KHẢO SÁT KHẢ NĂNG ỨNG DỤNG CỦA MỘT SỐ THUỐC TRỪ SÂU THUỘC NHÓM KÍCH THÍCH HORMON LỘT XÁC CÔN TRÙNG TRONG NUÔI TRỒNG THỦY SẢN

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH KHOA THỦY SẢN KHÓA LUẬN TỐT NGHIỆP KHẢO SÁT KHẢ NĂNG ỨNG DỤNG CỦA MỘT SỐ THUỐC TRỪ SÂU THUỘC NHÓM KÍCH THÍCH HORMO

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH

KHOA THỦY SẢN

KHÓA LUẬN TỐT NGHIỆP

KHẢO SÁT KHẢ NĂNG ỨNG DỤNG CỦA MỘT SỐ THUỐC TRỪ SÂU THUỘC NHÓM KÍCH THÍCH HORMON LỘT XÁC

CÔN TRÙNG TRONG NUÔI TRỒNG THỦY SẢN

Sinh viên thực hiện: ĐINH THỊ THÙY TRANG

Ngành : Nuôi trồng thủy sản

Chuyên ngành : Ngư y

Niên khóa : 2004 – 2008

Thành phố Hồ Chí Minh Tháng 9/2008

KHẢO SÁT KHẢ NĂNG ỨNG DỤNG CỦA MỘT SỐ THUỐC TRỪ SÂU THUỘC NHÓM KÍCH THÍCH HORMON LỘT XÁC CÔN TRÙNG

TRONG NUÔI TRỒNG THỦY SẢN

Thực hiện bởi

ĐINH THỊ THÙY TRANG

Khóa luận được đệ trình để đáp ứng yêu cầu

cấp bằng Kỹ sư ngành Nuôi Trồng Thủy Sản

Giáo viên hướng dẫn:

Th.s PHẠM VĂN NHỎ

TÓM TẮT

Đề tài “Khảo sát khả năng ứng dụng của một số thuốc trừ sâu thuộc nhóm kích thích hormon lột xác côn trùng trong nuôi trồng thủy sản” được thực hiện từ ngày 19/5/2008 đến ngày 19/8/2008 tại trại thực nghiệm thủy sản trường Đại học Nông Lâm

Tp Hồ Chí Minh

Khảo sát độc tính và ứng dụng của ba hợp chất Mimic 20F, Phares 50SC và Prodigy 23F chúng tôi có một số kết quả sau:

LC50 sau 24 giờ của ba loại thuốc trừ sâu trên cá và tép rất cao:

- LC50 của Mimic 20F trên tép là 126,85 ppm; trên cá là 2166,7 ppm

- LC50 của Phares 50SC trên tép 296,45 ppm; trên cá là 295,45 ppm

- LC50 của Prodigy 23F trên tép là 214,7 ppm; trên cá là 1554,85 ppm

Nồng độ thuốc diệt ấu trùng chuồn chuồn từ 20 ppm (Phares 50SC) đến 50 ppm (Mimic 20F), đối với Prodigy 23F nồng độ thuốc là 25 ppm

Qua quá trình thí nghiệm để đánh giá tác hại của ấu trùng chuồn chuồn đối với

ao ương cá bột, chúng tôi thấy rằng ấu trùng chuồn chuồn là một địch hại rất nguy hiểm, một con ấu trùng có thể gây hại từ 10 – 23 con cá tra bột trong vòng 24 giờ

Các chất này dường như có tác động gây kích thích lột xác trên tép bò ở nồng

độ 0,05 – 1 ppm

CẢM TẠ

Tôi xin chân thành cảm ơn:

 Ban Giám hiệu trường Đại học Nông Lâm thành phố Hồ Chí Minh, Ban Chủ nhiệm khoa Thủy Sản cùng tất cả quý Thầy Cô đã truyền đạt kiến thức cho tôi trong suốt quá trình học tại trường Đặc biệt tôi xin gửi lời cảm ơn sâu sắc đến:

 Ths Phạm Văn Nhỏ, người Thầy kính mến đã nhiệt tình giúp đỡ, truyền đạt nhiều kiến thức quý báu để tôi hoàn thành đề tài

