ĐỒ ÁN PHÂN TÍCH THỰC PHẨM : CNSX NƯỚC ÉP CỦ DỀN ĐÓNG HỘP

BỘ CÔNG THƯƠNG TRƯỜNG ĐẠI HỌC CÔNG NGHIỆP THỰC PHẨM TP.HCM KHOA CÔNG NGHỆ THỰC PHẨM BỘ CÔNG THƯƠNG TRƯỜNG ĐẠI HỌC CÔNG NGHIỆP THỰC PHẨM TPHCM KHOA CÔNG NGHIỆP THỰC PHẨM ĐỒ ÁN PHÂN TÍCH THỰC PHẨM : BEETROOT JUICE CNSX NƯỚC ÉP CỦ DỀN ĐÓNG HỘP HUỲNH BÃO YÊN – 2022130160 – 04DHDB2 10/5/2016 GVHD: Hồ Thị Mỹ Hương Nhận xét giáo viên hướng dẫn ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… ………………………………………………………………………………………… Nhận xét giáo viên phản biện LỜI NÓI ĐẦU Ngày nay, xã hội ngày phát triển tri thức nâng cao ngồi tiện lợi vốn có, người tiêu dùng quan tâm nhiều đến chất lượng sản phẩm, đặc biệt yếu tố sức khoẻ Cùng với phát triển ngành công nghệ sản xuất nước giải khát phát triển mạnh mẽ Với xu hướng thời đại sản phẩm nước giải khát làm từ nguyên liệu có sẵn tự nhiên, từ nguồn gốc nguyên liệu xanh Nguyên liệu vừa có giá trị dinh dưỡng cao vừa có giá trị dược liệu hiệu Về tiện lợi vốn có, phải sản phẩm có nhu cầu sử dụng cao cần thiết sống hàng ngày, yếu tố lựa chọn nước ép Sản phẩm đáp ứng nhu cầu khách hàng ngày, nhiều đối tượng nhiều quốc gia Và nguyên liệu xanh giúp cho bạn khoẻ ngày lựa chọn củ dền Trong công nghệ sản xuất nước ép sản phẩm nước củ dền ép sản phẩm mẻ người tiêu dùng, giá trị dinh dưỡng nước ép củ dền sức khoẻ người tiêu dùng cho cao Ngoài ra, giá trị cảm quan sản phẩm mùi, vị, màu sắc đặc trưng phù hợp với thị hiếu người tiêu dùng Việt Nam Tuy sản phẩm có tiềm phát triển lợi ích cần thiết người tiêu dùng sống đại ngày Đó lý đề tài Do thời gian, kiến thức kinh nghiệm có giới hạn nên đồ án khơng tránh khỏi thiếu sót Rất mong nhận góp ý q thầy bạn để đồ án hoàn thiện hoàn hào Xin cảm ơn ! DANH MỤC BẢNG Bảng 1.1 Giá trị dinh dưỡng 180g cam tươi 16 Bảng 2.1 Giới hạn ô nhiễm patulin thực phẩm 17 Bảng 2.2 Giới hạn nhiễm chì (Pb) thực phẩm 18 Bảng 2.3 Giới hạn ô nhiễm thiếc (Sn) thực phẩm 18 Bảng 2.4 Lượng dịch .20 Bảng 2.5 Đồ hộp nước ép 20 Bảng 2.6 Số đơn vị bao gói định để lấy mẫu ban đầu 23 Bảng 2.7 Số lượng đơn vị sản phẩm lấy từ đơn vị bao gói để thành lập mẫu riêng .23 Bảng 2.8 Số lượng mẫu trung bình trung bình thí nghiệm 24 Bảng 2.9 Bảng hiệu chỉnh số khúc xạ quy nhiệt độ 200C 26 Bảng 3.1 Hệ thống tiêu chuẩn cho sản phẩm Nước Cam 44 DANH MỤC HÌNH Hình 1.1 Cam trịn 11 Hình 1.2 Cam navel 12 Hình 1.3 Cam đỏ 13 Hình 1.4 Cam Xã Đồi (Nghệ An) 13 Hình 1.5 Cam sành 14 Hình 2.1 Lắp hệ thống lọc 30 CHƯƠNG TỔNG QUAN 1.1 Nguồn gốc Cây cam biết đến lâu khoảng 2200 năm trước công nguyên Trung Quốc số người lại cho cam có nguồn gốc từ dãy Himalayas (Ấn Độ) Cam trồng phổ biến Ấn Độ, sau lan rộng phía Đơng Nam Á Vào khoảng kỷ thứ trước Công Nguyên, cam đưa đến Châu Âu lan tới vùng Địa Trung Hải Sau cam Columbus đưa đến Châu Mỹ Những năm sau đó, người làm vườn Châu Mỹ Châu Âu đem cam tới Châu Úc Châu Phi Ngày cam trồng phổ biến nhiều nơi giới 1.2 Phân loại Có nhiều cách phân loại cam khác nhau, tùy thuộc vào quốc gia địa phương Trong thương mại, cam chia làm loại: cam (sweet orange) cam chua (sour orange) Trong cam chua thường để sản xuất mứt cam Một số loại cam thường gặp:  Cam tròn: Cam tròn phổ biến loại Valencia, có nguồn gốc từ đảo Azores Bồ Đào Nha Giống cam có khả thích ứng vùng nội địa, nơi có chênh lệch sâu sắc ngày đêm làm hoạt hó hệ sắc tố vỏ tạo cho màu sắc hấp dẫn Qủa có cỡ nhỏ tới trung bình thích hợp cho sản xuất cơng nghiệp Vỏ mỏng, da cam nhẵn, màu cam sáng Qủa có mùi vị đặc sắc tươi hay chế biến nước ép Khi chin cây, chuyển sang màu cam sáng, nhiệt độ nóng lên làm cho da hấp thụ lại