1.5.3.1. Chăm sóc nuôi dưỡng
* Giai đoạn gà con
Gà con mới nở khả năng tự điều chỉnh thân nhiệt cơ thể rất kém, do đó ảnh hưởng tới sức đề kháng của gà. Vì vậy ở giai đoạn này tỷ lệ gà thất thoát là khá cao. Úm gà con đây là một trong những giai đoạn cực kỳ quan trọng vì nó ảnh hưởng tới sự sinh trưởng và phát triển của gà ở các giai đoạn tiếp theo.Vì vậy chúng ta cần chú ý nhiệt độ chuồng úm bằng cách quan sát mức độ phân tán của đàn gà quanh chụp úm hay đèn úm.
Nếu nhiệt độ úm thích hợp (nhiệt độ úm tối ưu): thì gà con thoải mái và lúc nào cũng thấy gà đi ăn và uống nước, phản ứng linh hoạt với tiếng ồn. Và đàn gà phân tán đều quanh chuồng nuôi. Khi nhiệt độ tối ưu thì gà ăn nhiều nhất, gà có bộ lông bóng và sạch sẽ.
Nếu nhiệt độ úm nóng quá gà con nằm xa nguồn nhiệt. Gà ăn ít, uống nhiều nước, gà há mỏ thở nhiều, gà yếu ớt và chậm lớn. Nếu nóng quá gà sẽ chết hàng loạt.
Nếu nhiệt độ úm không đủ gà con túm tụm lại dưới đèn úm hoặc chụp úm hay nằm chồng chất lên nhau để lấy nhiệt lẫn nhau. Nếu tình trạng này kéo dài gà đi phân lỏng, chân lạnh và gà kêu liên hồi không dứt trong khi thức ăn vẫn đầy máng.
Gà con mới nở cần cho uống nước sạch và tăng sức đề kháng bằng cách trong những ngày đầu pha vào nước 5 - 10 gam glucose và 1 - 2 gam vitamin C vào 1 lít nước, sau khi gà uống nước được 1-2 giờ chúng ta mới cho gà tập ăn thức ăn như tấm, bắp…
Gà con sinh trưởng nhanh, trao đổi chất mạnh, vì vậy thức ăn cho gà ăn phải đày đủ về số lượng và chất lượng. Trong 3 tuần đầu cho gà ăn cả ngày lẫn đêm. Đến tuần thứ 3 về sau nên cho gà ăn theo bữa và theo trọng lượng của gà ở các tuần tuổi khác nhau [19].
* Giai đoạn gà giò đến trưởng thành
Gà ăn nhiều, lớn nhanh và bắt đầu hoàn thiện dần bộ lông. Đây cũng là giai đoạn trong khẩu phần ăn chúng ta có thể giảm lượng bột cá và tăng cường thức ăn hạt. Tuy nhiên vào những ngày thời tiết nóng, nhất là vào khoảng 10-16 giờ nên hạn chế hay tốt nhất chúng ta không nên cho gà ăn, mà cho gà uống nước mát pha với vitamin C hay antistress, nhằm hạn chế stress nhiệt [9].
Để đạt kết quả kinh tế cao, người chăn nuôi cần tuân thủ nghiêm ngặt những nội quy thú y, thực hiện nghiêm ngặt công tác rửa chuồng, tẩy uế và khử trùng trước khi đưa gà vào chuồng nuôi. Trong quá trình nuôi dưỡng phải thường xuyên kiểm tra theo dõi tình trạng sức khoẻ của đàn gà, nếu phát hiện có điều gì bất thường, cần báo với cán bộ thú y để can thiệp kịp thời.
Bảng 1.2. Lịch phòng bệnh cho gà
Ngày tuổi Vaccin
1 ngày tuổi Tiêm phòng bằng vaccine Marek
1 - 4 ngày tuổi Cho uống Gluco, vitamin C hoặc B-complex (5g đường gluco, 1g vitamin C, 5ml B-complex/1 lít nước uống), phòng bệnh đường ruột bằng Octamix amocycline + Colistin 1g/4-6 lít nước.
5 ngày tuổi Nhỏ mắt, mũi vaccine phòng bệnh Newcastle lần 1.
7 ngày tuổi Nhỏ mắt, mũi vaccine Gumboro lần 1, phòng bệnh Newcastle đậu gà (dưới da cánh).
14 ngày tuổi Nhỏ mắt, mũi vaccine Gumboro lần 2.