 Con xin cảm ơn Ba Mẹ và anh chị đã không ngại khó khăn, vất vả và đã hết lòng quan tâm động viên và tạo mọi điều kiện trong suốt thời gian con đi học, và dạy

dỗ con trưởng thành

 Tôi xin cảm ơn bạn bè thân yêu của lớp Ngư y 30 đã chia sẻ cùng tôi những vui buồn trong thời gian học cũng như hết lòng hỗ trợ, giúp đỡ, động viên tôi trong thời gian thực tập

 Xin cảm ơn các bạn lớp Nuôi trồng 30 thực tập tại trại thực nghiệm thủy sản trường Đại Học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh đã động viên cũng như giúp đỡ tôi trong quá trình làm đề tài

Tp Hồ Chí Minh, ngày 19 tháng 05 năm 2008

Đinh Thị Thùy Trang

Danh sách bảng biểu và đồ thị vii

Chương I MỞ ĐẦU 1

1.1 Đặt Vấn Đề 1

Chương II TỔNG QUAN TÀI LIỆU 3

2.1.1 Giới thiệu nhóm thuốc ức chế quá trình lột xác của côn trùng 3

2.1.2 Nhóm chất kích thích hormone lột xác côn trùng fenozide 5

2.2 Vài Nét Về Chuồn Chuồn 9

2.2.1 Phân loại 11

2.2.2 Vòng đời của chuồn chuồn 13

2.2.3 Cấu trúc của ấu trùng chuồn chuồn 15

2.2.4 Đặc điểm sinh học của ấu trùng chuồn chuồn 19

2.3 Một Vài Thông Tin Về Các Đối Tượng Thử Nghiệm 20

2.3.1 Thuốc sử dụng 20

2.3.2 Đối tượng thử nghiệm 23

Chương III VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 27

3.1 Thời Gian Và Địa Điểm Nghiên Cứu 27

3.1.2 Địa điểm 27

3.2 Vật Liệu Và Trang Thiết Bị Dùng Trong Nghiên Cứu 27

3.2.1 Đối tượng nghiên cứu 27

3.3 Phương Pháp Nghiên Cứu 28

3.3.2 Thí nghiệm về tác hại của ấu trùng chuồn chuồn 28

3.3.3 Thí nghiệm về khả năng diệt ấu trùng chuồn chuồn của thuốc 29

3.3.4 Thí nghiệm về khả năng kích thích lột xác trên tép bò 29

3.3.5 Phương pháp phân tích số liệu 29

Chương IV KẾT QUẢ THẢO LUẬN 30

4.1 Độc Tính Đối Với Động Vật Thủy Sản 30

4.2 Tác Hại Của Ấu Trùng Chuồn Chuồn Trong Nuôi Trồng Thủy Sản 33

4.3 Khả Năng Diệt Ấu Trùng Chuồn Chuồn Của Thuốc 36

Chương V KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ 38

5.1 Kết Luận 38 5.2 Đề Nghị 38

PHỤ LỤC

DANH SÁCH HÌNH ẢNH VÀ ĐỒ THỊ

Hình 2.1 Chuồn chuồn Brachydiplax denticauda 9

Hình 2.2 Một số loài chuồn chuồn 10

Hình 2.3 Vòng đời của chuồn chuồn 13

Hình 2.4 Xanthocnemis zealandica đang đẻ trứng 14

Hình 2.5 Vỏ của ấu trùng chuồn chuồn sau khi lột xác 14

Hình 2.6 Ấu trùng chuồn chuồn 15

Hình 2.7 Cấu trúc của ấu trùng chuồn chuồn 17

Hình 2.8 Các dạng ấu trùng chuồn chuồn 18

Hình 4.1 Bố trí tép bò trong hũ nhựa để tìm LC50 sau 24 giờ 30

Hình 4.2 Bố trí cá trong hũ nhựa để tìm LC50 sau 24 giờ 32

Hình 4.4 Bố trí cá tra bột và ấu trùng chuồn chuồn để theo dõi tỉ lệ sống của cá sau

