Các độ pha loãng được chọn lựa sao cho trong các lần lặp lại có một số lần dương tính và có một số lần âm tính.. Số lần dương tính được ghi nhận và so sánh với bảng thống kê => giá
Trang 1ĐỊNH LƯỢNG TỔNG COLIFORMS BẰNG PHƯƠNG PHÁP TÍNH SỐ SÁC XUẤT
LỚN NHẤT (MPN)
GVHD :NGUYỄN THỊ MỸ LỆ
Trang 2NỘI DUNG
I ĐỐI TƯỢNG PHÂN TÍCH: COLIFORMS
II PHƯƠNG PHÁP ĐỊNH LƯỢNG : MPN
III QUY TRÌNH PHÂN TÍCH
IV VÍ DỤ PHƯƠNG PHÁP PHÂN TÍCH VSV TRONG NƯỚC
Trang 3I COLIFORMS
Coliforms là những trực khuẩn gram (-)
Không sinh bào tử
Hiếu khí hoặc kị khí tùy ý
Có khả năng lên men lactose sinh acid và sinh hơi ở 37 0c trong 24- 48h
Coliforms được xem là nhóm vsv chỉ thị
Trang 4echerichia
citrobacter
klebsiella enterobacter
Coliforms gồm 4 nhóm :
Trang 5Echerichia Coli Citrobacter Freundii Bacteria
Trang 6Klebsiella Pneumoniae Carbapenemase Enterobacter aerobacter
Trang 7Coliforms phân + IMViC
Là coliforms chịu nhiệt có khả năng sinh indole khi ủ ở 44.5 0c /24h trong tryptone
Trang 8II PHƯƠNG PHÁP MPN (MOST PROBABLE NUMBER
Phương pháp MPN dựa trên nguyên tắc xác suất thống kê sự phân bố vsv trong các
độ pha loãng khác nhau của mẫu.
Mỗi độ pha loãng được nuôi cấy lặp lại nhiều lần ( 3- 10 lần).
Các độ pha loãng được chọn lựa sao cho trong các lần lặp lại có một số lần dương
tính và có một số lần âm tính.
Số lần dương tính được ghi nhận và so sánh với bảng thống kê => giá trị ước đoán
số lượng vsv trong mẫu.
Trang 9Sự tạo hơi : Coliforms
Sự đổi màu : S aurius
Cho phép định lượng được mật độ vsv thấp trong thể tích mẫu lớn
Trang 10HỆ THỐNG MPN /g (ml)
Trang 11La
ury
l
Sulfa
te
T rypto
ne
Broth
g
( pre
ca
nh
Brillia
nt
Gree
n
Lacto
se
Sa
lt (
BGLB
–
48
giờ
a :
kh
ả n ăn
g
lê
n m en
sinh hơ
i ở
mô
i
trư ờng
nuô
i c ấy
ủ
ở 37
oC –
48 g
iờ
sử d ụn
g t est
đoá
n
ch ừn
g : để
h h
ơi
( c
ác ống
dư ơn
g t ín
h )
– q ua cá
c
ốn
g D uh arm
đư
ợc hơ
i
sin
h r
a đ ẩy
lê
n t rê
n
Trang 12III QUY TRÌNH PHÂN TÍCH
- Cho vào các ống nghiệm có chứa môi trường thích hợp cho sự tăng trưởng của đối tượng VSV cần định lượng một thể tích chính xác ở dung dịch mẫu ở
3 nồng độ bậc 10 liên tiếp, mỗi mức 3 hoặc 5 ống nghiệm ; ủ ở nhiệt độ và thời gian thích hợp
- Kết quả nhìn thấy chứng minh sự tăng trưởng của vi sinh vật cần kiểm
định ( sinh hơi, đổi màu, đục, …)
Trang 13- Ghi nhận số lượng ống nghiệm dương tính ở từng độ pha loãng Tra bảng Mac Crady rồi suy ra mật độ vi sinh vật
MPN/100 ml hay MPN/1g mẫu
Độ chính xác của trị số MPN phụ thuộc vào số ống nghiệm lặp lại trong mỗi độ pha loãng
Trang 15MÔI TRƯỜNG
Trang 16HÓA CHẤT
CỒN 90 ĐỘ VÀ 70 ĐỘ
HCL 10%
NAOH 10%
Trang 17QUY TRÌNH THỰC HIỆN
Trang 18- Bước 1 : Chuẩn bị mẫu
Cân 10g mẫu cho vào túi dập mẫu ( nếu là mẫu rắn) hoặc 10ml mẫu ( mẫu lỏng ) cho vào bình tam giác chứa 90ml dd SPW
đã vô trùng , và đồng nhất mẫu trong 1 phút
Trang 19Bước 2 : Chuyển 1ml dung dịch mẫu pha loãng ở mỗi nồng độ 10-1 , 10-2, 10-3 vào ống nghiệm có chứa 10ml canh LSB, mỗi nồng độ có 3 ống lặp lại, mỗi ống nghiệm cho 1 ống Durham
