STT Vi khuẩn Gây bệnh
1 Mycoplasma hyopneumoniae Suyễn 2 Actinobaccilus pleuropneumoniae APP
3 Pasteurella multocida Tụ huyết trùng 4 Haemophilus parasuis Viêm đương hô hấp 5 Bordetella bronchiseptica Viêm teo mũi 6 Streptococcus suis Liên cầu khuẩn
7 Salmonella spp Phó thương hàn
8 E.coli E.coli
9 Clostridium spp Viêm ruột hoại tử 10 Classical Swine Fever Dịch tả lợn
2.8. PHÒNG VÀ ĐIỀU TRỊ BỆNH 2.8.1. Phòng bệnh
Thực hiện các phương pháp phòng bệnh tổng hợp sau: * Tuyên truyền phòng bệnh
Tổ chức tuyên truyền phổ biến kiến thức về bệnh, tính chất nguy hiểm của bệnh và các biện pháp phòng chống dịch tới từng trang trại, gia trại, hộ gia đình và cộng đồng.
- Tuyên truyền, vận động các tổ chức, cá nhân chăn ni trong từng thơn xóm kí cam kết thực hiện:
+ Không giấu dịch. + Không mua lợn bệnh. + Không bán chạy lợn bệnh.
+ Không vận chuyển lợn bệnh ra khỏi vùng dịch. * Chủ động giám sát, phát hiện sớm dịch.
Khi phát hiện lợn có những biểu hiện bất thường: bỏ ăn, sốt cao, lợn nái sảy thai, người chăn nuôi cần báo ngay cho nhân viên thú y xã hoặc trưởng thơn.
- Chính quyền xã, ban chăn nuôi thú y xã có trách nhiệm tổ chức, phân công giám sát dịch bệnh trên gia súc, gia cầm, lập sổ theo dõi tình hình chăn ni, dịch bệnh, kết quả tiêm phịng các bệnh ở lợn tại địa phương đến từng thơn xóm, hộ chăn ni.
- Lập bản đồ dịch tễ Hội chứng rối loạn sinh sản và hô hấp ở lợn tại địa phương để chủ động tham mưu các biện pháp phịng bệnh có hiệu quả.
- Tổ chức lấy mẫu bệnh phẩm để chẩn đoán bệnh đột xuất. Đồng thời, thường xuyên giám sát sự xuất hiện của virus để dự báo sớm dịch bệnh.
- Kiểm soát chặt chẽ lợn xuất ra, nhập vào địa phương.
2.8.1.1. Vệ sinh phòng bệnh
- Cải thiện môi trường trong chuồng ni: thống mát, giảm mùi hôi chuồng…
- Thực hiện biện pháp chăn nuôi “cùng vào, cùng ra”. - Tránh nhập lợn mới vào trại trong lúc dịch đe dọa. - Loại thải những lợn cịi cọc, bệnh nặng.
- Kiểm sốt nguồn tinh tốt. - Không nuôi lợn thả rông.
- Thường xuyên vệ sinh cơ giới và tiêu độc khử trùng chuồng trại, dụng cụ chăn nuôi, phương tiện vận chuyển và các dụng cụ khác bằng các loại hoá chất như: vôi bột, chlorine, iodine ...
- Xử lý phân và chất thải chuồng nuôi theo phương pháp ủ sinh học hoặc xây dựng bể Biogas.
- Con giống đưa vào chăn ni phải khoẻ mạnh, có nguồn gốc rõ ràng, giấy chứng nhận kiểm dịch của cơ quan thú y.
- Vệ sinh thức ăn, nước uống: thức ăn, nước uống dùng trong chăn nuôi phải đảm bảo vệ sinh. Không sử dụng thức ăn ôi thiu, ẩm mốc, không đảm bảo chất lượng ..., thường xuyên vệ sinh máng ăn, máng uống ...
- Tiêm đầy đủ vacxin phòng bệnh: dịch tả lợn, FMD, Mycoplasma, PRRS,
circovirus…
2.8.1.2. Phòng bệnh bằng vacxin
Theo báo cáo kết quả thực hiện kế hoạch 12 tháng năm 2012 ngành Nông nghiệp và PTNT (Bộ NN và PTNT, 2012) có 7 loại vacxin được phép lưu hành và sử dụng tại Việt Nam.