3, 6, 12, 24 giờ 33

DANH SÁCH BẢNG BIỂU VÀ ĐỒ THỊ

Bảng

Bảng 4.1 Đồ thị tỷ lệ cá và tép chết (%) sau khi dùng thuốc 24 giờ 31

Bảng 4.2 Kết quả kiểm tra độc tính của các loại hóa chất đối với tép bò 31

Bảng 4.3 Kết quả kiểm tra độc tính của các loại hóa chất đối với cá lóc 32

Bảng 4.4 Số cá tra bột (3 – 5 ngày tuổi) bị hại bởi ấu trùng chuồn chuồn 34

Bảng 4.5 Nồng độ diệt ấu trùng chuồn chuồn sau 24 giờ 36

Đồ thị

Đồ thị 4.1 Tỷ lệ cá tra bột còn sống (%) khi cho ấu trùng chuồn chuồn

vào sau 24 giờ 35

Chương I

MỞ ĐẦU 1.1 Đặt Vấn Đề

Trong nuôi trồng thủy sản vấn đề con giống là một nhân tố rất quan trọng, góp phần không nhỏ vào sự thành công hay thất bại của người nuôi Bên cạnh những yếu

tố như: con giống khỏe, chất lượng tốt, ít nhiễm bệnh thì vấn đề địch hại cũng là mối quan tâm hàng đầu

Bên cạnh các loài như bắp cày, nòng nọc, bọ gạo, … ấu trùng chuồn chuồn cũng là một địch hại nguy hiểm, gây tác hại rất nghiêm trọng đến việc đảm bảo số lượng đàn giống, do đó sẽ ảnh hưởng trực tiếp đến hiệu quả kinh tế của người nuôi Bản thân người ương cá cũng nhìn thấy tác hại của ấu trùng chuồn chuồn và cũng tìm nhiều phương pháp để diệt như: dùng vợt bắt tay, sử dụng dầu lửa,… Nếu ao có nhiều

ấu trùng chuồn chuồn thì ngưng thả cá hoặc cải tạo ao lại và sử dụng thuốc sát trùng để diệt, tuy nhiên sẽ ảnh hưởng đến đợt sản xuất Nếu ao đã thả cá bột thì người nuôi chấp nhận biện pháp bắt bằng tay đồng thời chịu thiệt hại vì ấu trùng nhiều trong ao sẽ làm giảm tỷ lệ sống của cá

Do những biện pháp trên không mang lại hiệu quả mong muốn nên một vấn đề được đặt ra là phải tìm ra biện pháp thật hiệu quả và an toàn để diệt ấu trùng chuồn chuồn trong ao nuôi, hạn chế việc giảm số lượng đàn cá giống nhằm tăng hiệu quả kinh tế cho người nuôi

Xuất phát từ thực tế trên, được sự cho phép của Khoa thủy sản trường Đại Học Nông Lâm Thành Phố Hồ Chí Minh, chúng tôi đã tiến hành thực hiện đề tài: “Khảo sát khả năng ứng dụng của một số thuốc trừ sâu thuộc nhóm kích thích hormon lột xác côn trùng trong nuôi trồng thủy sản”

1.2 Mục Tiêu Đề Tài

Tìm hiểu độc tính của một số thuốc kích thích điều hòa sinh trưởng côn trùng (IGR), ở đây sử dụng nhóm fenozide có trong một số thuốc trừ sâu như Mimic 20F, Phares 50SC, Prodigy 23F

Tìm hiểu tác hại của ấu trùng chuồn chuồn trong nuôi trồng thủy sản

Tìm hiểu khả năng kích thích lột xác của nhóm chất fenozide

Thử nghiệm khả năng diệt ấu trùng chuồn chuồn của nhóm fenozide

Theo Frederick (1981), tính độc cao đối với côn trùng được xem là đặc tính quan trọng của thuốc trừ sâu, thuốc trừ sâu có các chất hóa học càng độc thì càng có hiệu quả, độ độc của thuốc trừ sâu phụ thuộc vào cấu trúc hóa học, độ hòa tan và độ bền vững của chúng trong môi trường (Nguyen Thanh Tam, 2008)

