Vì thế mà vấn đề vệ sinh và đảm bảo chất lượng thực phẩm phải được thực hiện một cách nghiêm túc trong quá trình sản xuất.. Chính nhờ hàm lượng lớn các chất này mà xác định được các tính
Tình hình phát triển của ngành thuỷ sản
Ngành thuỷ sản của của nước ta nói chung và của các nước khác trên thế giới nói riêng một phần được đánh bắt xa bờ ở các vùng biển, một phần được nuôi trồng Sản lượng toàn cầu theo FAO đã biên soạn số liệâu thống kê chi tiết về số lượng nuôi trồng thuỷ sản giai đoạn từ năm 1984-1995 và thống kê tạm thời giai đoạn 1996-1999 Số liệu hiện nay cho thấy sản lượng nuôi trồng cá và các loài thuỷ sản khác tăng gấp 3 lần từ 6,94 triệu tấn năm 1990 lên 22,8 triệu tấn năm 1999, tương đương với mức tăng trung bình 1,24 triệu tấn/ năm
Từ năm 2000 đến nay tình hình phát triển của nghành thuỷ sản nước ta đã liên tục tăng mạnh, tốc độ tăng trưởng bình quân đạt 18,7% / năm (TLTK - tuổi trẻ trang 11 ngày 13/09/04)
Theo thống kê của bộ thuỷ sản thì sản lượng thuỷ sản 9 tháng đầu năm
2004 đạt kim ngạch xuất khẩu 1,66 tỉ USD tăng 2,2% so với cùng kỳ năm ngoái Thuỷ sản sản của nước ta xuất khẩu sang các thị trường như: Nhật Bản, Hàn Quốc, Đài Loan và các nước ASEAM tăng mạnh ước khỏang 34.650 tấn, tăng 25,2% so cới cùng kỳ Ngoài tôm, Nhật Bản là thị trường tiêu thụ mực và bạch tuộc lớn nhất Việt Nam, chiếm khoảng 40% tổng giá trị xuất khẩu (TLTK: www.vietlinh.com.vn)
Hiện nay nước ta có 6.236 tàu khai thác thủy sản xa bờ có công suất từ 90 mã lực trở lên, do đó số lượng khai thác thủy sản tăng mạnh, đạt khoảng 612.280 tấn bằng 42,23% so với kế hoạch năm và tăng gần 2% so với cùng kỳ (TLTK: Phan Thảo - báo SGGP ngày 24/05/2004)
Giá trị dinh dưỡng và tính chất sử dụng của mực
Giá trị dinh dưỡng
Trong thịt đa số các loài mực chứa 16-20% các chất chứa nitơ, 76-79% nước và 1-2% mỡ Các chất chứa nitơ gồm 70% protid, 30-35% các chất phi protid ( trang 14 tin chọc lọc bảo quản chế biến thuỷ sản ) Chính nhờ hàm lượng lớn các chất này mà xác định được các tính chất đặc trưng của thịt mực ( mùi, vị ) và tính chất hư hỏng của vi sinh vật khi bảo quản lạnh Các chất phi protid của thịt mực chủ yếu là các acid amin tự do, các nucleotit, trymetilaminoaxit, betain
Mực có giá trị dinh dưỡng cao, trong mỡ chứa 30% acid béo Easentialas nhử: acid oleic (8:1), acid linoleic (18:2), acid linolenoic (18:3), acid arachidonic (20:4), acid dixozapentainoleic (20:5) và acid dokozahekxanoleic (22:6).
Tính chất sử dụng
Mực có tính chất sử dụng gần như toàn bộ các cơ quan, chỉ loại một phần nhỏ không ăn được như ruột, nang mực, mắt và răng Thân mực gồm đầu kể cả râu và xoang áo kể cả vây Các tế bào sắc tố gây nên màu sắc của mực nằm giữa các lớp da ngoài Kích thước của các loài mực giao động từ 20-50 cm, phần ăn được chiếm 80%.
Các phương pháp bảo quản lạnh
Phương pháp ướp đá
Dùng nước đá ướp lạnh sản phẩm thuỷ sản là phương pháp phổ biến, nước dùng sản xuất nước đá, bảo quản sản phẩm thuỷ sản phải đảm bảo vệ sinh
Muốn nhiệt độ bảo quản bằng đá thấp hơn nữa thì ta có thể bổ sung một số hoá chất vào nước như: NaCl, Nh4Cl, NaNo3
Nước đá ( % ) Muối NaCl (% ) Nhiệt độ đạt ( % )
Phương pháp này chỉ sử dụng bảo quản thực phẩm trong thời gian ngắn (TLTK - Tô Minh Châu - Giáo trình kiểm tra vệ sinh chất lượng sản phẩm - Trang 84,85 ).
Phương pháp lạnh đông
Làm lạnh đông thuỷ sản là làm hạ thấp nhiệt độ của thuỷ sản, làm chậm sự hư hỏng của thuỷ sản trong quá trình bảo quản, thông thường nhiệt độ bảo quản -18 0 C trở xuống Phương pháp này đóng vai trò quan trọng vì nó quyết định một phần chất lượng của sản phẩm thuỷ sản xuất khẩu
Trong sản phẩm thuỷ sản nước chiếm đa phần khoảng 80%, do đó nhiệt độ bảo quản tốt nhất là -15 0 C, -20 0 C với ẩm độ là 80-85% Trong điều kiện này sản phẩm có thể bảo quản 5÷10 tháng ( TLTK - Tô Minh Châu - giáo trình kiểm tra vệ sinh chất lượng sản phẩm - trang 85 ).
Các chất khử trùng làm sạch thuỷ sản
Chlorin
Chlorin là một chất sát trùng mà cũng là một chất độc, ăn mòn rất nhanh ở nhiệt độ 90 0 C hay ở nhiệt độ thường nhưng ẩm ướt
Chlorin khi sử dụng vào môi trường sẽ tạo thành những hợp chất chlorine gồm HOCL, OCL và chloramin, tác dụng diệt khuẩn của chlorine do những phản ứng của các hợp chất này với các enzyme của tế bào vi trùng làm ngưng tiến trình biến dưỡng Những điều kiện ảnh hưởng đến khả năng diệt trùng là nhiệt độ, pH, thời gian và nồng độ (TLTK- kỹ thuật chế biến lạnh thuỷ sản/trang 219)
Nồng độ chlorine được kiểm tra bằng giấy kiểm tra chlorine ( chloritest papers), giấy được nhúng vào nước chlorine màu sắc hiện diện trên giấy cho biết nồng độ chlorine tương ứng
Trong chế biến thuỷ sản đông lạnh chlorine thường dùng ở dạng muối calcium của acid hydrochloreux có công thức Ca(OCl)2, thuốc trắng mịn, không bị ố vàng hay đóng cục, dễ hoà tan trong nước và không làm thay đổi màu sắc dung dịch, đơn vị sử dụng là ppm
Theo quy trình sản xuất của nhà máy thì chlorine được sử dụng theo nhiều nồng độ khác nhau:
- Nguồn nước dùng trong chế biến: 0,5÷1 ppm
- Nước rửa sản phẩm: 20 ppm
- Nước rửa rổ, dụng cụ chế biến, sàn xi măng …: 50÷100 ppm
Yêu cầu cơ bản trong phòng kiểm nghiện vi sinh vật
Các yêu cầu về phòng kiểm nghiệm
Phòng kiểm nghiệm vi sinh vật phải có diện tích làm việc và cách bố trí phù hợp Khoảng cách làm việc phải hợp lý nhằm làm giảm nguy cơ nhiễm trong quá trình phân tích kiểm nghiệm Thông thường phòng kiểm nghiệm cần được phân thành các khu riêng biệt như:
- Thu mẫu và lưu mẫu
- Rửa dụng cụ thuỷ tinh, khử trùng dụng cụ, tủ ấm ủ mẫu
- Khu vực thao tác nuôi cấy mẫu
- Khu vực thao tác các vi sinh vật gây bệnh
Ngoài ra phòng được chiếu sáng đầy đủ, khu nuôi cấy nên được lấp đặt đèn tử ngoại để đảm bảo tiệt trùng không khí và không gian thao tác Khu vực này nên được trang bị máy điều hoà không khí vì nó đem lại các lợi ích sau:
Không khí đi vào luôn được lọc để làm giảm ngoại nhiễm từ môi trường bên ngoài
Cửa đóng làm giảm tối thiểu sự di chuyển của không khí, ngăn ngừa bụi làm giảm ngoại nhiễãm Điều hoà không khí giúp chủ động kiểm soát độ ẩm, nhiệt độ theo hướng có lợi cho quá trình làm việc.
