1. Trang chủ
  2. » Luận Văn - Báo Cáo

Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì

160 12 0

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

THÔNG TIN TÀI LIỆU

Thông tin cơ bản

Tiêu đề Nghiên Cứu Tác Dụng Lên Hành Vi Và Chuyển Hóa Lipid Máu Của Nano Alginate/Chitosan/Lovastatin Trên Chuột Cống Gây Mô Hình Béo Phì
Người hướng dẫn TS. Phạm Minh Đàm, PGS. TS. Cấn Văn Mão
Trường học Học viện Quân y
Chuyên ngành Khoa học Y sinh
Thể loại luận án tiến sĩ y học
Năm xuất bản 2022
Thành phố Hà Nội
Định dạng
Số trang 160
Dung lượng 10,47 MB

Nội dung

, BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO BỘ QUỐC PHÒNG HỌC VIỆN QUÂN Y NGHIÊN CỨU TÁC DỤNG LÊN HÀNH VI VÀ CHUYỂN HÓA LIPID MÁU CỦA NANO ALGINATE/CHITOSAN/LOVASTATIN TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MƠ HÌNH BÉO PHÌ LUẬN ÁN TIẾN SĨ Y HỌC 2 HÀ NỘI – 2022 BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO BỘ QUỐC PHÒNG HỌC VIỆN QUÂN Y NGHIÊN CỨU TÁC DỤNG LÊN HÀNH VI VÀ CHUYỂN HÓA LIPID MÁU CỦA NANO ALGINATE/CHITOSAN/LOVASTATIN TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MƠ HÌNH BÉO PHÌ Chun ngành: Khoa học Y sinh Mã số: 9720101 LUẬN ÁN TIẾN SĨ Y HỌC NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: TS PHẠM MINH ĐÀM PGS TS CẤN VĂN MÃO 3 HÀ NỘI – 2022LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam đoan cơng trình nghiên cứu tơi với hướng dẫn khoa học tập thể cán hướng dẫn Các kết nêu luận án trung thực công bố phần báo khoa học Luận án chưa công bố Tác giả 4 LỜI CẢM ƠN Trước tiên, xin trân trọng cảm ơn người thầy, người hướng dẫn khoa học, tận tình giúp đỡ, trực tiếp hướng dẫn tơi thực nghiên cứu khoa học q trình học tập thực luận án Tôi xin chân thành cảm ơn Bộ môn-Khoa-Trung tâm tạo điều kiện, hỗ trợ, giúp đỡ trình học tập thực luận án Tơi xin gửi lời cảm ơn chân thành tới lãnh đạo sở đào tạo sở hợp tác nghiên cứu tạo điều kiện giúp đỡ q trình thực nghiên cứu Cuối cùng, tơi xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc tới Bố, Mẹ, Chồng, Con gia đình ln bên cạnh động viên, giúp đỡ sống, học tập công tác Nghiên cứu sinh 5 MỤC LỤC TRANG PHỤ BÌA LỜI CAM ĐOAN LỜI CẢM ƠN MỤC LỤC DANH MỤC CÁC CHỮ, KÝ HIỆU VIẾT TẮT DANH MỤC CÁC BẢNGviii DANH MỤC CÁC HÌNH I ĐẶT VẤN ĐỀ CHƯƠNG 1: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 1.1 Tổng quan béo phì 1.1.1 Khái niệm béo phì 1.1.2 Tình hình béo phì Thế giới Việt Nam 1.1.3 Nguyên nhân hậu béo phì .6 1.1.4 Ảnh hưởng béo phì lên hệ thần kinh trung ương 12 1.1.5 Các thuốc điều trị béo phì .15 1.2 Gây mơ hình béo phì động vật thực nghiệm 20 1.2.1 Các mơ hình gây béo phì phẫu thuật hóa chất 20 1.2.2 Các mơ hình biến đổi gen .22 1.2.3 Các mơ hình động vật béo phì khác .27 1.2.4 Mơ hình chuột béo phì thức ăn cao .28 1.2.5 Các số đánh giá mơ hình béo phì động vật thực nghiệm 31 1.2.6 Các phương pháp đánh giá hành vi động vật thực nghiệm .33 1.3 Tổng quan nano Alginate/Chitosan/Lovastatin 34 1.3.1 Chitosan 34 1.3.2 Alginate 36 1.3.3 Alginate/Chitosan 37 1.3.4 Lovastatin tổ hợp polymer mang thuốc .38 CHƯƠNG 2: ĐỐI TƯỢNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 2.1 Đối tượng nghiên cứu 2.2 Phương pháp nghiên cứu 2.2.1 Thiết kế nghiên cứu 45 6 2.2.2 Phương tiện, dụng cụ hóa chất 45 2.2.3 Quy trình nghiên cứu 48 2.3 Xử lý số liệu 2.4 Đạo đức nghiên cứu CHƯƠNG 3: KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU 3.1 Kết gây mơ hình béo phì chuột cống .57 3.1.1 Các số sinh trắc học tiêu thụ thức ăn, nước uống 57 3.1.2 Kết nồng độ số thành phần lipid máu glucose máu 61 3.1.3 Kết hành vi động vật gây mơ hình .63 3.1.4 Kết mô bệnh học động vật gây mơ hình .71 3.2 Kết tác dụng lên hành vi rối loạn chuyển hóa lipid máu nano Alginate/Chitosan/Lovastatin chuột cống gây mơ hình béo phì 73 3.2.1 Các số sinh trắc học tiêu thụ thức ăn, nước uống giai đoạn can thiệp dùng dược chất 73 3.2.2 Tác dụng lên rối loạn lipid máu glucose máu giai đoạn can thiệp 77 3.2.3 Tác dụng lên hành vi động vật sau can thiệp dùng dược chất 84 CHƯƠNG 4: BÀN LUẬN 4.1 101 4.1.1 101 4.1.2 Thay đổi chuyển hóa lipid máu glucose máu 105 4.1.3 107 4.2 Đánh giá tác dụng lên hành vi chuyển hóa lipid máu nano Alginate/Chitosan/Lovastatin chuột cống gây mơ hình béo phì 112 4.2.1 112 4.2.2 Tác dụng lên số số lipid máu glucose máu 113 4.2.3 Tác dụng lên hành vi 117 KẾT LUẬN KIẾN NGHỊ DANH MỤC CÁC CƠNG TRÌNH CƠNG BỐ KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU CỦA ĐỀ TÀI LUẬN ÁN 7 TÀI LIỆU THAM KHẢO DANH MỤC CÁC CHỮ, KÝ HIỆU VIẾT TẮT TT Phần viết tắt ANOVA ARC AgRP BAT cAMP CART Phần viết đầy đủ tiếng Anh (tiếng Việt) Analysis of variance (phân tích phương sai) Arcuate nucleus of the hypothalamus (nhân cung vùng đồi) Agouti-related protein (protein liên quan màu lông hung) Brown adipose tissue (mô mỡ nâu) Cyclic adenosine monophosphate (AMP vòng) Cocaine- and amphetamine-regulated transcript 10 CCK CRH DMN ERK (phiên mã điều hòa liên quan cocaine amphetamine) Cholecystokinin Corticotropin-releasing hormone (hormone giải phóng ACTH) Dorsomedial nucleus (nhân lưng