Cá chim vây vàng là đối tượng dễ nuôi và có giá trị kinh tế cao, mặc dù có phân bố tự nhiên ở vùng biển Việt Nam nhưng rất ít khi bắt gặp. Nhận thức được tiềm năng của đối tượng này, nhiều người nuôi cá lồng ở các tỉnh Quảng Ninh, Hải Phòng và Khánh Hòa đã nhập giống từ Đài Loan về nuôi, thức ăn sử dụng chủ yếu là cá tạp, sau thời gian nuôi khoảng 10 – 12 tháng cá đạt cỡ thương phẩm 800 – 1000 g. Năm 2004, Phân Viện nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản Bắc Trung bộ đã tiến hành nhập cá hương cá chim vây vàng về nuôi. Cá được cho ăn bằng cá tạp, sau 6 tháng nuôi cá đạt khối lượng trung bình 545g/con và sau 9 tháng nuôi đạt 722 g/con. Theo Lê Xân [6], cá chim vây vàng giống cỡ 22 g nuôi trong lồng có thể tích
20 m3 với 3 mật độ nuôi là 330, 460 và 600con/lồng đạt tỷ lệ sống từ 58,6 – 68,2%,
khối lượng từ 461,2 – 470,2 g và tác giả cũng cho biết ở mật độ nuôi càng cao tỷ lệ sống, tốc độ sinh trưởng thấp và tỷ lệ phân đàn cao hơn so với mật độ thấp. Ở giai
đoạn giống 2 – 6 cm, ương nuôi cá chim vây vàng ở mật độ nuôi 400 con/m3 và
thức ăn công nghiệp Inve cho kết quả tốt về tốc độ sinh trưởng, tỷ lệ sống và độ đồng đều của cá giống [3].
Trong khi đó, cá chim vây vàng giống cỡ 21,1 g được sản xuất tại địa phương nuôi trong ao đất tại Quảng Ninh bằng thức ăn công nghiệp nhập từ Trung
Quốc với mật độ 1,5 và 2,5 con/m2, sau thời gian nuôi 3 tháng cá đạt khối lượng
nguồn giống nhập từ Đài Loan. Qua đó cho thấy, việc giống nhập từ các nước khác về ngoài giá giống cao thì tỷ lệ sống khi ương, nuôi cũng thấp thấp do môi trường nuôi thay đổi.
Để chủ động trong việc sản xuất con giống, năm 2006 Trường Cao đẳng Thủy sản Bắc Ninh đã thực hiện thành công dự án “Nhập công nghệ sản xuất giống cá chim vây vàng”. Cá bố mẹ đã thành thục có khối lượng từ 2 – 6 kg/con được nhập từ Trung Quốc (nước chuyển giao công nghệ) về nuôi vỗ bằng thức ăn là cá tạp. Qua 2 lần nhập cá bố mẹ cho thấy tỷ lệ sống của cá rất thấp sau 1 tháng nuôi (đợt 1: chết 39/40 con, đợt 2: chết 30/40 con) do thời gian vận chuyển lâu và thay đổi môi trường nuôi. Những cá bố mẹ còn lại khi thành thục được kích thích sinh sản bằng hormone HCG 1000 IU và 20 µg LRHa/kg cá. Ấu trùng được ương trong bể xi măng với mật độ từ 10 – 15 con/L, cho ăn bằng luân trùng và ấu trùng copepoda nuôi từ ao, khi cá đạt cỡ cá hương thì đưa ra ao ương thành cá giống lớn hơn. Kết quả cho thấy tỷ lệ sống của cá bố mẹ từ 2,5 – 25%, tỷ lệ thành thục > 63,5%, tỷ lệ đẻ > 73,3%, tỷ lệ thụ tinh 15,3 – 80%, tỷ lệ nở 28 – 56%, tỷ lệ sống của cá hương 31 – 35% và cá giống là 50 – 62,5%; khi kết thúc dự án đã thu được 104.486 con cá giống cỡ 4 – 6 cm [7].
