Nghiêncứutácdụng chống ungthưcủa một
số hoạtchấtphânlậptừhạtnhụcđậukhấu
(Myristica Fragrans)
Nguyễn Thị Chinh
Trường Đại học Khoa học Tự nhiên
Khoa Sinh học
Luận văn Thạc sĩ ngành: Sinh học thực nghiệm; Mã số: 60 42 30
Người hướng dẫn: TS. Phương Thiện Thương
Năm bảo vệ: 2011
Abstracts. Nghiêncứutácdụngchốngungthưcủa 04 hoạtchất là các lignan phân
lập từhạtnhụcđậukhấu Myristica fragrans là acid meso-dihydroguairetic,
macelignan, fragransin A2, nectandrin B trên mô hình tế bào 2D, spheroid và in
vivo. Kết quả như sau: Trong 04 hoạtchất thì acid meso-dihydroguairetic có hoạt
tính kháng u mạnh nhất khi thửtácdụng trên 08 dòng tế bào ungthư với giá trị
IC50 trong khoảng 10 μM đến 33,4 μM, trong đó tácdụng mạnh nhất là trên dòng
tế bào ungthư phổi H358 với giá trị IC50 nhỏ nhất là 10,11 µM. Chế phẩm không
gây độc cho dòng tế bào thường MDCK khi thử ở nồng độ cao nhất (30 µM). Ở mô
hình spheroid, acid meso-dihydroguairetic có tácdụng rõ rệt trong việc làm giảm
thể tích và gây tan khối cầu spheroid MCF7. Trong in vivo, acid meso-
dihydroguairetic gây tiêu hết u trên chuột nhắt swiss đến 50% ở liều thử thuốc cao
nhất 1g/kg thể trọng, và đạt tỷ lệ 30% ở hai liều thấp hơn là 0,5 và 0,2g/kg thể trọng
đồng thời làm tăng thời gian sống thêm ở chuột so với đối chứng không sử dụng
chế phẩm ở tất cả 3 liều lượng thử.
Keywords. Hoạtchấtphân lập; Hạtnhụcđậu khấu; Chốngung thư; Hóa sinh học
Content
Cùng với sự phát triển của xã hội, hiện nay số người mắc bệnh ungthư ở Việt
Nam cũng như trên thế giới ngày càng gia tăng. Năm 2000, ở Việt Nam tỷ lệ mắc chung
của bệnh ungthư ở nam giới là 104/100.000 dân, ở nữ giới là 101/100.000 dân, thì đến
năm 2010 tỷ lệ này ở nam giới tăng đến 181/100.000 dân và ở nữ giới tăng đến
134/100.000 dân. Trong đó các loại bệnh ungthư có tỷ lệ mắc mới tăng rõ rệt là ungthư
phổi, ungthư đại tràng, ungthư thực quản, ungthư tiền liệt tuyến ở nam giới và ungthư
vú, ungthư dạ dày, ungthư phổi, ungthư đại tràng và ungthư tuyến giáp ở nữ giới. Mỗi
năm Việt Nam có khoảng 75.000 người chết vì bệnh ung thư. Ước tính năm 2011 có
thêm 126.000 người mắc mới [11]. Bệnh ungthư đã trở thành một mối đe dọa cho sức
khỏe cộng đồng, không loại trừ một ai trong xã hội. Việc nghiêncứu tìm ra các chất có
khả năng điều trị căn bệnh ung thư, cũng như ngăn cản sự phát triển của các tế bào ung
thư làm tăng thời gian sống cho bệnh nhân luôn được các nhà khoa học trong nước và thế
giới quan tâm nghiên cứu. Đến nay, đã có nhiều hoạtchấtchốngungthư có nguồn gốc tự
nhiên đã được khám phá ra và đem vào sử dụng trên lâm sàng. Các hoạtchất điển hình là
paclitaxel (taxol), vinblastin và vincristin, camptothecin, adriamycin…
Việt Nam với khí hậu nhiệt đới gió mùa, nóng ẩm và mưa nhiều nên có hệ thực
vật vô cùng phong phú và đa dạng. Có rất nhiều loại cây được sử dụng là những dược
liệu quí. Đã có nhiều hoạtchất được tách chiết từ thực vật có tácdụng hỗ trợ điều trị căn
bệnh ungthư cũng như ngăn chặn sự phát triển của khối u được tìm thấy như: đu đủ
(Carica papaya L.) thuộc họ Đu đủ (Papayaceae) [24], gấc (Momordica cochinchinensis
Streng) thuộc họ Bầu bí (Cucurbitaceae) [1], trinh nữ hoàng cung (Crinum latifolium L.)