- Vacxin nhược độc BSL-PS 100 của Công ty Bestar - Singappo, chủng vacxin JKL 100 thuộc dòng Bắc Mỹ.
- Vacxin nhược độc Amervac PRRS của Công ty Hipra - Tây Ban Nha, chủng vacxin VP046 BIS.
- Vacxin Porcilis PRRS của Công ty Intervet Hà Lan.
- Vacxin nhược độc Ingelvac PRRS MLV của Công ty Boehringer - Đức, chủng vacxin ATCC VR-2332 thuộc dòng Bắc Mỹ.
- Vacxin vô hoạt Hội chứng rối loạn hô hấp, sinh sản lợn (PRRS) của Công ty Chengdu- Trung Quốc, chủng NVDC-JXA1 thuộc dòng Bắc Mỹ.
- Vacxin nhược độc chủng JXA1-R của Công ty China Animal Husbandry Industry Company (CAHIC) - Trung Quốc, chủng JXA1-R thuộc dòng Bắc Mỹ.
- Vacxin nhược độc chủng độc lực cao (live JXA1-R Highly Pathogenic Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome vacxin), của Công ty Đại Hoa Nơng - Trung Quốc, chủng JXA1-R thuộc dịng Bắc Mỹ.
Hiện nay, tuy chưa có những đánh giá cụ thể về hiệu quả sử dụng vacxin ở Việt Nam, những việc tiêm phòng vacxin chỉ thực sự hiệu quả khi được đồng thời thực hiện cùng hàng loạt các biện pháp khác như an toàn sinh học, kiểm tra huyết thanh định kỳ.
2.8.1.3. Kiểm dịch vận chuyển
- Kiểm soát chặt chẽ lợn, sản phẩm của lợn vận chuyển qua biên giới. - Tại các địa phương kiểm soát chặt chẽ lợn, sản phẩm của lợn vận chuyển, xuất ra, nhập vào địa phương.
- Xử phạt nghiêm các trường hợp vi phạm theo quy định của pháp luật. 2.8.2. Điều trị bệnh
Hiện nay, PRRS khơng có thuốc điều trị, chỉ có thể sử dụng một số thuốc tăng cường sức đề kháng, điều trị triệu chứng và chủ yếu là ngăn ngừa bệnh kế phát.
Với những trang trại đang xảy ra dịch, thực hiện đúng các bước sau: - Loại bỏ những con bị quá nặng.
- Tách những con bỏ ăn ra chuồng riêng. - Giãn mật độ nuôi tối đa.
- Khơng tắm cho lợn có dấu hiệu bị bệnh, chỉ rửa chuồng, tích cực vệ sinh. - Sát trùng chuồng trại ngày 1 – 2 lần.
- Pha Vitamin C vào nước cho uống khi đàn lợn có triệu chứng sốt cao. - Một tuần cho uống 2 ngày Sorbitol để giải độc gan, thận.
- Sử dụng cám có thuốc kháng sinh cho đến khi hết bệnh (1 – 2 tháng). - Với những con bỏ ăn: phải tách ra để tiêm cùng lúc 2 loại thuốc là kháng sinh và thuốc điều trị triệu chứng.
- Kháng sinh kéo dài và phổ rộng: Amoxillin LA, Oxytetraxyllin LA, Tiamulin…để điều trị vi khuẩn kế phát.
- Thuốc hạ sốt, giảm đau, chống viêm sử dụng các loại sau: Funicin, Ketoprofen (Ketofen, Ketovet) khi đàn lợn có triệu chứng sốt cao.
- Không nên sử dụng thuốc kháng viêm dạng Corticoids.
Thời gian điều trị phải kéo dài từ 10 – 15 ngày lợn mới có thể hết bệnh. Đối với lợn nái phải lấy thân nhiệt ít nhất 2lần/ngày và tiêm thuốc hạ sốt cho những con > 39,50C.
Nên xem xét kỹ và chẩn đốn chính xác có phải bị PRRS (chết < 30%) hay là dịch tả lợn (chết 100% khi có triệu chứng bệnh).
