tuần thí nghiệm Chỉ tiêu Trước thí nghiệm Sau thí nghiệm CT1 (ĐC) CT2 (VLSH) Tính chất vật lý pHH20 6,98 7,23 7,29 Độ ẩm 27,42 28,16 28,20 Tính chất hóa học OC (%) 1,12 1,20 1,27 N (%) 0,06 0,06 0,17 P2O5 (mg/g) 0,11 0,14 0,10 K2O (mg/g) 1,42 1,53 1,52 Tính chất sinh học VSVTS (106 TB/g) 5,39 7,68 23,9 Nấm rễ (TB/ 100g đất) 17 25 264
Kết quả bảng 4.18 cho thấy, trước và sau khi sử dụng VLSH trong khoảng thời gian là 8 tuần thì tính chất đất thay đổi theo chiều hướng tích cực. Cụ thể: độ
ẩm trong đất tăng do độ che phủ cao hạn chế được sự thoát hơi nước từ đất. Bên cạnh đó, hoạt động cộng sinh của Arbuscular mycorrhizae và Rhizobium với rễ cây đã có xu hướng làm tăng các chỉ số dinh dưỡng trong đất. Nấm rễ có khả năng chuyển hóa và hấp thụ mạnh dinh dưỡng, đặc biệt là P làm tăng hàm lượng dinh dưỡng dễ tiêu trong đất. Rhizobium giúp cố định Nitơ tự do trong khơng khí cung cấp đạm cho cây trồng, một phần trả lại đạm cho đất. Mặt khác, sự có mặt các hoạt động mạnh mẽ của AM và Rhizobium trong VLSH đã kích thích hệ vi sinh vật trong đất hoạt động theo hướng tích cực, phân giải và chuyển hóa các chất hữu cơ trong đất, góp phần cải thiện tính chất đất.
PHẦN 5. KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ
5.1. KẾT LUẬN
Từ kết quả nghiên cứu, đề tài đưa ra một số kết luận như sau:
- Tuyển chọn được hai chủng AM và hai chủng Rhizobium làm giống sản xuất VLSH dùng để tái tạo thảm cỏ làm tiểu cảnh cho khn viên trong đó: Hai chủng nấm rễ Gigaspora sp6 và Dentiscutata nigra được tuyển chọn đều là những chủng sinh trưởng phát triển nhanh, hệ sợi phát triển mạnh, tỷ lệ nảy mầm và sức sống cao; Hai chủng vi khuẩn nốt sần Bradyrhizobium japonicum và
Shinorhizobium fredii được tuyển chọn là những chủng có đặc tính sinh học vượt
trội, khả năng mọc nhanh (48-72h), thích ứng ở pH và nhiệt độ rộng, ưa ấm và khả năng cạnh tranh cao.
Chất nền chính được lựa chọn để sản xuất VLSH là đất phù sa cũ Gia Lâm, là loại nguyên liệu sẵn có, rẻ tiền mà vẫn đảm bảo được điều kiện sinh trưởng và phát triển cho nấm rễ Arbuscular mycorhizae và Rhizobium.
Dinh dưỡng được bổ sung vào VLSH là NPK 15-0-15 với tỷ lệ 15-20g/ 1kg vật liệu. Lượng dinh dưỡng này đảm bảo cho sự sinh trưởng phát triển của giống VSV và cây con.
- Quy trình sản xuất VLSH gồm có 5 bước chính: (i) Chọn và nhân giống AM và Rhizobium, (ii) xử lý chất nền, (iii) bổ sung dinh dưỡng, (iv) thêm hạt giống (nếu trồng bằng hạt), (v) phối trộn và kiểm tra chất lượng trước khi sử dụng. Vật liệu sinh học có chất lượng ổn định và vẫn có thể phát huy hiệu quả sử dụng sau 6 tháng sản xuất.