chlorophyll từ nên cam có màu xanh nhạt Loại cam chủ yếu dùng làm nước với chất lượng nước ép tốt chứa nhiều dịch có màu sậm bền, hạt nên khơng tạo vị đắng Valencia dùng ăn tươi  Cam navel Trước năm 1835, cam Navel trồng nhiều Florida bị phá hủy chiến tranh giới thứ Giống cam trồng nhiều Brazil, Trung Quốc,… Cam navel có giống valenica loại cam khác Quả có màu vàng đậm sáng cam, da hồ đào dày dễ lột vỏ, không hạt Quả cho chất lượng tốt đạt độ khối lượng định, cho nhiều nước Thời tiết lạnh làm màu vàng sáng chín cịn màu xanh nhạt da Giống cam dùng chế biến nước trình chế biến dễ phát sinh vị đắng  Cam Blood ( Cam đỏ ) Đây loại xem ngon hấp dẫn loại có múi tìm thấy Địa Trung Hải Quả cỡ trung bình với vỏ mỏng có khơng hạt Có màu đỏ sậm sáng đẹp Nhược điểm lớn hàm lượng anthocyanin tạo màu đỏ đậm có khuynh hướng bị nhạt trình chế biến bảo quản Anthocyanin cịn chất chống oxy hóa mạnh tạo nhiều gốc tự gây ung thư, lão hóa, bệnh nhẹ … Loại cam thường dùng để ăn tươi, ăn kèm salad, dùng rôti nướng thịt  Cam (acidless orange) Loại trồng chủ yếu Địa Trung Hải Do nước có độ cao hàm lượng acid thấp không đủ khả ức chế vi sinh vật nên loại cam khơng thích hợp cho sản xuất nước ép Ở Việt Nam, cam chia làm loại : cam chanh, cam sành cam đắng Một số giống cam phổ biến nước ta cam Xã Đoài ( Nghệ An ), cam Động Đình, cam đường,…  Cam Xã Đoài ( Nghệ An ) Cây tương đối cao, cành (cành quả), trồng Xã Đoài, xã Nghi Diên, huyện Nghi Lộc, tỉnh Nghệ An Quả ngon, thơm có vỏ mỏng bóng, vị đậm, xơ Dùng chủ yếu sản xuất nước cam mứt cam Hình 1.4 Cam Xã Đồi (Nghệ An)  Cam đường Quả trung bình 100g, vỏ mỏng, màu vàng đỏ hay đỏ sẫm, dễ bóc, múi dễ chia Có ba loại Cam giấy với giống Cam Canh (Hà Nội), Cam Đồng dụ (Hải Phòng), Cam Ngọc cục Cam Hành Thiện (Nam Hà); Cam Bù, Cam Chua Hương Sơn (Hà Tĩnh); Cam voi Tun Hố (Quảng Bình)  Cam sành Quả có vỏ sần sùi mịn; vỏ dày, chín có màu vàng hay đỏ sẫm, dày dễ bóc, ruột đỏ, hạt có màu nâu lục, vị ngọt, chua, hương vị ngon quýt Ôn Chân (Nhật Bản) Thích hợp làm đồ hộp nước đường Giống phổ biến cam Bố Hạ, trồng bãi phù sa Hà Bắc đất thoát nước; dẹt, nặng trung bình 200250g, màu vàng đỏ đẹp chín vào tháng 11-12-1 năm sau, dịp Tết Ngun đán Cam sành cịn có tên Citrus nobilis Lour Quýt trước xem thứ Cam sành 1.3 Thành phần hóa học cam Thành phần hóa học cam trình bày bảng sau: Bảng 1.1- Thành phần dinh dưỡng cam tươi Thành phần Thành phần Nước Protein Tinh dầu Sacharose Glucose Muối khống Vitamine Fructo Acid hữu Cellulose Pectin P Fe Ca P Fe A Β-Carotene B1 B2 PP Hàm lượng Múi 88,06 0,9 Vết 3,59 1,25 Đơn vị Vỏ 75,95 2,4 1,22 3,49 % % % % 1,41 0,47 1,41 34 23 0,4 23 0,4 0,09 0,4 0,04 0,06 0,75 0,22 3,49 0,22 0,09 0,02 1,27 % % % mg% mg% mg% mg% mg% mg% mg% mg% mg% mg% 1.4 Giá trị dinh dưỡng Các chuyên gia sức khỏe Anh cho cần uống ly nước cam ngày giúp cải thiện da, tóc móng tay cam chứa nhiều vitamin C, kali axít folic Vitamin C cần thiết trình sản sinh collagen với siêu dưỡng chất lutein, chất trì hỗn q trình lão hóa da Sắc tố vàng cam có liên quan tới việc giảm tổn hại da ánh nắng mặt trời gây ra, đồng thời cho cải thiện độ đàn hồi da Các loại sản phẩm nước cam bao gồm: Nước cam cô đặc, nước cam trích ly, nước cam có gas - Tăng sức đề kháng Theo chuyên gia dinh dưỡng, nước cam đặc biệt cam sành chứa nhiều canxi vitamin sản phẩm từ sữa – có khả chống bệnh cảm cúm tăng cường khả miễn dịch Vào tiết trời chuyển mùa xuân sang hạ, chị em bầu dễ có nguy mắc bệnh cảm cúm sức đề kháng mẹ bầu thường yếu Để tăng khả miễn dịch cho thể, chị em nên uống nước cam sành hàng ngày Orange juice is filtered to remove particulates, injected onto a column containing C18 phase where naringin and neohesperidin are separated from other components, and measured by UV absorbance at 280 nm C Apparatus (a) Liquid chromatograph.