Các quy tắc an toàn trong phòng kiểm nghiệm
Thao tác an toàn là yêu cầu cực kỳ quan trọng trong kiểm nghiệm vi sinh vật Khi làm việc với vi sinh vật chúng ta thường thao tác với số lượng rất lớn và đậm đặc tế bào vi sinh vật (ở mức 10 9 TB/ml) Nhiều chủng vi sinh vật là tác nhân gây bệnh cho nên phải luôn luôn cẩn thận với tất cả các chủng đang thao tác Mặt khác khi làm kiểm nghiệm cũng phải sử dụng nhiều loại hoá chất, trong đó có các acid hoặc những hoá chất có tính độc Do vậy, cần tuân thủ một số nguyên tắc an toàn để đảm bảo an toàn cho bản thân và cho những người khác trong phòng thí nghiệm như sau:
- Nắm vững nguyên tắc, phương pháp làm việc với vi sinh vật
- Không ăn uống, hút thuốc trong phòng kiểm nghiệm
- Mang khẩu trang khi thao tác với vi sinh vật
- Mặt áo blouse trong thời gian làm việc
Trước khi bắt đầu làm cần sát trùng mặt bàn bằng giấy lau tẩm cồn 65 0 Thực hiện tương tự cho hai tay
( TLTK: Trần Linh Thước - phương pháp phân tích vi sinh vật trong nước thực phẩm và mỹ phẩm - NXBGD 2002 - trang 30,31,32)
Đặc điểm hình thái, tính chất nuôi cấy, tính chất gây độc và triệu chứng của một số vi sinh vật nhiễm vào mực có thể gây bệnh cho người
Coliform
Thuộc họ Enterobacteriaceae ( tộc Escherichia ) có khả năng lên men sinh hơi đường lactose Đây là vi khuẩn nằm trong nhóm có dạng E.coli
Trực khuẩn gram âm, hiếu khí hoặc yếm khí tuỳ nghi, không hình thành nha bào
6.2.2 Đặc điểm nuôi cấy và tính chất sinh hoá :
Lên men sinh hơi đường lactose trong vòng 24÷48 giờ ở 37 0 C
Nhóm Coliforms ngoài nguồn gốc từ phân người, phân động vật còn có trong đất, nước, không khí…
E.coli
Vi khuẩn E.coli thuộc nhóm vi trùng đường ruột Enterobacteriaceae chúng có nhiều trong tự nhiên, trong đường ruột của người và gia súc Chúng được nhiễm từ đất, nước… từ phân của động vật, chúng trở nên gây bệnh khi gặp điều kiện thuận lợi
6.3.1 Đặc điểm hình dạng, nuôi cấy và tính chất sinh hoá:
E.coli thuộc loài cầu trực gam âm, di động bằng tiêm mao quanh tế bào, không tạo bào tử, loại có độc lực thì có capsul, loại không có độc lực thì không cú capsul, một số cú lụng bỏm pi li Kớch thước trung bỡnh 0,5à ữ3à hai đầu tròn
6.3.1.2 Đặc điểm nuôi cấy và sinh hoá:
Hiếu khí hay hiếu khí tuỳ nghi, nhiệt độ thích hợp 37 0 C nhưng có thể mọc treân 40 0 C
Trên môi trường NA: khuẩn lạc tròn ướt, màu trắng đục, kích thước 2 ÷3 mm
Trên môi trường EMB ( Eozin Methyl blue ): khuẩn lạc tím ánh kim Trên môi trường Maconkey: tạo khóm hồng đỏ
Trên môi trường KIA: vàng/vàng
Leõn men sinh hụi lactose, glucose, leõn men khoõng ủieàu sacharose
Phản ứng sinh hoá: Indol (+), MR (+), VP (-), Citrat (-), H2S (-), khử Nitrat thành Nitric
6.3.2 Đặc điểm kháng nguyên và độc tố:
E.coli có 4 loại kháng nguyên: O, H, K, F Độc tố của E.coli: loại có giáp mô (kháng nguyên K) gây độc mạnh hơn không có giáp mô Kháng nguyên K có 3 loại: KA, KB, KL Độc tố gồm 2 loại: nội độc tố và ngoại độc tố
Nội độc tố gây tiêu chảy
Ngoại độc tố gây phù thũng, tan huyết có 2 loại: loại chịu nhiệt ST và loại khoõng chũu nhieọt LT
E.coli gây bệnh tiêu chảy ở trẻ em dưới 2 tuổi gồm các nhóm sau:
Nhóm EPEC (Enteropathogenic E.coi ): gồm các type thường gặp
Gây tiêu chảy cho trẻ em dưới 2 tuổi
Nhóm ETEC ( Enterinvasine E.coli ) : Gây tiêu chảy có đàm lẫn máu, thường gặp các type O125, O157, O144…
Nhóm VETEC ( Verocytoxin producy E.coli ): Gây bệnh tiêu chảy, viêm đại tràng, xưng phù, thường gặp các type: O26, O111, O113, O145, O57
Thời kỳ ủ bệnh 2÷20 giờ Người trúng độc thấy đau bụng dữ dội, phân lỏng nhiều lẫn trong máu, ít khi nôn mửa, hơi sốt Nặng có thể sốt cao, người mỏi mệt, chân tay co quắp, đổ mồ hôi Thời gian khỏi bệnh vài ngày
Cần phải nấu chín kỹ thức ăn, nước uống
(TLTK – Tô Minh Châu – Giáo trình kiểm tra vệ sinh chất lượng sản phaồm – trang 55, 56)
Salmonella
Salmonella có thể gây ngộ độc thực phẩm khi hiện diện ở mức cả triệu tế bào trong một gam thực phẩm Các triệu chứng do Salmonella gây ra thường là tiêu chảy, ói mửa, buồn nôn Thời gian ủ bệnh kể từ khi tiêu thụ thực phẩm bị nhiễm cho đến khi các triệu chứng được biểu hiện là 12÷36 giờ Triệu chứng ngộ độc kéo dài từ 2÷7 ngày Các loại thực phẩm có nguy cơ bị nhiễm
Salmonella cao là thịt gia cầm, sản phẩm thịt, trứng và các sản phẩm từ trứng, thuỷ sản Nguồn lây nhiễm các loại thực phẩm này là phân người và động vật, được nhiễm gián tiếp hoặc trực tiếp Đặc biệt gây nhiễm cho người là các loài
Salmonella typhi, Salmonella paratyphi A, B, C, gây sốt thương hàn
6.4.1 Đặc điểm hình dạng, nuôi cấy và tính chất sinh hoá của
Thuộc nhóm vi trùng đường ruột Enterobacteriacae, chúng có nhiều trong tự nhiên và là loài vi khuẩn gây bệnh thương hàn, phó thương hàn cho nhiều loài động vật kể cả người
Hỡnh trực, gam õm, kớch thước 0,4ữ0,6 x 1ữ3à, khụng tạo giỏp mụ, khụng tạo bào tử, di động nhờ lông ( flagella ) quanh tế bào
Là loại hiếu khí và hiếu khí tuỳ nghi, nhiệt độ thích hợp 37 0 C, pH 7,2÷7,6 dễ mọc trên các môi trường dinh dưỡng bình thường
Môi trường NA: khóm trắng tròn
Trên môi trường chuẩn đoán chuyên biệt : BSA: xanh đen hay nâu đen, BGA: khóm trắng, môi trường chuyển vàng sang đỏ
Trên KIA/TSI: đỏ/ vàng sau 16÷24 giờ
6.4.1.3 Các phản ứng sinh hoá:
Indol (-) , Methyred (+), VP (-) , Citrat (+), H2S (+), Ure (-), Lysindecacboxylase(+) chuyeồn nitrat -> nitrit, leõn men sinh hụi glucose, manitol, sorbitol
Lên men không đều sacharose, không lên men lactose
6.4.2 Đặc điểm kháng nguyên và độc tố:
Kháng nguyên O: chia 34 nhóm A, B, C1, C2, D1, E mỗi nhóm có nhiều thành phần
Kháng nguyên H: gồm hai pha đặc hiệu và không đặc hiệu
Pha đặc hiệu: kí hiệu Ha, Hb (a, b, c, g…m)
Pha không đặc hiệu: ký hiệu H1 ,H2 ,H5…
Kháng nguyên vi: nằm ngoài kháng nguyên O Độc tố có hai loại:
Nội độc tố ruột có hai loại ST và LT
Ngoại độc tố tác động lên thần kinh
Gây bệnh thương hàn và phó thương hàn với triệu chứng sốt cao tiêu chảy lẫn máu Bệnh tích biểu hiện viêm loét ruột, lách sưng
Salmonella có trong cơ thể người và gia súc với tỉ lệ 5%÷10% số người mang nang truứng
Trường hợp trúng độc Salmonella là do ăn phải thức ăn bị nhiễm số lượng lớn Salmonella
Vi khuẩn khi nhiễm vào ruột theo đường tiêu hoá sẽ phát triển ở ruột rồi theo hệ thống bạch huyết đi vào máu gây nhiễm khuẩn huyết
Thời kỳ ủ bệnh 12÷24 h nhưng dài hay ngắn còn tuỳ thuộc vào sức chống đở của cơ thể
Nhiệt độ có thể tăng 38÷40 0 C biểu hiện triệu chứng nhức đầu, chán ăn, đau bụng, tiêu chảy