thuộc họ Thủy tiên (Amaryllidaceae) [9],… Do đó, chắc chắn trong thiên nhiên vẫn còn
tiềm ẩn các hoạtchất có tácdụngchốngungthư đang chờ con người khám phá.
Cây nhụcđậukhấu có tên khoa học là Myristica fragrans Hout. (tên tiếng Anh:
mace, nutmeg), thuộc họ nhụcđậukhấu (Myristicaceae), là cây được trồng và mọc ở
miền Nam Việt Nam. Các lignan (tức là các phenylpropanoids) là thành phần chủ yếu có
tác dụng sinh học củahạtnhụcđậu khấu, gồm các chất chính fragransin A2, nectandrin
B, macelignan, meso-dihydroguaiaretic acid. Đã có nhiều nghiêncứu về tácdụng sinh
học các lignan phânlậptừhạt có tácdụngchống oxy hóa, chống viêm giảm đau, có tác
dụng bảo vệ gan, giảm cholesterol trong máu, chống xơ vữa động mạch, kháng khuẩn.
Nhưng cho đến nay những nghiêncứu về tácdụngchốngungthưcủahạt và các lignan
phân lậptừhạt ở Việt Nam và thế giới mới có rất ít [27].
Trên cơ sở đó chúng tôi tiến hành thực hiện đề tài “Nghiên cứutácdụngchống
ung thưcủamộtsốhoạtchấtphânlậptừhạtnhụcđậukhấu Myristica fragrans” với các
mục đích chính như sau:
- Thửhoạt tính chốngungthưcủa các hoạtchất lignan phânlập được trên mô
hình nuôi cấy tế bào 2D.
- Tạo mô hình và nghiêncứutácdụng chống ungthưcủa lignan có tácdụng
chống ungthư mạnh nhất (trong các lignan đã thử nghiệm 2D) trên mô hình 3D và in
vivo.
Ung thư không phải chỉ là một loại bệnh mà là khoảng trên 200 loại bệnh khác
nhau [34]. Mỗi loại có nguyên nhân riêng của nó, nhưng đều có nguồn gốc chung từ việc
tế bào bị đột biến gen [34]. Năm 1953, lần đầu tiên tế bào ungthư được quan sát dưới
kính hiển vi điện tử. Những thành tựu nghiêncứu ở mô hình tế bào cho đến nay là cơ sở
chắc chắn cho nhận định của giáo sư Arnold Graffi “vấn đề củaungthư thực chất là vấn
đề của tế bào học”. Vì vậy muốn điều trị ungthư phải hiểu được cơ sở tế bào học của nó
[8, 34]. Các đặc điểm nổi bật chung của tế bào ungthư là tế bào bị đột biến gen, có khả
năng sự tăng sinh vô hạn, không kiểm soát được, có khả năng xâm lấn và phát triển ở các
cơ quan, tổ chức khác của cơ thể (sự di căn), có khả năng tăng sinh mạch máu [13, 34].