—With pump, manual or automatic injector, UV detector, integrator or data collection system, and column heater Operating conditions: flow rate 1.0 mL/min; injection volume 20 L (40 L if test portions are diluted); UV at 280 nm, 0.05 absorbance units full scale (AUFS), column temperature 25-30°C regulated (b) Column.—High purity silica packing material with very low metal impurities bonded to C18 phase New columns should exceed the following specifications to allow for deterioration: Theoretical plate count (N) for naringin is 2000 N = 5.545 (tr/Wh)2 where tr = retention time of peak at apex in sec, and Wh = peak width at half height in sec Resolution (R) between naringin and hesperidin is 1.5 Peak symmetry (S) is between 0.9-1.4 for hesperidin S = A0.1h/B0.1h Using a line drawn from the apex of the peak to the baseline and perpendicular to the baseline, A 0.1h = peak width in sec to left of perpedicular at 10% of peak height, and B 0.1h = peak width in sec to right of perpendicular at 10% of peak height Column capacity factor (k') < 10 for neohesperidin k = (tr - td)/td, where tr is defined above and td = retention time of injection spike (time it takes for unretained solvent to flow through the column in sec) Table 999.05: Interlaboratory study results The following columns have been found to be satisfactory without addition of acetic acid to the mobile phase: Kromasil C18 5m, 15 4.6 mm (Cat No KS-1546-C185) with a flow rate of mL/min (Higgins Analytical, 1235 Pear Ave, Suite 105, Mountain View, CA 94043, USA); Prodigy C18 5m, 150 mm (Cat No 00F-4097- Y0) with a flow rate of 0.5 mL/min (Phenomenex, 2320 W 205th St, Torrance, CA 90501-1456, USA); Inertsil ODS-2 5m, 150 mm (Cat No 2070210) with a flow rate of 0.8-1.0 mL/min (SGE, Inc., 2007 Kramer Ln, Austin TX 78758, USA) Many other C18 columns can be used, but may require addition of acetic acid to the mobile phase to obtain acceptable symmetry and plate count values (c) Precolumn.—A high quality C-18 bonded silica packed precolumn containing few metal impurities (d) Filters.—If test samples are diluted 1:1 with 40% aqueous acetonitrile, use 25 mm 0.45 m nylon filter with glass fiber prefilter If test samples are filtered without prior dilution, use a 25 mm 0.2 m Anotop Plus (Whatman No 6809-4022 or 68094025) or cellulose acetate membrane filter to remove particulates D Reagents (a) Acetonitrile.—LC grade (b) Deionized water (c) Acetic acid.—LC grade (d) Dimethylformamide.—LC grade (e) Dimethylsulfoxide.—LC grade (f) Mobile phase.—(Aqueous acetic acid-acetonitrile, 81 + 19.) Add 1-10 mL LC grade glacial acetic acid to LC grade deionized water to give a total volume of L Acetic acid may minimize peak tailing and improve column efficiency Amount of acetic acid necessary depends on the column used and addition of acetic acid to the mobile phase increases the probability of interference from Na benzoate and K sorbate with peaks of interest Mix 1620 mL water or acetic acid solution with 380 mL LC grade acetonitrile (g) Naringin, hesperidin, and neohesperidin stock A solution.