bên) Extracellular signal-regulated kinase 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 GABA GLP-1 HA HDL-cholesterol LDL-cholesterol LH MCH MC3R MC4R α-MSH (kinase điều hịa tín hiệu ngoại bào) Gamma-Aminobutyric acid (axít Gamma-Aminobutyric) Glucagon-like peptide (peptid giống glucagon-1) Hypothalamus (vùng đồi) High density lipoprotein cholesterol (cholesterol tỷ trọng cao) Low density lipoprotein cholesterol (cholesterol tỷ trọng thấp) Lateral hypothalamus (vùng đồi bên) Melanin-concentrating hormone (hormon tập trung melanin) Melanocortin receptor (thụ thể melanocortin 3) Melanocortin receptor (thụ thể melanocortin 4) Alpha-melanocyte-stimulating hormone 21 22 23 24 25 26 27 28 29 NA NPY NPYR NTS PKA PVN VMN VTA WAT (hormon kích thích tế bào sắc tố alpha) Nucleus accumbens (nhân vân bụng) Neuropeptide Y (peptid thần kinh Y) Neuropeptide Y receptor (thụ thể peptid thần kinh Y) Nucleus of the solitary tract (nhân bó đơn độc) Protein kinase A Paraventricular nucleus (nhân cạnh thất) Ventromedial nucleus (nhân bụng giữa) Ventral tegmental area (vùng mái bụng) White adipose tissue (mô mỡ trắng) DANH MỤC CÁC BẢNG Tên bảng Bảng 1.1 Phân độ béo phì theo số BMI cho người Châu Âu Mỹ Trang 1.2 Chiến lược cho thuốc dẫn tới giảm cân 2.1 Thành phần chất thức ăn cho chuột (g/kg) hai chế độ ăn 3.1 Tỷ lệ thể trọng/chiều dài hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần ni 8 3.2 Thức ăn tiêu thụ (gram) lượng (kcal) tương ứng hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần nuôi 3.3 Nước uống tiêu thụ (mililit) hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần ni 3.4 Nồng độ glucose máu (mmol/L) hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần nuôi 3.5 Nồng độ triglycerid máu (mmol/L) hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần nuôi 3.6 Nồng độ cholesterol máu (mmol/L) hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần ni 3.7 Nồng độ HDL-cholesterol (mmol/L) hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần nuôi 3.8 Nồng độ LDL-cholesterol (mmol/L) hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần ni 3.9 Quãng đường thời gian chuột bơi góc phần tư mê lộ nước sau bỏ platform hai nhóm chuột 3.10 3.11 Tỷ lệ thể trọng/chiều dài nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp 3.12 Thức ăn tiêu thụ (gram) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp 3.13 Nước uống tiêu thụ (mililit) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp 3.14 Nồng độ glucose máu (mmol/L) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp 3.15 Nồng độ triglycerid máu (mmoll/L) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp Tên bảng Trang Bảng 3.16 Nồng độ cholesterol máu (mmol/L) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần điều trị 3.17 Nồng độ HDL-cholesterol máu (mmol/L) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp 3.18 Nồng độ LDL–cholesterol máu (mmol/L) nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp 3.19 Trọng lượng tạng chuột nhóm nghiên cứu sau can thiệp 9 3.20 Thời gian (giây) quãng đường (m) bơi nhóm chuột góc phần tư rút bến đỗ vào ngày tập cuối mê lộ nước sau 12 tuần can thiệp DANH MỤC CÁC HÌNH Hình Tên hình 1.1 Cân lượng bệnh nguyên béo phì Trang 1.2 Sơ đồ chiến lược cho phân tử đích chống béo phì 1.3 Hình cắt ngang não chuột cống qua vị trí vùng đồi với vùng bơi đậm tương ứng vị trí gây tổn thương vùng đồi bên 1.4 Cấu trúc hóa học chitin chitosan 1.5 Tảo nâu (trái) cấu tạo alginate (phải) 1.6 Cấu trúc hóa học lovastatin 2.1 Lọ thành phẩm lovastatin (A) natri clorid 0,9% (B) 2.2 Môi trường mở (A) mê lộ nước (B) có chuột 2.3 Giao diện hệ thống ghi có hình ảnh mơi trường chuột (phải) thơng tin phân tích hành vi Any-Maze (trái) 2.4 Các tập vận động nhận thức đồ vật môi trường mở 10 10 2.5 Sơ đồ thiết kế nghiên cứu gây mơ hình chuột béo phì đánh giá tác dụng lên hành vi chế phẩm lovastatin qua hai giai đoạn 3.1 Trọng lượng (A) chiều dài (B) hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần ni 3.2 Vịng ngực (A) vịng bụng (B) hai nhóm chuột nghiên cứu qua tuần nuôi 3.3 Quãng đường vận động (A) tốc độ vận động (B) mơi trường mở hai nhóm chuột 3.4 Thời gian vận động (A) thời gian đứng im (B) mơi trường mở hai nhóm chuột 3.5 Qng đường vận động (A), tốc độ vận động (B), số lần vào (C) thời gian vận động (D) vùng trung tâm hai nhóm chuột 3.6 Quãng đường vận động (A), tốc độ vận động (B), số lần (C) thời gian vận động (D) vùng ngoại vi hai nhóm chuột 3.7 Tỷ lệ thời gian khám phá vật pha luyện tập (A) pha kiểm tra (B) hai nhóm chuột cuối giai đoạn gây mơ hình Hình Tên hình Trang 3.8 Số lần khám phá vật pha luyện tập (A) pha kiểm tra (B) hai nhóm chuột cuối giai đoạn gây mơ hình 3.9 Qng đường bơi tìm bến đỗ (A) thời gian đến tìm thấy bến đỗ (B) hai nhóm chuột qua ngày tập mê lộ nước tuần 3.10 Hình ảnh mơ học gan, thận lách hai nhóm chuột cuối giai đoạn mơ hình (x40, H&E) 3.11 Trọng lượng (gram) nhóm chuột nghiên cứu chế độ ăn thường (A), ăn giàu béo (B) chiều dài (cm) chúng chế độ ăn thường (C), ăn giàu béo (D) qua 12 tuần