Sử dụng một số hóa chất để cái thiện hiệu quả ly trích DNA từ lông
Trang 1BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO
TRƯỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM TP.HCM BỘ MÔN CÔNG NGHỆ SINH HỌC
Trang 2BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO
TRƯỜNG ĐẠI HỌC NÔNG LÂM TP.HCM BỘ MÔN CÔNG NGHỆ SINH HỌC
Chuyên ngành: Công nghệ sinh học
Giáo viên hướng dẫn: Sinh viên thực hiện: PGS TS TRẦN THỊ DÂN BÙI THỊ NGỌC BÍCH
KS NGUYỄN VĂN ÚT Khóa: 2002 – 2006
Thành phố Hồ Chí Minh
Trang 3MINISTRY OF EDUCATION AND TRAINING NONG LAM UNIVERSITY, HCMC DEPARTMENT OF BIOTECHNOLOGY
Professor: Student:
Ph D TRAN THI DAN BUI THI NGOC BICH Ba NGUYEN VAN UT Term: 2002 – 2006
HCMC 9/2006
Trang 4LỜI CẢM ƠN
Tôi xin chân thành cảm ơn:
* Ban giám hiệu trường Đại Học Nông Lâm TP Hồ Chí Minh, ban chủ nhiệm Bộ Môn Công Nghệ Sinh Học cùng Quý thầy cô đã tạo điều kiện tốt đẹp cũng như truyền đạt kiến thức trong suốt quá trình học tập tại trường
* Ban giám đốc cùng tập thể cán bộ nhân viên Trung Tâm Phân Tích Thí Nghiệm trường Đại Học Nông Lâm TP Hồ Chí Minh đã tạo điều kiện thuận lợi trong suốt quá trình thực tập tốt nghiệp
* Tập thể cán bộ thú y và các cô chú tại lò mổ tập trung huyện Dĩ An – Bình Dương đã giúp đỡ tôi trong suốt quá trình lấy mẫu
* PGS TS Trần Thị Dân, KS Nguyễn Văn Út đã hướng dẫn tận tình, để tôi hoàn thành tốt đề tài
* Bạn Lương Quý Phương đã giúp tôi lấy mẫu lông để thí nghiệm
* Các anh chị tại Trung tâm Phân Tích Thí nghiệm Trường Đại Học Nông Lâm TP HCM đã tạo mọi điều kiện cơ sở vật chất, kỹ thuật để tôi làm tốt đề tài
* Xin cảm ơn bạn bè ở lớp CNSH 28 đã giúp đỡ tôi và cùng học tập trong suốt 4 năm đại học
Sinh viên thực hiện
Bùi Thị Ngọc Bích
Trang 5TÓM TẮT KHÓA LUẬN
BÙI THỊ NGỌC BÍCH, Đại Học Nông Lâm Tp Hồ Chí Minh, tháng 9/2006, “SỬ DỤNG MỘT SỐ HÓA CHẤT CẢI THIỆN HIỆU QUẢ LY TRÍCH DNA TỪ LÔNG”
Hướng dẫn khoa học:
1 PGS TS Trần Thị Dân 2 KS Nguyễn Văn Út
Đề tài được tiến hành từ ngày 14 – 02 – 2006 đến ngày 30 – 07 – 2006 tại Trung Tâm Phân Tích Thí Nghiệm Trường Đại Học Nông Lâm Tp Hồ Chí Minh
Trong các thí nghiệm sinh học phân tử, người ta thường sử dụng mẫu máu, da, cơ để ly trích DNA Tuy nhiên, nhiều khi ta không thể có những loại mẫu đó, ví dụ trong khoa học hình sự hay khi nghiên cứu về những loài tiệt chủng hay loài quý hiếm Ngoài ra, thu thập mẫu lông dễ dàng hơn thu thập các loại mẫu khác trên thú sống Với mục đích tìm một quy trình tối ưu cho ly trích DNA từ nhiều nguồn lông, đề tài được tiến hành trên lông bò và lông heo Kết quả ly trích được đánh giá dựa vào tỷ số OD của mẫu DNA và hiệu suất thành công của PCR với đoạn mồi phân biệt giới tính và đoạn mồi phát hiện gen halothane
Kết quả đạt được như sau:
1 Dung dịch đệm ly trích chứa proteinase K và Ca2+ ởcác nồng độ 2 mM, 6 mM và 10 mM cho DNA với tỷ số OD đạt khoảng 1,6 – 1,69 Trong đó, sản phẩm PCR từ DNA của gốc lông bò khi ly trích với dung dịch đệm có 10 mM Ca2+
cho 1 băng dài 370 bp của gen giới tính