—500 g/g Standard grade Atomergic Chemetals Corp., 71 Carolyn Blvd Ave, Farmingdale, NY 11735, USA; Indofine Chemical Co., PO Box 473, Somerville, NJ 08876, USA; or Extrasynthese S.A., BP62, Z.I Lyon Nord, 69730 Genay, France Accurately weigh 0.05 g each of naringin, hesperidin, and neohesperidin into a 100 mL volumetric flask Add 10 mL dimethylforamide or dimethylsulfoxide, mix until dissolved, and dilute to volume with mobile phase (h) Sodium benzoate and potassium sorbate stock B solution.—500 g/g Accurately weigh 0.05 g K sorbate and 0.05 g Na benzoate, transfer to a 100 mL volumetric flask, and dilute to volume with mobile phase (i) Working standards.—Make dilutions (1:5, 1:10 , 1:20, 1:50, 1:100) of stock standard A in mobile phase to provide 100, 50, 25, 10, and g/g working standards Add 10 mL stock A and 10 mL stock B into a 100 mL volumetric flask to provide a standard for checking the mobile phase and column suitability Dilute to volume with mobile phase E Test Sample Preparation Centrifuge 10-20 mL of test sample at 10 000 g for 10 at 25°C Filter through a 25 mm 0.2 m Anotop Plus, or membrane filter Alternatively, if a centrifuge is not available, mix test samples well and dilute + with aqueous acetonitrile (40 + 60) Filter test samples through 25 mm 0.45 m nylon filter with glass fiber prefilter Adsorption of flavonoids by nylon in aqueous samples is overcome by the acetonitrile Do not use a filter with cellulose acetate, Versapore, or polysulfone membranes as they are not resistant to acetonitrile Do not use filters with a PVDF or PTFE membrane as these materials adsorb flavonoids from the matrix F Chromatography Inject working standard containing stock B solution and adjust solvent strength so resolution (R) is at least 1.5 between naringin and hesperidin, both naringin and neohesperidin are resolved from Na benzioate and K sorbate (R > 1.5), and k < 10 for neohesperidin Use an injection volume of 20, 10, or L dependent on the internal diameter (4.6, 3.0, or 2.0 mm, respectively) of the analytical column used Inject one orange juice test portion and set run time for 60 Interfering peak will elute between 25-60 on columns 150 mm or shorter For longer columns (250-300 mm) interfering peak may not elute for 80-100 Time injection interval so late peak does not interfere with subsequent analyses Temperature control of the analytical column and use of an automatic injection system are recommended Calibrate instrument with standards and check instrument for linearity If response is nonlinear, a multipoint calibration of the instrument is necessary each time a set is analyzed If linear, duplicate injections of a single standard for calibration is sufficient for subsequent sets G Calculation Identification of peaks is improved if relative retention times (RRT) are used instead of retention times Base relative retention times on retention time of hesperidin Quantitate naringin and neohesperidin by peak area Calculations may be programmed into the integrator following manufacturer's instructions or by standard curve if detector response is nonlinear If response is linear, calculate response factor (RF) for each standard component and determine concentration of naringin and neohesperidin in each test sample as follows: Reference: J AOAC Int (future issue) [4] 9.2.19 - Metals and Other Elements at Trace Levels in Foods / Single Element Methods AOAC Official Method 972.25 Lead in Food Atomic Absorption Spectrophotometric Method First Action 1972 Final Action 1976 A Principle Organic matter is digested and Pb released coprecipitates with SrSO4 Soluble sulfate salts are decanted, and precipitate is converted to carbonate salt, dissolved in acid, and determined by AA at 217.0 or 283.3 nm B Apparatus (a) Atomic absorption spectrophotometer.