8-12 ngày tuổi Phòng bệnh hô hấp bằng Tylosin 1g/1 lít nước. 15 ngày tuổi Tiêm phòng vaccin cúm gà lần 1 (dưới da cổ). 17 ngày tuổi Nhỏ mắt, mũi vaccine Gumboro lần 3.
21 ngày tuổi Tiêm phòng vaccin newcastle hệ 1 (dưới da cánh). 42 ngày tuổi Tiêm phòng vaccin newcastle hệ 1 lần 2.
45 ngày tuổi Tiêm phòng vaccin H5N2, tiêm dưới da cổ.
Ngoài ra trong quá trình nuôi dưỡng có thể bổ sung một lượng rất nhỏ kháng sinh và thuốc phòng cầu trùng, đường ruột, song đối với gà lấy thịt thì hạn chế dùng kháng sinh. Trong trường hợp bắt buộc phải dùng thì cần ngừng sử dụng trước khi giết mổ đối với tất cả các loại kháng sinh tối thiểu là 10 ngày [19].
1.6. Thành phần dinh dưỡng của tấm gạo và ngô xay*Năng lượng trao đổi của tấm gạo *Năng lượng trao đổi của tấm gạo
Giá trị năng lượng trao đổi của tấm gạo là 3000 kCal/kg, trong đó tỉ lệ thành phần trăm các chất như sau: Protein thô 9 %, mỡ thô: 1.7 %, xơ thô: 0.8 %, lizin 0.33 %, metionin 0.19%, Canxi 0.11 %, Photpho tổng số 0.2 % [14].
*Năng lượng trao đổi của ngô
Giá trị năng lượng trao đổi của ngô là 3200-3400 KCal/kg, trong đó tỷ lệ phần trăm các chất như sau: Protein thô 8-10 %, mỡ thô: 4 -4.5 %, xơ thô: 2 %, trong đó hàm lượng Caroten khá cao [19].
Chương 2
ĐỐI TƯỢNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
2.1. Đối tượng nghiên cứu
Tảo Nanochloropsis oculata Hibberd Gà Ri (Gallus gallus otomesticus)
2.2. Địa điểm và thời gian nghiên cứu2.2.1. Địa điểm nghiên cứu 2.2.1. Địa điểm nghiên cứu
Phòng thí nghiệm Thực vật bậc thấp - Khoa sinh - Đại học Vinh Phân viện nghiên cứu nuôi trồng thủy sản Bắc Trung Bộ (Nghệ An) Tại số nhà 16 - Đường Võ Thị Sáu - Khối 11 Phường Trường Thi - TP Vinh, Nghệ An.
Tại gia đình (Xóm 6 - Quảng Đông - Quảng Xương - Thanh Hoá) Tại phòng Hoá thực phẩm Khoa hoá - Đại học Vinh.
2.2.2. Thời gian nghiên cứu
Đề tài được tiến hành từ tháng 3/2011 đến tháng 10/2011 cụ thể như sau: Từ tháng 3/2011 - 9/2011 nghiên cứu sự sinh trưởng của tảo
Nanochloropsis oculata trên môi trường F2 và nuôi tảo thu sinh khối. Tháng 8 - 2011 tạo chế phẩm Tảo.
Từ 9/ 2011 -10/2011 bố trí thí nghiệm nuôi gà Ri với khẩu phần thức ăn có bổ sung chế phẩm tảo.
Tháng 11/2011 phân tích thành phần Protein thịt gà trong các lô thí nghiệm từ đó đánh giá hiệu quả của chế phẩm tảo bổ sung.
2.3. Phương pháp nghiên cứu
2.3.1. Phương pháp trồng và thu sinh khối tảo Nanochloropsis oculata
2.3.1.1. Nhân giống tảo trong phòng thí nghiệm
Tảo Nanochloropsis oculata được Phân viện nuôi trồng thủy sản Bắc Trung Bộ (Nghệ An) cung cấp. Tảo sau khi lấy về được nuôi trồng trong
phòng thí nghiệm trên môi trường F/2 để đảm bảo cung cấp giống cho việc nuôi tảo ngoài trời, đồng thời theo dõi một số chỉ tiêu sinh lý và mật độ tảo qua từng giai đoạn.