can thiệp 3.12 Vịng ngực (cm) nhóm chuột nghiên cứu chế độ ăn thường (A), ăn giàu béo (B) vòng bụng chúng chế độ ăn thường (C), ăn giàu béo (D) qua 12 tuần can thiệp 3.13 Quãng đường vận động (m) môi trường mở nhóm chuột ăn thường (A) ăn giàu béo (B) sau can thiệp dược chất 146 56 Dye L., Boyle N.B., Champ C et al (2017) The relationship between obesity and cognitive health and decline The Proceedings of the 57 Nutrition Society, 76(4): 443–454 Gazdzinski S., Kornak J., Weiner M.W., et al (2008) Body mass index and magnetic resonance markers of brain integrity in adults Annals of 58 Neurology, 63(5): 652–657 Verri M., Pastoris O., Dossena M., et al (2012) Mitochondrial alterations, oxidative stress and neuroinflammation in Alzheimer's disease International Journal of Immunopathology and Pharmacology, 59 25(2): 345–353 Kao Y.C., Wei W.Y., Tsai K.J., et al (2019) High fat diet suppresses peroxisome proliferator-activated receptors and reduces dopaminergic neurons in the substantia nigra International Journal of Molecular 60 Sciences, 21(1):207 Moreira E.L., de Oliveira J., Engel D.F., et al (2014) Hypercholesterolemia induces short-term spatial memory impairments in mice: up-regulation of acetylcholinesterase activity as an early and 61 causal event? Journal of Neural Transmission, 121(4): 415–426 Arnold S.E., Lucki I., Brookshire B.R., et al (2014) High fat diet produces brain insulin resistance, synaptodendritic abnormalities and 62 altered behavior in mice Neurobiology of Disease, 67: 79–87 Denver P., Gault V.A., McClean P.L (2018) Sustained high-fat diet modulates inflammation, insulin signalling and cognition in mice and a modified xenin peptide ameliorates neuropathology in a chronic high- 63 fat model Diabetes, obesity & metabolism, 20(5): 1166–1175 Bray G.A., Tartaglia L.A (2000) Medicinal strategies in the treatment 64 of obesity Nature, 404(6778): 672–677 Rolls B.J., Shide D.J., Thorwart M.L., et al (1998) Sibutramine reduces food intake in non-dieting women with obesity Obesity Research, 6(1):1–11 147 65 Hansen D.L., Toubro S., Stock M.J., et al (1998) Thermogenic effects of sibutramine in humans The American Journal of Clinical Nutrition, 66 68(6):1180–1186 Seagle H.M., Gessesen D.H., Hill J.O (1998) Effects of sibutramine on resting metabolic rate and weight loss in overweight women 67 Obesity Research, 6(2):115–121 Bray G.A., Blackburn G.L., Ferguson J.M., et al (1999) Sibutramine 68 produces dose-related weight loss Obesity Research, 7(2):189–198 Apfelbaum M., Vague P., Ziegler O., et al (1999) Long-term maintenance of weight loss after a very low calorie diet: efficacy and tolerability of sibutramine The American Journal of Medicine, 69 106(2):179–184 Guercolini R (1997) Mode of action of orlistat International Journal 70 of Obesity and Related Metabolic Disorders, 21(Suppl 3): S12–S23 Hauptman J.B., Jeunet F.S., Hartmann D (1992) Initial studies in humans with the novel gastrointestinal lipase inhibitor Ro 18–0647 (tetrahydrolipstatin) The American Journal of Clinical Nutrition, 71 55(1):309S–313S Sjöström L., Rissanen A., Andersen T., et al (1998) Randomized placebo-controlled trial of orlistat for weight loss and prevention of 72 weight regain in obese patients Lancet, 352:167–172 Davidson M.H., Hauptman J., DiGirolamo M (1999) Weight control and risk factor reduction in obese subjects treated for years with orlistat A randomized controlled trial Journal of the American 73 Medical Association, 281(3):235–242 Astrup A., Breum L., Toubro S., et al (1992) The effect and safety of an ephedrine/caffeine compound compared to ephedrine, caffeine and placebo in obese subjects on an energy restricted diet A double blind trial International Journal of Obesity and Related Metabolic Disorders, 16(4):269–277 148 74 Toubro S., Astrup L., Breum L., et al (1993) The acute and chronic effects of ephedrine/caffeine mixtures on energy expenditure and glucose metabolism in humans International Journal of Obesity and 75 Related Metabolic Disorders, 17(Suppl 3):S73–S77; discussion S82 Astrup A., Buemann B., Christensen N.J., et al (1992) The effect of ephedrine/caffeine mixture on energy expenditure and body 76 composition in obese women Metabolism, 41(7):686–688 Tartaglia L.A., Dembski M., Weng X., et al (1995) Identification and 77 expression cloning of a leptin receptor, OB-R Cell, 83:1263–1271 Cone R.D (1999) The central melanocortin system and energy 78 homeostasis Trends in Endocrinology & Metabolism, 10(6):211–216 Wilson B.D., Ollmann M.M., Barsh G.S (1999) The role of agoutirelated protein in regulating body-weight Molecular Medicine Today, 79 5(6):250–256 Kristensen P., Judge M.E., Thim L., et al (1998) Hypothalamic CART is a new anorectic peptide regulated by leptin Nature, 393(6680):72– 80 76 Heymsfield S.B., Greenberg A.S., Fujioka K., et al (1999) Recombinant leptin for weight loss in obese and lean adults: a randomized, controlled, dose-escalation study Journal of the American 81 Medical Association, 