—Operated at 217 or 283.3 nm (b) Stirring motor.—With eccentric coupling for stirring centrifuge tubes C Reagents (Age all new glassware and all glassware which has contained high Pb concentration in boiling HNO3 before washing Never let used glassware dry before washing, and always include final HNO3 rinse followed by deionized H2O rinse.) (a) Strontium solution.—2% Dissolve g SrCl2·6H2O in 100 mL H2O (b) Ternary acid mixture.—Add 20 mL H2SO4 to 100 mL H2O, mix, add 100 mL HNO3 and 40 mL 70% HClO4, and mix (c) Nitric acid 1M.—Add 128 mL redistilled HNO3 to 500-800 mL distilled or deionized H2O and dilute to L Redistilled HNO (GFS Chemical, Inc., No 63) may be diluted and used without redistillation (d) Lead standard solutions.—(1) Stock solution.—1000 g/mL Dissolve 1.5985 g Pb(NO3)2, recrystallized as in 935.50 B (see 9.2.12), in ca 500 mL 1M HNO3 in L volumetric flask and dilute to volume with 1M HNO (2) Working solutions.— Prepare 100 g Pb/mL by diluting 10 mL stock solution to 100 mL with 1M HNO Dilute 1, 3, 5, 10, 15, and 25 mL aliquots of this solution to 100 mL with 1M HNO (1, 3, 5, 10, 15, and 25 g Pb/mL, respectively) D Separation of Lead Accurately weigh test portion containing 10 g dry matter and g Pb Place in 500 mL boiling or Kjeldahl flask and add mL 2% Sr solution, C(a), and several glass beads Prepare reagent blank and carry through same operations as sample Add 15 mL ternary acid mixture, C(b), for each g dry matter and let stand h Heat under hood or H2O vacuum manifold system until flask contains only H 2SO4 and inorganic salts (Note:Take care to avoid material loss from foaming when heat is first applied, and when foaming occurs soon after material chars Remove heat and swirl flask before continuing digestion Add HNO3, if necessary.) Cool digest few (Digest should be cool enough to add ca 15 mL H2O safely, but hot enough to boil when H2O is added.) Wash while still hot into 40-50 mL taperedbottom centrifuge tube and swirl Let cool, centrifuge 10 at 350 g, and decant liquid into waste beaker (Film-like precipitate on surface may be discarded.) Dislodge precipitate by vigorously stirring with eccentric-coupled stirring motor To complete transfer, add 20 mL H 2O and mL 0.5M H2SO4 to original flask and heat Do not omit this step even though it appears transfer was complete in first wash Wash hot contents of original digestion flask into centrifuge tube containing precipitate Swirl to mix, cool, centrifuge, and decant liquid into waste beaker Dislodge precipitate by stirring vigorously, add 25 mL saturated (NH4)2CO3 solution (ca 20%), and stir until all precipitate is dispersed Let stand h, centrifuge, and decant liquid into waste beaker Repeat (NH4)2CO3treatment After decanting, invert centrifuge tube on paper towel and drain all liquid Add mL 1M HNO3 (use larger volume 1M HNO3 in both sample and blank if >25 g Pb is expected), stir vigorously to expel CO2 or use ultrasonic bath 2-3 min, let stand 30 min, and centrifuge if precipitate remains (Use same technique for all test portions.) E Determination Set instrument to previously established optimum conditions, using airC2H2 oxidizing flame and 217 or 283.3 nm resonant wavelength Determine A of test and blank solutions and standards within optimum working range (10-80% T) before and after sample readings Flush burner with 1M HNO3 and check point between readings Determine Pb from standard curve of A against g Pb/mL [5] 9.2.35 - Metals and Other Elements at Trace Levels in Foods / Single Element Methods AOAC Official Method 985.16 Tin in Canned Foods Atomic Absorption Spectrophotometric Method First Action 1985 Final Action 1988 Codex-Adopted-AOAC Method* A Principle Materials are digested with HNO3 and then HCl and are diluted Aqueous KCl is added to samples and standards to reduce positive instrument interference Sn is determined by AAS at 235.5 nm with oxidizing N2O-C2H2 flame B Reagents and Apparatus (a) Atomic absorption spectrophotometer.