Bảng 2.1. Thành phần môi trường F/2 của Guillard [3]. Dung dịch 1 Các thành phần Số lượng (mg/l) NaNO3 75 NaH2PO4. H2O 5 Dung dịch 2. Các thành phần Số lượng (mg/l) Na2SiO3.9H20 30 Dung dịch 3. Các thành phần Số lượng (mg/l) Na2EDTA 4,36 CoCl2.6H2O 0,01 CuSO4.5H2O 0,01 FeCl3.6H2O 3,15 MnCl2.4H2O 0,18 Na2MoO4.6H2O 0,006 ZnSO4.H2O 0,022
Vitamin
Các thành phần Số lượng (mg/l) Thiamin (B1) 0,1
Biotin (B6) 0,0005 Riboflavin (B12) 0,0005
2.3.1.2. Phương pháp nghiên cứu sinh trưởng của tảo Nanochloropsis oculata
* Phương pháp đếm số lượng tế bào
Lấy mẫu tảo: mẫu được lấy vào lúc 8 giờ sáng. Dùng ống hút tảo, hút khoảng 20 ml tảo ở bể nuôi cấy cho vào cốc đong có thể tích 250 ml. Mẫu tảo được pha loãng 5 lần bằng nước cất, sau đó nhỏ vài giọt dung dịch foocmol 4% để cố định mẫu tảo. Lắc đều mẫu tảo sau đó dùng ống hút, hút nhỏ một giọt dung dịch tảo vào buồng đếm Goriaev, để vài phút cho tảo ổn định, sau đó dùng lamen đậy nhẹ nhàng, để lắng một lúc rồi đưa lên kính hiển vi để đếm.
2.3.1.3. Phương pháp xác định các yếu tố môi trường
Đo pH : dùng test pH độ chinh xác 0,5 đo hàng ngày vào lúc 8 giờ và 14 giờ
Đo nhiệt độ : dùng nhiệt kế thuỷ ngân độ chính xác 10C đo hàng ngày vào lúc 8 giờ và 14 giờ.
Độ mặn : dùng tỉ trọng kế độ chính xác 10
00 đo khi chuẩn bị nước và hàng ngày vào lúc 8 giờ và 14 giờ.
2.3.2. Phương pháp thu hoạch và bảo quản tảo
Bước 1: Thu hoạch tảo bằng phương pháp li tâm.
Bước 2: Tảo li tâm được sấy khô và bảo quản trong túi nilon cất giữ để làm nguyên liệu cho thí nghiệm sau.
2.3.3. Phương pháp tạo chế phẩm tảo
Sinh khối tảo sau khi thu hoạch, sấy khô được nghiền thành dạng bột mịn để tạo chế phẩm phục vụ cho nghiên cứu sau này. Chế phẩm bao gồm tảo khô Nanochloropsis oculata và chất phụ gia, được chế biến thành dạng bột mịn, sấy khô và bảo quản trong bao nilon ở nơi thoáng mát.
2.3.4. Phương pháp chế biến thức ăn cho gà
Sử dụng thức ăn nuôi gà là những phế phẩm nông nghiệp như tấm gạo, ngô xay với tỷ lệ 1:1 và kết hợp bổ sung chế phẩm tảo theo tỷ lệ mg tuỳ thuộc vào lô thí nghiệm.
Ở lô 1, lượng chế phẩm tảo bổ sung là 100 mg vào 100g thức ăn (gồm tấm gạo và ngô xay) cho gà.
Ở lô 2, lượng chế phẩm tảo bổ sung là 200 mg vào 100g thức ăn (gồm tấm gạo và ngô xay) cho gà.
Ở lô 3, lượng chế phẩm tảo bổ sung là 300 mg vào 100g thức ăn (gồm tấm gạo và ngô xay) cho gà.
2.3.5. Phương pháp bố trí thí nghiệm nuôi gà
Bố trí nuôi gà trong chuồng ngăn lưới Polyme, kích thước mắt lưới 3 mm được chúng tôi thiết kế thành chuồng nuôi tương ứng với 5 lô thí nghiệm, trong đó 2 lô đối chứng (Đ/C1; Đ/C2) và 3 lô thí nghiệm lần lượt là (Lô 1; Lô 2 và Lô 3). Kích thước mỗi lô là: 1m x 1.2 m x 1.5 m. Mỗi ngăn nuôi đều có máng ăn, máng uống nước, bóng điện sưởi ấm.