282(16):1568–1575 Huszar D., Lynch C.A., Fairchild-Huntress V., et al (1997) Targeted disruption of the melanocortin-4 receptor results in obesity in mice 82 Cell, 88(1):131–141 Lembo P.M., Grazzini E., Cao J., et al (1999) The receptor for the orexigenic peptide melanin-concentrating hormone is a G-protein- 83 coupled receptor Nature Cell Biology, 1(5):267–271 Vickers S.P., Clifton P.G., Dourish C.T., et al (1999) Reduced satiating effect of d-fenfluramine in serotonin 5-HT (2C) receptor mutant mice Psychopharmacology, 143:309–314 149 84 Smith B.K., York D.A., Bray G.A (1999) Activation of hypothalamic serotonin receptors reduced intake of dietary fat and protein but not carbohydrate The American Journal of Physiology, 277(3):R802– 85 R811 Heinonen P., Koulu M., Pesonen U., et al (1999) Identification of a three-amino acid deletion in the alpha2B-adrenergic receptor that is associated with reduced basal metabolic rate in obese subjects The 86 Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 84(7):2429–2433 Terry P., Gilbert D.B., Cooper S.J (1995) Dopamine receptor subtype 87 agonists and feeding behavior Obesity Research, 3:515S Sakata S., Yoshimatsu H., Kurokawa M (1997) Hypothalamic neuronal histamine: implications of its homeostatic control of energy 88 metabolism Nutrition,13:403–411 Kurose Y., Terashima Y (1999) Histamine regulates food intake through modulating noradrenaline release in the para-ventricular 89 nucleus Brain Research, 15:115–118 Smith G.P (1998) Satiation: From Gut to Brain (Oxford Univ Press, NewYork). 90 Accessed on August 5, 2020 Gutzwiller J.P., Drewe J., Hildebrand P., et al (1994) Effect of intravenous human gastrin-releasing peptide on food intake in humans 91 Gastroenterology, 106(5):1168–1173 Flint A., Raben A., Astrup A., et al (1998) Glucagon-like peptide I promotes satiety and suppresses energy intake in humans The Journal 92 of Clinical Investigation, 101(3):515–520 Holst J.J (1999) Glucagon-like peptide-1 (GLP-1) — an intestinal hormone, signaling nutritional abundance, with an unusual therapeutic 93 potential Trends in Endocrinology & Metabolism, 10:229–235 Gutzwiller J.P., Drewe J., Göke B., et al (1999) Glucagon-like peptide-1 promotes satiety and reduces food intake in patients with 150 diabetes mellitus type The American Journal of Physiology, 94 276(5Pt2):R1541–R1544 Erlanson-Albertsson C., York D (1997) Enterostatin – a peptide 95 regulating fat intake Obesity Research, 5(4):360–372 Kovacs E.M.R., Lejeune M.P.G.M., Westerterp-Plantenga M.S (2003) The effects of enterostatin intake on food intake and energy 96 expenditure British Journal of Nutrition, 90(1):207–214 Morley J.E., Flood J.F., Horowitz M., et al (1994) Modulation of food intake by peripherally administered amylin The American Journal of 97 Physiology, 276(1 Pt 2):R178–R184 Nagase H., Bray G.A., York D.A (1996) Effects of pyruvate and lactate on food intake in rat strains sensitive and resistant to dietary 98 obesity Physiology and Behavior, 59(3):555–560 Malhotra A., Shafiq N., Arora A., et al (2014) Dietary interventions (plant sterols, stanols, omega-3 fatty acids, soy protein and dietary fibers) for familial hypercholesterolaemia The Cochrane Database of 99 Systematic Reviews, 2014(6):CD001918 Lutz T.A., Woods S.C (2012) Overview of animal models of obesity Current Protocols in Pharmacology, 58:5.61.1–5.61.18 100 Chambers A.P., Sandoval D.A., Seeley R.J (2013) Integration of satiety signals by the central review nervous system Current Biology, 23:R379–R388 101 Carvalheira J.B.C., Ribeiro E.B., Araújo E.P., et al (2003) Selective impairment of insulin signalling in the hypothalamus of obese Zucker rats Diabetologia, 46:1629–1640 102 Anand B.K., Brobeck J.R (1951) Localization of a “feeding center” in the hypothalamus of the rat Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine, 77(2):323–325 103 King B.M., Frohman L.A (1986) Hypothalamic obesity: comparison of radio-frequency and electrolytic lesions in male and female rats Brain Research Bulletin, 17(3):409–413 151 104 Lorden J.F., Caudle A (1986) Behavioral and endocrinological effects of single injections of monosodium glutamate in the mouse Neurobehavioral Toxicology and Teratology, 8(5):509–519 105 Guimaraes R.B., Telles M.M., Coelho V.B., et al (2002) Adrenalectomy abolishes the food-induced hypothalamic serotonin release in both normal and monosodium glutamate-obese rats Brain Research Bulletin, 58(4):363–369 106 Miskowiak B., Partyka M (1993) Effects of neonatal treatment with MSG (monosodium glutamate) on hypothalamo-pituitary-thyroid axis in adult male rats Histology and Histopathology, 8(4):731–734 107 Perello M., Gaillard R.C., Chisari A., et al (2003) Adrenal enucleation in MSG-damaged hyperleptinemic male rats transiently restores adrenal sensitivity to leptin Neuroendocrinology, 78(3):176–184 108 Bunyan J., Murrell E.A., Shah P.P (1976) The induction of obesity in rodents by means of monosodium glutamate The British Journal