—With simultaneous background correction and N2O-C2H2 burner (b) Tin standard solutions.—(1) Stock solution.—1 mg Sn/mL Dissolve 1.000 g Sn (reagent grade) in ca 200 mL concentrated HCl, add ca 200 mL H2O, cool to ambient temperature, and dilute to L with H2O (2)Working solutions.—0, 50, 100, 150, and 200 g Sn/mL Into each of five 100 mL volumetric flasks, pipet 10 mL concentrated HCl, 1.0 mL KCl solution, (c), and 0, 5, 10, 15, or 20 mL Sn stock solution Dilute to volume with H2O (c) Potassium chloride solution.—10 mg K/mL Dissolve 1.91 g KCl and dilute to 100 mL with H2O (d) Nitric acid.—Concentrated Test purity of lot by diluting portion 1:4 (v/v) with H2O and aspirating into AA spectrophotometer Absence of Sn signal indicates suitability for analysis C Preparation of Materials Accurately (±0.01 g) weigh test portion into 250 mL Erlenmeyer: 30-40 g juices or drinks, 20 g foods containing 50-75% H 2O, and 5-10 g solids or semisolids Limit fat or oil content to 2-4 g and total organics to ca g Dry in oven at 120°C Do not add HNO3 to test portions unless there is time to complete this stage of digestion in the same day Add 30 mL concentrated HNO3 to flask and, within 15 min, heat gently in hood to initiate digestion, avoiding excessive frothing Gently boil until 3-6 mL digest remains or until sample just begins to dry on bottom Do not let material char Remove flask from heat Without delay, continue as follows, including empty flasks for reagent blanks: Add 25 mL concentrated HCl, and heat gently ca 15 until bumping from evolution of Cl stops Increase heat, and boil until 10- 15 mL volume remains, using similar flask with 15 mL H2O to estimate volume Add ca 40 mL H2O, swirl, and pour into 100 mL volumetric flask, rinsing once with ca 10 mL H 2O When HCl is present in digest, test portions may stand overnight or longer Pipet 1.0 mL KCl solution into each volumetric flask Cool to ambient temperature and dilute to volume with H2O, adding additional H2O to approximately compensate for volume of fat in flask Mix well and filter ca 30-50 mL through dry, medium porosity paper into dry, polypropylene or polyethylene screw-cap bottle Do not filter blanks Cap bottles until analysis Solutions are stable several months D Determination (Caution: Due to explosive nature of gases, take care when igniting and using flame Heating tape on N2O regulator may be needed to maintain steady gas flow.) Using 200 g/mL standard and 235.5 nm Sn line, optimize spectrophotometer, burner, and flame according to manufacturer's instructions Then increase N 2O flow or decrease C2H2 flow to give oxidizing flame; red part should be ca mm above burner slot This reduces sensitivity but improves precision to ± 0.0004 A for blank and gives 0.201 ± 0.001 A for 100 g/mL standard Periodically monitor sensitivity of a standard; if sensitivity decreases >20%, turn off flame and carefully clean burner slot Zero spectrophotometer while aspirating H 2O but not adjust zero until after determinations; autozero