Công thức thí nghiệm: Thức ăn tương ứng với 5 lô thí nghiệm cụ thể như sau:
Bảng 2.2. Phương pháp bố trí các thí nghiệm và khẩu phần ăn của gà
Lô TN Khẩu phần ăn
Lô đối chứng 1:
(Đ/C1) Gạo tấm + Ngô xay (không bổ sung chế phẩm tảo) Lô đối chứng 2:
(Đ/C2) Cám công nghiệp (không bổ sung chế phẩm tảo) Lô 1 Tảo Nanochloropsis oculata + tấm gạo và ngô xay
với tỉ lệ 1:1 (100mg chế phẩm tảo/ 100g thức ăn) Lô 2 Tảo Nanochloropsis oculata + tấm gạo và ngô xay
với tỉ lệ 1:1 (200mg chế phẩm tảo/ 100g thức ăn) Lô 3 Tảo Nanochloropsis oculata + tấm gạo và ngô xay
với tỉ lệ 1:1 (300mg chế phẩm tảo/ 100g thức ăn)
2.3.6. Tiến hành nuôi và theo dõi
Gà Ri được chọn nuôi thí nghiệm là gà 4 tuần tuổi và đảm bảo các yêu cầu sau: nhanh nhẹn, mắt sáng, lông mượt, bụng gọn, rốn kín, chân bóng, cứng cáp, mập, trọng lượng gà đạt 180 ÷ 185 g/con. Tránh chọn con khô chân, mỏ dị hình, hở rốn, bụng xệ...
Thả giống: 5 cá thể/ lô.
Hàng ngày theo dõi và cho gà ăn uống đầy đủ 4 lần/ngày. Theo dõi mức ăn của gà, vệ sinh và bệnh tật để đảm bảo gà phát triển bình thường.
Hình 2.1. Sơ đồ chuồng nuôi gà
2.3.7. Phương pháp cân trọng lượng gà
Sử dụng cân điện tử (max 2kg, sai số 1g) để xác định trọng lượng gà. Cân từng con một, định kỳ 14 ngày/lần và cân vào sáng sớm trước khi cho gà ăn.
2.3.8. Phương pháp xác định sinh trưởng tuyệt đối (mức tăng trọng trên ngày) trên ngày)
Xác định tăng trưởng trọng lượng bình quân trong ngày theo công thức. A = (P2 - P1)/ t
Trong đó: A là sinh trưởng tuyệt đối
P2 là trọng lượng cơ thể cân lần sau P1 là trọng lượng cơ thể cân lần trước
t là khoảng thời gian giữa hai lần cân (ngày) [20].
2.3.9. Phương pháp phân tích Protein
Xác định hàm lượng protein tổng số trong thịt gà ở các lô thí nghiệm bằng phương pháp Kjeldahl [15]. Với sự giúp đỡ của Đào Thị Thanh Xuân, Khoa Hoá - Trường Đại học Vinh.
2.3.10. Phương pháp xử lý số liệu
Dùng toán xác suất thống kê, để thống kê số liệu thí nghiệm [11 ]. Trung bình cộng: X = n1 i n i n Xi. 1 ∑ =
X : là trung bình cộng của mẫu; Xi : là giá trị của từng mẫu; n là số lần lặp lại
Chương 3
KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU
3.1. Ảnh hưởng mật độ nuôi ban đầu khác nhau đến sự sinh trưởng và phát triển của tảo Nanochloropsis oculata trong môi trường F/2 phát triển của tảo Nanochloropsis oculata trong môi trường F/2
Việc lựa chọn mật độ tảo nuôi ban đầu phù hợp có ý nghĩa rất quan trọng trong việc lưu giữ, nhân giống, nuôi thu sinh khối vi tảo làm thức ăn tươi sống phục vụ cho ngành nuôi trồng thuỷ hải sản, chăn nuôi cũng như làm thực phẩm chức năng cho con người… Thực tế khi nuôi tảo để thu sinh khối người ta thường chú ý tới mật độ tảo giống thích hợp vừa tiết kiệm được tảo giống mà lại thu được sinh khối cao nhất nhằm cung cấp kịp thời cho nhu cầu chăn nuôi cũng như các mục đích khác.
Sự tăng sinh về mật độ của quần thể tảo khi được nuôi ở các mật độ ban đầu khác nhau trong những thí nghiệm được thể hiện qua bảng 3.1 và hình 3.1.
Bảng 3.1. Ảnh hưởng của các mật độ ban đầu khác nhau tới sự sinh trưởng của tảo Nanochloropsis oculata trong điều kiện phòng thí nghiệm.