* Cụ thể phác đồ điều trị như sau:
- Chống nhiễm bệnh kế phát: dùng kháng sinh có tác dụng với đường hơ hấp: + Nếu lợn cịn ăn thì trộn vào thức ăn hàng ngày một trong các loại kháng sinh sau: Flofenicol 40ppm (40gr/tấn thức ăn) hoặc 10 – 15 ngày, Lincomix S liều 2kg/tấn thức ăn, Tylansulfa – G 2kg/tấn thức ăn.
+ Nếu con vật bỏ ăn dùng một trong các loại kháng sinh sau đây: Amoxicillin LA 15% liều 1ml/10kgP, Linco – spectin, Cafelosporin liều 1gr/30 – 50kgP. Liệu trình 3 – 7 ngày.
Với lợn nái có thể tiêm chậm vào tĩnh mạch vành tai, cịn đối với lợn con có thể tiêm bắp ở vùng cổ.
- Nâng cao sức đề kháng: có thể sử dụng kết hợp một số loại thuốc sau: + Vitamin C 5% liều 5 – 10 ml/con/ngày (có thể tiêm bắp).
+ Đường glucoza 5% liều 10 – 20 – 30 ml/con/ngày. + Urotropin 10% liều 5 – 10 – 20 ml/con/ngày. + Thuốc trợ tim.
2.8.3. Chống dịch - Khai báo ổ dịch.
- Chuẩn đốn xét nghiệm.
- Cơng bố dịch: Điều 17, Pháp lệnh Thú y; 1 thôn, 3 xã, 3 huyện.
- Tiêu hủy lợn mắc bệnh: là những lợn có bệnh, đã được chăm sóc tích cực trong 7 ngày nhưng khơng bình phục.
- Hỗ trợ theo Quyết định số 719/QĐ – TTg ngày 05/06/2008 của Thủ tướng chính phủ.
2.9. YẾU TỐ NGUY CƠ 2.9.1. Khái niệm 2.9.1. Khái niệm
Yếu tố nguy cơ (risk factor) là một yếu tố qua các cơ chế gián tiếp hay trực tiếp làm tăng nguy cơ mắc bệnh của cá thể.
Một yếu tố nguy cơ bao gồm 3 thành phần: tác nhân có hại, yếu tố nguy cơ và mức độ hậu quả. Thơng thường người ta ít khi phân biệt tác nhân có hại với yếu tố nguy cơ và nhiều khi coi chúng đều là nguyên nhân. Do vậy, nếu dùng từ nguyên nhân thì trong dịch tễ học cần phân biệt giữa tác nhân có hại với yếu tố nguy cơ.
2.9.2. Phương pháp xác định yếu tố nguy cơ
Nguy cơ xảy ra dịch bệnh không chỉ nói chung chung là nguy cơ cao mà phải xác định và tính tốn đề chứng minh rằng yếu tố đó chính là yếu tố nguy cơ. Muốn vậy, ta phải tính xác suất xảy ra bệnh khi khơng có yếu tố nguy cơ đó. Sau đó so sánh 2 xác suất với nhau. Có 3 chỉ số so sánh xác suất tùy theo phương pháp nghiên cứu dịch tễ. Đó là tỷ số lệch OR (Odd Ratio), tỷ số tỷ lệ nhiễm PR (Prevalence Ratio) và nguy cơ tương quan RR (Relative Risk).
2.9.3. Tỷ số lệch OR (Odd Ratio) và nghiên cứu bệnh chứng (Case- Control Study) Control Study)
Nghiên cứu bệnh-chứng là một trong những nghiên cứu quần thể, được tiến hành bằng quan sát phân tích đồng thời trên 2 nhóm động vật bệnh và động vật đối chứng. Nhóm động vật bệnh là nhóm gồm những con vật mắc bệnh mà ta muốn nghiên cứu, sau đó điều tra ngược trở lại xem khả năng tiếp xúc với yếu tố nguy cơ như thế nào, do đó nghiên cứu bệnh-chứng mang ý nghĩa hồi cứu.
Phân tích nghiên cứu bệnh-chứng là so sánh tần số phơi nhiễm với một yếu tố nguy cơ (tác nhân gây bệnh) giữa nhóm bệnh và nhóm chứng.
