hiện nay nhiều diện tích nuôi thủy sản phải bỏ hoang, nhiều hộ dân phải bỏ nghề vì thua lỗ Vì vậy, một trong những giải pháp được Nhà nước, Bộ Nông nghiệp và Phát triển Nông thôn phê duyệt tại Quyết định số 1628/QĐ-BNN-TCTS ngày 20/7/2011 là quy hoạch nuôi các đối tượng Động vật thân mềm (ĐVTM) ở các vùng ven biển, tạo ra sản phẩm có tính hàng hóa tập trung, giảm thiểu tình trạng ô nhiễm do hoạt động nuôi tôm và các đối tượng thủy sản thiếu quy hoạch gây ra, phục hồi và bảo vệ nguồn lợi một số giống loài thủy sản đã và đang có nguy cơ tuyệt chủng và giải quyết tình trạng thất nghiệp của người dân ven biển [2]

Tu hài là loài ĐVTM hai mảnh vỏ theo phương thức ăn lọc, thức ăn là các mùn

bã hữu cơ và các sinh vật phù du Thịt tu hài thơm ngon, có hàm lượng dinh dưỡng cao

và có giá trị kinh tế Do đó, những năm gần đây nghề nuôi tu hài ở nước ta phát triển rộng khắp và được xác định là đối tượng xuất khẩu chủ lực trong giai đoạn 2010-2020

Nghề nuôi tu hài phát triển đã làm tăng nhu cầu cung cấp con giống Hiện nay, sản xuất giống tu hài ở Việt Nam đã đạt được một số thành quả đáng kể Tuy nhiên, việc sản xuất giống vẫn gặp không ít khó khăn với tỷ lệ sống thấp trong giai đoạn ấu trùng và giai đoạn xuống đáy, tỷ lệ hao hụt cao trong quá trình vận chuyển, chất lượng con giống không ổn định Những khó khăn đó một phần là do quy trình sản xuất giống chưa hoàn thiện, thức ăn chưa đảm bảo Do đó, những nghiên cứu về thức ăn cho ấu trùng tu hài cần được cải tiến nhằm hoàn thiện quy trình công nghệ sản xuất giống, tạo

ra con giống đạt chất lượng cao

Để góp phần nâng cao hiệu quả sản xuất giống tu hài tôi thực hiện đề tài:

“Nghiên cứu ảnh hưởng của thức ăn, chế độ cho ăn lên sinh trưởng, tỷ lệ sống của ấu

trùng tu hài (Lutraria rhynchaena Jonas, 1844)’’giai đoạn sống nổi đến con giống

5mm’’

Mục tiêu của đề tài

- Xác định thức ăn, chế độ cho ăn thích hợp cho ấu trùng tu hài từ giai đoạn sống nổi đến con giống 5mm

Ý nghĩa khoa học và thực tiễn của đề tài

- Ý nghĩa khoa học: Bổ sung nghiên cứu mới về ảnh hưởng của thức ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài

- Ý nghĩa thực tiễn: Góp phần nâng cao hiệu quả sản xuất giống nhân tạo tu hài

Nội dung nghiên cứu:

- Ảnh hưởng của thức ăn, chế độ cho ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu

trùng tu hài (Lutraria rhynchaena Jonas, 1844) giai đoạn sống nổi

- Ảnh hưởng của thức ăn, chế độ cho ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu

trùng tu hài (Lutraria rhynchaena Jonas, 1844) giai đoạn spat đến con giống 5mm

CHƯƠNG 1 - TỔNG QUAN TÀI LIỆU

1.1 Một số đặc điểm sinh học của tu hài

Tu hài (Lutraria rhynchaena Jonas, 1844) là loài động vật thân mềm (ĐVTM) hai

mảnh vỏ có giá trị dinh dưỡng cao Kết quả nghiên cứu về sinh hóa của tu hài cho thấy thành phần các chất chính có trong phần thịt thân mềm xác định theo phần trăm khối

lượng tươi như sau: protein 11,63%; đường 0,42%; khoáng 1,22%; nước 82,3% [11]

1.1.1 Vị trí phân loại

Theo Hylleberg và Kilburn, 2003 vị trí phân loại của tu hài Lutraria

rhynchaena như sau:

Tu hài (Lutraria rhynchaena Jonas, 1844) có kích thước khi trưởng thành từ

7-12 cm, khối lượng từ 50 – 200 g/con, hình bầu dục, chiều dài vỏ thường gần gấp đôi chiều cao Vỏ bằng đá vôi có màu vàng nâu, tuy nhiên màu sắc của tu hài có phần biến đổi tuỳ thuộc vào môi trường sống, tu hài nuôi ở biển có màu sắc tươi sáng hơn tu hài nuôi ở đìa, một số con sống ở vùng đáy là rạn đá san hô, mảnh vỏ ĐVTM nhỏ như hầu, sò…thường có màu nâu xám Đối với những cá thể mập, khỏe hai vỏ khép lại trước sau đều không kín, ống thoát hút nước to tròn, những cá thể gầy yếu ống thoát hút nước teo lại, khi vỏ khép lại chỉ hở phần đầu, đây là một trong những đặc điểm cần lưu ý khi tuyển chọn bố mẹ cho đẻ Da vỏ mỏng có màu nâu và dễ bị bong ra, không

có gờ phóng xạ, các vòng sinh trưởng thô mịn không đều Bản lề trong lớn, hình tam giác, nằm trong máng bản lề, vịnh màng áo rộng 11

Đặc điểm hình thái dễ phân biệt nhất giữa tu hài so với các loài ĐVTM hai mảnh

vỏ khác là ống thoát hút nước Mặc dù sống vùi mình trong cát nhưng ống thoát hút nước của tu hài thường nhô lên trên mặt cát, tu hài thường vươn ống thoát hút nước về phía trước, ống này có thể vươn dài gấp 1,5 – 2,0 lần chiều dài vỏ Phần chân phía sau màu trắng hình tam giác rất phát triển và thường dùng để đào hang trong cát [13]

1.1.3 Phân bố địa lý và môi trường sống

Tu hài phân bố ở vùng biển phía Tây, Nam nước Úc và một số nước Châu Á như Trung Quốc, Thái Lan, Philippine và Việt Nam

Ở Việt Nam, tu hài phân bố tập trung chủ yếu ở Miền Bắc (Quảng Ninh, Hải Phòng), các tỉnh Miền Trung tu hài phân bố hầu hết các tỉnh từ Thanh Hóa vào đến Bình Thuận [7]

1.1.4 Vòng đời của tu hài, tập tính và môi trường sống

Sự phát triển vòng đời: Vòng đời tu hài được chia thành 2 giai đoạn:

Giai đoạn sống trôi nổi: Từ ấu trùng trochopora đến giai đoạn biến thái sang spat khoảng 20 – 25 ngày Ở giai đoạn này ấu trùng sống trôi nổi trong nước

Giai đoạn sống đáy: Đầu giai đoạn spat, ấu trùng spat di chuyển xuống sống ở nền đáy, lúc này chân đào phát triển để đào lỗ tìm nơi định cư và bắt đầu giai đoạn sống đáy [13]

Tập tính sống: Tu hài là loài ĐVTM rộng muối, chúng có thể sống bình thường

ở độ mặn từ 20-34‰, nhiệt độ 18-33oC, và sống ở độ sâu 5-10m, đôi khi còn bắt gặp ở

độ sâu 20m, chất đáy là cát, sỏi có pha ít sét, bùn và mảnh vỏ ĐVTM Tu hài sống vùi trong đáy, lỗ của chúng thường sâu 20- 50 cm [4]

Tu hài sống vùi mình trong đáy cát sâu theo chiều thẳng đứng Ban ngày để tránh kẻ thù tu hài thụt ống thoát hút nước vào bên trong vỏ hoặc chỉ thò 1/3 ra ngoài, ban đêm chúng vươn dài ống thoát hút nước để hút lọc thức ăn trong môi trường Chỉ cần có tác động nhẹ lên ống thoát hút nước tu hài hoặc gặp kẻ thù chúng co ống thoát hút nước lại rất nhanh và chui sâu vào lỗ Đây là bản năng tự vệ giúp tu hài tránh được kẻ thù [11]