- Sử dụng VLSH trong thử nghiệm trên cây lạc cảnh đã đưa lại kết quả khả quan trong việc tái tạo thảm cỏ nhanh chóng để làm tiểu cảnh trong khn viên. Tác động hiệp đồng của nấm rễ AM và vi khuẩn nốt sần Rhizobium đã làm tăng cường sự sinh trưởng và phát triển của cây: Ở công thức sử dụng VLSH chiều dài rễ tăng gấp 1,76 lần; Trọng lượng rễ gấp 3,64 lần; Mức độ xâm nhiễm rễ gấp 9,35 lần; Số lượng bào tử gấp 7,91 lần; Số lượng nốt sần gấp 3,03 lần so với công thức đối chứng. Đặc biệt, chỉ số diện tích lá LAI ở cơng thức sử dụng VLSH vào tuần thứ 8 tăng gấp 5,67 lần so với cơng thức đối chứng. Bên cạnh đó,
hoạt động của hệ vi sinh vật tại vùng rễ cũng làm thay đổi tính chất đất theo chiều hướng tích cực, kích thích sự phát triển mạnh mẽ của quần thể vi sinh vật đất và góp phần cải thiện độ phì nhiêu của đất.
5.2. KIẾN NGHỊ
Do thời gian thực hiện đề tài cịn ngắn, quy mơ thử nghiệm còn nhỏ nên khi đưa vào thực tế ứng dụng VLSH cần:
+ Tiến hành phân lập, tuyển chọn thêm giống AM và Rhizobium phù hợp cho các nhóm cây trồng khác nhau để tăng phổ ứng dụng của VLSH.
+ Thử nghiệm tái tạo thảm cỏ tạo cảnh quan ở quy mô lớn để khẳng định hiệu quả và khả năng ứng dụng của VLSH.
+ Tính tốn sử dụng các nguyên liệu rẻ, sẵn có mà vẫn đảm bảo điều kiện sinh trưởng và phát triển tối ưu cho nấm rễ AM và vi khuẩn nốt sần Rhizobium nhằm giảm giá thành của VLSH một cách tối đa để dễ dàng chuyển giao và ứng dụng đại trà trong việc tái tạo thảm thực vật ở nhiều mục đích khác nhau.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Tiếng Việt:
1. Bùi Ngọc Tấn (2013). Hiện trang và hướng duy trì hệ thống cây xanh trong khn viên trường đại học Nơng Nghiệp Hà Nội. Tạp chí Khoa học và phát triển. 11 (2). 2. Chính phủ (2010). Nghị định 64/2010/NĐ-CP về quản lý cây xanh đô thị.
3. Hàn Tất Ngạn (1999). Kiến trúc cảnh quan. NXB Xây dựng, Hà Nội.
4. Hàn Tất Ngạn (2000). Nghệ thuật vườn công viên. NXB Xây dựng, Hà Nội.
5. Hồ Thị Kim Anh (1999). Ảnh hưởng của các chủng vi khuẩn cố định nitơ trong rễ lúa lên sinh trưởng của mầm lúa CR203. NXB Khoa học kỹ thuật, Hà Nội..
6. Hồng Vân (2015). Khơng gian đơ thị xanh- nhìn từ các nước.
http://hanoimoi.com.vn/Tin-tuc/The-gioi/745473/khong-gian-do-thi-xanh- %E2%80%93-nhin-tu-cac-nuoc.
7. Lê Xuân Cường (2013). Phân lập tuyển chọn một số chủng vi khuẩn cố định đạm nội sinh trong rễ cây ngô tại một số địa điểm của tỉnh Dak Lak. Luận văn thạc sỹ. 8. Ngô Thế Dân, Nguyễn Ngọc Quyên và Nguyễn Kim Vũ (2000). Phân vi khuẩn nốt
sần và cách sử dụng cho cây đậu đỗ. Nhà Xuất bản Nông Nghiệp, Hà Nội.
9. Ngô Thế Thi (2009). Tổ chức thẩm mỹ không gian trống trong các khu ở đô thị http://www.ashui.com/mag/chuyenmuc/quy-hoach-do-thi/1538-to-chuc-tham-my- khong-gian-trong-trong-cac-khu-o-do-thi.html
10. Ngô Thị Bưởi (2015). Phân lập và tuyển chọn giống nấm rễ cộng sinh Arbuscular mycorhizae dùng để sản xuất vật liệu sinh học nhằm tạo thảm thực vật làm tiều cảnh cho khuôn viên.
11. Nguyễn Thị Minh (2005). Phân lập và tuyển chọn nấm rễ Arbuscular Mycorrhizae để xử lý cho cây trồng ., Ttạp chí khoa học đất Việt Nam. (23). tr. 46-51.
12. Nguyễn Thị Minh (2007). Hiệu quả của việc xử lý Arbuscular Mycorrhizae đến sự sinh trưởng và phát triển của cây họ đậu trên đất phù sa sơng Hồng. Tạp chí khoa học đất Việt Nam. (28). tr.27-30.