Tỷ lệ tử vong thấp nhưng nếu sức đề kháng của cơ thể yếu, không chữa trị kịp thời có thể chết
6.4.5 Phòng ngừa và điều trị:
Cách ly người bệnh, thức ăn phải được nấu chín kỹ Điều trị bằng chất kháng sinh và sulfamid như bactrium chloramphênicol, furazolidon
(TLTK - Tô Minh Châu - Giáo trình kiểm tra vệ sinh chất lượng sản phẩm
Là loại vi khuẩn phân bố rộng rãi trong đất, nước trên da, họng…và chỉ gây bệnh trúng độc khi gặp chủng hình thành độc tố ruột (enterotoxin) bền với nhiệt
6.5.1 Đặc điểm hình dạng, nuôi cấy và tính chất sinh hoá:
Hình cầu, tụ thành đám như chùm nho, bắt màu gram dương, kích thước 0,8ữ1àm, khụng di động, khụng bào tử, cú hay khụng cú capsul
Loại hiếu khí tuỳ nghi, thích hợp ở 30÷37 0 C, pH =7.0÷7.5, dể mọc trên môi trường dinh dưỡng NA hay TSA tạo khóm màu vàng đậm
Trên môi trường thạch máu gây dung huyết
Trên môi trường Chapmam tạo khóm vàng và chuyển môi trường từ hồng sang vàng
Trên môi trường gelatin gây tan chảy
Trên môi trường coagulase tạo khóm vàng
Trên canh dinh dưỡng NB đục điều có mùi mủ
Leân men glucose, mannit, lactose, khoâng leân men glycerin
Indol (-) methyred (+) VP (+) H2S(-) NO3(+) coagulaza (+) Catalaza (+) photphataza (+)
6.5.2 Cấu trúc kháng nguyên và độc tố:
Tế bào Staphylococcus aureus là hỗn hợp của hơn 30 loại kháng nguyên
Kháng nguyên thân O ở thành tế bào gồm nhiều thành phần kháng nguyên như peptydoglucan, protein A, acid teichoic và một số enzyme gây độc
Kháng nguyên độc tố: gồm nội độc tố và ngoại độc tố Độc tố ruột có 6 loại: A, B, C, D, E, F
Các enzyme ngoại bào: catalaza, coagulaza gây đông huyết tương,
Staphylococcus aureus làm tan sợi huyết, hemolynaza phá huỷ hồng cầu
Gây viêm mũi nhiễm trùng da, ung nhọt, viêm khớp, apxe Vi khuẩn có thể vào máu gây nhiễm trùng máu và đi đến các cơ quan gây viêm tuỷ sương, viêm não, viêm tim, có thể gây tử vong
6.5.4 Triệu chứng trúng độc : Độc tố chủ yếu tác động lên đường tiêu hoá gây đau bụng, buồn nôn, nôn mửa dữ dội, gây tiêu chảy Độc tố thấm vào máu gây nhức đầu, tiêu chảy, co giật cơ và hạ huyết áp Thời gian ủ bệnh ngắn (2÷3), bệnh kéo dài 1÷2 ngày, tỷ lệ tử vong thấp Độc tố trúng tuỳ lứa tuổi, tuổi càng ít tính nhạy cảm càng mạnh, trẻ em dễ bị ngộ độc
Bằng cách khống chế sự phát triển của vi sinh khuẩn và sự tạo độc tố ruột bằng cách trữ lạnh các sản phẩm chín hoặc giữ nóng các thực phẩm ăn nóng
(TLTK - Tô Minh Châu - Giáo trình kiểm tra vệ sinh chất lượng sản phẩm
Là tác nhân gây nên các vụ dịch tả trên toàn thế giới Nguồn thực phẩm có nguy cơ nhiễm và lan truyền dịch tả là nước uống, trái cây, rau quả, sữa và các sản phẩm sữa, các loài thuỷ sản tươi sống
6.6.1 Đặc điểm hình dạng, nuôi cấy và tính chất sinh hoá:
Trực khuẩn cong, gam âm, có một tiêm mao ở đầu, không tạo bào tử, không tạo giáp mô
Là loại hiếu khí tuỳ nghi, nhiệt độ tối ưu 37 0 C, nhưng có thể mọc ở 16÷42 0 C, pH=8,5÷9,5 Là loại vi khuẩn ưa kiềm do đó mọc tốt trong môi trường pepton kieàm
Trên thạch NA có pH kiềm vi khuẩn tạo khóm tròn lồi hơi đục và rất nhỏ Trên thạch TCBS ( thyosulphat, citrat, bile salt ) vi khuẩn tạo khóm vàng do leân men saccarpse
Lên men không sinh hơi saccarose, manit và glucose, không lên men lactose
H2S ( - ) KIA: đỏ/ vàng không tạo H2S TSI: vàng/ vàng
Indol: ( + ) , MR: ( + ) , Citrat: ( + ) , VP: ( + ) , NO3 chuyển thành NO2
6.6.2 Kháng nguyên và độc tố:
Có hai loại kháng nguyên O và H: trong đó kháng nguyên O bền với nhiệt, kháng nguyên H không bền với nhiệt Nhóm O1 gây dịch tả Độc tố: Độc tố ruột enterotoxin gây tiêu chảy Enterotoxin của Vibrio cholerae có liên hệ kháng nguyên với enterotoxin LT của Ecoli gây độc ETEC ( tiêu chảy )
Enzim: hemolysin không gây bệnh dịch tả và có tính độc với tế bào tim và gaây cheát
Bệnh lây qua đường tiêu hoá, người bị bệnh dịch tả khi nhiễm nhóm O1
Thời gian ủ bệnh 1÷4 ngày, bệnh phát ra với triệu chứng nôn mửa, tiêu chảy dữ dội, co thắt cơ bụng Bệnh nặng có thể tử vong do mất nhiều nước, 20 l nước/ ngày
Sử dụng nước sạch, uống nước phải được nấu sôi kỹ
Sử dụng kháng sinh diệt khuẩn: Tetracylin, ampixylin
(TLTK – Tô Minh Châu – Giáo trình kiểm tra vệ sinh chất lượng sản phaồm – trang 60,61)
Vibrio parahemotylicus tạo độc tố hemolysin bền với nhiệt, có phản ứng kháng nguyên konagama
Triệu chứng ngộ độc là đau thắt vùng bụng, viêm nhiễm đường ruột và tiêu chảy nhẹ xuất hiện 2÷96 giờ Loài vi khuẩn này hiện diện và tăng trưởng trong môi trường có hàm lượng muối cao, thường phân lập được từ các sản phẩm thuỷ sản, trong các vùng nước ấm ven bờ biển
Về cơ bản Vibrio cholera và Vibrio parahemotylicus giống nhau, nhưng do cấu tạo kháng nguyên mà người ta chia Vibrio ra thành nhiều nhóm Để phân biệt các chủng Vibrio ta dựa vào đặc tính sinh hoá của nó
Vibrio parahemotylicus - + + +/- Viêm ruột, viêm dạ dày
( TLTK: Trần Linh Thước - Phương pháp phân tích vi sinh vật trong nước thực phẩm và mỹ phẩm - NXBGD 2002)
Vibrio Cholerae
Là tác nhân gây nên các vụ dịch tả trên toàn thế giới Nguồn thực phẩm có nguy cơ nhiễm và lan truyền dịch tả là nước uống, trái cây, rau quả, sữa và các sản phẩm sữa, các loài thuỷ sản tươi sống
6.6.1 Đặc điểm hình dạng, nuôi cấy và tính chất sinh hoá:
Trực khuẩn cong, gam âm, có một tiêm mao ở đầu, không tạo bào tử, không tạo giáp mô
Là loại hiếu khí tuỳ nghi, nhiệt độ tối ưu 37 0 C, nhưng có thể mọc ở 16÷42 0 C, pH=8,5÷9,5 Là loại vi khuẩn ưa kiềm do đó mọc tốt trong môi trường pepton kieàm
Trên thạch NA có pH kiềm vi khuẩn tạo khóm tròn lồi hơi đục và rất nhỏ Trên thạch TCBS ( thyosulphat, citrat, bile salt ) vi khuẩn tạo khóm vàng do leân men saccarpse
Lên men không sinh hơi saccarose, manit và glucose, không lên men lactose
H2S ( - ) KIA: đỏ/ vàng không tạo H2S TSI: vàng/ vàng
Indol: ( + ) , MR: ( + ) , Citrat: ( + ) , VP: ( + ) , NO3 chuyển thành NO2
6.6.2 Kháng nguyên và độc tố:
Có hai loại kháng nguyên O và H: trong đó kháng nguyên O bền với nhiệt, kháng nguyên H không bền với nhiệt Nhóm O1 gây dịch tả Độc tố: Độc tố ruột enterotoxin gây tiêu chảy Enterotoxin của Vibrio cholerae có liên hệ kháng nguyên với enterotoxin LT của Ecoli gây độc ETEC ( tiêu chảy )
Enzim: hemolysin không gây bệnh dịch tả và có tính độc với tế bào tim và gaây cheát
Bệnh lây qua đường tiêu hoá, người bị bệnh dịch tả khi nhiễm nhóm O1
Thời gian ủ bệnh 1÷4 ngày, bệnh phát ra với triệu chứng nôn mửa, tiêu chảy dữ dội, co thắt cơ bụng Bệnh nặng có thể tử vong do mất nhiều nước, 20 l nước/ ngày