Bệnh ungthư bắt đầutừ khi có một tế bào bắt đầu vượt qua sự kiểm soát của cơ
thể, bị đột biến gen, phát triển không ngừng và hình thành một đám tế bào có chung đặc
điểm là phát triển vô kiểm soát, xâm lấn và chèn ép các mô xung quanh. Có rất nhiều
nguyên nhân làm chuyển dạng tế bào lành thành tế bào ung thư, bao gồm: các tác nhân
vật lý (chủ yếu là tia bức xạ ion hóa), các tác nhân hóa học, các virus, mộtsố bệnh viêm
mạn tính, nhiễm trùng lâu ngày, rối loạn nội tiết, rối loạn hoạt động enzyme và nhiều vấn
đề dinh dưỡng liên quan. Các tác nhân này gây ảnh hưởng sâu sắc đến cơ cấu di truyền
phân tửcủa tế bào, làm thay đổi khả năng trao đổi chất, năng lượng và thông tin với môi
trường. Ngoài ra, ungthư còn có thể do yếu tố di truyền bẩm sinh
Quá trình hình thành khối u từ tế bào ungthư phải trải qua nhiều giai đoạn. Thời
gian từ tế bào ungthư khởi đầu đến khi xuất hiện một u có thể nhận biết gọi là thời kì
tiềm ẩn (ở người có thể kéo dài từ 10 đến 20 năm) [8, 34]. Sau khi phát triển thành khối
u, các tế bào ungthư tiếp tục tăng sinh hỗn loạn, tự mất đi các thụ thể để nhận biết giới
hạn với các tế bào bên cạnh, sản xuất ồ ạt cytokin và enzyme proteaza để phá hủy màng
đệm lót và môi trường ngoại bào xung quanh. Do đó, các tế bào ungthư liên kết lỏng lẻo,
dễ dàng bứt ra khỏi khối u mẹ, theo mạch máu và mạch bạch huyết di cư đến các tổ chức
và cơ quan mới, bám lại và tiếp tục sinh sôi, nảy nở, tăng sinh số lượng. Quá trình này
được gọi là sự di căn (metastasis). Nói cách khác, di căn là một hay nhiều tế bào ungthư
tăng trưởng ở một khoảng cách nào đấy cách nơi phát sinh tiên phát của khối u. Thông
thường do hậu quả của di căn mà ungthư gây ra là xấu, có khả năng gây tử vong
Thuốc chữa ungthư có nguồn gốc thực vật gồm mộtsố alkaloid, glycozid hoặc
các dẫn chất bán tổng hợp của chúng. Thuốc nhóm này có thể kể đến là: vincristin,
vinblastin, podophyllin, thaliblastin, etoposid, teniposid, elsidin. Các nghiêncứu đã chỉ ra
một số cây thuốc Việt Nam có các thành phần kể trên:
a. Dừa cạn: tên khoa học là Catharanthus roseus, thuộc họ trúc đào Apocynaceae.
Từ dừa cạn đã chiết được các alkaloid chữa ungthư là vinblastin, vincristin, cũng
như các bán tổng hợp từ vinblastin là vinorelbin và eldisin .
b. Mộtsố cây trong họ hành tỏi Liliaceae như tỏi ta, hành ta và tỏi độc. Nước chiết
từ tỏi có tácdụngchống lại ungthư miệng của chuột hamster khi gây ungthư
miệng chuột. Dầu tỏi và dầu hành có tácdụngchống lại khối u ở da chuột nhắt
trắng .
c. Cây bát giác liên tên khoa học là Podophyllum tonkinense Gagnep, họ Hoàng liên
gai Berberidaceae. Cây này ở nước ta chưa thấy nghiêncứutácdụng chữa ung
thư nhưng ở Mỹ người ta đã chiết được từ cây Podophyllum peltatum L. cùng họ
Berberidaceae chất podophyllotoxin có tácdụng chữa ung thư.
d. Cây thông đỏ tên khoa học là Taxus wallichiana zucc, thuộc họ thanh tùng
Taxaceae. Từ thông đỏ đã chiết xuất ra chất 10-deacetylbaccatin II, rồi chuyển
hóa ra thành taxol có tácdụng chữa ung thư.
e. Đu đủ tên khoa học là Carica papaya L, họ đu đủ papayaceae, qua nghiêncứu
đều cho thấy có tácdụng chữa ungthư .
