2.2. PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
2.2.6. Chuẩn bị TBG mô mỡ
2.2.6.1. Cơ sở, phương tiện
- Phịng lấy mơ mỡ: Phịng tiểu phẫu vơ trùng, diện tích 20 m2. Trang bị gồm: bàn mổ, đèn mổ, tủ dụng cụ, bình ơ xy, lị sấy, máy rửa tay, bộ dụng cụ hút mỡ, đồ vải, tủ thuốc cấp cứu.
- Phòng tách chiết sản xuất TBG: diện tích 15-20m2. Xây dựng bảo đảm theo tiêu chuẩn của labo vô khuẩn. Trang bị:
Thiết bị xử lý tế bào
+ Máy ly tâm.
+ Máy đếm tế bào
+ Kính hiển vi và phụ kiện.
+ Bộ micropipette và phụ kiện
+ Hóa chất nhuộm tế bào
Các dụng cụ xử lý và lưu giữ tế bào, bình Nitơ
Các dụng cụ tiêu hao khác: ống nghiệm, ống ly tâm, xylanh, kim tiêm.
2.2.6.2. Qui trình lấy mỡ bụng a). Bộ dụng cụ cần thiết (Hình 2.4) + Khay phẫu thuật + Ống tiêm PBS + Bộống thơng dị. + Dụng cụđục phẫu thuật với đầu thẩm mỹ. +Thuốc tê. + Kéo phẫu thuật và kẹp. + Nắp ống tiêm xoắn.
Hình 2.4. Bộ dụng cụ lấy mỡ bụng
b) Kỹ thuật lấy mỡ (Hình 2.5)
- Sát trùng khu vực phẫu thuật.
- Sử dụng tay, xoa bóp nhẹ nhàng xung quanh vùng phẫu thuật. Tập trung vào những lớp mỡ bám chặt dưới da để hỗ trợ việc tách mỡ dễ dàng.
- Tiêm thuốc tê
- Sử dụng dụng cụ chuyên dụng tạo đường vào để cán của bộ ống thơng dị qua lại được.
- Từ từ cho đầu ống thơng dị vào và định hướng đầu ống thông xuyên qua lớp mỡngay dưới da bệnh nhân.
- Di chuyển ống thông và kéo pittông của ống tiêm và bắt đầu lấy mỡ. - Hút ra 80cc mỡ.
- Sau khi hút được lượng mỡ mong muốn, đóng kín ống tiêm bằng nắp ống tiêm xoắn.
- Dùng chỉ khâu hoặc kẹp đểđóng đường vào.
Hình 2.5 Thao tác lấy mỡ bụng
2.2.6.3. Quy trình phân lập TBG từ khối mỡ bụng và ni cấy tăng sinh
Phân lập TBG trung mô thu nhận từ mô mỡ
Mô mỡ sau khi được thu nhận sẽ được bóc tách ngay ra TBG ở điều kiện vô trùng. Quy trình bóc tách TBG mơ mỡ như sau: mô mỡ sẽ được loại bỏ máu và vô khuẩn bằng PBS và kháng sinh. Tiếp theo, mô mỡ được lắc ủở 370C trong dung dịch DMEM và enzyme collagenase ở 40-60 phút để tách các tếbào cơ bám vào mô mỡ. Sau đó, dùng phương pháp ly tâm gradient nồng độ để tách lớp các loại tế bào. Lớp hỗn hợp lắng đọng cuối cùng là phần được thu nhận, gọi là Phân đoạn mạch nền (Stromal Vascular Fraction-SVF). SVF chứa các loại tế bào như tế bào nội mô, tế bào cơ trơn, pericyte, nguyên bào sợi và các tế bào tuần hoàn như bạch cầu, TBG máu, tế bào tiền thân nội mô, đặc biệt là TBG trung mơ- tế bào đích của nghiên cứu. Sau các cơng đoạn bóc tách, các TBG này được định danh bằng các marker bề mặt chuyên biệt của TBG trung mơ và định lượng bằng cách pha lỗng và đếm dưới kính hiển vi.