Tuy nhiên, công nghệ nhập cũng có những hạn chế như: tỷ lệ sống cá bố mẹ thấp, tỷ lệ thụ tinh, tỷ lệ nở không ổn định, nguồn giống tạo ra khó thích ứng với điều kiện nuôi ở các tỉnh phía Nam nước ta,… Năm 2011, Lại Văn Hùng và Ngô
Văn Mạnh [3] đã cho sinh sản nhân tạo thành công cá chim vây (Trachinotus
blochii Lacepède, 1801) tại Khánh Hòa. Điều này đã mở ra những triển vọng mới cho nghề nuôi cá chim vây vàng thương phẩm ở các tỉnh Nam Trung Bộ cũng như cả nước do nguồn cá giống này thích ứng rất tốt với điều kiện nuôi thương phẩm ở nước ta.
Các nghiên cứu về ương giống cá chim vây vàng ở nước ta còn nhiều hạn chế, đặc biệt là những nghiên cứu sâu về dinh dưỡng, các giải pháp kỹ thuật nâng cao tỷ lệ sống và chất lượng con giống. Do đó, nghiên cứu ảnh hưởng của protein, lipid và vitamin D3 trong thức ăn lên sinh trưởng và tỷ lệ sống của cá chim vây
CHƯƠNG II. PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 2.1. Địa điểm, thời gian và đối tượng nghiên cứu
Địa điểm nghiên cứu: Thí nghiệm được tiến hành tại Trại Thực nghiệm Nuôi trồng Thủy sản, Đường Đệ, Nha Trang, Khánh Hòa.
Thời gian thực hiện: Thời gian tiến hành thí nghiệm từ tháng 05/2011 đến 05/2012.
Đối tượng nghiên cứu: Cá chim vây vàng, giai đoạn giống cỡ 4 cm, được sản xuất tại Trại Thực nghiệm Nuôi trồng Thủy sản, Đường Đệ, Nha Trang, Khánh Hòa.
2.2. Vật liệu và phương pháp nghiên cứu 2.2.1. Sơ đồ khối nội dung nghiên cứu 2.2.1. Sơ đồ khối nội dung nghiên cứu
Hình 2.1. Sơ đồ khối nội dung nghiên cứu
Nghiên cứu ảnh hưởng của hàm lượng protein, lipid, vitamin D3 trong thức ăn lên sinh trưởng và tỷ lệ sống của cá chim vây vàng
(Trachinotus blochii Lacepède, 1801) giai đoạn giống.
Nghiên cứu ảnh hưởng của hàm lượng protein: 40, 43, 46, 49, 52% Nghiên cứu ảnh hưởng của hàm lượng lipid:10, 12, và 14% Nghiên cứu ảnh hưởng của hàm lượng vitamin D3: 0, 100, 115, 130 (mg/kg thức ăn ). Các chỉ tiêu đánh giá:
- Tốc độ sinh trưởng: We, SGRL, SGRW
- Hệ số thức ăn: FCR - Tỷ lệ sống: SR
2.2.2. Bố trí thí nghiệm
2.2.2.1. Hệ thống thí nghiệm
Thí nghiệm được bố trí trong các bể composite đáy bằng có thể tích 120 L/bể, được sơn đen phía trong, thể tích nước cấp là 100 L/bể. Nước biển được bơm vào 2
bể 5 m3, xử lý chlorine với nồng độ 30 ppm và sục khí liên tục kết hợp với phơi
nắng để loại bỏ hết dư lượng chlorine. Hệ thống bể nuôi được sục khí 24/24 giờ. Nước biển có độ mặn 30 - 33‰ chảy liên tục qua hệ thống tuần hoàn. Hệ thống này được đặt trong nhà, thời gian chiếu sáng trong ngày theo chế độ chiếu sáng tự nhiên.