Trang 20Bước 3 :
+ Sau 48 giờ - các ống nghiệm được ủ ở 37o C - Ghi nhận các ống LSB sinh hơi và canh trường đục
+ Kết luận các ống LSB dương tính (+)
Trang 22Bước 5 :
+ Ghi nhận số ống sinh hơi và canh trường đục ở mỗi độ pha loãng
+ Kết luận các ống BGLB ( + )
Trang 23- Tra bảng Mac Crady :
Tra bảng MPN/100ml ta có kết quả : 43 coliform tổng /
100 ml mẫu
Trang 24IV.Phân tích coliforms trong mẫu nước
giới thiệu về vsv trong mẫu nước
Nước, dung môi phổ biến, là điều cần thiết cho cuộc sống: nước sạch để tắm, uống và nấu
ăn Thật không may, nhiều tác nhân gây bệnh lây truyền qua nguồn nước Một số các loài gây bệnh như bại liệt, thương hàn, tả, viêm gan, Bệnh vi khuẩn Shigella, Salmonella
Coliforms có đầy đủ các tiêu chuẩn và là những sinh vật chỉ thị chuẩn được sử dụng để kiểm tra tình trạng ô nhiễm sinh học của nước.
Theo tiêu chuẩn của EPA thì nước uống và nước trong hồ bơi phải có độ tinh khiết cao nhất
Không thể có nhiều hơn một mẫu dương tính (> 1 coliform/100 ml) trong 40 mẫu được kiểm tra trong một tháng và nồng độ coliform phân phải bằng không.
Trang 25 THỦ TỤC PHÂN TÍCH NƯỚC
Giai đoạn 1:
Chuẩn bị:
• 1 mẫu nước
• 8 đĩa petri vô trùng
• 2 chai thạch Agar tan chảy (PCA, 100 ml / chai) - trong nước tắm 50 ° C
• 15 ống Lactose Lauryl Tryptose Broth(LLTB, với ống Durham)
• Pipett vô trùng
Trang 27Đổ dd PCA từ nước tắm (mỗi 1 chai 4 đĩa) vào 8 đĩa petri đã được đánh dấu Sau khi đổ, nhẹ nhàng xoay mỗi đĩa (đảo chiều một vài lần) để pha trộn các chất mẫu hoàn toàn với
môi trường
Khi các đĩa đã đông cứng, đảo ngược các đĩa và ủ chúng ở 30 ° C
Dán nhãn 15 ống LLTB cho năm
độ pha loãng (mỗi độ pha loãng
3 ống).
Cấy 1ml hoặc 0,1 ml từ chai pha loãng thích hợp vào mỗi ống.
Ủ tất cả các ống ở 37 ° C trong 1-2 ngày (Nhiệt độ tiêu chuẩn là 35 độ C, nhưng 37 ° C cũng được ) Các ống sẽ được làm lạnh 2 ngày trước khi tiến hành
giai đoạn tiếp theo.
Trang 28Tổng số vi khuẩn hiếu khí
Trang 29Giai đoạn 2:
• 15 ống nghiệm cho mỗi môi trường Brilliant Green Lactose Bile (BGLB) Broth và EC Broth (với ống Durham cho mỗi ống
Trang 30Tính toán số lượng có thể xảy
ra nhất của vi khuẩn/ ml mẫu bằng cách sử dụng bảng MPN
Trang 31Kết quả trong BGLB
Trang 32Kết quả tăng trưởng điển hình quan sát cho canh EC
Trang 33 Ghi lại số lượng tích cực (tăng trưởng và khí) như trong giai đoạn
trước.
Ghi kết quả trên bảng dữ liệu Đối với các ống canh BGLB, tính toán
xác nhận, số lượng có thể xảy ra nhất của vi khuẩn / ml mẫu Đối với các ống canh EC, tính toán xác nhận, số lượng có thể xảy ra nhất của vi khuẩn phân / ml mẫu Ghi lại các giá trị trên bảng dữ liệu.
Trang 34 Từ một ống canh BGLB pha loãng cho thấy sự tăng trưởng và sinh khí,
các đường sọc trên đĩa thạch EMB cho thấy sự phân lập của các khuẩn lạc Làm tương tự cho các canh EC Ủ các đĩa ở 37 ° C trong 1-2 ngày.
quan sát trên mỗi thiết bị như trong thí nghiệm trước đây Mỗi cô lập phải lên men lactose thành acid và khí đốt có thể nhìn thấy để được coi là một coliform.
Trang 35The end