Thuốc trừ sâu và hóa chất độc có tác động mạnh lên cá như làm giảm tốc độ tăng trưởng, sinh sản hoặc làm chết cá Một lượng nhỏ thuốc trừ sâu cũng có thể rất độc đối với giai đoạn ấu trùng và ấu niên của nhiều loài giáp xác, đặc biệt là ở giai

đoạn lột xác (Buchanan et al., 1970; Nguyen Thanh Tam, 2008)

2.1.1 Giới thiệu nhóm thuốc ức chế quá trình lột xác của côn trùng

Các loại thuốc có cơ chế ức chế quá trình sinh trưởng và phát triển côn trùng còn được gọi là thuốc điều hòa sinh trưởng côn trùng (Insect growth regulator, viết tắt

là IGR) được sử dụng từ những năm 80 để trừ sâu kháng thuốc lân, clo, cacbamat và pythrethroit Tuy nhiên hiện tượng sâu kháng thuốc IGR cũng phát triển nhanh (Trần

Theo Bùi Cách Tuyến và ctv (2005) nhóm thuốc IGR có đặc điểm:

IGR gây hiệu lực chậm nhưng kéo dài, nhiều hợp chất chỉ có tác dụng đối với pha ấu trùng hoặc ấu trùng, nhộng, trứng mà không có hiệu lực trực tiếp đối với pha trưởng thành

IGR tác dụng chọn lọc cao, ít gây hại ký sinh có ích, ít độc đối với người, động vật máu nóng và môi sinh

Thuốc tác động qua tiếp xúc, đường tiêu hóa và nội hấp

Các hợp chất IGR:

Buprofezin (C16H23N3OS): ức chế tổng hợp kitin, phá vỡ thế cân bằng sinh học hormone ecdizon, diệt trừ ấu trùng và gây tác động trưởng thành đẻ trứng ung.Thuộc nhóm độc III Thuốc độc với cá, không độc đối với ong mật

Chlorfluazuron (C20H9Cl3F5N3O3): ức chế tổng hợp kitin Ấu trùng, nhộng bị tử vong do không xảy ra quá trình lột xác Nhóm độc III Thuốc rất ít độc đối với cá và ong mật

Cyromazin (C6H10N6): thuốc tác động tiếp xúc, ức chế lột xác của ấu trùng và nhộng Thuộc nhóm độc III Rất ít độc đối với cá và ong mật

Diflubenzuron (C14H9ClF2N2O2): ức chế sự lột xác của côn trùng và gây tác động làm sâu trưởng thành đẻ trứng không có khả năng nở ấu trùng Thuộc nhóm độc III Thuốc độc với cá không độc với ong mật

Flufenoxuron (C21H11ClF6N2O3): ức chế côn trùng lột xác, pha trưởng thành đẻ trứng ung Nhóm độc III Ít độc đối với ong mật, cá

Teflubenzuron (C14H6Cl2F4N2O2): ức chế lột xác côn trùng Nhóm độc IV Triflumuron (C15H10ClF3N2O3): ức chế lột xác côn trùng Nhóm độc IV Thuốc

2.1.2 Nhóm chất kích thích hormone lột xác côn trùng - fenozide

Nhóm này gồm có 4 chất: chromafenozide, halofenozide, methoxyfenozide và tebufenozide được phát hiện ra cách đây hơn 10 năm

2.1.2.1 Chromafenozide

Tên thương mại: RH - 5849

Tên IUPAC: 2’-tert-butyl-5-methyl-2’-(3,5-xyloyl)-chromane-6-hydratcarbon

Tên thông thường: 3,4-dihydro-5-methyl-2H-1-benzopyran-6-carboxylic acid

Điểm tan chảy: 186,40C

Hòa tan được (g/L, 200C): Toluen: 0,32; Dichloromethane: > 336, Axeton: 186, Axetat ethyl: 50,6; Ethanol: 173, Diisopropylether: 0,35; nước: 1,12 mg/L

(Nguồn: http://wwwsoc.nii.ac.jp/pssj2/journal/tec_info/chromafenozide.pdf)