Sử dụng nước sạch, uống nước phải được nấu sôi kỹ
Sử dụng kháng sinh diệt khuẩn: Tetracylin, ampixylin
(TLTK – Tô Minh Châu – Giáo trình kiểm tra vệ sinh chất lượng sản phaồm – trang 60,61)
Vibrio parahemotylicus tạo độc tố hemolysin bền với nhiệt, có phản ứng kháng nguyên konagama
Triệu chứng ngộ độc là đau thắt vùng bụng, viêm nhiễm đường ruột và tiêu chảy nhẹ xuất hiện 2÷96 giờ Loài vi khuẩn này hiện diện và tăng trưởng trong môi trường có hàm lượng muối cao, thường phân lập được từ các sản phẩm thuỷ sản, trong các vùng nước ấm ven bờ biển
Về cơ bản Vibrio cholera và Vibrio parahemotylicus giống nhau, nhưng do cấu tạo kháng nguyên mà người ta chia Vibrio ra thành nhiều nhóm Để phân biệt các chủng Vibrio ta dựa vào đặc tính sinh hoá của nó
Vibrio parahemotylicus - + + +/- Viêm ruột, viêm dạ dày
( TLTK: Trần Linh Thước - Phương pháp phân tích vi sinh vật trong nước thực phẩm và mỹ phẩm - NXBGD 2002)
Vibrio Parahemotilycus
7.1 Quy trình sản xuất mực ống:
Bảo quản nguyên liệu Tiếp nhận nguyên liệu
Sơ chế 2, Rửa 3 Rửa 2, Đánh khuấy
Phân cỡ, Phân loại Kieãm dô
Chờ đông Caỏp ủoõng Tách khuôn mạ băng Bao gói thành phẩm
Quy trình sản xuất mực ống và mực nang fillet
Quy trình sản xuất mực ống
Bảo quản nguyên liệu Tiếp nhận nguyên liệu
Sơ chế 2, Rửa 3 Rửa 2, Đánh khuấy
Phân cỡ, Phân loại Kieãm dô
Chờ đông Caỏp ủoõng Tách khuôn mạ băng Bao gói thành phẩm
Quy trình sản xuất mực nang fillet
Bảo quản nguyên liệu Tiếp nhận nguyên liệu
Sơ chế 2, Rửa 3 Rửa 2, Đánh khuấy
Bảo quản thành phẩm Bao gói thành phẩm
VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP
Vật liệu thí nghiệm
Duùng cuù kieồm nghieọm
1.1.1 Dụng cụ xử lý mẫu
- Kéo Inox, kẹp Inox, máy dập mẫu, cân điện tử, đèn cồn, khay Inox, khay nhựa, bao PE, phòng xử lý mẫu
Tất cả các dụng cụ trên đều phải vô trùng
1.1.2 Dụng cụ pha chế môi trường:
- Nồi hấp thanh trùng autoclave, ống đong có chia độ, ống nghiệm, ống Dulham, coác thuyû tinh, chai thuyû tinh 250 ml, 500 ml, 1000 ml, muoãng Inox, pipet
1.1.3 Dụng cụ nuôi vi khuẩn và bảo quản mẫu:
- Tủ lạnh dùng bảo quản mẫu và môi trường, tủ ấm để nuôi vi khuẩn ở nhiệt độ 37 0 C, ống nghiệm, giá để, đĩa petri
1.1.4 Duùng cuù caỏy vi khuaồn:
- Đèn cồn, que cấy thẳng, que cấy có đầu uốn tròn, phòng cấy
1.2.Hoá chất và môi trường dùng để định danh và định tính vi sinh vật:
1.2.1 Tổng vi sinh vật hiếu khí:
- Môi trường PCA ( Plate Count Agar)
- Dung dịch pha loãng: Buffered Peptone Wate ( BPW)
- Canh Brilliant Green Lactose Bile Salt (BGBL)
- Esin Methylene Blue Lactose Sucrose Agar (EMB Agar )
- IMVC: ( Indol, Methyl Red, Voges Peoskauer, Citrat )
- Thạch Xylose Lysine Deoxycholate ( XLD )
- Thạch Triple Sugar Iron Agar ( TSI Agar )
- IMVC:( Indol, Methyl Red, Voges Peoskauer, Citrat )
- Tryppic Soy Broth ( TSB) + 10% NaCl
- Manitol Salt Egg Yoll ( MSEY )
- Brain Heart Infusion Broth (BHI ) + Rabbit Plasma
- Canh Alkaline Pepton Water 1% NaCl
- Thiosulphat Citrat Bile Sucrose ( TCBS )
- Thạch Kháng huyết thanh Vibrio cholerae polyvalent 01
- Canh Alkaline Pepton Water 3% NaCl
- Thạch Thiosulphat Citrat Bile Sucrose (TCBS) 3% NaCl
Trong tất cả các mặt hàng thuỷ sản nói chung và mực nói riêng, vấn đề chất lượng an toàn thực phẩm là chỉ tiêu quan trọng được đặt lên hàng đầu, vì nó liên quan đến sức khoẻ người tiêu dùng, đến việc xuất khẩu… chính vì những yêu cầu nghiêm ngặt này mà đòi hỏi các nhà sản xuất phải đề ra phương án kiểm tra một số chỉ tiêu vi sinh vật đánh giá chất lượng của sản phẩm thuỷ sản nói chung và mực nói riêng bao gồm:
Toồng vi khuaồn hieỏu khớ
Mẫu kiểm nghiệm trong phương pháp này bao gồm:
Mực tươi ướp đá (mực ống và mực nang fillet nguyên liệu), mực đông lạnh (mực ống và fillet đông block) do công ty cung cấp
2 1 Phương pháp lấy mẫu và cảm quan:
Trước khi lấy mẫu cần ghi mã số mẫu lên bao PE gồm số lô, ngày tháng laáy maãu
B2: Khử trùng tay và dụng cụ lấy mẫu bằng cồn 65 0
B3: Lấy mẫu ở nhiều vị trí khác nhau cho vào bao PE buột miệng lại
B4: Khi thực hiện xong rửa tay bằng nước sạch sau đó rửa lại bằng cồn 65 0 là kết thúc quá trình lấy mẫu
2.1.2 Phương pháp đánh giá cảm quan thuỷ sản:
Việc đánh giá cảm quan mực được thực hiện dựa vào tài liệu hướng dẫn của công ty về hình dạng, màu sắc, mùi, vị…
2.1.2.1 Hình dạng bên ngoài và trạng thái:
Có vết xước và trầy da nhẹ, không bị thủng rách Đầu dính chặt vào thân, mắt sáng, râu nguyên vẹn, thịt chắc đàn hồi hoặc cho phép có một vết thủng diện tích không quá 1 cm 2
Màu tự nhiên đặc trưng của loài: sáng bóng, sau khi bảo quản ướp đá thịt có màu trắng tự nhiên hoặc hơi phớt vàng, không cho phép 1/5 diện tích toàn thân
Mùi tự nhiên, không có mùi lạ
2.2 Phương pháp bảo quản mẫu và xử lý mẫu cho phân tích vi sinh: 2.2.1 Phương pháp bảo quản:
Mẫu sau khi lấy được chuyển về phòng kiểm nghiệm vi sinh tại đây mẫu được bảo quản trong tủ lạnh trong khi chờ phân tích
Mẫu chờ phân tích phải tuân theo các yêu cầu và điều kiện bảo quản như sau:
Loại mẫu Nhiệt độ bảo quản mẫu Thời gian bảo quản
Mẫu đông lạnh < -18 0 C (tủ đông) Không quá 24 h Mẫu tươi (kể cả sản phẩm ướp đá) 2 0 C ÷ 5 0 C (tủ lạnh) Không quá24h
2.2.2 Phương pháp xử lý mẫu cho phân tích vi sinh
Phương pháp này gồm các bước:
Bước 1: Cân mẫu cho phân tích
Dùng kéo, kẹp đã vô trùng để mở bao bì của mẫu
Sau khi mở mẫu, ta dùng kéo, kẹp vô trùng để lấy mẫu ngẫu nhiên cho vào bao PE và cân
Bước 2: Thêm dung dịch pha loãng
Bước 4: Mẫu trong bao PE sau khi đồng nhất có nồng độ mẫu là 10 -1 Dùng pipet vô trùng lấy 1 ml chuyển vào ống nghiệm đựng 9 ml dung dịch pha loãng Ống nghiệm này sẽ có nồng độ pha loãng là 10 -2
Lập lại các bước trên ta được mẫu có nồng độ pha loãng là 10 n tuỳ vào các chỉ tiêu vi sinh vật phân tích mà ta có nồng độ pha loãng khác nhau
2.3 Phương pháp định lượng vi sinh vật:
Sự hiện diện của vi sinh vật có thể được định lượng bằng nhiều phương pháp khác nhau như đếm số khuẩn lạc mọc trên môi trường xác định, định lượng một cách thống kê bằng phương pháp pha loãng tới hạn ( phương pháp MPN ) :
2.3.1 Phương pháp đếm khuẩn lạc:
Phương pháp này cho phép xác định số lượng tế bào vi sinh vật còn sống hiện diện trong mẫu Trong phương pháp này cần pha loãng mẫu thành nhiều độ pha loãng bậc 10 liên tiếp sao cho có độ pha loãng với mật độ tế bào thích hợp để xuất hiện các khuẩn lạc riêng lẻ trên bề mặt thạch
Phương pháp này được sử dụng rộng rãi trong kiểm nghiệm vi sinh vật trong nước, thực phẩm, bệnh phẩm