Khác với các loài ĐVTM khác như hàu, vẹm xanh sau khi kết thúc giai đoạn sống trôi nổi chúng sống cố định trên vật bám Tu hài có thể di chuyển đến nơi khác

khi gặp điều kiện sống không thích hợp Phương thức di chuyển cũng không giống các loài ĐVTM khác như ốc hương, bào ngư bò trên nền đáy nhờ chân Đối với tu hài khi gặp điều kiện bất lợi chúng nhoi mình lên nền đáy, vươn dài ống thoát hút nước để hút đầy nước sau đó đột ngột co ống lại phụt mạnh nước ra để tạo phản lực đẩy cơ thể về phía trước Mỗi lần như vậy tu hài có thể di chuyển được từ 1-3 cm [6]

1.1.5 Đặc điểm dinh dưỡng

Hầu hết các loài ĐVTM hai vỏ có giá trị kinh tế cao sử dụng các loài sinh vật phù du làm thức ăn Tuy nhiên kết quả phân tích thức ăn trong dạ dày đã không xác định được chính xác thành phần thức ăn Nguyên liệu thu được gồm nhiều thành phần khác nhau như các chất hữu cơ, chất khoáng, chất keo, mẫu hữu cơ lắng động và một

số thành phần sinh vật sống Thức ăn của ĐVTM thay đổi theo mùa và vị trí địa lý ngay cả trong một loài [4]

Tu hài là loại mang tấm, ăn lọc thụ động, chưa có công trình nào nghiên cứu về tốc độ lọc, cũng như loài tảo nào là thức ăn thích hợp nhất đối với nhu cầu dinh dưỡng của tu hài Tuy nhiên, theo các quy trình sản xuất giống tu hài ở Việt Nam, thức ăn sử

dụng gồm các loài tảo có kích thước nhỏ như Nannochloropsis, Chaetoceros gracilis,

C calcitrans, C mulleri, Isochrysis galbana, Platymonas.v.v…[7, 7, 14]

Trong tự nhiên tu hài chủ yếu ăn thực vật phù du nhưng không chọn lọc loài làm thức ăn Vì vậy vùng biển có loài sinh vật phù du nào phổ biến, thì loài đó là thức

ăn chính của tu hài 4

1.1.6 Đặc điểm sinh trưởng

Sinh trưởng của ĐVTM hai vỏ (Bivalvia) là sự tăng lên của cả phần vỏ và phần thân mềm So với các loài khác trong nhóm ĐVTM, tu hài là loài có tốc độ sinh trưởng trung bình và tốc độ tăng trưởng của tu hài khác nhau theo giai đoạn sống Qui luật sinh trưởng của tu hài cũng tương tự các loài ĐVTM 2 mảnh vỏ khác là tăng nhanh về kích thước ở giai đọan đầu và giai đoạn sau tăng nhanh về khối lượng (Quayle và Newkirt, 1989) 7] Tốc độ sinh trưởng phụ thuộc vào tuổi, khi còn non tốc độ sinh trưởng nhanh nhưng khi về già tốc độ sinh trưởng chậm lại Tốc độ sinh trưởng còn phụ thuộc vào mật độ quần thể Nếu quần thể nhỏ thì tốc độ sinh trưởng nhanh nhưng quần thể lớn thì tốc độ sinh trưởng chậm do khả năng cung cấp dinh dưỡng của thủy vực (Jeng và Tyan (1982) 7 Yếu tố ngoại cảnh tác động rất lớn đến tốc độ sinh

trưởng của ĐVTM các yếu tố môi trường trực tiếp ảnh hưỏng đến quá trình sống như, nhiệt độ, pH, độ mặn 3] Theo kết quả nghiên cứu về sinh thái tự nhiên của tu hài tại Cát Bà, Nguyễn Xuân Dục và Nguyễn Mạnh Hùng (1978) cho rằng tháng 5 tu hài có trị số trung bình về kích thước và khối lượng nhỏ nhất Tháng 9 và tháng 10 tu hài có tốc độ tăng trưởng về khối lượng và kích thước rất nhanh Từ tháng 12 năm trước đến tháng 4 năm sau quần thể tu hài có độ béo lớn hơn thời kỳ từ tháng 5 đến tháng 10 [4]

Sinh trưởng của tu hài khác nhau theo giai đoạn sống Thời kỳ đầu tu hài tăng nhanh về chiều dài, từ cỡ giống 5mm sau 20 - 25 ngày kích thước tăng lên 12-15mm Sau khi đạt chiều dài vỏ 3 – 4 cm tốc độ phát triển chiều dài vỏ chậm lại Lúc này khối lượng, chiều rộng và chiều cao, bắt đầu tăng nhanh [5, 11]

1.1.7 Đặc điểm sinh sản

Tuyến sinh dục:

Tuyến sinh dục của tu hài nằm ở gờ nội tạng xung quanh gốc chân (về phía đỉnh vỏ), và lẫn trong các cơ quan nội tạng [3] Dựa vào những thay đổi trong quá trình phát triển của tuyến sinh dục Từ đó, nhiều tác giả đã đưa ra cách phân chia khác nhau, theo Trần Trung Thành (2008), tuyến sinh dục của tu hài thành 5 giai đoạn, từ giai đoạn I đến giai đoạn V Giai đoạn I tuyến sinh dục chưa phát triển Giai đoạn II tuyến sinh dục bắt đầu phát triển Giai đoạn III tuyến sinh dục phát triển mạnh, số lượng tế bào sinh trứng và sinh tinh tăng lên Giai đoạn IV trứng và tinh trùng thành thục Giai đoạn V, sau khi đẻ, tuyến sinh dục rỗng, xẹp xuống Hình thái ngoài của tuyến sinh dục đực và cái giống nhau, chỉ khác nhau về màu sắc Khi thành thục, tuyến sinh dục

của con đực màu trắng đục, con cái có màu nâu nhạt [7]

Phương thức sinh sản :

Tu hài có phương thức sinh sản noãn sinh Trứng và tinh trùng được phóng ra ngoài môi trường nước, chúng gặp nhau tạo thành hợp tử, trải qua quá trình phân cắt phôi, từ trứng thụ tinh phát triển thành ấu trùng.[11]

Mùa vụ sinh sản:

Mùa vụ sinh sản của ĐVTM hai vỏ tùy thuộc vào loài và điều kiện sống Một

số loài có tuyến sinh dục thành thục quanh năm thì có thể đẻ được quanh năm, nhưng cũng có loài chỉ thành thục trong những mùa nhất định 3 Trong tự nhiên tu hài thành thục hầu hết các tháng trong năm, nhưng tỷ lệ thành thục cao nhất tập trung từ tháng

12 năm trước đến tháng 4 năm sau 13, 8, 4] Mùa vụ sinh sản chịu ảnh hưởng rất lớn bởi các điều kiện môi trường như nhiệt độ, độ mặn Các yếu tố môi trường không chỉ

có vai trò trong việc kích thích thành thục sinh dục, sinh sản, đẻ trứng mà còn đảm bảo cho sự tồn tại và sự phát triển của trứng, phôi và ấu trùng 7 Tu hài có thể tham gia sinh sản sau 10 tháng tuổi và kích thước từ 50 mm trở lên 13

Nhìn chung, sức sinh sản của ĐVTM hai mảnh vỏ rất cao, vì chúng đẻ trứng trong môi trường nước nên tỷ lệ nở và tỷ lệ phát triển thành con giống rất thấp So với một số ĐVTM hai vỏ khác, tu hài có sức sinh sản khá lớn, cá thể có khối lượng từ 80- 100g thường có 8-10 triệu trứng/cá thể 5 Tu hài đẻ nhiều lần trong một mùa vụ sinh sản nên sức sinh sản tuyệt đối của tu hài thấp, thường chỉ đạt 1-1,5 triệu trứng/cá thể/lần đẻ 7

1.2 Tình hình nghiên cứu về tu hài trên thế giới và Việt Nam

1.2.1 Tình hình nghiên cứu trên thế giới

Do sản lượng tu hài chiếm tỉ lệ nhỏ trong các loài ĐVTM hai mảnh vỏ khai thác hàng năm của các nước, nên tu hài chưa được chú ý nghiên cứu Cho đến nay, các tài liệu công bố về tu hài trên thế giới rất ít và tập trung chủ yếu về đặc điểm phân loại và phân bố, sản xuất giống chỉ mới phát triển ở Trung Quốc, Philipine [7]

Theo Phạm Thược (2008) thu thập thông tin từ khoa Sinh thái Trường Đại học Puget Sound (Mỹ), tu hài (có tên tíếng Anh là Geoduck) sống tới 40 năm và nặng tới 9kg, trung bình là 7,15 pound (=3.217,5gam) và vùng Puget Sound có trữ lượng khoảng