Nhóm độc III, LD50 qua miệng 5000 mg/kg, LD50 qua da > 2000 mg/kg Ít độc đối với cá (LC50 với cá chép là 50 mg/kg trong 96 giờ)

Là thuốc điều tiết sinh trưởng côn trùng, làm quá trình lột xác của sâu non không hoàn chỉnh dẫn đến chết Tác động tiếp xúc và vị độc, hiệu quả chủ yếu đối với sâu non bộ cánh vảy (Bùi Cách Tuyến và ctv., 2005)

2.1.2.2 Halofenozide

Tên thương mại: RH - 0345

Tên IUPAC: N-tert-butyl-N’-(4-chlorobenzoyl) benzohyrazide

Tên thông thường: 4-chlorobenzoic acid 2-benzoyl-2-(1,1-dimethylethyl)

hyrazide

Công thức cấu tạo:

Công thức phân tử: C18H19ClN2O2

Thuộc nhóm độc III Ức chế hoạt tính hormone ecdizon, là loại thuốc nội hấp,

vị độc, dùng trừ nhiều loại sâu thuộc bộ cánh phấn, cánh cứng hại hoa, cây cảnh (Bùi Cách Tuyến và ctv., 2005)

2.1.2.3 Methoxyfenozide

Tên thương mại: RH-2485, RH-112485

Tên IUPAC: N-tert-butyl-N’-(3-methoxy-o-Toluoyl)- 3,5 -xylohydrazide

Tên thông thường: 3-methoxy-2-methylbenzoic acid 2-(1,1-dimethylethyl) hydrazide

2-(3,5-dimethylbenzoyl)-Công thức cấu tạo:

Tác động vị độc, tiếp xúc qua nội hấp và rễ cây Chủ yếu tác dụng đối với sâu non bộ cánh vảy, có thể làm ung trứng (Bùi Cách Tuyến và ctv., 2005)

2.1.2.4 Tebufenozide

Tên thương mại: RH - 5992

Tên IUPAC: N-tert-butyl-N’-(4-ethylbenzoyl)-3,5-dimethlbenzohydrazide Tên thông thường:

3,5-dimethylbenzoic acid 1-(1,1-dimethylethyl)-2-(4-ethylbenzoyl) hydrazide Công thức cấu tạo:

Công thức phân tử: C22H28N2O2

Trọng lựợng phân tử: 352,48

Trạng thái vật lý: bột trắng

Điểm tan chảy: 191 - 191,50C

Rất ít tan trong nước (0,83 ppm)

Thuộc nhóm độc III, LD50 qua miệng > 5000 mg/kg, LD50 qua da > 5000 mg/kg Ít độc đối với cá và ong mật Tác động tiếp xúc, vị độc, chủ yếu trừ sâu non bộ cánh vảy

Là loại thuốc điều tiết sinh trưởng côn trùng, ức chế hoạt tính của men ecdizon, không tạo được chất kitin, sâu non không lột xác được mà chết

(Nguồn: http://www.Ratphuochai.com.vn)

2.2 Vài Nét Về Chuồn Chuồn

Hình 2.1 Chuồn chuồn Brachydiplax denticauda

nước trong lịch sử đời sống (Nguồn: http://tolweb.org/Odonata/8266/2008.03.20).

Chuồn chuồn là nhóm rất nguyên thủy và cổ xưa Các cánh hóa thạch của các

họ còn đến hiện nay được biết từ kỷ Trias Nhóm Prodonata khổng lồ bay lượn trong

kỷ Carbon Ngày nay người ta phân biệt ra hai bộ phụ, Anisoptera (cánh không bằng nhau) hoăc chuồn chuồn thực và Zygoptera (cánh bằng nhau), thường gọi là chuồn

Bản, trước đây được xếp chung vào bộ phụ cổ Anisozygoptera, hiện nay được xếp vào

http://www.wildlifeatrisk.org/UserFiles/Publication/PQ-Dragonfly-book-Tất cả các loài chuồn chuồn đều thuộc nhóm săn mồi, kể cả ấu trùng lẫn các cá thể trưởng thành Hiện diện gần đỉnh trong chuỗi thức ăn, phần lớn chúng là những con tương đối lớn và hiện diện với mật độ vừa phải Chúng có tầm quan trọng không lớn về mặt kinh tế Đôi khi ở vùng Đông Nam Á chúng cũng được sử dụng làm thức