reduces precision Aspirate H 2O before and after each sample, standard, and blank solution Take three s readings for each solution, average, and reference all A measurements to A of H2O Record A for standards, draw calibration curve, and visually check for inaccurate standards Two times blank-corrected A for 50 g/mL standard should not differ by more than 3% from blank-corrected A for 100 g/mL standard Block standard blank solution with 50 g/mL standard, and using ratio of A, calculate concentration of standard blank: Standard blank ( g/mL) = [Ao/(A - Ao)] 50 where Ao and A refer to blank and mean of readings for 50 g/mL blocking standard, respectively Add standard blank concentration to nominal standard concentrations to obtain true standard concentrations Measure A of material blanks as for standard blank and calculate: Material blank ( g/mL) = (Ao/A ) true concentration of 50 g/mL standard where Ao and A refer to blank and 50 g/mL standard, respectively Calculate mean concentration of material blanks, B Determine test solution concentrations by one of ways: (1) Measure A of test solutions (maximum solutions) and 50 g/mL standard (or 100 g/mL standard, depending on test solution concentration level), blocking test solutions with standards Calculate blank-corrected test solution concentrations: Test solution concentration ( g/mL) = (A/A true standard concentration) - B where A and A refer to test and standard solution, respectively When high accuracy is not required or when calibration curvature is extensive, use procedure (2) after confirmation that sensitivity changes and baseline drift are absent during analytical run (2) Calibrate using blank and 50, 100, and 150 g/mL standards Run material blanks and test solutions, and calculate solution concentrations using either instrument microprocessor or calibration curve Calculate mean of sample blank concentrations, B Calculate blank-corrected solution concentrations ( g/mL) by subtracting B from solution concentrations Reference: JAOAC 68, 209(1985) CAS-7440-31-5 (tin) Revised: March 1997 * Adopted as a Codex Reference Method (Type II) for atomic absorption spectrophotometry of tin in processed meat and poutry products and soups and broths Adopted as a Codex Reference Method (Type III) for atomic absorption spectrophotometry of tin (products in other containers) in canned corned beef [6] AOAC Official Method 934.05 Sampling of Fruits Procedure (a) Boxed dried fruit.—Remove cover, bottom, or one side of box, as convenient Remove block comprising of contents of box taken from one corner as follows: With sharp knife make vertical cut midway between endsof box to center of top surface, extending cut half way to bottom Make another vertical cut midway between sides of box, extending half way to bottom, and continue it until it meets first cut Remove all fruit included in angle formed by the cuts Working rapidly, break up lumps, mix thoroughly, and take enough sample to fill quart (1 L) Mason jar, replacing remainder in box Seal jar and send to laboratory Sample enough boxes from different parts of pile to constitute at least square root of lot (b) Frozen pack fruit in barrels.—Use stainless steel or corrosion-resistant tube ca cm (1.25 in) diameter and 90 cm (36 in) long, one end serrated and set to run freely, other end with removable cap and arrangement for use of electric motor in drilling To aid in removal of core samples use wooden ram smaller in diameter but longer than tube Remove bottom of barrel and take cores evenly spaced around its circumference near chime, parallel to and through full length of barrel Take fourth core at approximately center of barrel (c) Frozen pack fruit in small containers 13.6-22.7 kg (30-50 lb).