109 triệu con tu hài – là vùng có mật độ cao nhất của Hoa Kỳ (tuy nhiên tác giả đã không nói rõ tên loài) Cũng theo nguồn thông tin này, ở Mỹ người ta gọi loài này là

“King Clam” và được coi là một loài đặc sản Từ đây tu hài còn được xuất sang Đài Loan, Nhật Bản, Trung Quốc, Hồng Kông Người ta cũng khuyến cáo khi sử dụng tu hài làm thực phẩm phải tìm hiểu cẩn thận về vùng nuôi bởi vì trong thịt tu hài và một số động vật 2 mảnh vỏ khác thường có độc tố SPS – làm tê liệt thần kinh [10]

Năm 1999, Viện nghiên cứu Hải sản Sơn Đông (Trung Quốc) bắt đầu nghiên cứu và cho đẻ nhân tạo tu hài thành công Năm 2001, trong chương trình hợp tác giữa

Mỹ với Trung Quốc đã sản xuất được 3 triệu tu hài giống Hiện nay ở Trung Quốc nghề nuôi tu hài rất phát triển [10]

1.2.2 Tình hình nghiên cứu ở Việt Nam

Ở Việt Nam, quy trình công nghệ sản xuất giống và nuôi thương phẩm tu hài đã được xây dựng và ứng dụng, thúc đẩy sản xuất giống và nuôi tu hài thương phẩm phát triển mạnh mẽ ở các tỉnh Hải Phòng, Quảng Ninh, Khánh Hòa Tuy nhiên, hiện nay dịch bệnh đã làm tu hài nuôi chết hàng loạt, hầu hết hộ dân và các trang trại nuôi phá

dỡ lồng bè, thay đổi đối tượng nuôi, hoặc bỏ hoang bè bãi nuôi [7, 12]

1.2.2.1 Sản xuất giống nhân tạo tu hài

Các công trình nghiên cứu về sản xuất giống tu hài gồm có các tác giả: Lê Xân, Hoàng Nhật Sơn, Hoàng Hải (2001); Hà Đức Thắng, Hà Đình Thùy (2004); Trần Trung Thành (2008), Ngô Anh Tuấn (2012) Trong đó, các công trình nghiên cứu của

Hà Đức Thắng, Hà Đình Thùy (2004) và Trần Trung Thành (2008) và Ngô Anh Tuấn (2012) là tương đối đầy đủ Nghiên cứu trên đã tiến hành từ khâu lựa chọn đàn bố mẹ, nuôi vỗ thành thục, kích thích đẻ trứng và phóng tinh, thu trứng đã thụ tinh và ương nuôi đến giai đoạn sống đáy, quản lý bể ương, phương pháp thu và ương ấu trùng xuống đáy Qua các công trình nghiên cứu trên quy trỉnh sản xuất giống tu hài có thể tóm tắt như sau:

- Tuyển chọn tu hài bố mẹ: tu hài bố mẹ phải đạt kích thước chiều dài vỏ lớn hơn 63 mm; khối lượng 80 – 100 g/con Chọn cá thể khỏe mạnh, vỏ không bị dập nát Khi nhấc lên khỏi mặt nước phần thịt giữa 2 mảnh vỏ khép lại kín, khi thả xuống nước chân đào nhanh chóng được thò ra để đào lỗ ẩn mình vào trong nền đáy.[7, 11]

- Nuôi vỗ thành thục: tu hài bố mẹ khi bắt được ở ngoài tự nhiên đưa về thì cho

đẻ ngay Nếu không có hiện tượng phóng tinh và trứng thì phải nuôi vỗ để tu hài thành thục và phát dục với mật độ nuôi 15 con/m2, cho ăn 1 ngày 2 lần (buổi sáng và buổi chiều) thức ăn chính là tảo đơn bào, mật độ tảo 250.000 – 300.000 tế bào/mL [7, 11]

- Nghiên cứu kích thích phóng tinh và đẻ trứng tu hài: Các phương pháp được sử dụng bao gồm gây sốc nhiệt độ, sốc độ mặn, để khô trong bóng tối và kích thích đẻ bằng

áp lực thủy động (dòng chảy), phương pháp xử lý bằng hóa chất như dùng ammonium hydroxide, tia cực tím, tiêm serotonin vào cơ của con bố mẹ, Trong đó phương pháp kích thích nhiệt và kết hợp dòng chảy là phương pháp cho hiệu qủa cao nhất [8]

- Mật độ ương nuôi ấu trùng chữ D là 10-20 con/mL, mật độ này giảm dần trong qúa trình ương và đến giai đoạn sống đáy còn 3 con/mL [8]

- Thức ăn sử dụng cho ương nuôi ấu trùng là các loài tảo đơn bào như

Platymonas sp, Chaetoceros muelleri, Chlorella sp, Isochrysis sp, Nannochloropsis sp,

và Thalassiosira sp Việc sử dụng hỗn hợp các loài tảo đơn bào trong ương nuôi ấu

trùng cho kết quả tốt hơn sử dụng đơn loài Theo Hà Đức Thắng (2004), mật độ tảo cho ăn từ 15.000 – 20.000 tb/mL là phù hợp [8] Tuy nhiên, theo Lê Xân (2010), ấu trùng được cho ăn tảo tươi, 2 lần/ ngày với mật độ tảo 40.000 – 50.000 tế bào/mL/ ngày và tăng dần lên đến mật độ 100.000 – 160.000 tế bào/mL/ngày khi đạt đến cỡ 0,5

cm Mật độ này có thể thay đổi tùy theo khả năng tiêu thụ của ấu trùng [14]

- Tu hài thích nghi với độ mặn từ 17- 48‰, thích hợp nhất từ 25 – 30‰ Ngưỡng nhiệt độ của tu hài được xác định ở 12oC và 37oC, thích hợp 27-30oC Tu hài

là loài tương đối rộng nhiệt và rộng muối so với một số đối tượng động vật thân mềm hai vỏ khác [5]

Kết quả nghiên cứu của các đề tài trên đã được ứng dụng vào sản xuất Từ năm 2004-2006, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I đã thực hiện dự án chuyển giao công nghệ sản xuất tu hài cho tỉnh Quảng Ninh và Hải Phòng Kết quả đến nay T.S Lê Xân đã có năm trại sản xuất giống tu hài ở qui mô lớn, sản xuất và cung cấp giống cho các cơ sở nuôi Sản lượng giống sản xuất khoảng 5 triệu con: trong đó Trại thực nghiệm Cát Bà của Viện NCNTTS I sản xuất được 1 triệu con, tỉ lệ sống tính từ hậu kỳ đến giống cỡ 7-10mm đạt trung bình 5% Từ năm 2007 đến nay Viện nghiên cứu NTTS III đã chuyển giao công nghệ sản xuất giống tu hài cho các tỉnh Khánh Hòa, Bình Định và Phú Yên [7]

Mặc dù có nhiều công trình nghiên cứu về sản xuất giống tu hài được hoàn thành và chuyển giao công nghệ Tuy nhiên, đến nay chất lượng con giống tu hài không

ổn định, tỷ lệ sống thấp trong giai đoạn ấu trùng và giai đoạn xuống đáy, tỷ lệ hao hụt cao trong quá trình vận chuyển và nuôi thương phẩm, dẫn đến tình trạng không đủ số lượng con giống cung cấp cho người nuôi Những khó khăn đó cho thấy một phần là do quy trình sản xuất giống chưa hoàn thiện, thức ăn chưa đảm bảo.[7, 8, 13]

Các công trình nghiên cứu về sử dụng các loài vi tảo làm thức ăn cho ấu trùng nhưng chỉ thí nghiệm ở việc sử dụng thức ăn là một hay nhiều loài tảo, thức ăn là tảo tươi, tổng hợp hay tảo khô, lượng thức ăn sử dụng theo các đối tượng ĐVTM hai mảnh vỏ nói chung, chưa bố trí thí nghiệm cụ thể về lượng thức ăn sử dụng là bao nhiêu thích hợp cho phát triển ấu trùng Giai đoạn ấu trùng chữ D các tác giả trong

nước đều sử dụng thức ăn là các loài tảo đơn bào trong đó có loài tảo Nannochloropsis sp., trong khi trên thế giới các loài ĐVTM hai mảnh vỏ giai đoạn ấu trùng chữ D và suốt giai đoạn ấu trùng nổi tảo Isochrysis sp rất quan trọng, nó vừa có giá trị dinh dưỡng cao và phù hợp với kích cỡ ấu trùng Vì vậy, tảo Isochrysis sp thường được sử dụng đơn loài hay kết hợp với các loài tảo khác làm thức ăn cho ấu trùng [7, 8, 17]