ăn và ấu trùng của chuồn chuồn bị cho là làm lan truyền các kí sinh của sán lá Trematoda

Tuy nhiên, có lẽ điều quan trọng nhất là chuồn chuồn thuộc nhóm động vật vô cùng lý thú về tập tính, sinh thái và địa lý động vật học Chúng cũng có tiềm năng đáng kể dùng làm các sinh vật chỉ thị cho sự xáo trộn môi trường sau phá rừng và ô nhiễm Điều này bao hàm cả hai giai đoạn trong đời sống của chúng, một số nhóm dễ thu mẫu hơn ở dạng ấu trùng, một số khác dễ thu mẫu hơn ở dạng trưởng thành

(Nguồn: http://tolweb.org/Odonata/8266/2008.03.20)

2.2.2 Vòng đời của chuồn chuồn

Hình 2.3 Vòng đời của chuồn chuồn

(Nguồn:

http://vietbao.vn/Khoa-hoc/Tai-sao-chuon-chuon-lai-dap-nuoc/10884125/201/)

Quá trình giao phối của chuồn chuồn rất phức tạp Thời gian giao phối của chuồn chuồn có thể kéo dài trong vài giây hay vài giờ, tuỳ thuộc vào từng loài Chuồn chuồn cái có thể đẻ trứng ngay lập tức hoặc sau đó vài giờ hay vài ngày Nếu đẻ trứng ngay lập tức, nó có thể phải làm việc đó một mình trong khi con đực còn dính vào cơ thể nó hoặc bay gần để bảo vệ cho nó

(Nguồn: http://lamdong.khaihoanmon.vn/?tabid=view&ID=179)

Việc lựa chọn môi trường sống là hoạt động của các cá thể trưởng thành và phải thõa mãn được tất cả các giai đoạn trong chu trình sống Các con cái đôi khi chọn địa

điểm đẻ trứng rất cẩn thận, ví dụ các loài thuộc giống Pericnemis (Coenagrionidae) chỉ

đẻ trứng trong các hốc cây có nước, kể cả các lá ốp, các lỗ cây mục và các gốc tre Các loài khác, đáng chú ý là giống Orthetrum (Libellulidae), ít đặc thù hơn và đẻ trứng ở

Con trưởng thành

Ấu trùng Con trưởng thành

đẻ trứng

Hình 2.4 Xanthocnemis zealandica đang đẻ trứng

(Ảnh: R.J Rowe, 1997)

(Nguồn: http://tolweb.org/Odonata/8266/2008.03.20)

Phần lớn chu trình sống của Odonata ở dạng ấu trùng trong môi trường nước và chính trong giai đoạn này chúng ta thấy sự đa dạng nhất về hình dạng Thời gian để cho trứng nở thay đổi từ vài ngày cho đến vài tháng, tùy thuộc vào vĩ độ và loài Trứng chuồn chuồn sẽ nở thành ấu trùng, ấu trùng của chúng có thể chịu được những biến động lớn các điều kiện môi trường như: nhiệt độ, hàm lượng oxy, pH, …

Hình 2.5 Vỏ của ấu trùng chuồn chuồn sau khi lột xác

Giai đoạn đầu tiên trong quá trình phát triển của ấu trùng được gọi là tiền ấu trùng Trong giai đoạn này ấu trùng được bao bọc hoàn toàn trong một túi cutin, có lẽ

là để bảo vệ nó khi thoát ra khỏi vỏ trứng hoặc các vật liệu thực vật Khoảng thời gian của giai đoạn này trước khi loại bỏ lớp cutin rất ngắn, thường dưới một phút, tuy nhiên

có thể kéo dài hơn nếu quá trình nở diễn ra ngoài nước

Ấu trùng non sau đó phải trải qua 8 đến 15 lần lột xác trước khi rời khỏi môi trường nước và nở thành con trưởng thành.Với mỗi lần lột xác liên tiếp nhau sau các giai đoạn tuổi đầu tiên, bao cánh phát triển lớn lên tương ứng và sự phát triển của chúng là một sự chỉ dẫn cho sự thành thục Quá trình biến thái, bao gồm việc hấp thu các mô của ấu trùng và phát triển các ấu trùng của con trưởng thành, diễn ra trong bộ xương ngoài của ấu trùng tuổi cuối cùng Ở ấu trùng không có giai đoạn nhộng, và chúng sẽ ở trong môi trường nước cho đến khi cơ thể phát triển đầy đủ Khi đó, chuồn chuồn sẽ rời môi trường nước và lên sống ở trên cạn