Hình 2.2. Hệ thống bể thí nghiệm
2.2.2.2. Thức ăn thí nghiệm (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
Nguyên liệu thí nghiệm chính gồm bột cá, bột đậu nành, cám gạo, dầu mực, dầu đậu nành, vitamin tổng hợp premix, khoáng và một số các chất bổ sung khác (Thành phần và tỷ lệ xem phụ lục). Cách chế biến thức ăn:
Hình 2.2. Quy trình chế biến thức ăn
Các nguyên liệu được cân theo tỷ lệ của từng nghiệm thức, sau đó được phối trộn với nhau, cho thêm nước cất để đạt được một hỗn hợp dẻo. Hỗn hợp dẻo này được ép viên qua máy ChuSheng Foods của Đài Loan với các kích cỡ viên thức ăn khác nhau cho phù hợp với từng giai đoạn phát triển của cá. Thức ăn sau khi ép viên
được rải đều ra các khay, sau đó đưa vào tủ hấp cách thủy trong vòng 5 phút trước
khi cho vào tủ sấy. Thức ăn được làm khô bằng tủ sấy ở nhiệt độ 60oC trong vòng
12 tiếng, sau đó tiến hành tạo viên cho phù hợp với kích cỡ miệng của cá. Thức ăn
được bảo quản trong các túi nilon ở nhiệt độ âm 20oC.
Hình 2.3. Phối trộn và hấp thức ăn
2.2.2.3. Nguồn cá giống
Cá chim vây vàng đưa vào thí nghiệm được sản xuất giống nhân tạo ngay tại Trại Thực nghiệm Nuôi trồng Thủy sản. Cá giống được ấp nở và ương từ nguồn cá bố mẹ cho kích thích sinh sản tại Vũng Ngán. Trứng sau khi chuyển về được ấp nở và ương đến giai đoạn 4 cm/con tại Trại Thực nghiệm Nuôi trồng Thủy sản Đường Đệ. Cá có kích cỡ ban đầu 4 cm/con, được thả nuôi với mật độ 30 con/bể (100 L). Cá đưa vào thí nghiệm có kích cỡ đồng đều, khỏe mạnh, vận động linh hoạt, màu sắc tự nhiên tươi sáng, không dị hình hay có dấu hiệu lạ trên thân, không bị xây sát,… Nguồn cá cho một thí nghiệm có nguồn gốc như nhau, kích thước đồng đều để hạn chế tối đa sai sót trong quá trình tiến hành thí nghiệm.
2.2.3. Bố trí thí nghiệm
2.2.3.1. Nghiên cứu ảnh hưởng của hàm lượng protein khác nhau lên sinh trưởng và tỷ lệ sống của cá chim vây vàng giai đoạn giống (TN 1) trưởng và tỷ lệ sống của cá chim vây vàng giai đoạn giống (TN 1)
Thí nghiệm được bố trí với 5 nghiệm thức khác nhau tương ứng với 5 mức protein trong thức ăn (40, 43, 46, 49 và 52%). Trong thí nghiệm này, hàm lượng lipid được cố định trong thức ăn là 12%. Thí nghiệm được tiến hành trong thời gian 4 tuần (từ ngày 10/06 - 10/07/2011). Mỗi nghiệm thức được thực hiện với 03 lần lặp (cùng thời điểm).
Bảng 2.1: Hàm lượng protein trong thức ăn (công thức và phân tích)
Nghiệm thức 1 2 3 4 5
Protein (%) - công thức 40 43 46 49 52
Protein (%) - phân tích 39,76 42,92 46,21 49,18 52,40
2.2.3.2. Nghiên cứu ảnh hưởng của hàm lượng lipid trong thức ăn lên sinh trưởng và tỷ lệ sống của cá chim vây vàng giai đoạn giống (TN2)
Thí nghiệm được bố trí với 3 nghiệm thức khác nhau tương ứng với 3 mức lipid trong thức ăn (10, 12 và 14%). Trong thí nghiệm này, hàm lượng protein được cố định trong thức ăn là mức tốt nhất thu được từ thí nghiệm 1. Thí nghiệm được tiến hành trong thời gian 5 tuần (từ ngày 25/09 – 02/11/2011). Mỗi nghiệm thức được thực hiện với 03 lần lặp (cùng thời điểm).