2.3.2 Phương pháp MPN ( Most Probable Number ): Đây là phương pháp dùng để đánh giá số lượng vi sinh vật có xác suất lớn nhất hiện diện trong một đơn vị thể tích mẫu Việc định lượng này được thực hiện ở 3 độ pha loãng bậc 10 liên tiếp, tổng cộng có 3 x3=9 ống nghiệm
Quy trình thực hiện phương pháp:
Cho vào các ống nghiệm có chứa môi trường thích hợp cho sự tăng trưởng của đối tượng vi sinh vật cần định lượng một thể tích chính xác dung dịch mẫu ở
3 nồng độ pha loãng bậc 10 liên tiếp (1/10; 1/100; 1/1000) ủ ở nhiệt độ và thời gian thích hợp Dựa vào kết quả ta chứng minh được sự tăng trưởng của vi sinh vật cần kiểm định trong từng ống nghiệm (thường có hiện tượng sinh hơi, đổi màu, đục…) Ghi nhận số ống lượng các ống nghiệm dương tính ở từng độ pha loãng Sử dụng các số liệu này và dựa vào bảng Mack Crady suy ra mật độ vi sinh vật được trình bày dưới dạng số MPN/100 ml hay số MPN/1 g mẫu
( TLTK - Trần Linh Thước – Phương pháp phân tích vi sinh – NXBGD - trang 65,68 )
2.4 Phương pháp kiểm tra vi sinh vật trước và sau khi đông lạnh:
2.4.1 Xác định tổng số vi khuẩn hiếu khí bằng phương pháp đếm khuẩn lạc trên môi trường PCA (plate count agar):
Cân 10 gr mẫu trong điều kiện vô trùng Trộn mẫu này với 90 ml dung dịch pha loãng BPW, đồng nhất mẫu bằng máy dập mẫu, thời gian dập mẫu 30 giaây
Dịch mẫu ngay sau khi đồng nhất được pha loãng theo dãy thập phân bằng cách dùng pipet vô trùng chuyển 1 ml dịch mẫu vào ống nghiệm chứa 9 ml dung dịch pha loãng BPW Trộn đều dịch mẫu trong ống nghiệm bằng máy laéc
Dùng pipet vô trùng chuyển 1 ml dịch mẫu đã pha loãng 10 -1 vào ống thứ hai chứa 9 ml dung dịch pha loãng Tiếp tục như vậy cho đến khi có đủ các nồng độ pha loãng cần thiết
Ghi trên nắp đĩa petri: ngày cấy, mã số mẫu và nồng độ pha loãng mẫu Dùng pipet vô trùng chuyển 1 ml dịch mẫu đã pha loãng vào giữa đĩa petri vô trùng Mỗi nồng độ hai đĩa Trong vòng 15 phút, đỗ vào mỗi đĩa 10 ml môi trường PCA (plate count agar) đã được thanh trùng và để ổn định ở 45 0 C Trộn đều dịch mẫu với môi trường bằng cách lắc đĩa petri xuôi và ngược chiều kim đồng hồ, mỗi chiều 5 đến 7 lần sau khi đổ môi trường Đặt các đĩa trên bề mặt phẳng ngang cho đông khô tự nhiên
Lật ngược đĩa lại và ủ ở 37+ 1 0 C trong 48 giờ
2.4.1.4 Đọc kết quả: Đếm khuẩn lạc trên các đĩa sau 48 giờ
Tính tổng số vi sinh vật trong 1 ml mẫu bằng số đếm trung bình từ hai đĩa của mỗi nồng độ nhân với số lần pha loãng mẫu
Quy trình định lượng tổng vi khuẩn hiếu khí trong thực phẩm
2.4.2 Định lượng coliforms, coliforms giả định (coliform phân) bằng phương pháp MPN (Most Probale Number) và E.coli bằng phương pháp định tính
Tuần tự cấy 1 ml mẫu đã pha loãng 10 -1 ,10 -2 , 10 -3 vào dãy 9 ống nghiệm (mỗi nồng độ 3 ống) chứa 5 ml môi trường BGBL ủ các ống nghiệm ở 37+ 1 0 C trong 48 giờ ghi nhận số ống có sinh hơi Đọc số lượng các ống cho kết quả
Chuẩn bị dịch đồng nhất hoặc pha loãng mẫu để có độ pha loãng 10 -1 ; 10 -2; 10 -3 …
Chọn 2 nồng độ pha loãng thích hợp, chuyển 1 ml mẫu vào đĩa petri vô trùng (mỗi nồng độ cấy 2 đĩa)
Rót vào mỗi đĩa 10 ml môi trường PCA đã được làm nguội 45 0 C, lắc cho mẫu phân tán đều vào môi trường, ủ ở 37 o C /48giờ
Chọn các đĩa có khoảng 25÷250 khuẩn lạc trên một đĩa để đếm
Tính kết quả: tổng vi sinh vật hiếu khí trong mẫu
Phương pháp lấy mẫu và cảm quan
Trước khi lấy mẫu cần ghi mã số mẫu lên bao PE gồm số lô, ngày tháng laáy maãu
B2: Khử trùng tay và dụng cụ lấy mẫu bằng cồn 65 0
B3: Lấy mẫu ở nhiều vị trí khác nhau cho vào bao PE buột miệng lại
B4: Khi thực hiện xong rửa tay bằng nước sạch sau đó rửa lại bằng cồn 65 0 là kết thúc quá trình lấy mẫu
2.1.2 Phương pháp đánh giá cảm quan thuỷ sản:
Việc đánh giá cảm quan mực được thực hiện dựa vào tài liệu hướng dẫn của công ty về hình dạng, màu sắc, mùi, vị…
2.1.2.1 Hình dạng bên ngoài và trạng thái:
Có vết xước và trầy da nhẹ, không bị thủng rách Đầu dính chặt vào thân, mắt sáng, râu nguyên vẹn, thịt chắc đàn hồi hoặc cho phép có một vết thủng diện tích không quá 1 cm 2
Màu tự nhiên đặc trưng của loài: sáng bóng, sau khi bảo quản ướp đá thịt có màu trắng tự nhiên hoặc hơi phớt vàng, không cho phép 1/5 diện tích toàn thân
Mùi tự nhiên, không có mùi lạ.
Phương pháp bảo quản mẫu và xử lý mẫu cho phân tích vi sinh
Mẫu sau khi lấy được chuyển về phòng kiểm nghiệm vi sinh tại đây mẫu được bảo quản trong tủ lạnh trong khi chờ phân tích
Mẫu chờ phân tích phải tuân theo các yêu cầu và điều kiện bảo quản như sau:
Loại mẫu Nhiệt độ bảo quản mẫu Thời gian bảo quản
Mẫu đông lạnh < -18 0 C (tủ đông) Không quá 24 h Mẫu tươi (kể cả sản phẩm ướp đá) 2 0 C ÷ 5 0 C (tủ lạnh) Không quá24h
2.2.2 Phương pháp xử lý mẫu cho phân tích vi sinh
Phương pháp này gồm các bước:
Bước 1: Cân mẫu cho phân tích
Dùng kéo, kẹp đã vô trùng để mở bao bì của mẫu
Sau khi mở mẫu, ta dùng kéo, kẹp vô trùng để lấy mẫu ngẫu nhiên cho vào bao PE và cân
Bước 2: Thêm dung dịch pha loãng
Bước 4: Mẫu trong bao PE sau khi đồng nhất có nồng độ mẫu là 10 -1 Dùng pipet vô trùng lấy 1 ml chuyển vào ống nghiệm đựng 9 ml dung dịch pha loãng Ống nghiệm này sẽ có nồng độ pha loãng là 10 -2
Lập lại các bước trên ta được mẫu có nồng độ pha loãng là 10 n tuỳ vào các chỉ tiêu vi sinh vật phân tích mà ta có nồng độ pha loãng khác nhau.
Phương pháp định lượng vi sinh vật
Sự hiện diện của vi sinh vật có thể được định lượng bằng nhiều phương pháp khác nhau như đếm số khuẩn lạc mọc trên môi trường xác định, định lượng một cách thống kê bằng phương pháp pha loãng tới hạn ( phương pháp MPN ) :
2.3.1 Phương pháp đếm khuẩn lạc:
Phương pháp này cho phép xác định số lượng tế bào vi sinh vật còn sống hiện diện trong mẫu Trong phương pháp này cần pha loãng mẫu thành nhiều độ pha loãng bậc 10 liên tiếp sao cho có độ pha loãng với mật độ tế bào thích hợp để xuất hiện các khuẩn lạc riêng lẻ trên bề mặt thạch
Phương pháp này được sử dụng rộng rãi trong kiểm nghiệm vi sinh vật trong nước, thực phẩm, bệnh phẩm
2.3.2 Phương pháp MPN ( Most Probable Number ): Đây là phương pháp dùng để đánh giá số lượng vi sinh vật có xác suất lớn nhất hiện diện trong một đơn vị thể tích mẫu Việc định lượng này được thực hiện ở 3 độ pha loãng bậc 10 liên tiếp, tổng cộng có 3 x3=9 ống nghiệm
Quy trình thực hiện phương pháp:
Cho vào các ống nghiệm có chứa môi trường thích hợp cho sự tăng trưởng của đối tượng vi sinh vật cần định lượng một thể tích chính xác dung dịch mẫu ở