2 DNA ly trích từ mẫu gốc lông heo và gốc lông bò không có sự khác biệt nhau về tỷ số OD và hàm lượng
3 DNA từ gốc lông bò (tỷ số OD trung bình 1,76) tinh sạch và có hàm lượng cao hơn DNA từ ngọn lông (1,2)
4 DNA ly trích từ dung dịch đệm có DTT (tỷ số OD trung bình 1,84) tinh sạch hơn DNA từ dung dịch đệm không có DTT (1,58)
Trang 65 Nồng độ CTAB trong quá trình ly trích có ảnh hưởng đến độ tinh sạch của DNA Không bổ sung CTAB cho tỷ số OD cao nhất (1,84 ); 0,06% CTAB cho OD = 1,6; 0,2% CTAB cho OD = 1,3
6 Sử dụng BSA cũng không có tác dụng trong việc cải thiện kết quả PCR vì không nhân được đoạn DNA 655 bp của gen giới tính
Nhìn chung, các hoá chất được bổ sung vào quy trình ly trích DNA và hỗn hợp PCR chỉ cho đoạn sản phẩm PCR ngắn (370 bp) mà không có đoạn DNA dài (655 bp) của gen giới tính Đồng thời, các thí nghiệm đều không cho kết quả mong muốn khi PCR phát hiện gen halothane trên 5 mẫu lông heo
Trang 7MỤC LỤC
TRANG Lời cảm ơn 1
Tóm tắt khóa luận iv
PHẦN II TỔNG QUAN TÀI LIỆU 3
2.1 Cấu trúc tổng quan của lông 3
2.2 Cấu trúc của lông bò và lông heo 3
2.3 Cấu trúc của melanin 4
2.4 Cấu tạo của keratin 5
2.5 Những công trình tách chiết DNA từ lông 5
2.6 Nguyên tắc của PCR 7
2.7 Nguyên tắc xác định gen giới tính và gen halothane 9
2.7.1 Nguyên tắc xác định gen giới tính 9
2.7.2 Nguyên tắc xác định gen halothane 9
PHẦN III NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 11
3.1 Nội dung nghiên cứu 11
3.2 Địa điểm và thời gian tiến hành 11
Trang 83.2.2.2 Đoạn mồi của gen halothane 12
3.4.5 Điện di và quan sát kết quả 17
3.4.5.1 Chuẩn bị gel agarose 17
3.4.5.2 Kết quả điện di PCR 17
3.5 Xử lý số liệu 17
PHẦN IV KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 18
4.1 Thí nghiệm 1: Khảo sát nồng độ Ca2+ trong dung dịch đệm ly trích DNA 18
4.2 Thí nghiệm 2: So sánh DNA ly trích từ gốc và ngọn lông bò 19
4.3 Thí nghiệm 3: So sánh DNA ly trích từ lông heo và lông bò 20
4.4 Thí nghiệm 4: Khảo sát tác dụng của DTT trong việc phân cắt keratin khi ly trích DNA 21
4.5 Thí nghiệm 5: Khảo sát tác dụng của CTAB trong việc loại bỏ melanin 23
4.6 Thí nghiệm 6: Sử dụng BSA trong phản ứng PCR 23
Trang 9DANH SÁCH CÁC CHỮ VIẾT TẮT
bp base pair ctv cộng tác viên
DNA deoxyribonucleic acid NST nhiễm sắc thể
OD optical density DTT Dithiothreitol
CTAB Cetyltrimetylamonium bromide BSA bovine serum albumine
PCR polymerase chain reaction
Taq thermus aquaticus
Tỷ số OD tỷ số OD260 nm /OD280 nmUI unit
UV ultra violet W wave
Trang 10Bảng 3.5 Chu kỳ nhiệt trong PCR xác định gen halothane 17
Bảng 4.1 Tỷ số OD và hàm lượng DNA thu hồi tương ứng với các nồng độ Ca2+ 18
Bảng 4.2a Tỷ số OD và hàm lượng DNA thu hồi từ 2 vị trí lông bò 19
Bảng 4.2b Kết quả PCR từ 2 vị trí lông bò 19
Bảng 4.3 Tỷ số OD và hàm lượng DNA thu hồi từ 2 nguồn lông 21
Bảng 4.4 Tỷ số OD và hàm lượng DNA thu hồi từ việc sử dụng DTT 22
Bảng 4.5 Tỷ số OD và hàm lượng DNA thu hồi từ 3 mức CTAB 23
Bảng 4.6 Kết quả PCR tương ứng với nồng độ BSA được bổ sung 24