of Nutrition, 35(1): 25–39 109 Diniz Y.S., Faine L.A., Galhardi C.M., et al (2005) Monosodium glutamate in standard and high-fiber diets: metabolic syndrome and oxidative stress in rats Nutrition, 21(6):749–755 110 Scallet A.C., Olney J.W (1986) Components of hypothalamic obesity: bipiperidyl-mustard lesions add hyperphagia to monosodium glutamate-induced hyperinsulinemia Brain Research, 374(2):380–384 111 Shimomura K., Shimizu H., Tsuchiya T., et al (2002) Is leptin a key factor which develops obesity by ovariectomy? Endocrine Journal, 49(4):417–423 112 Shimizu H., Ohtani K., Kato Y., et al (1996) Withdrawal of [corrected] estrogen increases hypothalamic neuropeptide Y (NPY) mRNA expression in ovariectomized obese rat Neuroscience Letters, 204(1-2):81–84 152 113 Dube M.G., Xu B., Kalra P.S., et al (1999) Disruption in neuropeptide Y and leptin signaling in obese ventromedial hypothalamic-lesioned rats Brain Research, 816(1): 38–46 114 Martins A.C., Souza K.L., Shio M.T., et al (2004) Adrenal medullary function and expression of catecholamine-synthesizing enzymes in mice with hypothalamic obesity Life Sciences, 74(26):3211–3222 115 Lim S.M., Goh Y.M., Mohtarrudin N., et al (2016) Germinated brown rice ameliorates obesity in high-fat diet induced obese rats BMC Complementary and Alternative Medicine, 16:140 116 Furnes M.W., Zhao C.M., Chen D (2009) Development of obesity is associated with increased calories per meal rather than per day A study of high-fat diet-induced obesity in young rats Obesity Surgery, 19(10):1430–1438 117 Naderali E.K., Fatani S., Williams G (2004) Chronic withdrawal of a high-palatable obesity-inducing diet completelyreverses metabolic and vascular abnormalities associated with dietary-obesity in the rat Atherosclerosis, 172(1):63–69 118 Deuel H.J.Jr., Movitt E., Hallman Lois F, et al (1944) Studies of the comparative nutritive value of fats: I Growth rate and efficiency of conversion of various diets to tissue Journal of Nutrition, 27(1): 107– 121 119 Deuel H.J.Jr., Meserve E.R., Straub E., et al (1947) The effect of fat level of the diet on general nutrition: I Growth, reproduction and physical capacity of rats receiving diets containing various levels of cottonseed oil or margarine fat ad libitum Journal of Nutrition 33(5): 569–582 120 Okere I.C., Chandler M.P., McElfresh T.A., et al (2006) Differential effects of saturated and unsaturated fatty acid diets on cardiomyocyte apoptosis, adipose distribution, and serum leptin American Journal of Physiology Heart and circulatory physiology, 291(1): H38 –H44 153 121 Seo E.Y., Ha A.W., Kim W.K (2012) α-Lipoic acid reduced weight gain and improved the lipid profile in rats fed with high fat diet Nutrition Research and Practice, 6(3):195–200 122 de Moura E Dias M, Dos Reis SA, da Conceiỗóo LL, et al (2021) Diet-induced obesity in animal models: points to consider and influence on metabolic markers Diabetology & metabolic syndrome, 13(1):32 123 Hariri N, Thibault L (2010) High-fat diet-induced obesity in animal models Nutrition Research Reviews, 23(2): 270–299 124 Novelli E.L.B., Diniz Y.S., Galhardi C.M., et al (2007) Anthropometrical parameters and markers of obesity in rats Laboratory Animals, 41:111119 125 Rocha-Rodrigues R., Gonỗalves I.O., Beleza J., et al (2018) Physical exercise mitigates high-fat diet-induced adiposopathy and related endocrine alterations in an animal model of obesity Journal of Physiology and Biochemistry, 74(2):235–246 126 Ibrahim M.M (2010) Subcutaneous and visceral adipose tissue: structural and functional differences Obesity Reviews, 11(1):11–18 127 Gopalan V., Lee S.S., Velan S.S (2014) Quantification of abdominal fat depots in rats and mice during obesity and weight loss interventions PLoS ONE, 9(10):e108979 128 Li J, Zhao W.G., Shen Z.F., et al (2015) Comparative proteome analysis of brown adipose tissue in obese C57BL/6J mice using iTRAQ-coupled 2D LC-MS/MS PLoS ONE, 10(3):e0119350 129 Mughal R.S., Bridge K., Buza I., et al (2019) Effects of obesity on insulin: insulin-like growth factor hybrid receptor expression and Akt phosphorylation in conduit and resistance arteries Diabetes & Vascular Disease Research, 16(2): 160 –170 130 Iñiguez M., Pérez-Matute P., Villanueva-Millán M.J., et al (2018) Agaricus bisporus supplementation reduces high-fat diet-induced body weight gain and fatty liver development Journal of Physiology and Biochemistry, 74(4):635–646 154 131 Cordner Z.A., Tamashiro K.L (2015) Effects of high - fat diet exposure on learning and memory Physiology & Behavior, 152(Pt B):363–371 132 Morris R.G.M., Garrud P., Rawlins J.N.P., et al (1982) Place navigation impaired in rats with hippocampal lesions Nature, 297(5868):681–683 133 Morris R (1984) Developments of a water-maze procedure for studying spatial learning in the rat Journal of Neuroscience Methods, 11(1):47–60 134 Vorhees C.V., Williams M.T (2006) Morris water maze: procedures for assessing spatial and related forms of learning and memory