3 nồng độ pha loãng bậc 10 liên tiếp (1/10; 1/100; 1/1000) ủ ở nhiệt độ và thời gian thích hợp Dựa vào kết quả ta chứng minh được sự tăng trưởng của vi sinh vật cần kiểm định trong từng ống nghiệm (thường có hiện tượng sinh hơi, đổi màu, đục…) Ghi nhận số ống lượng các ống nghiệm dương tính ở từng độ pha loãng Sử dụng các số liệu này và dựa vào bảng Mack Crady suy ra mật độ vi sinh vật được trình bày dưới dạng số MPN/100 ml hay số MPN/1 g mẫu
( TLTK - Trần Linh Thước – Phương pháp phân tích vi sinh – NXBGD - trang 65,68 )
2.4 Phương pháp kiểm tra vi sinh vật trước và sau khi đông lạnh:
2.4.1 Xác định tổng số vi khuẩn hiếu khí bằng phương pháp đếm khuẩn lạc trên môi trường PCA (plate count agar):
Cân 10 gr mẫu trong điều kiện vô trùng Trộn mẫu này với 90 ml dung dịch pha loãng BPW, đồng nhất mẫu bằng máy dập mẫu, thời gian dập mẫu 30 giaây
Dịch mẫu ngay sau khi đồng nhất được pha loãng theo dãy thập phân bằng cách dùng pipet vô trùng chuyển 1 ml dịch mẫu vào ống nghiệm chứa 9 ml dung dịch pha loãng BPW Trộn đều dịch mẫu trong ống nghiệm bằng máy laéc
Dùng pipet vô trùng chuyển 1 ml dịch mẫu đã pha loãng 10 -1 vào ống thứ hai chứa 9 ml dung dịch pha loãng Tiếp tục như vậy cho đến khi có đủ các nồng độ pha loãng cần thiết
Ghi trên nắp đĩa petri: ngày cấy, mã số mẫu và nồng độ pha loãng mẫu Dùng pipet vô trùng chuyển 1 ml dịch mẫu đã pha loãng vào giữa đĩa petri vô trùng Mỗi nồng độ hai đĩa Trong vòng 15 phút, đỗ vào mỗi đĩa 10 ml môi trường PCA (plate count agar) đã được thanh trùng và để ổn định ở 45 0 C Trộn đều dịch mẫu với môi trường bằng cách lắc đĩa petri xuôi và ngược chiều kim đồng hồ, mỗi chiều 5 đến 7 lần sau khi đổ môi trường Đặt các đĩa trên bề mặt phẳng ngang cho đông khô tự nhiên
Lật ngược đĩa lại và ủ ở 37+ 1 0 C trong 48 giờ
2.4.1.4 Đọc kết quả: Đếm khuẩn lạc trên các đĩa sau 48 giờ
Tính tổng số vi sinh vật trong 1 ml mẫu bằng số đếm trung bình từ hai đĩa của mỗi nồng độ nhân với số lần pha loãng mẫu
Quy trình định lượng tổng vi khuẩn hiếu khí trong thực phẩm
2.4.2 Định lượng coliforms, coliforms giả định (coliform phân) bằng phương pháp MPN (Most Probale Number) và E.coli bằng phương pháp định tính
Tuần tự cấy 1 ml mẫu đã pha loãng 10 -1 ,10 -2 , 10 -3 vào dãy 9 ống nghiệm (mỗi nồng độ 3 ống) chứa 5 ml môi trường BGBL ủ các ống nghiệm ở 37+ 1 0 C trong 48 giờ ghi nhận số ống có sinh hơi Đọc số lượng các ống cho kết quả
Chuẩn bị dịch đồng nhất hoặc pha loãng mẫu để có độ pha loãng 10 -1 ; 10 -2; 10 -3 …
Chọn 2 nồng độ pha loãng thích hợp, chuyển 1 ml mẫu vào đĩa petri vô trùng (mỗi nồng độ cấy 2 đĩa)
Rót vào mỗi đĩa 10 ml môi trường PCA đã được làm nguội 45 0 C, lắc cho mẫu phân tán đều vào môi trường, ủ ở 37 o C /48giờ
Chọn các đĩa có khoảng 25÷250 khuẩn lạc trên một đĩa để đếm
Tính kết quả: tổng vi sinh vật hiếu khí trong mẫu
(CFU/ml) dương tính Số ống nghiệm cho phản ứng dương tính của các nồng độ pha loãng được tra bảng MPN để xác định tổng số coli forms trong 1 ml sản phẩm
Dùng khuyên cấy vòng cấy chuyển dịch mẫu từ các ống sinh hơi trên môi trường BGBL sang môi trường canh tryptone, EC, ủ ở 44 + 0.2 0 C trong 24 giờ, nhỏ thuốc thử kovac / s vào các ống nghiệm tryptone đã ủ Phản ứng cho kết quả dương tính khi có màu đỏ xuất hiện trong môi trường trong vài phút Đọc kết quả số lượng các ống dương tính, số ống nghiệm cho phản ứng dương tính của các nồng độ pha loãng được tra theo bảng MPN để xác định tổng số coli forms phân trong 1 ml sản phẩm
Dùng khuyên cấy vòng cấy ria dịch mẫu từ các ống dương tính trên môi trường canh EC sang môi trường thạch đĩa Maconkey nuôi ủ 37 0 C trong 24 giờ, đọc kết quả có khuẩn lạc màu đỏ tía, tròn, dẹt
Chọn các khẩn lạc điển hình thử nghiệm (test) sinh hoá IMVIC để xác định chính xác sự hiên diện của E.coli trong 1 ml sản phẩm
Quy trình phát hiện Coliforms, Coliforms phân bằng phương pháp MPN và E.coli bằng phương pháp định tính
Chuẩn bị dịch đồng nhất hoặc pha loãng mẫu để có độ pha loãng 10 -1 , 10 -2 , 10 -3 để có độ pha loãng 10 -1 ; 10 -2 ; 10 -3
Chọn ống (+) trên canh trypton
Thử nghiệm indol Đếm số ống canh trypton (+) và indol (+), tra bảng MPN
Kết luận: E.coli Cấy vào ống canh EC,
Trypton, uû 44+0,2 0 C / 24 h Số ống (+) ở mỗi nồng độ pha loãng Số ống (+) ở mỗi nồng độ pha loãng, tra bảng MPN
Cấy vào ống canh BGBL ủ 37+1 0 C / 48 giờ
Thử nghiệm IMViC Chọn ống (+) trên canh EC
2.4.3 Định lượng Staphylococcus aureus bằng phương pháp MPN:
2.4.3.1 Xử lý và pha loãng mẫu:
Cân 10g mẫu trong túi nhựa vô trùng, thêm 90 ml dung dịch BPW đồng nhất bằng máy dập mẫu khoảng 30 giây
Dung dịch sau khi đồng nhất được pha loãng theo dãy phân lập bằng cách dùng pipet vô trùng chuyển 1 ml dung dịch mẫu vào ống nghiệm chứa 9 ml dung dịch pha loãng BPW Trộn đều dịch mẫu trong ống nghiệm bằng máy lắc Votex
Dùng pipet vô trùng chuyển 1 ml dung dịch mẫu đã pha loãng 1/10 vào ống nghiệm thứ 2 chứa 9 ml dung dịch pha loãng, tiếp tục như vậy ta có nồng độ pha loãng 1/100, 1/1000 cần thiết
Các phương pháp thử nghiệm sinh hóa
Thử nghiệm khả năng lên men
Môi trường sau khi được khử trùng và làm nguội được phân phối vào các ống nghiệm vô trùng 5 ml sau đó cấy chủng vào các ống môi trường bằng que cấy vòng từ các chủng đã làm thuần trên môi trường KIA ủ 37 0 C trong 24 giờ
Sinh acid: (+) màu vàng ; (-) màu đỏ
Sinh hơi: (+) có bọt khí trong ống Dulham ; (-) không có bọt khí trong ống Dulham
Vi sinh vật có các enzim phân giải các loại đường tạo acid hữu cơ làm pH môi trường nuôi cấy giảm và có thể tạo một số chất khí như H2, CO2 pH giảm, chỉ thị phenolred chuyển từ đỏ sang vàng Trên môi trường canh sinh hơi khi các chất khí tạo ra tích tụ vào ống Dulham phát hiện được bằng mắt thường Trên môi trường thạch làm vỡ thạch do khí sinh ra.
Thử nghiệm khả năng sinh indol
Cấy 1 ml vi khuẩn vào ống nghiệm môi trường triptone ủ 44 0 C trong 24 giờ lấy ra cho 5 giọt thuốc thử Kovacs vào ống dung dịch nuôi cấy, để yên vài phút theo dõi sự tạo màu đỏ trong lớp dung môi hữu cơ
( + ): khi có xuất hiện màu đỏ trên bề mặt môi trường
( - ): khi có màu vàng của thuốc thử trên bề mặt môi trường
Vi sinh vật tiết enzim tryptophanase, chuyển hoá tryptophan thành indol Indol sẽ kết hợp với para-dimethylaminobenzaldehyd trong thuốc thử Kovacs tạo thành phức chất Rosindol màu đỏ (+), trường hợp (-) giử nguyên màu vàng của thuốc thử là do enzim phân giải các hợp chất Nitrogen tạo các chất sử dụng cho tế bào vi sinh vật như acid amin, NH3 không tạo chất độc.