Phương pháp SRB - xác định độc tính đối với TBUT của các hoạtchất trong mô
hình in vitro
a, Nạp tế bào
8000 tế bào trong 180 µl môi trường nuôi cấy DMEM (hoặc RPMI) tùy thuộc
từng dòng tế bào với hàm lượng 10% FBS, được nạp vào các giếng của đĩa nuôi cấy 96
giếng, sau đó được ủ trong tủ nuôi cấy vô trùng ở 37
0
C, 5% CO2 cho tế bào ổn định trong
24h trước khi tiến hành ủ với hoạt chất.
b, Ủ với thuốc thử
Sau 24h nuôi cấy, đĩa thí nghiệm được cho thêm vào mỗi giếng 20µl dịch thuốc
đã pha trong môi trường nuôi cấy có nồng độ đặc gấp 10 lần liều thử. Tế bào được ủ với
các chất theo 5 nồng độ 30μM -10μM -3μM -1μM – 0,3μM trong 48h. Mỗi nồng độ được
lặp lại 4 lần. Sau đó đem cố định với TCA.
c, Nhuộm với SRB
Protein tổng sốcủa tế bào sau khi cố định bằng TCA 50% được nhuộm trong
10 phút bằng dung dịch SRB 4% với lượng 100µl/giếng ở nhiệt độ phòng. Lượng SRB
dư thừa được rửa trôi bằng dung dịch 1% axit axetic, lặp lại 5 lần. Sau đó hong khô ở
nhiệt độ phòng.
d, Hòa tan thuốc nhuộm
Thuốc nhuộm đã bám vào protein được thôi ra bằng cách lắc nhẹ trên máy lắc với
100 µl dung dịch 10mM tris-base/giếng.
e, Đo mật độ quang học
Mật độ quang học củadung dịch SRB vừa được thôi ra trong các giếng được xác
định bằng máy Microplate reader Model 680 (BioRad) ở bước sóng 540 nm.
f, Tính toán số liệu và ghi kết quả
Dựa vào giá trị mật độ quang học đo được, xác định % tỷ số tăng sinh A của tế
bào theo công thức sau:
A (%) =
T
VH
x 100%
Trong đó:
VH: là giá trị trung bình của mật độ quang học ở các giếng thử với dung
môi dùng để pha hoạtchất .
T : là giá trị trung bình của mật độ quang học ở các giếng thử với hoạtchất
Nếu : A = 50% thì có nghĩa là thuốc đã ức chế và làm chết 50% tế bào.
Nồng độ củahoạtchất khi A đạt giá trị 50% gọi là liều gây ức chế 50% sự phát
triển của tế bào, kí hiệu là IC50.
Phương pháp thửtácdụngcủahoạtchất trên spheroid MCF7
Phương pháp tạo spheroid MCF7
Bước 1: Chuẩn bị đĩa 96 giếng phủ agarose
Hòa tan agarose trong nước cất khử trùng nồng độ 3% (3g/100ml)
Đun nóng agarose bằng lò vi sóng ở nhiệt độ 120
0
C trong 15 phút
Làm nóng môi trường nuôi cấy bằng tủ sấy ở 70
0
C trong 5 phút
Pha agarose 3% trên với môi trường đã đun nóng (tỷ lệ 1:1) được agarose
1,5%.
Nhỏ 50µl agarose trên vào mỗi giếng
Sau 2h để agarose đông hoàn toàn, nhỏ tiếp 150µl môi trường/giếng.
Bước 2: Chuẩn bị tế bào
Hoạt hóa tế bào từ Nitơ lỏng:
Rã đông tế bào lưu giữ trong Nitơ lỏng (-196
0
C). Phân tán tế bào trong môi
trường nuôi cấy thích hợp (khoảng 7ml MT) trong ống falcon 15ml.
Đem ly tâm 1000 vòng/phút trong 5 phút
Thu tế bào lắng, phân tán tế bào trong môi trường nuôi cấy thích hợp có bổ
sung 20% FBS, ủ trong tủ ấm 37
0
C, 5% CO
2
. Nuôi tế bào đến khi tế bào bám
mặt đĩa nuôi cấy khoảng 75-90% thì tiến hành thu tế bào.
Thu tế bào: sử dụng trypsin để tách tế bào khỏi bề mặt đĩa nuôi cấy. Xác định
số lượng tế bào bằng buồng đếm Thoma.