Nature Protocols, 1(2):848–858 135 Zanini P., Arbo B.D., Niches G., et al (2017) Diet – induced obesity alters memory consolidation in female rats Physiology and Behavior, 180:91–97 136 Pathan A.R., Gaikwad A.B., Viswanad B., et al (2008) Rosiglitazone attenuates the cognitive deficits induced by high fat diet feeding in rats European Journal of Pharmacology, 589(1-3):176–179 137 Liu Y., Fu X., Lan N., et al (2014) Luteolin protects against high fat diet-induced cognitive deficits in obesity mice Behavioural Brain Research, 267:178–188 138 Arika W.M., Kibiti C.M., Njagi J.M., et al (2019) Effects of DCM leaf extract of Gnidia glauca (Fresen) on locomotor activity, anxiety, and exploration-like behaviors in high-fat diet-induced obese rats Behavioural Neurology, 2019:7359235 139 Vogel H., Kraemer M., Rabasa C., et al (2017) Genetic predisposition to obesity affects behavioural traits including food reward and anxiety – like behavior in rats Behavioural Brain Research, 328:95–104 140 Davies K.G., Ekpennyong C., Green O., et al (2013) Locomotor and exploratory behaviour in mice treated with oral artesunate British Journal of Science, 8(1):47–57 155 141 Kumari, S., & Kishor, R (2020) Chitin and chitosan: origin, properties, and applications Handbook of Chitin and Chitosan, 1–33 doi:10.1016/b978-0-12-817970-3 142 Hirano S (1996) Chitin biotechnology applications, Biotechnology Annual Review, 2: 237–258 143 Tønnesen H.H., Karlsen J (2002) Alginate in drug delivery systems Drug Development and Industrial Pharmacy, 28(6): 21–30 144 Rinaudo M (2014) Biomaterials based on a natural polysaccharide: alginate Revista Especializada en Ciencias Qmico-Biológicas, 17(1): 92–96 145 Lee Y.M., Park Y.J., Lee S.J., et al.(2000) The bone regenerative effect of platelet-derived chitosan/tricalcium growth factor-BB phosphate sponge delivered carrier with Journal a of Periodontology, 71 (3): 418–424 146 Hambleton A., Debeaufort F., Bonnote A., et al (2009) Influence of alginate emulsion-based films structure on its barrier properties and on the protection of microencapsulated aroma compound Food Hydrocolloids, 23: 2116–2124 147 Knill C.J., Kennedy J.F., Mistry J., et al (2010) Alginate fibres modified with unhydrolysed and hydrolysed chitosans for wound dressings Carbohydrate Polymer, 55(1): 65–76 148 Bhunchu S., Rojsitthisak P (2014) Biopolymeric alginate-chitosan nanoparticles as drug delivery carriers for cancer therapy Pharmazie, 69: 563–570 149 Azevedo M.A., Bourbon A.I., Vicente A.A., et al (2014) Alginate/chitosan nanoparticles for encapsulation and controlled release of vitamin B2 International Journal of Biological Macromolecules, 71: 141–146 150 Schachter M (2005) Chemical, pharmacokinetic and pharmacodynamic properties of statins: an Pharmacology 19(1):117–125 update Fundamental & Clinical 156 151 Liu J., Zhang J., Shi Y., et al (2006) Chinese red yeast rice (Monascus purpureus) for primary hyperlipidemia: a meta-analysis of randomized controlled trials Chinese Medicine, 1(1): 4–16 152 Crundy S.M (1988) HMG-CoA reductase inhibitors for treatment of hypercholesteremia The New England Journal of Medicine, 319: 24–33 153 Bradford R.H., Shear C.L., Chremos A.N., et al (1991) Expanded Clinical Evaluation of Lovastatin (EXCEL) study results I Efficacy in modifying plasma lipoproteins and adverse event profile in 8245 patients with moderate hypercholesterolemia Archives of Internal Medicine, 151:43–49 154 Eskandary A., Moazedi A.A., Najaph Zade Varzi H., et al (2017) The effect of lovastatin on cognition impairment induced by bilateral electrical lesion of nucleus basalis magnocellularis in the Alzheimer’s disease model in adult male rats Feyz, Journal of Kashan University of Medical Sciences, 21(5):422–432 155 Meena A., Ratnam D.V., Chandraiah G., et al (2008) Oral nanoparticulate atorvastatin calcium is more efficient and safe in comparison to Lipicure in treating hyperlipidemia Lipids, 43:231–241 156 Aggarwal P., Hall J.B., McLeland C.B., et al (2009) Nanoparticle interaction with plasma proteins as it relates to particle biodistribution, biocompatibility and therapeutic efficacy Advanced Drug Delivery Reviews, 61:428–437 157 Garrett I.R., Gutierrez G.E., Rossini G., et al (2007) Locally delivered lovastatin nanoparticles enhance fracture healing in rats Journal of Orthopaedic Research, 25: 1351–1357 158 Tandon V., Bano G., Khajuria V., et al (2005) Pleiotropic effects of statins Indian Journal of Pharmacology, 37: 77–85 159 Xia Z., Tan M., Wei-Lynn Wong W., et al (2001) Blocking protein geranylgeranylazation is essential for lovastatin induced apoptosis of human acute myeloid leukemia cells Leukemia, 15: 1398–1407 157 160 Nguyễn Cao Hiền, Tán Văn Hậu, Lê Thị Thanh Vân cs (2017) Tổng hợp hệ nano hydroxypropyl-betacyclodextrin/alginate làm vật liệu mang thuốc, Tạp chí Khoa học cơng nghệ Thực phẩm, 13(1): 89–94 161 Nguyễn Thị Thu Trang (2016) Chế tạo, nghiên cứu số tính chất vật liệu tổ hợp Polylactic axit/chitosan (PLA/CS) thăm