(Nguồn: http://mystusvittatus.googlepages.com/odonata)

2.2.3 Cấu trúc của ấu trùng chuồn chuồn

Hình 2.6 Ấu trùng chuồn chuồn

Ấu trùng trông “mập mạp” hơn nhiều so với con trưởng thành, và không có cánh Ở cả hai bộ phụ, đầu gắn chặt vào ngực và cử động hạn chế Mắt tương đối nhỏ

và không bao giờ chạm nhau Đằng sau mắt là các thùy sau mắt, thường có kích thước lớn, với hình dạng và kiểu khá có ích cho việc nhận diện loài

Râu thường có 3 - 7 đốt và có nhiều hình dạng khác nhau Ví dụ, đốt thứ nhất ở

ấu trùng của họ Calopterygidae có thể dài bằng cả sáu đốt kia cộng lại; ở họ Gomphidae, râu chỉ có 4 đốt ngắn và rộng

Tất cả các ấu trùng chuồn chuồn đều có mảnh môi dưới có bản lề, có thể cầm nắm được, là điểm đặc trưng chỉ có ở bộ này Mảnh môi dưới này được phóng ra rất nhanh nhờ áp lực thủy tĩnh và được dùng để bắt mồi Nó bao gồm phần dưới cằm và trước cằm ở cả hai phía của phần khớp có bản lề và một cặp mảnh môi sờ, mỗi cái có một móc cử động được Cấu trúc và hình dạng của cơ quan này, cùng với số lượng và cách sắp xếp các lông cứng trên phần trước cằm và mảnh môi sờ đặc biệt hữu ích trong

việc định danh

Ngực có các chân, bao gồm phần ngực trước và ngực giữa sau Phần ngực trước

có thể có các gờ nổi hai bên, được gọi là giáp trên háng, là các cấu trúc thường được

sử dụng để nhận diện ấu trùng của họ Aeshnidae Ở phía lưng có bốn bao cánh xuất hiện sau lần lột xác thứ ba hoặc thứ tư, và gia tăng kích thước nhanh chóng theo mức

độ thành thục Phần bụng bao gồm 10 đốt với đốt thứ mười một tiêu giảm Thông thường thì các gai ở phần giữa lưng và hai bên bụng có thể hữu ích về mặt phân loại

Ở các cá thể trưởng thành mà con cái có ống đẻ trứng, tức bộ phụ Zygoptera và họ Aeshnidae, một cấu trúc phôi thai có thể nhìn thấy rõ ở mặt dưới của đốt 8 và 9

Ấu trùng của hai bộ phụ này có thể được phân biệt một cách dễ dàng dựa trên cấu trúc tổng quát và hình dạng của các phụ bộ huyệt Ấu trùng của Zygoptera có hình dạng cơ thể đặc trưng là “mảnh mai” cho đến vừa phải với phần bụng thon lại một cách đều đặn và có hai hoặc ba phiến đuôi hướng ra phía sau Những cơ quan này có dạng như cái túi, dẹp hoặc mảnh và kéo dài là các đặc điểm rất quan trọng cho việc nhận diện đến cấp họ Chúng có chức năng như mang và có vai trò trong sự di chuyển

Hình 2.7 Cấu trúc của ấu trùng chuồn chuồn

Mặt bên của ấu trùng: A – Zygoptera, B – Anisoptera

Mặt bụng của ấu trùng: C – Aeshnidae con đực, D – Aeshnidae con cái (Nguồn: http://mystusvittatus.googlepages.com/odonata)