Bước 3: Tạo spheroid
Nhỏ 20µl tế bào (nồng độ 5000TB/20µl) lên nắp đĩa
Đậy nắp đĩa vào đĩa agarose đã chuẩn bị trước
Nuôi trong tủ ấm 37
0
C, 5% CO
2
.
Sau 2 ngày tiến hành hạ giọt treo xuống nền agarose.
Thiết kế thí nghiệm thửtácdụngcủahoạtchất meso-dihydroguairetic acid trên
spheroid MCF7
Sau khi hạ giọt spheroid, để spheroid phát triển ổn định, sau khoảng 5-7 ngày tiến
hành tra mẫu hoạtchất với 5 nồng độ khác nhau: 30, 20, 15, 10, 5 µM. Đồng thời tiến
hành tra taxol ở các giếng đối chứng thử với taxol với 5 nồng độ là: 30; 3; 0,3; 0,03;
0,003 µg/ml (Bảng 4).
Bố trí thí nghiệm thửtácdụngcủahoạtchất 1 trên mô hình spheroid MCF7
3.8(µM)
Taxol (µg/ml)
A
M
VH
30
20
15
10
5
30
3
0,3
0,03
0,003
B
M
VH
30
20
15
10
5
30
3
0,3
0,03
0,003
C
M
VH
30
20
15
10
5
30
3
0,3
0,03
0,003
D
M
VH
30
20
15
10
5
30
3
0,3
0,03
0,003
E
MT
VH
F
MT
VH
G
MT
VH
H
MT
VH
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
(M): Giếng được nạp môi trường nuôi cấy; (MT): Giếng gồm môi trường nuôi cấy và
spheroid; (V
H
): Giếng gồm môi trường nuôi cấy, spheroid và dung môi pha mẫu dùng
làm đối chứng.
Quy ước: Ngày tiến hành tra thuốc được tính là ngày 0. Các ngày tiếp theo sau khi
tra thuốc được tính là ngày 1, 2, 3,
Xác định thể tích khối spheroid MCF7
Tiến hành theo dõi sự phát triển của khối spheroid dưới tácdụngcủa thuốc ở các
nồng độ khác nhau. Chụp ảnh spheroid MCF7 sau đó dùngphần mềm Carl Zeiss Axio
Vision 4.5 để đo đường kính khối cầu spheroid. Sau đó tính thể tích spheroid theo công
thức của Rolf Bjerkvig [29].
- Đối với những spheroid bình thường có hình dạng khối cầu thì tính thể tích khối
cầu spheroid theo công thức:
V=
4
3
.π.(a.b)
3/2
- Đối với những spheroid bất thường không còn hình dạng khối cầu thì tính thể tích
khối spheroid theo công thức: V= 0,4.a.b
2
Trong đó: a: đường kính nhỏ nhất của khối cầu
b: đường kính lớn nhất của khối cầu
V: thể tích khối cầu spheroid.
Phương pháp gây u rắn và thửtácdụng chống ungthưcủa hoạt chất 1 trên chuột
Gây u
Chuột 05 tuần tuổi (trọng lượng trung bình 18 - 20g) sau khi được bắt về 01 ngày,
được tiến hành gây u.
Dùng sơranh, kim 18G tiêm 0,2ml huyền dịch tế bào Sarcoma180 (tương đương
10
6
tế bào) vào dưới da vùng ngực (lệch về phía bên phải chuột) để tạo u rắn trên chuột.
Phân lô
Sau 05 ngày cấy truyền, quan sát thấy khối u rắn đã xác định rõ, tiến hành phân
lô, đo kích thước khối u và trọng lượng.
Chuột được chia làm 07 lô:
01 Lô Đối chứng sinh học - viết tắt là ĐCSH: chuột khỏe mạnh bình thường,
không cấy truyền TBUT.
01 Lô Đối chứng ungthư - viết tắt là ĐCUT: chuột được cấy truyền TBUT.
01 Lô Đối chứng ungthư uống dung môi - viết tắt là ĐCDM: chuột được cấy
truyền TBUT, uống dung môi là dầu gấc.
01 Lô Đối chứng ungthư uống 6-MP – viết tắt UT+6-MP: chuột được cấy
truyền TBUT, uống 6-MP pha trong nước cất.