Thử nghiệm LIA,TSI
Môi trường sau khi được chẩn bị dùng que cấy thẳng lấy khuẩn lạc đặc trưng của chủng thuần cấy sâu vào ống thạch nghiêng, tránh chạm vào đáy ống nghiệm sau đó ria trên bề mặt thạch nghiêng, ủ 37 0 C trong 24 giờ
( + ): Xuất hiện đen bên trong môi trường
( - ): Không xuất hiện màu đen
Vi sinh vật có các enzim phân giải các loại đường do đó trong quá trình nuôi cấy trên môi trường LIA làm cho pH giảm, trong điều kiện này các vi sinh vật tiếp tục khử acid amin lysine này làm cho pH kiềm, đồng thời trng môi trường có chứa sodium thiosulphat, vi sinh vật khử sodium thiosulphat này để giải phóng H2 S tạo kết tủa đen, vở thạch
Trên môi trường TSI cũng do sự phân giải đường trong điều kiện kỵ khí sau 24h làm pH môi trường giảm, phần mặt nghiêng của môi trường có màu đỏ (có chỉ thị phenolred), phần sâu có màu vàng, đồng thời trong môi trường có chứa sodium thiosulphat, vi sinh vât khử thiosulphat này để giải phóng H2S tạo kết tủa màu đen, vở thạch
3.4 Thử nghiệm MR ( Methyl Red):
Môi trường: Clark-Lubs ( canh MR-VP, g/l): polypeptone 7,Dextrose ( glucose) 5,KHPO45,nước cất 1000 ml, PH 6,9
Môi trường được cho vào ống nghiệm 5ml hấp thanh trùng 121 0 C trong 15 phút sau đó cấy vi khuẩn từ khuẩn lạc thuần trên KIA và ống canh MR-VP ủ ở
37 0 C trong 48 giờ Nhỏ Methyl Red vào canh đã ủ và đọc kết quả ngay
Vi sinh vật chuyển hoá glucose thành acid pyruvic, rồi tiếp tục chuyển hoá acid pyruvic thành ethanol, acid acetic, acid lactic, acid succinic Các hợp chất tạo ra làm pH môi trường giảm mạnh, pH =4÷4.4, cho phản ứng dương tính methyl red có màu đỏ, pH>4.4 cho phản ứng âm tính pH có màu vàng
Cơ chế hoạt động của thuốc thử:
Methyl red có vùng chuyển màu pH từ 4.4-6.0: Màu đỏ pH6.0
3.5 Thử nghiệm VP ( Voges Proskauer )
Môi thường Clark-Lubs (canh MR-VP), pH 6,9
Rót vào ống nghiệm 5ml thuốc thử hấp khử trùng ở 121 0 C trong 15 phút Lấy khuẩn lạc từ môi trường KIA hoặc TSI đã ủ 24 giờ cấy vào môi trường Clark Lubs ủ 24-48 giờ
Nhỏ thuốc thử VP trực tiếp vào dịch nuôi cấy trước khi đọc kết quả
3.5.2 Kết quả: ( + ) : Màu đỏ xuất hiện trên bề mặt môi trường
( - ) : Bề mặt môi trường giữ nguyên màu thuốc thử Công thức thuốc thử:
Dung dịch B : 5% anpha napiton trong cồn tuyệt đối
Dung dịch thuốc thử VP được nhỏ theo đúng trình tự như sau:
Nhỏ 6 giọt ( 0,6ml ) dung dịch A sau đó nhỏ 2 giọt ( 0,2 ml ) dung dịch B lắc nhẹ ống nghiệm khoảng 0,5-1 phút đọc kết quả
Vi sinh vật chuyển hoá glucose thành acid pyruvic, rồi tiếp tục chuyển hoá acid pyruvic thành acetyl methyl carbinol (ACM).Acetyl methyl carbinol trong môi trường kiềm sẽ chuyển hoá thành diacetyl Diacetyl kết hợp với nhóm guanidin chứa trong acid amin arginin của pepton tạo hợp chất có màu đỏ với anpha napiton xuất hiện trên bề mặt môi trường cho phản ứng dương tính, phản ứng âm tính trên bề mặt môi trường giữ nguyên màu thuốc thử
Simmons Citrte Agar ( SCA ) chất chỉ thị pH: Bromothymol blue, có thể dùng sodiun citrate hoặc potassium citrate làm nguồn cacbon: Acid: vàng, pH 6,0 Kiềm: xanh dương, pH 7,6 Trunh tính: màu xanh, pH 6,9
Cấy ria khuẩn lạc từ KIA lên môi trường SCA ủ 24-48 giờ đọc kết quả
SCA: ( + ) có khuẩn lạc môi trường chuyển sang màu xanh dương
( - ) không có khẩn lạc, môi trường giữ nguyên màu lục
Một số vi sinh vật có khả năng sử dụng citrate như một nguồn cacbon duy nhất tạo ra ion Na + làm pH môi trường tăng khi pH môi trường tăng ion
Na + được thải ra ngoài môi trường môi cấy và citrat được sử dụng hết do đó kết quả cho phản ứng dương tính khi xanh promothymol chuyển từ màu lục sang màu xanh dương, phản ứng âm tính môi trường vẫn giữ nguyên màu lục của xanh bromothymol
3.7 Khả năng sinh H 2 S ( Hydrogen Sulfide Test):
Tất cả môi trường đều được thanh trùng ở 121 0 C 15 phút
Với môi trường KIA, TSI cấy trên ống thạch nghiêng, phần đáy sâu Với môi trường BSA cấy trên đĩa
Môi trường cấy xong ủ 37 0 C trong 24 giờ lấy ra đọc kết quả
( + ) : khuẩn lạc đen trên môi trường BSA
( - ) : không có sự đổi màu
Khả năng sinh H2S là do một số vi sinh vật tổng hợp được enzim desulfohydrase xúc tác sự chuyển hoá trong điều kiện kỵ khí các acid amin có chứa lưu huỳnh như cysteine, cystin, methione và giải phóng H2S, H2S sinh ra sẽ tạo tủa màu đen với chỉ thị sulfide chứa trong môi trường nuôi cấy
Thử nghiệm VP (Voges Proskauer)
Môi thường Clark-Lubs (canh MR-VP), pH 6,9
Rót vào ống nghiệm 5ml thuốc thử hấp khử trùng ở 121 0 C trong 15 phút Lấy khuẩn lạc từ môi trường KIA hoặc TSI đã ủ 24 giờ cấy vào môi trường Clark Lubs ủ 24-48 giờ
Nhỏ thuốc thử VP trực tiếp vào dịch nuôi cấy trước khi đọc kết quả
3.5.2 Kết quả: ( + ) : Màu đỏ xuất hiện trên bề mặt môi trường
( - ) : Bề mặt môi trường giữ nguyên màu thuốc thử Công thức thuốc thử:
Dung dịch B : 5% anpha napiton trong cồn tuyệt đối
Dung dịch thuốc thử VP được nhỏ theo đúng trình tự như sau:
Nhỏ 6 giọt ( 0,6ml ) dung dịch A sau đó nhỏ 2 giọt ( 0,2 ml ) dung dịch B lắc nhẹ ống nghiệm khoảng 0,5-1 phút đọc kết quả
Vi sinh vật chuyển hoá glucose thành acid pyruvic, rồi tiếp tục chuyển hoá acid pyruvic thành acetyl methyl carbinol (ACM).Acetyl methyl carbinol trong môi trường kiềm sẽ chuyển hoá thành diacetyl Diacetyl kết hợp với nhóm guanidin chứa trong acid amin arginin của pepton tạo hợp chất có màu đỏ với anpha napiton xuất hiện trên bề mặt môi trường cho phản ứng dương tính, phản ứng âm tính trên bề mặt môi trường giữ nguyên màu thuốc thử.
Thử nghiệm Citrate
Simmons Citrte Agar ( SCA ) chất chỉ thị pH: Bromothymol blue, có thể dùng sodiun citrate hoặc potassium citrate làm nguồn cacbon: Acid: vàng, pH 6,0 Kiềm: xanh dương, pH 7,6 Trunh tính: màu xanh, pH 6,9
Cấy ria khuẩn lạc từ KIA lên môi trường SCA ủ 24-48 giờ đọc kết quả
SCA: ( + ) có khuẩn lạc môi trường chuyển sang màu xanh dương
( - ) không có khẩn lạc, môi trường giữ nguyên màu lục
Một số vi sinh vật có khả năng sử dụng citrate như một nguồn cacbon duy nhất tạo ra ion Na + làm pH môi trường tăng khi pH môi trường tăng ion
Na + được thải ra ngoài môi trường môi cấy và citrat được sử dụng hết do đó kết quả cho phản ứng dương tính khi xanh promothymol chuyển từ màu lục sang màu xanh dương, phản ứng âm tính môi trường vẫn giữ nguyên màu lục của xanh bromothymol
3.7 Khả năng sinh H 2 S ( Hydrogen Sulfide Test):
Tất cả môi trường đều được thanh trùng ở 121 0 C 15 phút
Với môi trường KIA, TSI cấy trên ống thạch nghiêng, phần đáy sâu Với môi trường BSA cấy trên đĩa
Môi trường cấy xong ủ 37 0 C trong 24 giờ lấy ra đọc kết quả
( + ) : khuẩn lạc đen trên môi trường BSA
( - ) : không có sự đổi màu
Khả năng sinh H2S là do một số vi sinh vật tổng hợp được enzim desulfohydrase xúc tác sự chuyển hoá trong điều kiện kỵ khí các acid amin có chứa lưu huỳnh như cysteine, cystin, methione và giải phóng H2S, H2S sinh ra sẽ tạo tủa màu đen với chỉ thị sulfide chứa trong môi trường nuôi cấy
Thử nghiệm khả năng sinh H 2 S
Việc đánh giá cảm quan được thực hiện trên hai loại mực: mực ống và mực nang fillet với tổng số mẫu kiểm là 10 mẫu
1.1.1 Mực ống và mực nang fillet nguyên liệu:
1.1.1.1 Hình dạng bên ngoài và trạng thái cơ lý sản phẩm:
Mực còn nguyên con, đầu dính vào thân, râu còn nguyên vẹn, cơ thịt chắc, tính đàn hồi cao
Thịt có màu trắng tự nhiên, sáng, bóng
Mực có mùi tanh đặc trưng, không có mùi lạ
Mực khi luộc chín ăn có vị ngọt, giòn
1.1.2 Mực ống và mực nang fillet thành phẩm:
Mực ống và mực nang fillet đông lạnh được sản xuất theo dạng khối (đông block)
1.1.2.1 Hình dạng bên ngoài và trạng thái cơ lý sản phẩm:
Mực được đông thành khối cứng, bao gói nguyên vẹn, lớp băng bọc sản phẩm đồng đều phủ kín toàn bộ sản phẩm
Mực sau khi rã đông có màu trắng tự nhiên của sản phẩm, không xuất hiện những vết hồng hay chuyển sang màu vàng
Mực có mùi tanh đặc trưng, không có mùi lạ.
Đánh giá cảm quan của mực nguyên liêu và thành phẩm
Kết quả
1.1.1 Mực ống và mực nang fillet nguyên liệu:
1.1.1.1 Hình dạng bên ngoài và trạng thái cơ lý sản phẩm:
Mực còn nguyên con, đầu dính vào thân, râu còn nguyên vẹn, cơ thịt chắc, tính đàn hồi cao
Thịt có màu trắng tự nhiên, sáng, bóng
Mực có mùi tanh đặc trưng, không có mùi lạ
Mực khi luộc chín ăn có vị ngọt, giòn
1.1.2 Mực ống và mực nang fillet thành phẩm:
Mực ống và mực nang fillet đông lạnh được sản xuất theo dạng khối (đông block)
1.1.2.1 Hình dạng bên ngoài và trạng thái cơ lý sản phẩm:
Mực được đông thành khối cứng, bao gói nguyên vẹn, lớp băng bọc sản phẩm đồng đều phủ kín toàn bộ sản phẩm
Mực sau khi rã đông có màu trắng tự nhiên của sản phẩm, không xuất hiện những vết hồng hay chuyển sang màu vàng
Mực có mùi tanh đặc trưng, không có mùi lạ
Mực khi luộc chín ăn có vị ngọt, giòn.