1.2.2.2 Nuôi thương phẩm tu hài

Năm 2001, nghề nuôi thương phẩm tu hài được bắt đầu và phát triển thịnh vượng vào những năm 2007-2010 Tuy nhiên, từ năm 2011- 2013 dịch bệnh đã làm tu hài nuôi chết hàng loạt hầu hết các vùng nuôi tu hài trong cả nước, người nuôi lao đao, nhiều hộ nuôi phải bỏ lồng nuôi, bãi nuôi hoặc chuyển sang đối tượng nuôi khác [12] Một số kết quả nghiên cứu về nuôi thương phẩm tu hài tại Việt Nam như sau:

Năm 2001, Viện Nghiên Cứu NTTS I thử nghiệm nuôi thương phẩm tu hài tại Cát Bà và Vân Đồn Hình thức nuôi lồng treo, đăng chắn trên bãi triều và nuôi trong

ao nước tĩnh Theo Lê Xân (2001), do bước đầu chưa có kinh nghiệm nên kết qủa còn hạn chế Nuôi lồng đạt tỉ lệ sống cao nhưng chi phí nuôi lớn và tu hài chỉ tăng trưởng nhanh đến 3-4 cm, sau đó chậm lại Nuôi trên bãi cát bùn ở khu vực các đảo đạt kết quả không ổn định [13]

Năm 2001, phòng nông nghiệp và phát triển nông thôn huyện Cát Bà đã phối hơp với ngư dân thử nghiệm nuôi tu hài ở khu vực vịnh Lan Hạ (Cát Bà) Kết quả tương đối tốt, sau 120 ngày nuôi, từ cỡ giống 2,5 -3 cm tăng lên 4,5 – 5cm, tỷ lệ sống đạt 60 % Từ đó đến nay diện tích nuôi tu hài liên tục được mở rộng [5]

Tháng 6/2003, Hợp phần SUMA phối hợp với Trung tâm khuyến ngư Quảng Ninh

đã hỗ trợ cho hai hộ dân triển khai nuôi thử nghiệm tu hài thương phẩm tại Bản Sen, thị trấn Vân Đồn (Quảng Ninh) với số lượng giống là 2,5 vạn con, kích cỡ giống 2-3 cm Số giống trên được thả nuôi trong 30 lồng nhựa (kích thước 50x30x20cm) treo trên bè và 2.500 m2bãi triều Kết quả sau 13 tháng nuôi tu hài đạt kích cỡ 45-60 g/con, tỷ lệ sống đạt 33% [5]

giống tu hài từ Hải Phòng vào nuôi tại Hòn Mun Qua thời gian 5 tháng nuôi tu hài từ

cỡ giống 2 - 2,5 cm tăng lên 6 - 8 cm, tỉ lệ sống 43% Tuy nhiên do vận chuyển xa nên tỷ lệ hao hụt lớn So với kết quả nuôi ở Hải Phòng thì tốc độ tăng trưởng của tu hài nuôi ở Khánh Hòa nhanh hơn [7]

Năm 2007 Viện nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản III đã hướng dẫn kỹ thuật nuôi đến người dân các xã trong tỉnh Khánh Hòa và một số địa phương thuộc các tỉnh Bình Định, Phú Yên, đến nay nghề nuôi tu hài ở Khánh Hòa bắt đầu phát triển.[7]

Nghề nuôi Tu hài tại Việt Nam đã phát triển mạnh mẽ ở các tỉnh như Hải Phòng, Quảng Ninh, Phú Yên, Khánh Hòa, Bà Rịa- Vũng Tàu và nghề nuôi tu hài đã

và đang tiếp tục được nhân rộng ra các tỉnh ven biển khác Tuy nhiên, việc đáp ứng nhu cầu về con giống chưa thực sự ổn định cộng với tình hình dịch bệnh nuôi trên tu hài và các đối tượng ĐVTM khác như hầu, vẹm đang là mối lo cho nghề nuôi tu hài thương phẩm [7]

1.2.2.3 Nghiên cứu về bệnh tu hài

Trong sản xuất giống nhân tạo tu hài cũng như các đối tượng hai mảnh vỏ khác, các tác nhân gây bệnh gồm virut, vi khuẩn, nấm, nguyên sinh động vật, giun, động vật giáp xác ký sinh Đặc biệt nấm đỏ và nguyên sinh động vật có thể gây cho ấu trùng chết hàng loạt Bệnh thường xuất hiện vào các tháng 11; 12; và tháng 1, đặc biệt nấm

đỏ, đây là những tháng mùa đông nhiệt độ nước xuống thấp (22 – 25oC) Nguyên sinh động vật cũng rất nguy hiểm đối với ấu trùng tu hài, chúng chui vào ruột những cá thể yếu và ăn hết nội tạng Các loại bệnh trên thường gây chết nhiều nhất ở giai đoạn chữ

D, lúc ấu trùng còn nhỏ sức chịu đựng yếu [7]

Năm 2011, hiện tượng tu hài chết hàng loạt xuất hiện hầu hết các vùng nuôi trong

cả nước, gây thiệt hại nghiêm trọng cho nghề nuôi tu hài thương phẩm Hiện tượng tu hài chết xuất hiện ở mọi kích cỡ từ tu hài giống đến tu hài thương phẩm

Trước hình dịch bệnh ở tu hài Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn cùng với các nhà khoa học đầu ngành đã tổ chức các cuộc hội thảo về tu hài và triển khai một số nghiên cứu về bệnh tu hài Đề tài “Nghiên cứu dịch bệnh gây chết hàng loạt ở tu hài

(Lutraria philippinarum Reeve, 1854) nuôi tại Việt nam’’ của Viện Nghiên cứu Nuôi

trồng thủy sản I đã đưa ra kết quả rằng hiện tượng tu hài chết có liên quan đến mầm bệnh và diễn biến có xu hướng lây lan (phát triển thành dịch), tác nhân chính gây chết hàng loạt tu hài nuôi là virus gây sưng vòi cộng thêm độ pH, độ mặn gây chết Nguyên nhân do kỹ thuật nuôi, quy hoạch, kiểm soát con giống Hiện nay, mật độ nuôi quá dày ảnh hưởng môi trường và thức ăn Vì vậy, quy hoạch nuôi tu hài cần tránh vùng triều cao, đảm bảo lượng thức ăn tự nhiên cho tu hài Bên cạnh đó cần kiểm soát con giống

Hiện nguồn giống tu hài chưa được kiểm soát, nên cần có phương pháp chẩn đoán vius Giải pháp lâu dài là phải chuẩn bị nguồn tu hài bố mẹ có khả năng chống chịu tốt môi trường, khả năng kháng bệnh tốt [12]

Từ thực tiễn đã nêu cho thấy, đầu tư nâng cao chất lượng con giống là giải pháp nhằm tăng cường sức đề kháng, giảm thiểu nguy cơ dịch bệnh, tăng tỷ lệ sống tu hài thương phẩm và tăng thu nhập cho người nuôi Để nâng cao chất lượng con giống tu hài cần phải có nhiều nghiên cứu hơn nữa về các loại thức ăn có giá trị dinh dưỡng cao, lượng thức ăn tối ưu cho sự phát triển của ấu trùng và con giống

1.3 Sử dụng vi tảo trong sản xuất giống các đối tượng ĐVTM

Trong tự nhiên vi tảo được biết đến bởi vai trò dinh dưỡng của nó như là mắt xích đầu tiên trong chuỗi thức ăn của các loài động vật thủy sinh Đối với ĐVTM hai mảnh vỏ vi tảo là nguồn thức ăn chủ yếu trong suốt vòng đời, tùy theo các giai đoạn phát triển khác nhau mà chúng cần sử dụng các loài vi tảo khác nhau với kích cỡ và thành phần dinh dưỡng phù hợp Vì vậy, trong sản xuất giống các đối tượng ĐVTM nuôi tảo là khâu đầu tiên và cơ bản nhất [20]