03 lô đối chứng ungthư uống hoạtchất 1 - viết tắt là UT+1 (1g/kg); UT+1
(0,5g/kg); UT+1 (0,2g/kg): chuột được cấy truyền TBUT, uống hoạtchất 1
pha trong dung môi dầu gấc với nồng độ hoạtchất lần lượt là 1g; 0,5g; 0,2g
hoạt chất trên 1kg thể trọng chuột.
Cách cho uống
Dùng sơranh (có kim cho uống dài, đầu tù) cho sâu vào trong cổ họng chuột để
tránh hiện tượng chuột nhè thuốc ra ngoài, cho chuột uống vào các ngày thứ 2, 3, 5, 6
trong tuần.
Liều uống
Chất 1: 3 liều uống tương ứng với 3 lô là 1g; 0.5g; 0.2g/kg thể trọng tương đương với
20; 10; 4mg/con/lần.
6-MP: liều uống 0,96 mg/con/lần.
ĐCDM: uống dầu gấc 100µl /con/lần.
Kết quả
Nghiên cứutácdụng chống ungthưcủa 04 hoạtchất là các lignan phânlậptừhạt
nhục đậukhấu Myristica fragrans là acid meso-dihydroguairetic, macelignan, fragransin
A2, nectandrin B trên mô hình tế bào 2D, spheroid và in vivo chúng tôi thu được các kết
quả như sau: Trong 04 hoạtchất thì acid meso-dihydroguairetic có hoạt tính kháng u
mạnh nhất khi thửtácdụng trên 08 dòng tế bào ungthư với giá trị IC50 trong khoảng 10
μM đến 33,4 μM, trong đó tácdụng mạnh nhất là trên dòng tế bào ungthư phổi H358 với
giá trị IC50 nhỏ nhất là 10,11 µM. Chế phẩm không gây độc cho dòng tế bào thường
MDCK khi thử ở nồng độ cao nhất (30 µM).
Ở mô hình spheroid, acid meso-dihydroguairetic có tácdụng rõ rệt trong việc làm giảm
thể tích và gây tan khối cầu spheroid MCF7. Trong in vivo, acid meso-dihydroguairetic
gây tiêu hết u trên chuột nhắt swiss đến 50% ở liều thử thuốc cao nhất 1g/kg thể trọng, và
đạt tỷ lệ 30% ở hai liều thấp hơn là 0,5 và 0,2g/kg thể trọng đồng thời làm tăng thời gian
sống thêm ở chuột so với đối chứng không sử dụng chế phẩm ở tất cả 3 liều lượng thử .
Từ những nghiêncứu in vitro và in vivo đã tiến hành trên 4 hoạtchất meso-
Dihydroguaireic acid; Macelignan; Fragransin A và Nectandrin B sàng lọc được chúng
tôi rút ra những kết luận sau:
meso-dihydroguairetic acid có hoạt tính kháng u khi thửtácdụng trên 08 dòng tế
bào ungthư với giá trị IC
50
trong khoảng 10 μM đến 33,4 μM, trong đó tácdụng
mạnh nhất là trên dòng tế bào ungthư phổi H358 (IC
50
= 10,11 µM). Chế phẩm
không gây độc cho dòng tế bào thường MDCK với tỷ số tăng sinh đạt 87,76% so
với đối chứng khi thử ở nồng độ cao nhất (30 µM).
meso-dihydroguairetic acid có tácdụng rõ rệt trong việc làm giảm thể tích và gây
tan khối cầu spheroid của dòng tế bào MCF7. Chỉ một ngày sau khi tra chất 1 thể
tích khối spheroid đã giảm đáng kể ở tất cả các nồng độ 10, 15, 20, 30 µM. Đến
ngày thứ 4 thì thể tích khối cầu spheroid gần như không đáng kể (chỉ còn vài 6-
7% so với ngày thứ nhất).
meso-dihydroguairetic acid gây tiêu hết u đến 50% trên chuột nhắt trắng Swiss
mang u rắn Sar180 ở liều thử thuốc cao nhất 1g/kg thể trọng, và đạt tỷ lệ 30% ở
hai liều thấp hơn là 0,5 và 0,2g/kg thể trọng. Chấtthử còn có tácdụng làm tăng
thời gian sống thêm ở chuột so với đối chứng không sử dụng chế phẩm ở tất cả 3
liều lượng thử, kéo dài nhất là liều 1g/kg thể trọng. Chuột ở lô ĐCUT chỉ sau 35
ngày kể từ khi tạo u chuột đã chết hoàn toàn, ở các lô sử dụngchấtsố 1 còn 30%
số chuột vẫn sống đến ngày thứ 60.