Tỷ số lệch (OR) là một chỉ số của nguy cơ tương đối trong các nghiên cứu bệnh chứng, nó cũng là một số đo của nguy cơ so sánh. Nó so sánh độ chênh lệch của bệnh sẽ xảy ra trong nhóm có phơi nhiễm với yếu tố nguy cơ và độ chênh lệch của bệnh sẽ xảy ra trong nhóm khơng phơi nhiễm với yếu tố nguy cơ.
Tỷ số OR là ước lượng của tỷ số rủi ro:
Tỷ số chênh lệch OR > 1 chỉ sự kết hợp bệnh với sự phơi nhiễm, trị số OR càng lớn thì sự kết hợp càng mạnh. Ngược lại, nếu OR < 1 nói lên một kết hợp âm tính. OR = 1 thì bệnh và sự phơi nhiễm với yếu tố nguy cơ không liên quan đến nhau.
PHẦN 3. ĐỐI TƯỢNG, NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 3.1. ĐỐI TƯỢNG VÀ PHẠM VI NGHIÊN CỨU
3.1.1. Đối tượng nghiên cứu - Đàn lợn nuôi. - Đàn lợn nuôi.
- Các hộ chăn ni(có dịch và khơng có dịch) trên địa bàn một số xã thuộc tỉnh Hưng Yên.
- Một số yếu tố nguy cơ làm phát sinh và lây lan dịch. 3.1.2. Thời gian nghiên cứu
- Từ năm 2015-2016. 3.1.3. Địa điểm nghiên cứu
- Một số hộ chăn nuôi lợn trên địa bàn một số xã thuộc tỉnh Hưng Yên. - Bộ môn Dịch tễ và Bệnh lý - Viện thú y.
3.2. NỘI DUNG NGHIÊN CỨU
3.2.1. Nghiên cứu tình hình chăn ni, vệ sinh khử trùng, tiêm phòng và dịch tai xanh trong chăn nuôi lợn tại tỉnh Hưng Yên dịch tai xanh trong chăn nuôi lợn tại tỉnh Hưng Yên
Thu thập thông tin qua phiếu điều tra và phỏng vấn cán bộ thú y, người chăn ni. Các chỉ tiêu điều tra bao gồm:
- Tình hình chăn ni lợn: cơ cấu chăn ni, phương thức chăn nuôi. - Quản lý: công tác quản lý đàn, cơng tác vệ sinh thú y.
- Tình hình tiêm phịng và dịch Lợn tai xanh (2015-2016).
3.2.2. Nghiên cứu tỷ lệ huyết thanh dương tính với kháng thể virus PRRS lưu hành trong đàn lợn nuôi tỉnh Hưng Yên (2015-2016) lưu hành trong đàn lợn nuôi tỉnh Hưng Yên (2015-2016)
- Tỷ lệ huyết thanh dương tính với kháng thể virus PRRS trước tiêm phịng
(2015-2016).
- Tỷ lệ huyết thanh dương tính với kháng thể virus PRRS sau tiêm phịng (2015-2016).
3.2.3. Phân tích một số yếu tố nguy cơ làm phát sinh và lây lan dịch Lợn tai xanh tai xanh
- Địa điểm chăn nuôi: gần đường quốc lộ, gần chợ buôn bán gia súc, gia cầm sống.
- Phương thức chăn nuôi và công tác quản lý khu chăn nuôi: Thức ăn chăn nuôi, nguồn nước uống trong chăn nuôi, nguồn gốc con giống.
3.3. PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
3.3.1. Lập phiếu điều tra và thu thập thông tin: 424 phiếu
Thông qua các phiếu điều tra phỏng vấn hộ chăn nuôi, thú y xã. Các chỉ tiêu theo dõi bao gồm:
Tình hình chăn ni lợn: Số lượng lợn trong một hộ chăn nuôi, nguồn giống, nguồn cung cấp thức ăn, phương thức chăn ni...
Tình hình vệ sinh: Chất lượng chuồng trại, vệ sinh chuồng trại, nguồn cung cấp nước, xử lý chất thải...
Tình hình dịch bệnh: xử lý khi có dịch, khử trùng tiêu độc chuồng trại khi có dịch, lấy mẫu xét nghiệm khi có dịch, tổng số lợn khi có dịch, số lượng lợn bị tiêu hủy...
Tình hình tiêm phịng: tỷ lệ tiêm phịng, thực hiện các quy định về thú y khi tiêm phịng.