dò khả mang thuốc Quinin vật liệu, Luận án Tiến sĩ Hóa học, Hà Nội 162 Chinh N.T., Trang N.T.T., Giang N.V., et al (2016) In vitronifedipine release from poly(lactic acid)/chitosan nanoparticles loaded with nifedipine, Journal of Applied Polymer Science, 133(16), n/a–n/a doi:10.1002/app.43330 163 Thạch Thị Lộc, Thái Hoàng, Lê Đức Giang cs (2018) Nghiên cứu đặc trưng tính chất màng tổ hợp polymer Alginate/Chitosan/Lovastatin, Tạp chí khoa học, 47(2A): 23 – 30 164 Wu L., Parhofer K.G (2014) Diabetic dyslipidemia Metabolism, 63:1469–1479 165 Olsen M.K., Choi M.H., Kulseng B., et al (2017) Time-restricted feeding on weekdays restricts weight gain: A study using rat models of high-fat diet-induced obesity Physiology & Behavior, 173:298–304 166 Wong S.K., Chin K.Y., Suhaimi F., et al (2016) Animal models of metabolic syndrome: a review Nutrition & Metabolism, 13:65 167 Deal A.W., Seshie O., Lenzo A., et al (2020) High-fat diet negatively impacts both metabolic and behavioral health in outbred heterogeneous stock rats Physiological Genomics, 52(9):379–390 168 Han J., Nepal P., Odelade A., et al (2021) High-fat diet-induced weight gain, behavioral deficits, and dopamine changes in young C57BL/6J mice Frontiers in Nutrition, 7:591161 169 Barker G.R., Warburton E.C (2011) When is the hypocampus involved in recongnition memory? The Journal of Neuroscience, 31(29):10721– 10731 158 170 Swerdlow D.I., Preiss D., Kuchenbaecker K.B., et al (2015) HMGcoenzyme A reductase inhibition, type diabetes, and bodyweight: evidence from genetic analysis and randomised trials Lancet, 385(9965):351–361 171 Hernáez Á., Soria-Florido M.T., Schröder H., et al (2019) Role of HDL function and LDL atherogenicity on cardiovascular risk: A comprehensive examination PLoS One, 14(6):e0218533 172 Helve E., Tikkanen M.J (1988) Comparison of lovastatin and probucol in treatment of familial and non-familial hypercholesterolemia: different effects on lipoprotein profiles Atherosclerosis, 72(2):189– 197 173 Tolman K.G (2002) The liver and lovastatin The American Journal of Cardiology, 89(12):1374–1380 174 Sanguankeo A., Upala S., Cheungpasitporn W., et al (2015) Effects of statins on renal outcome in chronic kidney disease patients: a systematic review and meta-analysis PLoS One, 10(7):e0132970 175 Esmeijer K., Dekkers O.M., de Fijter J.W., et al (2019) Effect of different types of statins on kidney function decline and proteinuria: a network meta-analysis Scientific reports, 9(1):16632 176 Bobulescu I.A (2010) Renal lipid metabolism and lipotoxicity Current opinion in nephrology and hypertension, 19(4): 393–402 177 Velázquez K.T., Enos R.T., Bader J.E., et al (2019) Prolonged highfat-diet feeding promotes non-alcoholic fatty liver disease and alters gut microbiota in mice World Journal of Hepatology, 11(8):619–637 178 Eskandary A., Ali A., Hossein, et al (2017) The effects of donepezil and lovastatin on the reference and working memory by using radial arm-maze task in male rats model of Alzheimer’s disease Basic and Clinical Neuroscience Congress 2017, Abstract ID: 53 179 Ghayour M.B., Abdolmaleki A., Rassouli M.B (2017) Neuroprotective effect of Lovastatin on motor deficit induced by sciatic nerve crush in the rat European Journal of Pharmacology, 812:121–127 159 180 Metwally F.M., Rashad H., Mahmoud A.A (2019) Morus alba L Diminishes visceral adiposity, insulin resistance, behavioral alterations via regulation of gene expression of leptin, resistin and adiponectin in rats fed a high-cholesterol diet Physiology & Behavior, 201:1–11 181 Dutheil S., Ota K.T., Wohleb E.S., et al (2016) High-fat diet induced anxiety and anhedonia: impact on brain homeostasis and inflammation Neuropsychopharmacology, 41(7):1874–1887 182 Homberg J.R., van den Akker M., Raasø H.S., et al (2002) Enhanced motivation to self-administer cocaine is predicted by self-grooming behaviour and relates to dopamine release in the rat medial prefrontal cortex and amygdala The European Journal of Neuroscience, 15(9):1542–1550 183 Kreutzberg G.W (1996) Microglia: a sensor for pathological events in the CNS Trends in Neuroscience, 19(8):312-318 184 Adedayo L.D., Akintola G.S., Ojo A.O., et al (2018) Anxiolytic and explorative potentials of the methanol leaf extract of vernonia amygdalina in male Wistar rats Annals of Depression and Anxiety, 5(1):1094 ... BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO BỘ QUỐC PHÒNG HỌC VI? ??N QUÂN Y NGHIÊN CỨU TÁC DỤNG LÊN HÀNH VI VÀ CHUYỂN HÓA LIPID MÁU CỦA NANO ALGINATE/CHITOSAN/LOVASTATIN TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MƠ HÌNH BÉO PHÌ Chuyên ngành:... giá tác dụng lên hành vi chuyển hóa lipid máu nano Alginate/Chitosan/Lovastatin chuột cống gây mơ hình béo phì 112 4.2.1 112 4.2.2 Tác dụng lên số số lipid máu glucose máu. .. tế trên, tiến hành thực đề tài ? ?Nghiên cứu tác dụng lên hành vi chuyển hóa lipid máu nano Alginate/Chitosan/Lovastatin chuột cống gây mơ hình béo phì? ?? với mục tiêu sau: Đánh giá biến đổi hành vi