Hiện nay trên thế giới đã có trên 40 loài tảo khác nhau được phân lập, nuôi để làm các chủng tảo thuần chủng trong các hệ thống thâm canh phục vụ cho nghề nuôi

thủy sản Các loài được sử dụng nhiều nhất là: Skeletonema costatum, Chaetoceros sp, Phaeodactylum tricornutum, Thalassiosira pseudonana, Isochrysis galbana, Pavlova lutheri, Chlorella sp, Dunaliella sp, Nannochloris atomus, Tetraselmis chuii, Nannochloropsis oculata, v.v [1]

Tuy đã có nhiều nghiên cứu sử dụng men bánh mì, vi khuẩn, thức ăn dạng vi hạt, tảo dạng dịch sệt, dạng bánh, tảo khô hay đông lạnh trong sản xuất giống ĐVTM nhưng không thể thay thế được tảo tươi [16] Nhu cầu sử dụng vi tảo làm thức ăn cho ĐVTM thay đổi tuỳ theo giai đoạn sinh trưởng Giai đoạn ấu trùng đòi hỏi nguồn tảo phải đủ chất lượng về mặt thành phần hóa sinh và sạch khuẩn Giai đoạn hậu ấu trùng chất lượng tảo có thể thấp hơn nhưng thành phần hoá sinh vẫn phải đáp ứng được nhu cầu dinh dưỡng của đối tượng nuôi Giai đoạn bố mẹ đòi hỏi cung cấp tảo phải đủ cả

về số lượng cũng như chất lượng Do đó, để sản xuất giống và nuôi các đối tượng ĐVTM luôn đòi hỏi phải sản xuất một lượng tảo lớn để đủ làm thức ăn cho nuôi vỗ bố

mẹ, ương ấu trùng, con giống và nuôi thương phẩm [15]

Bảng 1 1 Mức độ sử dụng của các loài tảo trong sản xuất giống động vật thân mềm [1]

Tần suất sử dụng (%) theo các tác giả Tên loài

các nghiên cứu đều xác định mỗi loài tảo khác nhau thì chúng có giá trị dinh dưỡng khác nhau, một loài tảo có thể thiếu ít nhất là một thành phần dinh dưỡng cần thiết, ví

dụ tảo I galbana có nhiều DHA, ít EPA nhưng ngược lại khuê tảo chứa nhiều EPA và

ít DHA Vì vậy, việc sử dụng hỗn hợp các loài tảo làm thức ăn cho động vật thuỷ sản

sẽ cung cấp chất dinh dưỡng tốt hơn cho chúng Tuy nhiên, việc kết hợp các loài tảo làm thức ăn phải được hợp lý cả về tỷ lệ và thành phần thích ứng với nhu cầu dinh dưỡng của từng đối tượng nuôi cụ thể thì mới đem lại hiệu quả cao, ví dụ sử dụng đơn

loài C calcitrans cho ấu trùng hầu (Crassostrea gigas) tốc độ sinh trưởng nhanh hơn

so với sử dụng hỗn hợp I galbana + C calcitrans [9]

Vi tảo là nguồn cung cấp vitamin quan trọng cho các đối tượng nuôi thuỷ sản, ngoài thành phần acid béo không no các vi tảo biển còn rất giàu vitamin Mười loại vitamin đã được tìm thấy ở vi tảo, trong đó có hàm lượng vitamin C (0,11 – 1,62% khối lượng khô), B12 tiếp theo là các vitamin A,D,E Hàm lượng acid ascorbic (vitamin C) trong vi tảo có sự khác nhau rất lớn giữa các loài (16 mg/g khối lượng khô ở tảo

C.muelleri; 1,1 mg/g ở tảo T pseudonana) Còn lại các vitamin khác (thiamin – B1,

riboflavin – B2, pyridoxine – B6, cyanocobalamin – B12, biotin, pyridoxine) chỉ khác nhau từ 2 – 4 lần giữa các loài tảo Điều này chứng tỏ rằng, việc lựa chọn một cách cẩn thận các loại vi tảo kết hợp với nhau sẽ cung cấp đầy đủ vitamin cho chuỗi thức ăn của động vật nuôi thủy sản [22]

Bảng 1 2: Kích thước và chất lượng dinh dưỡng của một số loài các vi tảo [22]

Gía trị dinh dưỡng

Các đặc trưng khác

Chế độ ăn phù hợp cho ấu trùng các loài hai mảnh vỏ giai đoạn đầu của ấu trùng chữ D và khi kích thước ấu trùng >125 µm chiều dài là hỗn hợp các loài tảo đơn

bào: Chaetoceros calcitrans; Thalassiosira pseudonana (3H); Isochrysis galbana (hoặc 'Tahiti Iso'); và Tetraselmis suecica Trong đó, các loài Chaetoceros calcitrans hoặc Thalassiosira pseudonana cho ấu trùng có kích thước > 55 µm hoặc Chaetoceros muelleri cho ấu trùng có kích thước > 90 µm, Tetraselmis suecica cho ấu trùng có

kích thước > 120 µm chiều dài Lượng thức ăn được sử dụng là 100 tế bào/ µL (tương đương 100.000 tế bào/ mL) [17]

Ấu trùng của nhiều loài ĐVTM hai mảnh vỏ có sở thích thức ăn như nhau Sử dụng kết hợp các loài tảo lông roi và tảo silic sẽ cung cấp thành phần thức ăn cân bằng tốt làm gia tăng tốc độ phát triển của ấu trùng tới giai đoạn biến thái hơn là khẩu phần

ăn đơn loài Lượng thức ăn cung cấp phụ thuộc vào mật độ nuôi ấu trùng Kết luận này được chứng minh bởi Uting (1991) khi nghiên cứu khẩu phần ăn ở hầu Thái Bình

Dương (Crassostrea gigas) và nghêu với mật độ 10.000 ấu trùng / lít, liều lượng thức

ăn thường được cung cấp như sau:

+ Thức ăn thích hợp cho ấu trùng chữ D là một hỗn hợp của tảo Chaetoceros và tảo Isochrysis với khẩu phần phù hợp nhất tương ứng là 125 tế bào/µL và 50 tế bào/

µL Nếu cho ăn chế độ ăn đơn loài Isochrysis hoặc Chaetoceros thì mật độ thức ăn

tương ứng 50 tế bào / µL và 250 tế bào / µL

+ Ấu trùng lớn hơn 120 µm chiều dài vỏ thức ăn cho phát triển tốt là hỗn hợp

của ba loài tảo với tỷ lệ: 33 tế bào / µL Isochrysis + 83 tế bào / µL Chaetoceros + 3,3

tế bào / µL Tetraselmis [17, 18]

Bảng 1 3: Số lượng tế bào tảo ăn mỗi ngày cho mỗi ấu trùng của ba loài hai mảnh vỏ so với kích thước chiều dài vỏ của chúng Giá trị được thể hiện là các tế

bào tảo có kích thước tương đương kích thước tảo I galbana [17]

Các loài ấu trùng hai mảnh vỏ Kích thước chiều

4.400 6.000 8.000 10.200 12.800

19.200 28.200 37.300 46.300 55.400 64.500 73.500 82.600 91.600 100.600 109.800 118.800

15.700 18.900 22.300 26.000 29.900 29.100 21.900 14.900

Thức ăn đối với ấu trùng spat trong trại giống phải đảm bảo cung cấp đầy đủ như trong nuôi ấu trùng nổi Ấu trùng spat trong tuần đầu sau khi chúng xuống đáy, thức ăn sử dụng thường giống với thành phần thức ăn trước khi chúng xuống đáy Khi kích thước ấu trùng tăng lên cần phải đảm bảo đủ số lượng thức ăn, chế độ ăn cho ấu

trùng spat đến con non là tảo Tetraselmis sp và tảo silic như Chaetoceros muelleri, Thalassiosira weissflogii và Skeletonema costatum Loài vi tảo có giá trị cao các acid béo không no (HUFA) DHA (22:6n3) như Isochrysis galbana quan trọng trong suốt

quá trình phát triển của ấu trùng nổi thì không cần thiết sử dụng trong nuôi ấu trùng

spat Khẩu phần ăn của ấu trùng spats được tính toán với tỉ lệ 50% của loài tảo Tetraselmis và 50% của một trong các loài tảo silic ở trên Nhu cầu thức ăn hàng ngày

được tính bằng 1x106 tế bào/ mL tảo có kích thước tế bào tương đương tảo

Tetraselmis.[19]