3.3.2. Bố trí lấy mẫu huyết thanh và bảo quản Bảng 3.1. Địa điểm lấy mẫu
STT HUYỆN 2015 2016 Lợn chưa tiêm phòng Lợn đã tiêm phòng Lợn chưa tiêm phòng Lợn đã tiêm phòng 1 TP Hưng Yên 10 2 Ân Thi 10 30 20 20 3 Kim Động 10 30 20 20 4 Tiên Lữ 10 20 20 20 5 Phù Cừ 10 20 6 Khoái Châu 10 7 Mỹ Hào 10 8 Văn Giang 10 9 Văn Lâm 10 10 Yên Mỹ 10
Lấy 320 mẫu huyết thanh lợn và bảo quản theo QCVN 01-83: 2011/BNNPTNT.
3.3.3. Phương pháp ELISA
Sử dụng bộ kit PRRS-HERDCHECKX3 của IDEXX (theo hướng dẫn của nhà sản xuất).
Tóm tắt cách làm:
- Bước 1: Chuẩn bị bộ kit: số mẫu huyết thanh cần kiểm tra + 02 đối
- Bước 2: Pha loãng mẫu huyết thanh cần kiểm tra với tỷ lệ 1/40: 10 μl mẫu kiểm tra + 390 μl dung dịch pha loãng mẫu trong ống pha lỗng. Sau đó chuyển 100 μl dung dịch mẫu kiểm tra đã pha loãng sang đĩa ELISA với sơ đồ bố trí mẫu tương ứng.
* Nhỏ 100 μl đối chứng âm và đối chứng dương(không pha loãng) vào đĩa ELISA.
- Bước 3: Vỗ nhẹ đĩa, đậy nắp. Ủ ở nhiệt độ phòng trong 30 phút.
- Bước 4: Pha nước rửa đĩa 1X từ dung dịch rửa đĩa 10X có sẵn trong bộ kit với nước cất.
- Bước 5: Sau 30 phút ủ đĩa, đổ bỏ dung dịch trong đĩa, rửa đĩa 3 lần với lượng 300 μl/giếng bằng dung dịch rửa đĩa 1X.
- Bước 6: Nhỏ 100 μl chất gắn kết(conjugate) vào tất cả các giếng. Ủ tiếp đĩa ở nhiệt độ phòng trong 30 phút.
- Bước 7: Sau đó đổ bỏ dung dịch trong đĩa, rửa đĩa 3lần với lượng 300 μl/giếng bằng dung dịch rửa đĩa 1X.
- Bước 8: Nhỏ 100 μl cơ chất vào các giếng, ủ đĩa trong 15phút.
- Bước 9: Dừng phản ứng bằng cách cho100 μl dung dịch stop vào các giếng.
- Bước 10: Đọc đĩa ở bước sóng 650 nm và tính kết quả. Phản ứng được công nhận khi:
+ OD của đối chứng âm ≤ 0,15;
+ OD của đối chứng dương - OD của đối chứng âm ≥ 0,15.
S/P = (OD của mẫu – OD của đối chứng âm)/(OD của đối chứng dương - OD của đối chứng âm).
Đánh giá kết quả:
+ Mẫu dương tính: S/P không nhỏ hơn 0,4. + Mẫu âm tính: S/P nhỏ hơn 0,4.
3.4. PHƯƠNG PHÁP XỬ LÝ SỐ LIỆU - Sử dụng phần mềm Microsoft Excel. - Sử dụng phần mềm Microsoft Excel.
- Theo phương pháp nghiên cứu bệnh - chứng.
- Sử dụng các phương pháp tính tốn thơng dụng, các cơng thức tính tốn trong dịch tễ.
- Để đưa ra kết luận yếu tố nguy cơ có liên quan đến việc phát sinh và lây lan dịch lợn tai xanh không, chúng tôi tiến hành theo các bước sau:
- Qui định:
+ Hộ có gia súc tiêm phịng vacxin PRRS khơng có kháng thể bảo hộ và hộ có gia súc phơi nhiễm(xét nghiệm dương tính huyết thanh học với kháng thể virus PRRS) là những hộ bệnh.
+ Hộ có gia súc tiêm phịng vacxin PRRS có kháng thể bảo hộ và hộ có gia