13. Nguyễn Thị Minh, Nguyễn Thu Hà và Phan Quốc Hưng (2014). Phân lập và tuyển chọn giống Abuscular Mycorrhizae dùng để sản xuất VLSH nhằm tái tạo thảm thực vật phủ xanh. T, tạp chí Nơng nghiệp và phát triển nơng thôn. (3-4). tr. 49-55.
14. Nguyễn Thị Minh, Nguyễn Thu Hà, Phan Quốc Hưng, Nguyễn Tú Điệp và Vũ Thị Xuân Hương (2014). Nghiên cứu xác định các nguyên liệu chính để sản xuất vật liệu sinh học nhằm tái tạo thảm thực vật phủ xanh., Ttạp chí Nơng nghiệp & Phát triển nông thôn. (6)/2014. tr. 111-116.
15. Nguyễn Thị Phương Chi (1999). Phối hợp các chủng Vi khuẩn cố định nitơ và Vi khuẩn hòa tan Photphat để nâng cao hiệu quả chế phẩm phân vi sinh., Nhà xuất bản Khoa học kỹ thuật, Hà Nội..
16. Nguyễn Văn Sức (2005). Nấm rễ nội cộng sinh (vesicular arbuscular mycorrhizae) và quần thể vi sinh vật trong đất trồng bưởi đặc sản Đoan Hùng. Tạp chí khoa học đất Việt Nam. (23). tr. 42.
17. Nguyễn Văn Sức (2007). Nghiên cứu áp dụng kỹ thuật phát triển cộng sinh Mycorrhizae cho một số cây trồng chính tại một số vùng sinh thái phục vụ cho sản xuất nông nghiệp bền vững. đề tài KHCN trọng điểm cấp Bộ 2006-2010.
18. Nông Thị Quỳnh Anh (2014). Xây dựng quy trình sản xuất vật liệu sinh học từ nấm rễ nội cộng sinh Arbuscular mycorhizae nhằm tái tạo thảm thực vật phủ xanh đất trống đồi núi trọc. Luận văn thạc sỹ. Học viện Nông nghiệp Việt Nam..
19. Phạm Ngọc Đăng (2014). Vai trị của cây xanh đơ thị trong cải thiện mơi trường và ứng phó với biến đổi khí hậu. http://vacne.org.vn/vai-tro-cua-cay-xanh-do-thi- trong-cai-thien-moi-truong-va-ung-pho-voi-bien-doi-khi-hau/213000.html
20. Phan Minh Thịnh, Tôn Thất Phát và Mai Văn Phô (2009). Nghiên cứu cây xanh đô thị trong kiến trúc cảnh quan của thành phố Huế. Tạp chí khoa học, đại học Huế, số 46. 21. Phan Quốc Hưng và cộng sự (2010). Khả năng kết hợp giữa vi sinh vật và thực vật
bản địa ưa nước trong xử lý đất nông nghiệp ô nhiễm kim loại nặng. Tạp chí Nơng nghiệp và phát triển nông thôn. (8). tr.19-23.
22. Phương Thảo (2014). Đưa không gian xanh vào môi trường sống http://vnexpress.net/tin-tuc/khoa-hoc/moi-truong/dua-khong-gian-xanh-vao-moi- truong-song-3028546.html
23. Thái Văn Trừng (1978). Thảm thực vật rừng Việt Nam. NXB Khoa học và kỹ thuật, Hà Nội.
24. Tiêu chuẩn xây dựng Việt Nam (TCXDVN 362:2005) quy hoạch cây xanh sử dụng công cộng trong các đô thị - Tiêu chuẩn thiết kế.
25. Trần Đình Lý (1998). Sinh thái thảm thực vật, giáo trình cao học. Viện sinh thái và tài nguyên sinh vật, Hà Nội.
26. Trần Lê Bảo Hà (2012). Công nghệ vật liệu sinh học. NXB Giáo dục Việt Nam. 27. Trần Văn Mão (2011). Vi sinh vật có ích tập 2. NXB Nơng nghiệp, Hà Nội.