Trong các trại sản xuất giống các loài động vật hai mảnh vỏ người ta tính toán lượng thức ăn dựa trên sự tăng trưởng về kích thước chiều dài vỏ và khối lượng của ấu trùng Cụ thể, khi ương 600 gam ấu trùng spat của hầu hoặc sò sẽ cần bể ương 3.000 lít Lượng thức ăn được tính toán cho hệ thống là 57 tế bào/ µL ( 57.000 tb/mL) Như vậy, ương 200 gam khối lượng tươi ấu trùng hầu cần thể tích 1.000 lít (0,2 kg/m3) Với

khối lượng mỗi ấu trùng là 0,3 gam thì 1.000 ấu trùng spat sẽ là 300 gam, thể tích bể ương sẽ là 1.500 lít Với tính toán này khi ấu trùng đạt chiều dài vỏ 5mm khối lượng của mỗi ấu trùng sẽ là 32 gam và 1.000 ấu trùng spat sẽ là 32.000 gam (32kg), thể tích

bể lúc này phải là 160.000 lít Bảng tính toán thể tích ương và thức ăn cho ấu trùng spat ĐVTM hai mảnh vỏ được thể hiện ở Bảng 1.4 [19]

Bảng 1 4: Thể tích nước và thức ăn hàng ngày của ấu trùng spat ĐVTM hai mảnh

vỏ các kích cỡ khác nhau khi nuôi ở 200 gam khối lượng tươi/1000 lít (0,2 kg/m 3 ) [19]

Chiều dài

vỏ

(mm)

Khối lượng (mg/spat)

Số cá thể/

200g

Thể tích bể (lít)/1.000 spat

Thức ăn (lít*/1.000spat) 0,3

2,0 x1072,9x 106666.700 90.900 28.700 11.765 6.270

50

350 1.500 11.000 34.840 85.000 160.000

2,9 20,0 85,7 628,5 1.999 4.856 9.130

*

Lượng thức ăn được tính toán dựa trên mật độ tảo Tetraselmis thu hoạch là 1x10 6 tế

bào/ml, với mật độ thức ăn cho ấu trùng là 57 tế bào/ µL

Chương 2 - PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

2.1 Đối tượng, thời gian và địa điểm nghiên cứu

Đối tượng nghiên cứu: tu hài (Lutraria rhynchaena Jonas, 1844)

Hình 2 1: Hình thái bên ngoài của tu hài ( Lutraria rhynchaena Jonas,1844)

Thời gian nghiên cứu: từ tháng 6 năm 2013 đến tháng 5 năm 2014

Địa điểm nghiên cứu: Phòng sinh học thực nghiệm - Viện Nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản III

2.2 Phương pháp nghiên cứu

Hình 2 2 Sơ đồ nội dung nghiên cứu

Ảnh hưởng của thức ăn, chế độ cho

ăn lên sinh trưởng, tỷ lệ sống của

ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

Ảnh hưởng của thức ăn, chế độ cho

ăn lên sinh trưởng, tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5mm

tỷ lệ sống của

ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

Thí nghiệm 3:

Ảnh hưởng của thức ăn lên sinh trưởng, tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5mm

Thí nghiệm 4:

Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên sinh trưởng,

tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5mm

NỘI DUNG NGHIÊN CỨU

KẾT LUẬN

2.2.1 Bố trí thí nghiệm ương nuôi ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

Hình 2 3: Bố trí thí nghiệm ương nuôi ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

Thí nghiệm được bố trí trong các bể composite hình phễu thể tích 100 lít

Mỗi nghiệm thức thí nghiệm được lặp lại 3 lần

2.2.1.1 Thí nghiệm 1: Ảnh hưởng của thức ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

Thí nghiệm được bố trí gồm bốn nghiệm thức (NT) thức ăn khác nhau (theo sơ

đồ khối Hình 2.3) Với mật độ tảo sử dụng như nhau trong các nghiệm thức là: 15.000

tế bào/mL; 20.000 tb/mL; 25.000 tb/mL; 30.000 tb/mL; 35.000 tb/mL tương ứng với các ngày tuổi của ấu trùng là: 1-3; 4-5; 6-7; 8-9; 10- đến giai đoạn ấu trùng spat Thí nghiệm theo các nghiệm thức (NT) sau:

NT 1: từ 1-6 ngày tuổi thức ăn là các loài tảo: Isochrysis galbana: Chaetoceros calcitrans tỷ lệ 1:1, từ ngày tuổi thứ 7 đến ấu trùng spat: Isochrysis galbana: Chaetoceros calcitrans: Tetraselmis chuii: tỷ lệ 1:1:1

NT 2: từ 1-6 ngày tuổi thức ăn là các loài tảo: Isochrysis galbana: Skeletonema costatum: tỷ lệ 1:1; từ ngày tuổi thứ 7 đến ấu trùng spat: Isochrysis galbana: Skeletonema costatum: Tetraselmis chuii tỷ lệ 1:1:1

NT 3: từ 1-6 ngày tuổi thức ăn là các loài tảo: Dicrateria sp: Chaetoceros calcitrans: tỷ lệ 1:1; từ ngày tuổi thứ 7 đến ấu trùng spat: Dicrateria sp: Chaetoceros calcitrans: Tetraselmis chuii tỷ lệ 1:1:1

TN 4: từ 1-6 ngày tuổi thức ăn là các loài tảo: Dicrateria sp: Skeletonema costatum: tỷ lệ 1:1; từ ngày tuổi thứ 7 đến ấu trùng spat: Dicrateria sp: Skeletonema costatum: Tetraselmis chuii tỷ lệ 1:1:1

Hình 2 4: Sơ đồ khối nội dung nghiên cứu ảnh hưởng của thức ăn lên sinh

trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

Ấu trùng sống nổi Mật độ ương 10 con/mL

Isochrysis galbana:

Chaetoceros calcitrans (1:1)

Isochrysis galbana:

Skeletonema costatum (1:1)

Dicrateria sp:

Chaetoceros calcitrans (1:1)

Dicrateria sp: Skeletonema costatum (1:1)

Thu thập, xử lý số liệu Nhận xét, kết luận

Isochrysis galbana:

Chaetoceros calcitrans:

Tetraselmis chuii: ( 1:1:1)

Isochrysis galbana:

Skeletonema costatum:

Tetraselmis chuii: ( 1:1:1)

Dicrateria sp:

Chaetoceros calcitrans:

Tetraselmis chuii: ( 1:1:1)

Dicrateria sp: Skeletonema costatum: Tetraselmis chuii: ( 1:1:1)

2.2.1.2 Thí nghiệm 2: Ảnh hưởng cuả chế độ cho ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

Từ kết quả của thí nghiệm 1, loại thức ăn tốt nhất sẽ được sử dụng cho thí nghiệm này với 4 chế độ ăn khác nhau Chế độ ăn 1 là mật độ thức ăn của thí nghiệm trên (thí nghiệm 1) và nhân lên 2, 3 và 4 lần cho 3 chế độ ăn tiếp theo, từ đó đưa ra chế

độ ăn thức ăn (mật độ thức ăn) phù hợp nhất theo ngày tuổi của ấu trùng

Bố trí 4 chế độ ăn như sau:

- Chế độ ăn 1: 15.000; 20.000; 25.000; 30.000; 35.000 tế bào tảo/ mL/ ngày, tương ứng với các ngày tuổi ấu trùng: 1-3; 4-5; 6-7; 8-9; 10- giai đoạn ấu trùng spat

- Chế độ ăn 2: 30.000; 40.000; 50.000; 60.000; 70.000 tế bào tảo/mL/ngày, tương ứng với các ngày tuổi ấu trùng: 1-3; 4-5; 6-7; 8-9; 10- giai đoạn ấu trùng spat

- Chế độ ăn 3: 45.000; 60.000; 75.000; 90.000; 105.000 tế bào tảo/mL/ngày, tương ứng với các ngày tuổi ấu trùng: 1-3; 4-5; 6-7; 8-9; 10- giai đoạn ấu trùng spat

- Chế độ ăn 4: 60.000; 80.000; 100.000; 120.000; 140.000 tế bào tảo/mL/ngày, tương ứng với các ngày tuổi ấu trùng: 1-3; 4-5; 6-7; 8-9; 10- giai đoạn ấu trùng spat