Trang 11DANH SÁCH CÁC HÌNH VÀ BIỂU ĐỒ
TRANG
Hình 2.1 Chu kỳ đầu tiên trong PCR 7
Hình 2.2 Chu kỳ thứ hai trong phản ứng PCR 8
Hình 4.1 Kết quả PCR từ mẫu có 10 mM Ca2+ 19
Hình 4.2 Kết quả PCR từ ngọn lông và gốc lông bò 20
Hình 4.3 Kết quả PCR với DNA từ gốc lông heo và gốc lông bò 21
Hình 4.4 Kết quả PCR từ mẫu có DTT và không DTT 22
Hình 4.6 Kết quả PCR từ mẫu sử dụng và không sử dụng BSA 24
Biểu đồ 4.1 Tỷ số OD và hàm lượng DNA ly trích tương ứng với các nồng độ Ca2+ 18
Biểu đồ 4.2 Tỷ số OD của DNA ly trích từ gốc lông và ngọn lông bò 19
Biểu đồ 4.3 Tỷ số OD của DNA ly trích từ mẫu gốc lông heo và lông bò 21
Biểu đồ 4.4 So sánh DNA ly trích bởi dung dịch đệm có DTT và không có DTT 22
Biểu đồ 4.5 Tỷ số OD của DNA ly trích bởi dung dịch đệm có và không có CTAB 23
Trang 12Sự phát triển của những phương pháp tinh sạch DNA hiệu quả từ nhiều nguồn mẫu khác nhau là mối quan tâm đối với những phòng thí nghiệm mô hình mẫu Công việc này đang là thử thách đối với những vật liệu chứa một hàm lượng lớn polysaccharide hay những chất thứ cấp như polyphenol, terpene, resin…
Tách chiết DNA từ máu, thịt rõ ràng không phức tạp và dễ thành công Các mẫu này thường được dùng cho hầu hết các nghiên cứu Tuy nhiên, các nguồn mẫu khác như lông, da, xương… cũng cần được quan tâm Loại mẫu này thường chứa lượng DNA ít, nhiều protein và chất hữu cơ nên việc ly trích trở nên khó khăn khi muốn tinh sạch và có đủ lượng DNA cho bất kỳ phân tích nào
Lông có thể là nguồn DNA cho những nghiên cứu không ảnh hưởng đến cơ thể sống Tuy nhiên, lông chứa một lượng rất nhỏ DNA, do đó tìm ra một phương pháp để tách chiết DNA từ lông là hết sức quan trọng Vấn đề quan tâm nhất hiện nay đối với mẫu lông là lượng nhỏ DNA, chứa nhiều protein ức chế và quy trình tách chiết không đặc hiệu Do đó hoàn thiện quy trình tách chiết DNA từ lông cho những thí nghiệm xa hơn là cần thiết Từ việc thử nghiệm những quy trình ly trích, một bộ kit có thể được tạo sẽ giúp việc tách chiết được thực hiện nhanh, và có thể được thương mại hóa vì vấn đề này vẫn còn đang bỏ ngỏ
1.2 Mục tiêu và yêu cầu 1.2.1 Mục tiêu
Đánh giá ảnh hưởng của một số hóa chất trong quy trình tách chiết DNA từ
lông, trên cơ sở hoàn thiện quy trình ly trích và tạo bộ kit ly trích lông sau này
Trang 143
PHẦN II TỔNG QUAN TÀI LIỆU
2.1 Cấu trúc tổng quát của lông
Theo Hairhandout (2005), lông có 3 vùng hình thái học: lớp cutin, vỏ, lõi - Lớp cutin: là 1 lớp mờ bên ngoài của thân lông chứa những vảy bao lấy thân Có 3 cấu trúc vảy cơ bản tạo lên lớp cutin – vòng hoa, cánh hoa, mái ngói
- Lớp vỏ: là thân chính của lông chứa những tế bào thon dài và mảnh Nó chứa cortical fusi, hạt sắc tố, và / hoặc những cấu trúc có hình dạng từ bầu dục đến hình tròn lớn gọi là thân hình trứng
- Lõi: là trung tâm của những tế bào có thể hiện diện trong lông
Thành phần cơ bản của lông là keratin (1 loại protein), melanin (1 loại sắc tố), và 1 lượng rất nhỏ nguyên tố kim loại
2.2 Cấu trúc của lông bò và lông heo