Ngày nuôi Mật độ tảo (x 105 tb/ml)
MĐ1 MĐ2 MĐ3 MĐ4 0 20 40 60 80 1 35.7 73.7 116.8 122.4 2 64.9 97.8 139.4 155.9 3 135.3 168.1 218.7 254.1 4 194.8 239.4 284.1 394.5 5 359.6 419.8 432.7 497.6 6 381.5 494.1 461.3 686.3 7 453.2 480.8 534.3 567.7 8 421.8 451.9 512.2 532.5 9 398.7 423.2 454.3 492.5 10 305.6 326.1 395.4 316.9
11 276.4 295.4 320.5 281.2 12 261.3 250.3 298.9 198.7
Hình 3.1. Ảnh hưởng của các mật độ ban đầu khác nhau tới sự sinh trưởng của tảo Nanochloropsis oculata
Qua bảng 3.1 và biểu đồ hình 3.1 chúng tôi thấy trong quá trình thí nghiệm, chu kỳ sinh trưởng của quần thể tảo kéo dài 12 ngày. Từ ngày 1 đến ngày 3 của chu kỳ nuôi ở các mật độ (MĐ1; MĐ2; MĐ3; MĐ4), tảo tăng trưởng chậm. Theo chúng tôi ở giai đoạn này tảo mới được cấy vào môi trường nuôi nên việc chậm phát triển của tảo là do sự thích nghi sinh lý còn yếu, đồng thời là giai đoạn tảo tổng hợp và tích trữ các chất chuẩn bị cho quá trình phát triển sau đó.
Từ ngày thứ 4 đến ngày thứ 6 mật độ tế bào ở mỗi lô thí nghiệm có mật độ tế bào tăng nhanh dần theo thời gian nuôi. Điều này có thể giải thích do số lượng tế bào ban đầu tham gia vào quá trình phân chia tế bào càng nhiều thì số lượng tế bào tạo ra càng lớn.
Mật độ tảo nuôi ban đầu có ảnh hưởng rất lớn đến mật độ cực đại và thời gian đạt mật độ cực đại của tảo. Ở MĐ2, MĐ4 đạt mật độ cực đại lần lượt là: 494,1.105 tb/ml và 686,3.105 tb/ml vào ngày nuôi thứ 6, sau đó mật độ giảm dần và giảm mạnh vào những ngày cuối của chu kỳ nuôi. Còn ở MĐ1, MĐ3 đạt mật độ cực đại lần lượt là 453,2.105 tb/ml và 534,3.105 tb/ml sau 7 ngày nuôi.
Mật độ tảo tăng đến một khoảng nhất định sẽ ngừng và giảm nhanh vào những ngày sau đó. Điều này có thể giải thích do ở pha sinh trưởng tốc độ tăng trưởng của tảo nhanh làm cho môi trường dinh dưỡng cạn kiệt, cũng như số lượng tế bào trong môi trường quá lớn chúng sẽ che khuất ánh sáng của nhau và kìm hãm tảo phát triển, làm cho mật độ tảo giảm nhanh.
Như vậy việc cung cấp mật độ tảo ban đầu cao sẽ rút ngắn thời gian tảo đạt mật độ cực đại. Ở thí nghiệm của chúng tôi, chọn mật độ tảo ban đầu 80.105 tb/ml là tốt nhất.
3.2. Sự sinh trưởng và phát triển của tảo Nanochloropsis oculata khi nuôi ngoài trời ngoài trời
Qua kết quả thí nghiệm về ảnh hưởng của mật độ nuôi ban đầu khác nhau đến sự sinh trưởng, phát triển của tảo, chúng tôi đã lựa chọn được mật độ thích hợp là 80.105 (tb/ml) và độ mặn 300
00để thử nghiệm nuôi thu sinh khối tảo nhằm mục đích thu sinh khối tảo để phục vụ các thí nghiệm sau này.
Thí nghiệm xác định sự sinh trưởng của quần thể tảo Nanochloropsis oculata được bố trí nuôi trong túi nylon 10 lít, đặt ở ngoài trời, có mái che để giảm bớt cường độ ánh sáng và nhiệt độ. Kết quả được thể hiện qua bảng 3.2 và hình 3.2.
Bảng 3.2. Biến động mật độ của tảo Nanochloropsis oculata nuôi ngoài trời.