—Use modified corrosion-resistant auger 2.5-3.0 cm (1-1.5 in.) diameter and 50 cm (19 in.) long that can be operated by electric motor (Auger should have no lead screw or cutters and angle of face should not be flat but 170-175°.) Collect borings in corrosion-resistant sampling can ca 15 cm (6 in.) diameter and 10 cm (4 in.) high, open at one end, with outlet at other end ca 2.5 cm (1 in.) long and of diameter slightly larger than that of auger Place sampling can on surface of frozen fruit and operate auger through small opening at bottom Take vertical cores evenly spaced around circumference and ca 1.3 cm (0.5 in.) from edge of container and take core at or near center Remove both sampling can and auger simultaneously to prevent borings from falling through delivery outlet References: JAOAC 17, 66(1934); 30, 274(1947) 1.6 Mẫu trung bình mẫu lấy ngẫu nhiên từ mẫu chung 1.7 Mẫu trung bình thí nghiệm phần mẫu trung bình dùng để phân tích tiêu chất lượng 1.8 Trước lấy mẫu phải xác định tính đồng kiểm tra tình trạng bao bì lơ hàng 1.9 Khi lấy mẫu phải thực lấy ngẫu nhiên từ vị trí khác lơ hàng, đơn vị bao gói định lấy mẫu Lấy mẫu ca sản xuất có lơ hàng ca lấy khơng đơn vị sản phẩm Trường hợp mẫu ban đầu có sản phẩm mốc, gỉ, móp, méo, phồng chảy hay tượng hư hỏng khác phải tách để xác định riêng trước lấy mẫu trung bình 1.10 Chỉ lấy mẫu lô hàng qua bảo ôn Phương pháp lấy mẫu 2.1 Số lượng mẫu cần lấy để kiểm tra dạng bên ngồi độ kín bao bì theo TCVN 2600 - 78, với bậc kiểm tra AQL 6,5% 2.2 Số đơn vị bao gói định để lấy mẫu ban đầu quy định bảng Bảng Cỡ lô Số đơn vị bao gói cần lấy Dưới 500 đơn vị bao gói 2%, khơng Trên 500 đơn vị bao gói 10 thêm 1% số đơn vị bao gói trừ 500 2.3 Số lượng đơn vị sản phẩm lấy từ đơn vị bao gói để thành lập mẫu riêng quy định bảng Bảng Trang 92 Khối lượng tịnh đơn vị sản phẩm Số đơn vị sản phẩm lấy từ đơn vị (g) bao gói Dưới 500 12 Từ 500 đến 1000 Trên 1000 đến 3000 Trên 3000 2.4 Số lượng mẫu trung bình trung bình thí nghiệm theo quy định bảng Bảng 2.5 Trường hợp gửi mẫu trung bình đến nơi khác để phân tích mẫu phải bao Khối lượng tịnh Số lượng đơn vị sản phẩm cần lấy Kiểm VSV Kiểm đơn vị sản Kiểm hoá lý cảm quan phẩm (g) Mẫu lưu Tổng số Dưới 50 10 7 27 Từ 50 đến 200 5 18 3 3 14 12 2 Trên 200 đến 300 300 đến Trên 1000 Trên 1000 gói cẩn thận, kẹp chì niêm phong kèm nhãn có nội dung sau: Tên sở sản xuất; Tên hạng sản phẩm; Ngày sản xuất; Khối lượng lô hàng cỡ lô; Số lượng mẫu; Trang 93 Ngày lấy mẫu; Họ tên người lấy mẫu; Chỉ tiêu cần xác định 2.6 Cơ quan đánh giá phân tích trọng tài bên hữu quan thỏa thuận 2.7 Thời gian bảo quản mẫu lưu đựng bao bì hộp sắt tráng thiếc, thủy tinh, polyme khơng q tháng ... Nư? ?c cam c? ? đ? ?c, nư? ?c cam trích ly, nư? ?c cam c? ? gas - Tăng s? ?c đề kháng Theo chuyên gia dinh dưỡng, nư? ?c cam đ? ?c biệt cam sành chứa nhiều canxi vitamin sản phẩm từ sữa – c? ? khả chống bệnh c? ??m c? ?m... trị dinh dưỡng C? ?c chuyên gia s? ?c khỏe Anh cho c? ??n uống ly nư? ?c cam ngày giúp c? ??i thiện da, t? ?c móng tay cam chứa nhiều vitamin C, kali axít folic Vitamin C cần thiết trình sản sinh collagen với... s? ?c hấp dẫn Qủa c? ? c? ?? nhỏ tới trung bình thích hợp cho sản xuất c? ?ng nghiệp Vỏ mỏng, da cam nhẵn, màu cam sáng Qủa c? ? mùi vị đ? ?c s? ?c tươi hay chế biến nư? ?c ép Khi chin c? ?y, chuyển sang màu cam