Một nửa hỗn hợp TBG trung mô thu nhận từ mô mỡ (Adipose derived Stem cells – TBG mơ mỡ) được hồ tan trong 8ml dung dịch nước muối sinh lý 0.9% sẽđược đóng gói vào xylanh để tiêm cho bệnh nhân.
Ni cấy tăng sinh
Một nửa hỗn hợp TBG còn lại được trải trên đĩa ni cấy có bề mặt plastics, mật độ 10.000 – 15.000 tế bào/cm2, trong môi trường nuôi cấy tăng sinh chuyên biệt cho TBG trung mô và nuôi trong tủ ủ 370C, 5% CO2. Thay môi trường mỗi 48h. Khi tế bào hợp dòng chiếm trên 80% bề mặt đĩa nuôi cấy sẽ cấy chuyền sang đĩa mới ở mật độ 5.000-5.500 tế bào/cm2. Sau 2 lần cấy chuyền, tế bào sẽđược chia làm 3 phần dùng cho 3 mũi tiêm sau đó. Phần tế bào cho mũi tiêm 2 sẽđược cấy chuyền thêm 3 lần nữa đểđủ 20-30 triệu tế bào xuất cho bệnh nhân. 2 phần tế bào cho mũi tiêm 3,4 sẽđược pha vào dung dịch bảo vệ sinh học và lưu trữ trong Nito lỏng ở -1960C. 2 tuần trước ngày tiêm mũi 3,4, tế bào sẽ được rả đông và cấy chuyền 1-2 lần trước khi xuất tế bào tiêm cho bệnh nhân.
Kiểm sốt chất lượng Ni cấy Tế bào
Định danh TBG: Đặc điểm kiểu hình miễn dịch của quần thể tế bào được xác định bằng phương pháp dòng chảy tế bào (flow cytometry). Phân đoạn mạch nền vừa thu được sau phân lập và phần TBG xuất trước mỗi mũi tiêm là hỗn hợp được định danh. 1 x 106 tế bào được hoà tan trong 1 ml PBS
và được đo mức độ biểu hiện các marker bề mặt của TBG trung mơ như: dương tính với CD73, CD105, CD90, CD166; âm tính với CD14. Các tế bào được theo dõi và chụp hình mỗi ngày, định lượng bằng cách pha lỗng và đếm dưới kính hiển vi mỗi lần cấy chuyền.
Độ vô trùng: Tất cả các nguyên vật liệu và hoá chất sử dụng đều được
Biểu đồ 2.1. Biểu đồ phân tích FACS biểu hiện CD73 bề mặt tế bào nuôi cấy
trước khi tiêm mũi 2. % tỉ lệ dương tính với CD73 là 97.5%. (Trục tung: số
lượng tế bào x1000; Trục hoành: cường độ huỳnh quang)
Biểu đồ 2.2. Biểu đồ phân tích FACS biểu hiện CD14 bề mặt tế bào nuôi cấy trước khi tiêm mũi 2.
% tỉ lệ dương tính với CD14 là 0%. (Trục tung: sốlượng tế bào x 1000; Trục hoành: cường độ huỳnh quang)
sản xuất và đạt độ vô trùng theo chuẩn GMP-WHO, ISO 9001-2008, ISO 15189. Môi trường làm việc đạt chuẩn GCP. Môi trường nuôi cấy mỗi lần cấy chuyền và dung dịch tế bào trước khi tiêm đều được kiểm tra vô khuẩn, nấm, mycoplasma và endotoxin.
Mức độ sống của tế bào: Mỗi lần cấy chuyền và thu hoạch, tếbào được đảm bảo mức độ sống trên 95%. Mức độ sống của tế bào khi rả đông là trên 85%.