Những kết quả nghiêncứu trên có thể kết luận hoạtchất meso-dihydroguairetic acid
(1) có tácdụng ức chế sự phát triển của các tế bào ungthư in vitro và in vivo. Tuy nhiên
cơ chế tácdụngcủahoạtchất này vẫn chưa được biết rõ. Hy vọng những kết quả này sẽ
là tiền đề cho việc nghiêncứu tiếp theo về cơ chế tácdụng và định hướng phát triển của
hoạt chất 1 trong tương lai.
References
Tiếng Việt
1. Đỗ Trung Đàm (1995), Thuốc chữa ung thư, NXB Y học, Hà Nội.
2. Lê Xuân Hải (2009), Đánh giá độc tính và tácdụng kích thích miễn dịch, chống
gốc tự do của cao thuốc thảo dược VID, Luận án tiến sĩ.
3. Hiệp hội chốngungthư UICC (1999), Ungthư học lâm sàng, NXB Y học, Hà
Nội.
4. Bùi Văn Lệ, “Ảnh hưởng chất điều hoà tăng trưởng thực vật và đường saccarose
lên dịch nuôi cấy huyền phù tế bào dừa”, Tạp chí Phát triển Khoa học và Công
nghệ, 9 (6), tr59.
5. Đỗ Tất Lợi (2003), Các cây thuốc và vị thuốc Việt Nam, NXB Y học, Hà Nội.
6. Chu Văn Mẫn (2009), Tin học trong công nghệ sinh học, NXB Giáo dục, Hà Nội.
7. Phan Kim Ngọc, Phạm Văn Phúc (2006), Công nghệ sinh học trên người và động
vật, NXB Giáo dục, TP. Hồ Chí Minh.
8. Nguyễn Thị Quỳ (1993), Gây tạo mô hình u báng thực nghiệm và thửtácdụng
phòng chống ungthưcủa một sốhoạtchấttự nhiên và tổng hợp, Luận án Phó tiến
sĩ Sinh học, Trường Đại học Khoa học Tự nhiên, Đại học Quốc gia Hà Nội.
9. Nguyễn Thị Ngọc Trâm, Kamenarka.Z, Bankova.V, Popov.S, Zvetkova.E, Lê
Mai Hương (2011), “Hoạt tính gây độc tế bào của các phân đoạn Alcoloid từ cây
Trinh nữ hoàng cung (Crium latifolium)”, Tạp chí Dược học số 11, tr21-23.
10. Trần Công Yên (1990), Tế bào ungthư - một mục tiêu tấn công chủ yếu của Sinh
– Y học hiện đại, Trường Đại học Khoa học Tự nhiên, Tài liệu đánh máy lưu hành
nội bộ.
11. http://www.thuocbietduoc.com.vn/tin-tuc-11252-2-5/ung-thu-do-loi-song-tang-
chong-mat.aspx0
12. http://wvww.thuoc-suckhoe.com/khainiem/BAIVIET/phanloai 026.htm
13. http://www.ungthu.net
Tiếng Anh
14. Chung, J.Y., Choo, J.H., Lee, M.H., Hwang, J.K (2006), “Anticariogenic activity
of macelignan isolated from Myristica fragrans (nutmeg) against Streptococus
mutans”, Phytomedicine, 13, 261-266.
15. Forrest, J.E., Heacock, R.A., Forrest, T.P. (1974), “Diarylpropanoids from
nutmeg and mace”, Myristica fragrans Houtt, 2, 205-209.
16. Freshney, R.I. (2005), “Culture of Animal Cells”, A Manual of Basic Technique,
5th edition.