Ngày đăng: 14/01/2022, 08:04

HÌNH ẢNH LIÊN QUAN

TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MÔ HÌNH BÉO PHÌ - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
TRÊN CHUỘT CỐNG GÂY MÔ HÌNH BÉO PHÌ (Trang 1)
DANH MỤC CÁC BẢNG - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
DANH MỤC CÁC BẢNG (Trang 7)
Hình 1.1. Cân bằng năng lượng và bệnh nguyên của béo phì. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 1.1. Cân bằng năng lượng và bệnh nguyên của béo phì (Trang 20)
Hình 1.3. Hình cắt ngang não chuột cống qua vị trí vùng dưới đồi với vùng bôi đậm tương ứng vị trí gây tổn thương vùng dưới đồi bên. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 1.3. Hình cắt ngang não chuột cống qua vị trí vùng dưới đồi với vùng bôi đậm tương ứng vị trí gây tổn thương vùng dưới đồi bên (Trang 33)
Hình 1.4. Cấu trúc hóa học của chitin và chitosan. *Nguồn: Kumari và Kishor (2020) [141]. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 1.4. Cấu trúc hóa học của chitin và chitosan. *Nguồn: Kumari và Kishor (2020) [141] (Trang 47)
Môi trường mở: là một dụng cụ hình trụ tròn (đường kính 80 cm, cao 25 - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
i trường mở: là một dụng cụ hình trụ tròn (đường kính 80 cm, cao 25 (Trang 59)
Hình 2.3. Giao diện hệ thống ghi có hình ảnh môi trường và chuột (phải) và thông tin phân tích hành vi của Any-Maze (trái). - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 2.3. Giao diện hệ thống ghi có hình ảnh môi trường và chuột (phải) và thông tin phân tích hành vi của Any-Maze (trái) (Trang 60)
Mô hình động vật béo phì - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
h ình động vật béo phì (Trang 67)
Hình 3.3. Quãng đường vận động (A) và tốc độ vận động (B) trong môi trường mở của hai nhóm chuột - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.3. Quãng đường vận động (A) và tốc độ vận động (B) trong môi trường mở của hai nhóm chuột (Trang 75)
Kết quả trên Hình 3.3 cho thấy tổng quãng đường vận động trong môi trường mở ở nhóm gây béo phì (1317,29 ± 566,1 cm) thấp hơn so với ở nhóm ăn thường (1800,24 ± 438,92 cm) (kiểm định T, p < 0,001) - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
t quả trên Hình 3.3 cho thấy tổng quãng đường vận động trong môi trường mở ở nhóm gây béo phì (1317,29 ± 566,1 cm) thấp hơn so với ở nhóm ăn thường (1800,24 ± 438,92 cm) (kiểm định T, p < 0,001) (Trang 75)
định T, p= 0,004) (Hình 3.4A). Nhóm gây béo phì có thời gian đứng im trong môi trường mở lâu hơn (125,44 ± 67,36 giây) so với thời gian này ở nhóm ăn thường (83,58 ± 31,57 giây) (p = 0,003) (Hình 3.4B). - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
nh T, p= 0,004) (Hình 3.4A). Nhóm gây béo phì có thời gian đứng im trong môi trường mở lâu hơn (125,44 ± 67,36 giây) so với thời gian này ở nhóm ăn thường (83,58 ± 31,57 giây) (p = 0,003) (Hình 3.4B) (Trang 76)
Hình 3.6. Quãng đường vận động (A), tốc độ vận động (B), số lần ra (C) và thời gian vận động (D ) ở vùng ngoại vi của hai nhóm chuột - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.6. Quãng đường vận động (A), tốc độ vận động (B), số lần ra (C) và thời gian vận động (D ) ở vùng ngoại vi của hai nhóm chuột (Trang 77)
Hình 3.7. Tỷ lệ thời gian khám phá mỗi vật ở pha luyện tập (A) và pha kiểm tra (B) của hai nhóm chuột ở cuối giai đoạn gây mô hình - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.7. Tỷ lệ thời gian khám phá mỗi vật ở pha luyện tập (A) và pha kiểm tra (B) của hai nhóm chuột ở cuối giai đoạn gây mô hình (Trang 78)
3.1.4. Kết quả về mô bệnh học của động vật gây mô hình - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
3.1.4. Kết quả về mô bệnh học của động vật gây mô hình (Trang 82)
Hình 3.10. Hình ảnh mô học gan, thận và lách của hai nhóm chuột ở cuối giai đoạn mô hình (x40, H&E). - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.10. Hình ảnh mô học gan, thận và lách của hai nhóm chuột ở cuối giai đoạn mô hình (x40, H&E) (Trang 83)
Bảng 3.13. Nước uống tiêu thụ (mililit) của các nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Bảng 3.13. Nước uống tiêu thụ (mililit) của các nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp (Trang 86)
Bảng 3.17. Nồng độ HDL-cholesterol máu (mmol/L) của các nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Bảng 3.17. Nồng độ HDL-cholesterol máu (mmol/L) của các nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp (Trang 90)
Bảng 3.18. Nồng độ LDL–cholesterol máu (mmol/L) của các nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Bảng 3.18. Nồng độ LDL–cholesterol máu (mmol/L) của các nhóm chuột nghiên cứu qua 12 tuần can thiệp (Trang 91)
Hình 3.13. Quãng đường vận động (m) trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.13. Quãng đường vận động (m) trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất (Trang 94)
Hình 3.14. Tốc độ vận động trung bình trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.14. Tốc độ vận động trung bình trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất (Trang 95)
Hình 3.15. Thời gian vận động trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.15. Thời gian vận động trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất (Trang 96)
Hình 3.16. Thời gian đứng im của chuột trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.16. Thời gian đứng im của chuột trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất (Trang 97)
Hình 3.17. Quãng đường vận động ở vùng trung tâm của các nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và tốc độ vận động ở vùng trung tâm của các nhóm chuột ăn - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.17. Quãng đường vận động ở vùng trung tâm của các nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và tốc độ vận động ở vùng trung tâm của các nhóm chuột ăn (Trang 98)
Hình 3.19. Số lần vào vùng trung tâm của các nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và thời gian ở vùng trung tâm của chuột ở nhóm ăn thường (C), - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.19. Số lần vào vùng trung tâm của các nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và thời gian ở vùng trung tâm của chuột ở nhóm ăn thường (C), (Trang 101)
Hình 3.20. Số lần ra vùng ngoại vi của chuột ở nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và thời gian ở vùng ngoại vi của chuột ở nhóm ăn thường (C ), ăn - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.20. Số lần ra vùng ngoại vi của chuột ở nhóm chuột ăn thường (A), ăn giàu béo (B) và thời gian ở vùng ngoại vi của chuột ở nhóm ăn thường (C ), ăn (Trang 103)
Hình 3.21. Số lần khám phá đồ vật ở pha luyện tập trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.21. Số lần khám phá đồ vật ở pha luyện tập trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp dược chất (Trang 104)
Ở pha luyện tập, kết quả Hình 3.21 phân tích về số lần khám phá đồ vật ở nhóm ăn thường (NaCl: Vật A: 10,50 ± 4,93 lần, Vật B: 8,7 ± 4,4 lần;  Lovastatin:   Vật   A:   10,9   ±   5,26   lần,  Vật   B:   11,8   ±   5,35   lần;   C-Nano/Lovastatin: Vật A: 1 - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
pha luyện tập, kết quả Hình 3.21 phân tích về số lần khám phá đồ vật ở nhóm ăn thường (NaCl: Vật A: 10,50 ± 4,93 lần, Vật B: 8,7 ± 4,4 lần; Lovastatin: Vật A: 10,9 ± 5,26 lần, Vật B: 11,8 ± 5,35 lần; C-Nano/Lovastatin: Vật A: 1 (Trang 105)
Hình 3.23. Số lần khám phá đồ vật ở pha kiểm tra trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.23. Số lần khám phá đồ vật ở pha kiểm tra trong môi trường mở của các nhóm chuột ăn thường (A) và ăn giàu béo (B) sau can thiệp bằng dược chất (Trang 106)
Hình 3.25. Quãng đường bơi tìm bến đỗ của các nhóm chuột qua các ngày tập trong mê lộ nước sau 12 tuần can thiệp dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.25. Quãng đường bơi tìm bến đỗ của các nhóm chuột qua các ngày tập trong mê lộ nước sau 12 tuần can thiệp dược chất (Trang 108)
Hình 3.26. Thời gian đến khi tìm thấy bến đỗ của các nhóm chuột qua các ngày tập trong mê lộ nước sau 12 tuần can thiệp dược chất. - Nghiên cứu tác dụng lên hành vi và chuyển hóa lipid máu của nano alginatechitosanlovastatin trên chuột cống gây mô hình béo phì
Hình 3.26. Thời gian đến khi tìm thấy bến đỗ của các nhóm chuột qua các ngày tập trong mê lộ nước sau 12 tuần can thiệp dược chất (Trang 109)

TỪ KHÓA LIÊN QUAN

TRÍCH ĐOẠN

TÀI LIỆU CÙNG NGƯỜI DÙNG

TÀI LIỆU LIÊN QUAN

w