Thảo luận
Để biết được kết quả đánh giá cảm quan có đạt tiêu chuẩn yêu cầu hay không thì cần phải đem kết quả này so sánh với tiêu chuẩn Việt Nam về quy định cảm quan của thuỷ sản tươi Việt Nam (TCVN 3690-81 )
Trong tiêu chuẩn này quy định:
− Trạng thái bên ngoài: Nguyên vẹn, không trầy da, đầu dính chặt vào thaân
− Màu sắc: Màu tự nhiên đặc trưng cho từng loài
− Mùi: Mùi tự nhiên, không có mùi lạ
Vết lõm phục hồi nhanh: thuỷ sản tươi
Vết lõm phục hồi chậm: thuỷ sản ươn
Khi so sánh giữa tiêu chuẩn Việt Nam với kết quả cảm quan ta có thể kết luận sơ bộ là sản phẩm đạt tiêu chuẩn quy định.
Kết quả kiểm tra vi sinh vật trong mẫu
Kết quả kiểm tra
Kết quả kiểm tra được đưa ra dưới dang bảng:
Gọi X là số lượng trung bình của vi khuẩn hiếu khí.
Gọi y là số lượng trung bình của Coliform
Bảng 3.1: Kết quả kiểm tra các chỉ tiêu vi sinh vật của mực ống nguyên liệu:
Stt TPC Coliforms F Coliforms E.coli Salmonell a Staphyloc occus aureus V.Cholera V.Parahe motylicus Đánh giá kết quả
Bảng 3.2: Kết quả kiểm tra các chỉ tiêu vi sinh vật của mực ống thành phẩm:
Stt TPC Coliforms F Coliforms E.coli Salmonell a Staphyloc occus aureus V.Cholera V.Parahe motylicus Đánh giá kết quả
Bảng 3.3: Kết quả kiểm tra các chỉ tiêu vi sinh vật của mực nang fillet nguyên liệu:
Stt TPC Coliforms F Coliforms E.coli Salmonella Staphyloco ccus aureus V.Cholera V.Parahe motylicus Đánh giá kết quả
Bảng 3.4: Kết quả kiểm tra các chỉ tiêu vi sinh vật của mực nang fillet thành phẩm:
Stt TPC Coliforms F Coliforms E.coli Salmonella Staphyloco ccus aureus V.Cholera V.Parahe motylicus Đánh giá kết quả
Với kết quả kiểm ở bảng 3.1, 3.2, 3.3, 3.4, cho thấy :
Tỉ lệ xuất hiện E.coli trong 20 mẫu là: 5%
Tỉ lệ xuất hiện E.coli trong 5 mẫu mực nang fillet nguyên liệu là 20%
Dựa vào kết quả trung bình ở bảng 3.1, 3.2, 3.3, 3.4 cho thấy:
Tỉ lệ xuất hiện Coliforms trong 20 mẫu kiển là 75%
Tỉ lệ xuất hiện Coliforms trong 5 mẫu mực ống nguyên liệu là 100%
Tỉ lệ xuất hiện Coliforms trong 5 mẫu mực ống thành phẩm là 40%
Tỉ lệ xuất hiện Coliforms trong 5 mẫu mực nang fillet nguyên liệu là 100%
Tỉ lệ xuất hiện Coliforms trong 5 mẫu mực nang fillet thành phẩm là 60%
Thảo luận
Số lượng tổng vi khuẩn hiếu khí và trực khuẩn Coliforms là chỉ tiêu để đánh giá mức độ vệ sinh của vi sinh vật trong thực phẩm Nếu tổng số vi khuẩn hiếu khí tăng thì số lượng vi khuẩn trong thực phẩm tăng và ngựơc lại nếu tổng số vi khuẩn hiếu khí giảm thì số lượng vi khuẩn trong thực phẩm sẽ giảm Để đánh giá kết quả trên đạt tiêu chuẩn hay không phải tiến hành so sánh tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms của kết quả kiểm với tiêu chuẩn Việt Nam và tiêu chuẩn của các nước nhập khẩu, đồng thời so sánh chỉ tiêu tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bìng của mực ống và mực nang fillet dựa vào đồ thị
Toồng vi khuaồn hieỏu khớ: 1000000
Các chỉ tiêu khác không được phép có mặt
(TLTK- Trần Linh Thước - Phương pháp phân tích vi sinh vật trong thực phẩm và trong nước - trang 26, 27)
1.2.2 Tiêu chuẩn của các nước nhập khẩu:
Toồng vi khuaồn hieỏu khớ: 500000
Các chỉ tiêu khác không được phép có mặt
Dựa vào tiêu chuẩn Việt Nam và tiêu chuẩn của các nước nhập khẩu cho thấy chỉ tiêu tổng vi khuẩn hiếu khí và coliforms của kết quả kiểm thấp
1.2.3 Đồ thị so sánh các chỉ tiêu vi sinh vật:
Chổ tieõu toồng vi khuaồn hieỏu khớ 60400
1 2 Đồ thị 1: Đồ thị so sánh chỉ tiêu tổng vi khuẩn hiếu khí trung bình của mực ống nguyên liệu so với mực ống thành phẩm
Chổ tieõu Coliforms trung bỡnh 27
1 2 Đồ thị 2: Đồ thị so sánh chỉ tiêu
Coliforms trung bình của mực ống nguyên liệu so với mực ống thành phaồm
Dựa vào kết quả đồ thị 1 và 2 cho thấy, chỉ tiêu tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bình của mực ống thành phẩm thấp hơn so với mực ống nguyên liệu là 92%, 93,7%
Chổ tieõu toồng vi khuaồn hieỏu khớ trung bỡnh
1 2 Đồ thị 3: Đồ thị so sánh tổng vi khuẩn hiếu khí trung bình của mực nang fillet nguyên liệu so với mực nang fillet thành phaồm
Chổ tieõu Coliforms trung bỡnh 33,2
1 2 Đồ thị 4: Đồ thị so sánh chỉ tiêu
Coliforms trung bình của mực nang fillet nguyên liệu so với mực nang fillet thành phẩm
Dựa vào kết quả đồ thị 3 và 4 cho thấy, chỉ tiêu tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bình của mực nang fillet thành phẩm thấp hơn so với mực nang fillet nguyên liệu là 91,6%, 89%
Chổ tieõu toồng vi khuaồn hieỏu khớ trung bỡnh
1 2 Đồ thị 5: Đồ thị so sánh chỉ tiêu tổng vi khuẩn hiếu khí trung bình của mực ống nguyên liệu so với mực nang fillet nguyeõn lieọu
Chổ tieõu Coliforms trung bỡnh 33,2
1 2 Đồ thị 6: Đồ thị so sánh chỉ tiêu
Coliforms trung bình của mực ống nguyên liệu so với mực nang fillet nguyeõn lieọu
Từ kết quả đồ thị 5 và 6 cho thấy, chỉ tiêu tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bình của mực ống nguyên liệu thấp hơn so với mực nang fillet nguyên liệu là 42,8%, 18,7%
Chổ tieõu toồng vi kuaồn hieỏu khớ trung bỡnh
1 2 Đồ thị 7: Đồ thị so sánh tổng vi khuẩn hiếu khí trung bình của mực ống thành phẩm so với mực nang fillet thành phẩm
Chổ tieõu Coliforms trung bỡnh 3,7
1 2 Đồ thị 8: Đồ thị so sánh chỉ tiêu
Coliforms trung bình của mực ống thành phẩm so với mực nang fillet thành phẩm Từ kết quả đồ thị 7 và 8 cho thấy, chỉ tiêu tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bình của mực ống thành phẩm thấp hơn so với mực nang fillet thành phẩm là 46%, 54%
Từ các kết quả so sánh trên rút ra được nhận xét:
Chỉ tiêu tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bình của kết quả kiểm nghiệm trên hai loại mực ống và mực nang fillet thấp hơn tiêu chuẩn Việt Nam và tiêu chuẩn của các nước nhập khẩu
Số lượng tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bình của mực ống thành phẩm thấp hơn mực ống nguyên liệu là 92%, 93,7% ( dựa vào đồ thị 1, 2)
Số lượng tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bình của mực nang fillet thành phẩm thấp hơn mực nang fillet nguyên liệu là 91,6%, 89% ( dựa vào đồ thị 3,4)
Số lượng tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bình của mực ống nguyên liệu thấp hơn mực nang fillet nguyên liệu là 42,8%, 18,7% ( dựa vào đồ thò 5,6)
Số lượng tổng vi khuẩn hiếu khí và Coliforms trung bình của mực ống thành phẩm thấp hơn mực nang fillet thành phẩm là 46%, 54% ( dựa vào đồ thị 7,8)
Thuận lợi, hạn chế và thiếu sót
Lịch thực hiện đề tài được sắp xếp có khoảng thời gian dài, hợp lý khi các môn học đã hoàn tất
Mẫu kiễm được lấy trực tiếp tại công ty với sự hướng dẫn tận tình của các anh chị trong phòng phân tích kiểm nghiệm
Trong quá trình kiểm nghiệm và thực hiện đề tài do kiến thức còn giới hạn cho nên không tránh khỏi những thiếu sót, mong nhận được nhiều lời chỉ dạy và ý kiến đóng góp của quí thầy cô, anh chị, bạn bè nhằm tạo cho đề tài được hoàn chỉnh hơn./.