28. Võ Thị Kiều Thanh (2012). Nghiên cứu sản xuất phân vi sinh cố định đạm từ bùn thải nhà máy bia Việt Nam. Tạp chí sinh học. (34). http://vjs.ac.vn/index.php/vjbio/article/viewFile/1791/2376http://www.ctahr.hawaii .edu/bnf/Downloads/Training/BNF%20technology/Rhizobia.PDF
Tiếng Anh:
29. Marumoto Takuya, Nobuyuki Kawano, Tsugio Ezaki and Hiroaki Okabe (1999). Plant restoration in Volcanic Denuded land using Mycorrhizae fungi. Soil and Microbiology vol 53 (2). pp. 81-90.
30. Morton J.B. (1998). Taxonomy of mycorrhizal fungi: Classificationnonmenclature and identification, 32. pp. 276-324.
31. Wenxin chen, Entao wang, Suying wang, Yingbo Li, Xiaoqiong chen, and Ying (1995) Characteristics of Rhizobium tianshanense sp. nov., a Moderately and Slowly Growing Root Nodule Bacterium Isolated from an Arid Saline Environment in Xinjiang, People’s Republic of China.
http://www.microbiologyresearch.org/docserver/fulltext/ijsem/45/1/ijs-45-
1153.pdf?expires=1461059173&id=id&accname=guest&checksum=8AE04FA6A D1F2B05EB74DF2C34747207
32. Yamamoto K, Takuya Marumoto, Hiroaki Okabe et al (2006). Plant fixation and soil quality teb years after the arial reforestation efforts in the quality of Fugendake, Unzen, Japan reforestation engineering Journal vol.32.
PHỤ LỤC 1.
Bảng 1. Hình thái học và phân loại của các chủng giống AM phân lập được
Ký hiệu giống Mẫu đất phân lập Hình dạng Màu sắc Kích thước (µm) Phân loại AM1 Gia Lâm Hình cầu đến gần hình
cầu
Trắng kem tới xanh nhạt
210-280 Gigaspora Albida
AM2 Gia Lâm Hình cầu đến gần hình cầu
Trắng trong tới trắng kem
240 - 370 Gigaspora Decipiens AM3 Gia Lâm Chủ yếu hình cầu Hồng nhạt tới
hồng đậm, hồng sắc xanh
200-320 Gigaspora sp1
AM4 Gia Lâm Hình cầu đến gần cầu Vàng xanh tới vàng cam, nâu
253-320 Gigaspora sp2 AM5 Gia Lâm Chủ yếu hình cầu Nâu tới nâu cam 390-450 Gigaspora sp3 AM6 Gia Lâm Hình cầu đến gần cầu Vàng rơm nhạt
tới vàng nâu
70-110 Glomus sp1 AM7 Gia Lâm Hình cầu đến gần cầu,
một số bất quy tắc
Trắng trong tới hồng nhạt
200-330 Scutellospora sp1
AM8 Gia Lâm Hình cầu đến gần cầu, một số bất quy tắc
Trắng trong tới xanh lục nhạt
330-410 Scutellospora sp2
AM9 Gia Lâm Hình cầu, gần hình cầu, một số thuôn dài
Nâu vàng nhạt tới nâu đen
300-425 Gigaspora sp6 AM10 Gia Lâm Hình cầu, gần hình cầu Kem nhạt tới
vàng nâu, chuyển sang đen
240-320 Dentiscutata Nigra AM11 Hiệp Hịa Hình cầu đến gần cầu Nâu trong nhạt
tới nâu trong đậm
250-270 Scutellospora sp3
AM12 Hiệp Hòa Hình cầu đến gần cầu Trắng ánh nâu tới trắng ánh hồng
310-420 Gigaspora sp4
AM13 Hiệp Hịa Hình cầu, gần hình cầu, bề mặt nhám
Nâu nhạt tới nâu sẫm
Hình 1. Sự sinh trưởng của các bào tử nấm rễ sau 15 ngày ni cấy
Kiểu A: Chưa hình thành sợi Kiểu B: Hình thành sợi ngắn
Kiểu C: Sợi nấm bắt đầu phân nhánh
Kiểu D: Sợi nấm có nhiều nhánh, hình thành cấu trúc đặc trưng với nhiều cấu trúc đặc trưng