Bảng 2. Các nghiệm thức thức ăn thí nghiệm 2
Nghiệm thức 1 2 3
Lipid (%) - công thức 10 12 14
Lipid (%) - phân tích 9,87 11,97 14,10
2.2.3.3. Nghiên cứu ảnh hưởng của hàm lượng vitamin D3 trong thức ăn lên sinh trưởng và tỷ lệ sống của cá chim vây vàng giai đoạn giống sinh trưởng và tỷ lệ sống của cá chim vây vàng giai đoạn giống
- Thức ăn của thí nghiệm 3 được chuẩn bị tương tự thí nghiệm 1 và 2, trong đó, hàm lượng protein và lipid là kết quả tốt nhất rút ra từ thí nghiệm 1 và thí nghiệm 2. Trong thí nghiệm này, vitamin D3 được bổ sung vào thức ăn với 3 mức khác nhau (100, 115, 130 mg/kg thức ăn khô) và lô đối chứng (không có vitamin
D3). Thí nghiệm được tiến hành trong thời gian 5 tuần (từ ngày 25/03 – 02/04/2012). Mỗi nghiệm thức được thực hiện với 03 lần lặp (cùng thời điểm).
Bảng 3. Các nghiệm thức thức ăn thí nghiệm 3
Nghiệm thức 1 2 3 ĐC
Vitamin D3 (mg/kg thức ăn khô)
100 115 130 0 (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
2.2.4. Phương pháp phân tích thành phần sinh hóa của thức ăn
Phân tích thành phần sinh hóa của thức ăn trước khi tiến hành thí nghiệm (sau khi phối trộn và sản xuất thức ăn) tại Viện Công nghệ Sinh học và Môi trường – Trường Đại học Nha Trang.
- Protein thô: phân tích theo phương pháp Kjeldahl - Lipid thô: Phân tích theo phương pháp Folch
- Độ ẩm: sấy mẫu ở nhiệt độ 105oC trong 18h đến khi khối lượng không đổi
- Tro: mẫu được nung ở 505oC trong 18h đến khi khối lượng không đổi.
2.2.5. Chăm sóc và quản lý
- Các yếu tố môi trường: nhiệt độ, độ mặn, ôxy hòa tan, độ mặn, pH, NO2-,
NH3 được đo 2 lần/ngày (7h, 14h) và duy trì trong phạm vi thích hợp với sinh
trưởng và tỷ lệ sống của cá chim vây vàng giai đoạn giống.
- Chế độ cho ăn: Cá được cho ăn theo tỷ lệ 5% khối lượng thân. Khẩu phần cho ăn được chia thành 4 lần/ngày và cho ăn vào lúc 7h, 10h, 13h và 16h.
Hình 2.4. Vệ sinh bể cá
- Hàng ngày kiểm tra, theo dõi tình trạng sức khỏe cá, vớt bọt và thay nước 20%/ngày, định kỳ 3 ngày thay 80% lượng nước trong bể thí nghiệm.
+ Mỗi tuần vệ sinh bể một lần, dây sục khí, bổ sung nước vào hệ thống thí nghiệm để bù lượng nước thất thoát do siphon .
- Các yếu tố môi trường và chế độ chăm sóc, quản lý được duy trì giống nhau
ở tất cả các nghiệm thức.
2.2.6. Phương pháp thu thập và xử lý số liệu
2.2.6.1. Phương pháp thu thập số liệu
- Số liệu thứ cấp: Được thu thập từ sách báo, tạp chí, tài liệu tham khảo, các báo cáo khoa học, đề tài dự án có liên quan đến sản xuất giống và nuôi cá chim vây vàng, các tài liệu kỹ thuật nuôi cá biển khác có liên quan,…
- Số liệu sơ cấp: Được thu thập từ việc đo môi trường hàng ngày cũng như theo dõi, xác định khối lượng thân, chiều dài toàn thân của cá thí nghiệm định kỳ 7 ngày/lần.
- Phương pháp thu thập các thông số môi trường:
Các thông số môi trường (nhiệt độ và ôxy hòa tan) được đo định kỳ 2
lần/ngày vào 7h và 16h, trong khi các yếu tố khác (pH, NH3, NO2 và độ mặn) được
đo 2 ngày/lần hoặc khi có sự cố bất thường xảy ra.
Các thông số này được đo bằng các thiết bị và dụng cụ chuyên dùng như:
nhiệt kế thủy ngân, test pH, NH3, NO2, máy đo ôxy, khúc xạ kế,… Nhiệt độ (to)
được đo bằng nhiệt kế thủy ngân, chính xác đến 1oC. Độ mặn (S‰) được đo bằng
tỷ trọng kế, chính xác đến 1‰. Ôxy hòa tan được đo bằng máy DO 200, chính xác
đến 0,01 mg/l. pH: đo bằng test pH có độ chính xác là 0,1. NO2 và NH3 được đo
bằng test NH3, và NO2 chuyên dụng.