17. Gils, C.V., Alan Cox, P. (1994), “Ethnobotany of nutmeg in the Spice Islands” , J.
Ethnopharmacol, 42, 117-124.
18. Hanahan, D., Weinberg R.A. (2000), "The Hallmarks of Cancer". Cell, 100, 57–
70.
19. Kwon, H.S., Kim, M.J., Jeong, H.J., Yang, M.S., Park, K.H., Jeong, T.S., Lee,
W.S. (2008), “Low density lipoprotein (LDL)-antioxidant lignans from Myristica
fragrans seeds”, Bioorg. Med. Chem. Lett., 18, 194-198.
20. Masters, J.R.W. (2002), Cancer cell lines, Vol.I.
21. Morita, T., Jinno, K., Kawagishi, H., Arimoto, Y., Suganuma, H., Inakuma, T.,
Sugiyama, K. (2003), “Hepatoprotective effect of myristicin from nutmeg
(Myristica fragrans) on lipopolysaccharide/d-galactosamine-induced liver injury”,
J. Agric. Food Chem., 51, 1560-1565.
22. Laboratory, T.J. (2008), Mouse Models for Cancer Research.
23. Olajide, O.A., Ajayi, F.F., Ekhelar, A. I., Awe, S.O., Makinde, J.M., Alada, A.R.
(1999), “Biological effects of Myristica fragrans (nutmeg) extract”, Phytother.
Res., 13, 344-345.
24. Oliveros – Belardo, V.A., Masilugan, V., Cardeno, F., Devera, E., Delacruz, E.,
Valmonte. J. (1972), “Possible antitumor conitituent of Carica papaya”, Asia
J.Pham.r, 26-9.
25. Ozaki, Y., Soedigdo, S., Wattimena, Y.R., Suganda, A.G. (1989),
“Antiinflammatory effect of mace, aril of Myristica fragrans Houtt., and its active
principles”, Jpn. J. Pharmacol., 49, 155-163.
26. Park, S., Lee, D.K., Yang, C. (1998), “Inhibition of fos-jun-ADN complex
formation by meso-Dihydroguaireic acid and in vitro cytotoxic effect of cancer
cells”, Cancer Lett., 127 (1-2), 23 -28.
27. Phuong Thien Thuong., Nguyen Trang Thuy., Dao Trong Tuan., Nguyen Minh
Khoi., Won Keun Oh. (2009), “Major lignans from the seeds of Myristica
fragrans (Nutmeg)”, Tạp chí Dược liệu, 14(2), 82-85.
28. Ram, A., Lauria, P., Gupta, R., Sharma, V.N. (1996), “Hypolipidatemic effect of
Myristica fragrans fruit extract in rabbits”, J. Ethnopharmacol., 55, 49-53.
29. Rolf Bjerkvig, Ph.D. (1992), Spheroid culture in cancer research, Illustrated.
30. Sharma, A., Mathur, R., Dixit, V.P. (1995), “Prevention of hypercholesterolemia
and atherosclerosis in rabbits after supplemientation of Myristica fragrans seed
extract”, Indian J. Physiol. Pharmacol., 39, 407-410.
31. Sohn, J.H., K.L., Choo, J.H., Hwang, J.K. (2007), “Macelignan protects HepG2
cells against tert-butylhydroperoxide-induced oxidative damage”, Biofactors, 29,
1-10.
32. Suckow, M.A. (2001), The laboratory mouse, A Volume in The Laboratory
Animal Pocket Reference Series.
33. Teicher, B.A (1997), Anticancer Drug Development Guide.
34. Weiberg, R.A. (2007), The Biology of Cancer. Garland Science Publishing House,
Michigan, USA.
35. http://en.wikipedia.org/wiki/Nutmeg
. Nghiên cứu tác dụng chống ung thư của một
số hoạt chất phân lập từ hạt nhục đậu khấu
(Myristica Fragrans)
Nguyễn Thị Chinh. tài Nghiên cứu tác dụng chống
ung thư của một số hoạt chất phân lập từ hạt nhục đậu khấu Myristica fragrans” với các
mục đích chính như sau:
- Thử hoạt