Hình 2 5: Sơ đồ khối nội dung nghiên cứu ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên sinh

trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

Thu thập, xử lý số liệu Nhận xét, kết luận

2.2.2 Bố trí thí nghiệm ương nuôi ấu trùng tu hài spat đến con giống 5 mm

Khi ấu trùng tu hài chuyển sang giai đoạn spat thì tiến hành ương nuôi trong hệ thống nước trồi (upwelling) Trong mỗi bể thí nghiệm hình phễu thể tích 100 lít được đặt một ống nhựa PVC đường kính 15cm, cao 30 cm, dưới đáy ống nhựa gắn lưới 220

µm để cho ấu trùng không lọt được xuống dưới bể, trong mỗi ống PVC nuôi 900 ấu trùng spat Nước từ dưới bể đi lên sẽ cung cấp thức ăn cho ấu trùng trong ống nhựa bằng lực hút của khí chạy trong ống nhựa PVC nhỏ đường kính 2cm với lưu tốc dòng chảy 40ml/phút/gam ấu trùng

Hình 2 6: Hệ thống nước trồi (upwelling) nuôi ấu trùng tu hài spat đến con giống

Mật độ ương: 5 con/cm2 , tươ, và không sử dụng cát như phương pháp ương truyền thống

Lượng thức ăn được chia cho ấu trùng ăn trong mỗi nghiệm thức là: 2 lần/ ngày (sáng và chiều)

Kiểm tra các yếu tố môi trường: nhiệt độ (oC), pH, độ mặn (‰): 2 lần/ ngày vào lúc 8 giờ sáng và 2 giờ chiều

Xác định tốc độ tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng 7 ngày / lần

Chế độ thay nước : thay nước 100%/2 ngày/ lần

Mỗi nghiệm thức thí nghiệm lặp lại 3 lần

2.2.2.1 Thí nghiệm 3: Ảnh hưởng của thức ăn lên lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống đáy (spat) đến con giống 5mm

Mật độ thức ăn ban đầu 100.000 tb/mL và tăng dần lượng thức ăn theo nhu cầu

sử dụng của ấu trùng spat đến con giống 5mm Lượng thức ăn sử dụng trong các nghiệm thức sau như nhau Bố trí thí nghiệm theo các nghiệm thức (NT) sau:

NT1: Isochrysis galbana: Chaetoceros calcitrans:Tetraselmis chuii: tỷ lệ 1:1:1 NT2: Isochrysis galbana: Skeletonema costatum :Tetraselmis chuii: tỷ lệ 1:1:1 NT3: Dicrateria sp: Chaetoceros calcitrans: Tetraselmis chuii: tỷ lệ 1:1:1 TN4: Dicrateria sp: Skeletonema costatum: Tetraselmis chuii: tỷ lệ 1:1:1

Hình 2 7: Sơ đồ nội dung nghiên cứu ảnh hưởng của thức ăn lên sinh trưởng và

tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống đáy (spat) đến con giống 5 mm

2.2.2.2 Thí nghiệm 4: Ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống đáy (spat) đến con giống 5mm

Từ kết quả của thí nghiệm 3, loại thức ăn tốt nhất (các loài tảo) sẽ được sử dụng cho thí nghiệm 4 với 4 chế độ ăn khác nhau được bố trí như sau:

- Chế độ ăn I: 35.000; 40.000; 45.000; 50.000 tế bào tảo/mL/ngày, tương ứng với các thời gian thí nghiệm là: 1-7; 8-14; 15-21; 22 ngày- con giống 5mm

- Chế độ ăn II: 70.000; 80.000; 90.000; 100.000 tế bào tảo/mL/ngày tương ứng với các thời gian thí nghiệm là: 1-7; 8-14; 15-21; 22 ngày- con giống 5mm

- Chế độ ăn III: 105.000; 120.000; 135.000; 150.000 tế bào tảo/mL/ngày, tương ứng với các thời gian thí nghiệm là: 1-7; 8-14; 15-21; 22 ngày- con giống 5mm

Ấu trùng tu hài spat Mật độ ương 5 con/cm2

Skeletonema costatum:

Tetraselmis chuii (1:1:1)

NT III

Dicrateria sp:

Cheatoceros calcitrans:

Tetraselmis chuii (1:1:1)

NT IV

Dicrateria sp:

Skeletonema costatum:

Tetraselmis chuii (1:1:1)

Thu thập, xử lý số liệu Nhận xét, kết luận

- Chế độ ăn IV: 140.000; 160.000; 180.000; 200.000 tế bào tảo/mL/ngày, tương ứng với các thời gian thí nghiệm là: 1-7; 8-14; 15-21; 22 ngày- con giống 5mm

Hình 2 8: Sơ đồ nội dung nghiên cứu ảnh hưởng của chế độ cho ăn lên sinh trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn spat đến con giống 5 mm

2.3 Phương pháp thu thập và phân tích, xử lý số liệu

2.3.1 Phương pháp thu thập số liệu

a Phương pháp thu mẫu:

Đối với ấu trùng nổi: thu mẫu xác định kích thước và tỷ lệ sống 2 ngày/lần theo định kỳ thay nước Thay nước 100% , lọc ấu trùng qua lưới lọc 60, 90, 120 hoặc 150

µm tùy theo kích cỡ ấu trùng, cho ấu trùng vào xô 5 lít, lấy ngẫu nhiên 10 mL ấu trùng trong xô pha loãng 100 mL và sau đó lấy 10 mL ấu trùng đã được pha loãng để đo và tính tỷ lệ sống, số mẫu đo là 30 cá thể Qúa trình lấy mẫu lặp lại 3 lần và tính giá trị trung bình Mẫu được đo, đếm trên kính hiển vi

Đối với ấu trùng đáy thu mẫu xác định kích thước và tỷ lệ sống 7 ngày/lần Với mẫu có kích thước bé sử dụng kính hiển vi đo kích thước Khi kích thước đạt trên

45.000 tb/ml 90.000 tb/ml 135.000 tb/ml 180.000 tb/ml

50.000 tb/ml 100.000 tb/ml 150.000 tb/ml 200.000 tb/ml

40.000 tb/ml 80.000 tb/ml 120.000 tb/ml 160.000 tb/ml

70.000tb/ml 105.000 tb/ml 140.000 tb/ml 35.000 tb/ml

Ấu trùng tu hài spat Mật độ ương: 5con/cm2

Ngày TN

15-21

Ngày TN 22-

tu hài 5mm

2mm sử dụng thước kẹp có chia độ để đo Xác định tỷ lệ sống của ấu trùng bằng cách tính tổng lượng ấu trùng sống, sau đó lấy 1 gam để đếm rồi nhân với tổng khối lượng

ấu trùng thu được và tính tỷ lệ sống, việc lấy mẫu được lặp lại 3 lần và tính giá trị trung bình

b Xác định các thông số môi trường :

Hàng ngày kiểm tra yếu tố môi trường vào lúc 7h sáng và 14h chiều

Nhiệt độ (oC) đo bằng nhiệt kế thủy ngân, độ mặn (‰): xác định bằng khúc xạ

kế, pH xác định bằng test pH

c Các công thức tính toán

V2: Thể tích tảo cho ăn (mL); V1: Thể tích nước chứa ấu trùng (mL)

N1: Mật độ tảo cần cho ăn (tb/mL); N2: Mật độ tảo thu hoạch từ nuôi sinh khối (tb/mL)

- Tốc độ tăng trưởng về kích thước : Lt = (L2-L1)/(T2- T1) (μm/ ngày),

Trong đó: Lt: tốc tăng trưởng vể chiều dài (μm/ ngày)

L1,L2: là chiều dài tại thời điểm trước và sau (mm)

T2 – T1: Khoảng thời gian giữa hai lần đo

- Công thức tính tỷ lệ sống:

Trong đó: A: Số lượng cá thể sau thời gian nuôi

B: Số lượng cá thể tại thời điểm bắt đầu thí nghiệm

2.3.2 Phương pháp xử lý số liệu

Số liệu ban đầu được xử lý sơ bộ bằng phần mềm MS-Excel 2003

Số liệu có giá trị trung bình sẽ được phân tích và xử lý bằng phần mềm SPSS Version 16.0 trong phép phân tích phương sai một yếu tố (One Way ANOVA), ở mức ý nghĩa p< 0,05 để so sánh giá trị trung bình về sinh trưởng và tỷ lệ sống

Chương 3 - KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN

3.1 Một số yếu tố môi trường trong quá trình thí nghiệm

Trong giới hạn nhiệt độ thích hợp cho sự phát triển của tu hài nói riêng và sinh vật nói chung, khi nhiệt độ môi trường tăng lên thì tốc độ trao đổi chất trong cơ thể của chúng sẽ tăng lên Do đó, trong quá trình ương ấu trùng tu hài, nhiệt độ là một trong những yếu tố có ảnh hưởng lớn đến tốc độ tăng trưởng và tỷ lệ sống