- Phương pháp xác định tốc độ sinh trưởng của cá: (adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});
Cá được cân khối lượng và đo chiều dài (tất cả số cá trong bể) trước và sau khi kết thúc thí nghiệm để tính toán các chỉ tiêu sinh trưởng. Hàng tuần cá được đo chiều dài toàn thân (Khoảng cách từ mút mõm đến hết vây đuôi) và cân khối lượng để xác định tốc độ tăng trưởng. Khối lượng cá được cân bằng cân điện tử có độ chính xác đến 0,01 g. Chiều dài toàn thân cá được đo bằng giấy kẻ ô ly kỹ thuật có độ chính xác đến 1 mm.
- Phương pháp xác định tỷ lệ sống:
Cá được theo dõi và kiểm tra hàng ngày, phát hiện và ghi lại những trường hợp cá bị chết trong bể để tính toán tỷ lệ sống. Tỷ lệ sống cuối cùng được xác định bằng cách đếm toàn bộ số cá còn lại sau khi kết thúc thí nghiệm.
2.2.6.2. Phương pháp xử lý số liệu
Các chỉ tiêu đánh giá và công thức kèm theo như sau: - Xác định chỉ tiêu tăng trưởng:
+ Tốc độ tăng trưởng đặc trưng (SGRW: (%/ngày)
SGRW = t W Ln W Ln( 2) ( 1) x 100
+ Tốc độ tăng trưởng đặc trưng về chiều dài (SGRL: (%/ngày)
SGRL = t Ln L Ln( 2) (L1) x 100 - Tỷ lệ sống (%): TLS (%) = Y X x 100
Trong đó: X: Số lượng cá tại thời điểm xác định
Y: Số lượng cá thả ban đầu - Hệ số thức ăn (FCR):
FCR =
WG Wtasd
Trong đó: Wtasd: Khối lượng thức ăn sử dụng (g: theo khối lượng khô)
WG: Khối lượng cá gia tăng (g: theo khối lượng tươi)
Số liệu được xử lý trên phần mềm SPSS 16.0 sử dụng phương pháp phân tích phương sai một yếu tố (One – way ANOVA). Sự khác biệt về giá trị trung bình của tốc độ sinh trưởng, tỷ lệ sống giữa các nghiệm thức được kiểm định bằng phép Duncan’s multiple range test. Sự sai khác có ý nghĩa được xác định ở mức ý nghĩa P < 0,05. Các số liệu trong thí nghiệm được trình bày dưới dạng trung bình (TB) ± Sai số chuẩn (SE).
CHƯƠNG III. KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ THẢO LUẬN 3.1. Ảnh hưởng của hàm lượng protein lên sinh trưởng và tỷ lệ sống của cá chim vây vàng giai đoạn giống (TN 1)
3.1.1. Các yếu tố môi trường trong thời gian thí nghiệm
Bảng 3.1: Các yếu tố môi trường trong thời gian thí nghiệm
Nhiệt độ (oC)
Độ mặn (‰)
pH Ôxy hòa tan
(mg/L) N-NO2 (mg/L) N-NH3 (mg/L) 26 – 29 30 - 33 7,4 – 8,3 > 4,5 < 0,01 < 0,02
Trong suốt thời gian thí nghiệm các yếu tố môi trường nước như nhiệt độ, độ
mặn, pH, ôxy hòa tan, N-NO2 và NH3-N của tất cả các bể thí nghiệm đều được duy
trì ổn định, phù hợp với điều kiện sinh trưởng và phát triển bình thường của cá chim vây vàng giai đoạn giống.
3.1.2. Ảnh hưởng của hàm lượng protein lên tốc độ sinh trưởng của cá
Tốc độ sinh trưởng đặc trưng:
Ảnh hưởng của hàm lượng protein trong thức ăn lên tốc độ sinh trưởng đặc
(adsbygoogle = window.adsbygoogle || []).push({});