Ấu trùng của Anisoptera thì “mập mạp” hơn, một số rất rộng chiều ngang và dẹp Bụng rộng ở phần giữa rồi thuôn lại về phía sau thành dạng tháp nhọn, có các phụ

bộ ngắn, bao gồm một mảnh trên huyệt ở giữa, hai mảnh bên huyệt, hai trâm đuôi nhỏ

hơn ở phía lưng, và ở con đực của Anisoptera, một mấu lồi của con đực sau này trở thành phụ bộ dưới của con trưởng thành Lỗ huyệt dẫn đến túi trực tràng, được che kín

từ phía ngoài, thẳng hàng với các mang Sự tống nước nhanh ra từ lỗ huyệt tạo thành một dạng phản lực đẩy tới, đóng vai trò như một dạng di chuyển thứ cấp, đặc biệt khi chạy trốn kẻ thù (Nguồn: http://mystusvittatus.googlepages.com/odonata)

2.2.4 Đặc điểm sinh học của ấu trùng chuồn chuồn

Ấu trùng là các sinh vật săn mồi phàm ăn, chúng dùng thị giác hoặc các thụ quan cơ học để phát hiện con mồi Cách bắt mồi điển hình là mảnh môi dưới có khả năng kẹp phóng ra rất nhanh để bắt mồi Nhiều loài chuồn chuồn thuộc loại thú săn mồi kiểu ngồi – và – đợi (phục kích), nhưng một số loài khác, đặc biệt là họ Lestidae

và Aeshnidae thường rình và đuổi theo con mồi Ấu trùng của Anax guttatus

(Aeshnidae) có thể bơi nhanh vài cm để tiếp cận một con mồi lớn và ấu trùng của loài

Indaeschna grubaueri (Aeshnidae) trong bể nuôi bơi lên tận mặt nước để bắt ấu trùng

muỗi Ấu trùng của Pantala flavescens (Libellulidae) bơi lượn lờ ngay dưới mặt nước,

tự nâng đỡ chúng bằng các tia nước nhỏ xíu phun ra từ lỗ huyệt và chủ động đuổi theo các con nòng nọc Bọn săn mồi tích cực hơn này thường được đặc trưng bởi phần trước cằm dài hơn các dạng ấu trùng khác Những thích nghi đối với việc lựa chọn con mồi cũng còn phụ thuộc vào kích thước của ấu trùng và bởi vì chúng là kẻ săn mồi cơ hội, khẩu phần ăn của chúng phản ảnh các loại con mồi có trong tiểu môi trường sống của chúng Các ấu trùng lớn được ghi nhận ăn thịt các con cá nhỏ, nòng nọc, các con trưởng thành thuộc bộ phụ Zygoptera đang đẻ trứng và các ấu trùng chuồn chuồn khác,

kể cả đồng loại của chúng

Môi trường sống của ấu trùng và cách thức ăn mồi có thể liên quan đến hình thái chung của chúng, các cấu trúc hô hấp bao gồm sự phát triển một ống thở dài ở các

đốt sau của các loài thuộc giống Macrogomphus (Gomphidae), cho phép nó tự vùi

mình xuống độ sâu tối thiểu là 5 cm, có thể là còn sâu hơn nữa, trong khi vẫn có thể hấp thu được nước sạch vào túi trực tràng Những loài sống trong các môi trường có

hàm lượng oxy rất thấp như Phytotelmata có thể có bề mặt hô hấp lớn hơn, như phiến đuôi được mở rộng ra ở giống Pericnemis, hoặc trong trường hợp của loài Indaeschna

grubaueri, chúng có thể bù lại bởi tập tính, bằng cách khi nghỉ tháp đuôi nhô lên khỏi

mặt nước, rõ ràng là để hấp thu oxy trong không khí Ấu trùng của giống

Tetracanthagyna (Aeshnidae) cũng gần như bò lên khỏi mặt nước vào ban đêm Ấu

trùng của giống Euphaea (Euphaeidae) có các mang hỗ trợ dạng sợi dọc theo hai bên

bụng nhưng sống trong các con suối nước trong được thông khí tốt nên đặc điểm này

rõ ràng không phải thích nghi với hàm lượng oxy thấp