Bảng 2. Sự phát triển của bào tử sau 30 ngày nuôi cấy
Tên giống Số lượng bào tử ở các mức phát triển hệ sợi
Mức 1 Mức 2 Mức 3 AM1 1 1 3 AM2 1 2 2 AM3 2 1 1 AM4 4 2 0 AM5 3 1 1 AM6 2 0 2 AM7 1 4 0 AM8 2 3 3 AM9 1 3 4 AM10 1 4 3 AM11 3 2 1 AM12 3 0 1 AM13 2 2 0
Mức I: Bào tử phát triển một vài sợi
Mức II: Số lượng sợi nấm phát triển trung bình
Bảng 3. Một số tính chất sinh học của giống AM được tuyển chọn Ký hiệu giống Hình dạng Màu sắc Kích thước (µm) Số lượng bào tử ở các giai đoạn khác nhau sau 30 ngày
nuôi cấy
Số lượng bào tử ở các mức phát triển hệ sợi sau 30 ngày nuôi cấy Tỷ lệ nảy mầm Phân loại Kiểu B Kiểu C Kiểu D Mức II Mức III AM6 Hình cầu đến gần cầu Vàng rơm nhạt tới vàng nâu 70- 110 1 2 4 4 3 70 Glomus sp1 AM11 Hình cầu đến gần cầu Nâu trong nhạt tới nâu trong đậm 250- 270 1 2 3 3 3 60 Scutellospora sp3 AM9 Hình cầu, gần hình cầu, một số thuôn dài Nâu vàng nhạt tới nâu đen 300- 425 1 3 5 3 6 90 Gigaspora sp6 AM10 Hình cầu, gần hình cầu Kem nhạt tới vàng nâu, chuyển sang đen 240- 320 0 4 4 3 5 80 Dentiscutata Nigra
Kiểu A: Chưa hình thành sợi Kiểu B: Hình thành sợi ngắn
Kiểu C: Sợi nấm bắt đầu phân nhánh
Kiểu D: Sợi nấm có nhiều nhánh, hình thành cấu trúc đặc trưng với nhiều cấu trúc đặc trưng.
Mức II: Số lượng sợi nấm phát triển trung bình
Hình 4.3. Tỷ lệ nảy mầm của bào tử sau 30 ngày nuôi cấy
Bảng 4. Khả năng cộng sinh của các chủng giống Rhizobium
Ký hiệu giống Nguồn gốc Thời gian xuất hiện nốt sần (ngày)
Số lượng nốt sần hữu hiệu ( nốt/cây)
RT1 Điền thanh 15,3 10,6 RT2 Điền thanh 21,6 3,3 RT3 Điền thanh 17,3 4,3 RT4 Điền thanh 22,6 1,6 RT5 Điền thanh 18,6 8,3 RT6 Điền thanh 24,3 2,0 RT7 Điền thanh 21,3 2,6 RT8 Điền thanh 23,0 1,3 RT9 Điền thanh 25,0 0 RT10 Điền thanh 24,3 1,0 RT11 Điền thanh 19,6 1,6 RT12 Điền thanh 20,3 0 RT13 Điền thanh 22,6 0 RĐ1 Đậu tương 16,3 2,3 RĐ2 Đậu tương 16,0 3,3 RĐ3 Đậu tương 14,3 4,6 RĐ4 Đậu tương 15,3 5,3 RĐ5 Đậu tương 13,6 7,3 RĐ6 Đậu tương 15,6 3,6 RL1 Lạc 14,3 7,6 RL2 Lạc 14,6 5,6 RL3 Lạc 17,6 1,3 RL4 Lạc 16,3 6,3 RL5 Lạc 16,6 4,6 (Nguyễn Thị Minh, 2016)
PHỤ LỤC 2.
Xử lý thống kê kết quả thí nghiệm
Ảnh hưởng xử lý VLSH đến một số chỉ tiêu sinh trưởng ở cây lạc cảnh
BALANCED ANOVA FOR VARIATE CCC FILE THANHF1 28/ 3/16 16:39
------------------------------------------------------------------ :PAGE 1 Anh huong cua xu ly VLSH den mot so chi tieu sinh truong
cua co lac dai
VARIATE V003 CCC ndthanhf
LN SOURCE OF VARIATION DF SUMS OF MEAN F RATIO PROB ER SQUARES SQUARES LN ============================================================================= 1 CT$ 1 69.4961 69.4961 112.07 0.001 2 * RESIDUAL 4 2.48053 .620134 ----------------------------------------------------------------------------- * TOTAL (CORRECTED) 5 71.9766 14.3953 -----------------------------------------------------------------------------