Bảng 3 1: Một số yếu tố môi trường trong các thí nghiệm

Yếu tố môi trường Thí nghiệm 1 Thí nghiệm 2 Thí nghiệm 3 Thí nghiệm 4

- Nhiệt độ: Dao động trong khoảng từ 23 – 29,5oC nằm trong khoảng nhiệt thích hợp của ấu trùng tu hài

- Độ mặn: Nước biển sử dụng được lấy ngoài biển vào qua hệ thống lọc cơ học

để loại bỏ các tạp chất, độ mặn ổn định trong khoảng 31 - 34‰, đảm bảo cho ấu trùng phát triển tốt

- pH: Dao động pH trong bể thí nghiệm không lớn và nằm trong khoảng thích hợp từ 7,8 – 8,0 cho sự phát triển của ấu trùng tu hài

Trong quá trình thực hiện các thí nghiệm, các yếu tố môi trường đều thích hợp đảm bảo quá trình sinh trưởng và phát triển của ấu trùng tu hài Ở thí nghiệm 1, vào ngày nuôi thứ 10 đến ngày nuôi thứ 13 nhiệt độ buổi sáng chuyển xuống thấp hơn (từ

25 oC xuống 23 oC) làm cho ấu trùng ở nghiệm thức 2 (I gabana +S costatum +T chuii) và nghiệm thức 4 (Dic sp + S costatum +T chuii) bị hao hụt hơn so với nghiệm thức 1 (I gabana +C calcitrans + T chuii) và nghiệm thức 3 (Dic sp + C calcitrans + T chuii) Tuy có sự giảm nhiệt độ đột ngột nhưng nhiệt độ vẫn trong

ngưỡng nhiệt phát triển của ấu trùng tu hài, cho nên ở lô cho ăn thức ăn phù hợp ấu trùng tu hài vẫn sinh trưởng và phát triển tốt

3.2 Kết quả thí nghiệm ương nuôi ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

3.2.1 Thí nghiệm 1: Ảnh hưởng của thức ăn lên tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

3.2.1.1.Ảnh hưởng của thức ăn lên tăng trưởng của ấu trùng tu hài

Các loài tảo sử dụng làm thức ăn cho ấu trùng tu hài được nuôi trong túi nhựa

220 lít đặt trong phòng có hệ thống điều hòa nhiệt độ, với hệ thống đèn chiếu sáng suốt

24 giờ, đảm bảo tảo sạch và thu tảo ở pha phát triển để cho ấu trùng ăn

Thí nghiệm với 4 nghiệm thức thức ăn khác nhau, trong đó tảo Tetraselmis chuii được sử dụng cả 4 nghiệm thức và vì tảo này có kích thước lớn nên ấu trùng từ 7

ngày tuổi mới cho sử dụng Kết quả thu được tăng trưởng về chiều dài của ấu trùng tu hài từ giai đoạn chữ D đến giai đoạn Spat được thể hiện ở Hình 3.1 và Bảng 3.2:

Bảng 3 2: Tăng trưởng về kích thước chiều dài của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi ở các nghiệm thức thức ăn

Ghi chú: Số liệu trình bày trong bảng là giá trị trung bình(TB) ± độ lệch chuẩn (SE) Các ký tự mũ chữ cái khác nhau trong cùng một hàng thể hiện sự sai khác có ý nghĩa về mặt thống kê (p<0,05) L : chiều dài trung bình; L t : tốc độ tăng trưởng tuyệt đối/ ngày * Loài tảo T chuii trong các thí nghiệm chỉ được sử dụng làm thức ăn khi ấu trùng 7 ngày tuổi

Với kích thước ấu trùng tu hài giai đoạn chữ D ban đầu ở 4 nghiệm thức giống nhau chiều dài trung bình 88,7 ± 1,15 µm, trong điều kiện nuôi như nhau Trong 6 ngày nuôi đầu thức ăn cho ấu trùng ở mỗi nghiệm thức là hỗn hợp 2 loài tảo khác nhau, kết quả thu được sau 5 ngày nuôi ấu trùng có sự khác nhau về kích thước chiều dài Nghiệm thức 1 ấu trùng đạt chiều cao nhất (149 µm), ấu trùng ở nghiệm thức 4 đạt

chiều dài thấp nhất (139,7 µm) Từ ngày nuôi thứ 7 loài tảo Tetraselmis chuii được

thêm vào cả 4 nghiệm thức, và sau 17 ngày nuôi ấu trùng ở nghiệm thức 1 đạt chiều dài cao nhất (320 µm), ấu trùng ở nghiệm thức 4 đạt chiều dài thấp nhất (267 µm) Tốc

độ tăng trưởng tương đối đạt cao nhất là 13,65 µm/ngày ở nghiệm thức 1, tiếp đến là tốc độ tăng trưởng ở nghiệm thức 2 đạt 12,38 µm/ngày Tốc độ tăng trưởng tương đối thấp nhất là 10,91 µm/ngày ở nghiệm thức 3

Kết quả kiểm định cho thấy có sự sai khác về tăng trưởng chiều dài vỏ ấu trùng

ở 4 nghiệm thức có ý nghĩa thống kê (p < 0,05) Tuy nhiên, kết quả kiểm định giữa từng cặp nghiệm thức cho thấy: nghiệm thức 1 và nghiệm thức 3 tăng trưởng chiều dài không có sự sai khác có ý nghĩa thống kê (p > 0,05) Nghiệm thức 2 và nghiệm thức 4 tăng trưởng chiều dài không có sự sai khác có ý nghĩa thống kê (p > 0,05)

Kết quả thí nghiệm với 4 nghiệm thức thức ăn trên thì ở nghiệm thức 1 thức ăn

gồm Isochrysis galbana + Chaetoceros calcitrans + Tetraselmis chuii là tốt nhất cho

ấu trùng tu hài, tiếp đến là nghiệm thức thức ăn gồm Dicrateria sp + Chaetoceros calcitrans + Tetraselmis chuii

Từ kết quả cho thấy, trong sản xuất giống nhân tạo tu hài nếu trường hợp không

có tảo Isochrysis gabana cho ấu trùng ăn chúng ta có thể sử dụng tảo Dicrateria sp thay thế Tảo Dicrateria sp là 1 loài tảo thuộc lớp Prymnesiophyceae, bộ

Isochrysidales, họ Isochrysidaceae, chi Dicrateria, với kích thước 3-3,5µm Theo Nguyễn Thị Xuân Thu và cộng tác viên, lớp Prymnesiophyceae rất giàu một hoặc cả hai loại acid béo không no DHA và EPA Từ 0,2-11% DHA có trong tảo thuộc lớp

Prymnesiophyceae [9] Như vậy, ngoài tảo Isochrysis gabana, tảo Dicrateria sp cũng

có giá trị dinh dưỡng tốt cho sự phát triển của ấu trùng tu hài Đối với nghiệm thức sử

dụng thức ăn trong đó có tảo Chaetoceros calcitrans ấu trùng tăng trưởng tốt hơn so với nghiệm thức trong đó có tảo Skeletonema costatum Kết quả cho thấy sử dụng hỗn hợp tảo Dicrateria sp + Skeletonema costatum + Tetraselmis chuii không phù hợp, vì

tảo Skeletonema costatum kích thước lớn không phù hợp cho ương ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi Theo Brown (1997) cũng chỉ ra rằng thức ăn cho các đối tượng ĐVTM

phải có sự tương quan giữa kích thước loài tảo và khả năng lọc ở từng giai đoạn của đối tượng đó cũng như giá trị dinh dưỡng của tảo [22]

3.2.1.2.Ảnh hưởng của thức ăn lên tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài giai đoạn sống nổi

Ảnh hưởng của 4 tổ hợp thức ăn khác nhau lên tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài

được thể hiện theo Bảng 3.3 và Hình 3.2:

Bảng 3 3: Tỷ lệ sống của ấu trùng tu hài ở các nghiệm thức thức ăn khác nhau

Tỷ lệ sống của ấu trùng (%) Thời

có ý nghĩa về mặt thống kê (p<0,05) * Loài tảo T chuii trong các thí nghiệm chỉ được

sử dụng làm thức ăn khi ấu trùng 7 ngày tuổi