Theo Wagner và ctv (1996), lông không chỉ bao gồm thân lông chết nhìn thấy bên ngoài da mà còn bao gồm phần gốc đang phát triển trong da Phần gốc nằm trong da được bao quanh bởi bao gốc lông, để lộ ra cấu trúc phức tạp và khác nhau Cấu trúc này thường được tìm thấy trong tất cả động vật có vú
Tại phần đế của lông có hình dạng như chuông (hành lông), bao quanh là một nhú da nhỏ, hình dạng này phụ thuộc vào lớp biểu bì hình ngói của da Chức năng của hành lông là dinh dưỡng cho những tế bào đang phát triển của lông Những tế bào gần nhú lông không khác nhau và là vùng tái sinh của lông, bao gồm cả bao gốc Phụ thuộc vào vị trí của chúng trong hành lông, những tế bào được tạo ra sau trong vùng này khác nhau về những loại tế bào mà nó sẽ tạo ra lông và mô xung quanh nó Mô này chứa năm lớp đồng tâm khác nhau, ba lớp trong cùng hợp thành bao gốc trong cùng (inner root sheath – IRS) Tiếp xúc trực tiếp với lớp cutin của lông là cutin của IRS (IRS – cutin), tiếp theo là hai lớp, lớp Huxley và lớp Henle Lớp kèm (companion layer – CL) là lớp tiếp theo bên trong bao gốc Lớp này cũng được gọi là lớp trong cùng của bao gốc bên ngoài (outer root sheath – ORS) hay bao gốc giữa Lớp ngoài cùng của bao gốc là ORS, bao quanh bởi những lớp khác nhau và lông Lớp ORS
Trang 154 không chỉ nằm trong phần nhú da của gốc lông, mà còn trong phần thân lông, thay đổi bên trong lớp biểu bì tại điểm kết thúc của nó
Những lớp của bao gốc
IRS chứa ba lớp tế bào khác nhau Lớp trong cùng của nó là cutin (IRS – cutin), những tế bào của nó là những tế bào nhỏ nhất của lông với bề dày dưới 1 mm Chúng có hình dạng và cách xếp lớp giống vảy cá Lớp cutin được theo sau bởi hai lớp tế bào đơn từ những tế bào có cấu trúc tương tự: lớp Huxley bên trong và Henle bên ngoài Những lớp này chứa những tế bào có hình dạng thon dài và hình ngọn giáo bao quanh bề mặt nhẵn của lớp cutin – IRS
Ba lớp IRS có sự keratin hóa xảy ra tại những thời điểm khác nhau Tiến trình này chịu trách nhiệm cho cấu trúc cứng giống da của ba lớp tế bào này Ý nghĩa sinh lý học của tiến trình này chưa được biết Lớp đầu tiên bị keratin hóa là lớp Henle Lớp tiếp theo là lớp cutin – IRS Lớp Huxley giữa hai lớp này vẫn là cấu trúc sợi nhỏ của mô ngắn, không bị keratin hóa
Lớp CL bao quanh IRS Nó có thể được thấy trong phần chiều dài gần lớp Henle như là một lớp sáng hơn, mỏng hơn Nó gồm một lớp những tế bào hình chữ nhật, dát mỏng
ORS là lớp ngoài cùng của gốc lông Nó tiếp xúc trực tiếp với CL và xung
quanh chứa những tế bào hình khối 2.3 Cấu trúc của melanin
Trong nghiên cứu của Rees (2003) tế bào melanin tạo những hạt melanin chứa một enzyme gọi là tyrosinase Enzyme này chứa Cu, tổng hợp sự chuyển đổi oxy hóa của DOPA (tyrosine) thành một sắc tố gọi là melanin
Tế bào melanin có nguồn gốc từ những tế bào thần kinh di chuyển vào biểu bì trong tháng thứ 3 đầu tiên Việc tạo melanin đi cùng với việc tạo 1 vài chất trung gian độc và xảy ra chủ yếu trong hạt giống như lysosome (hạt melanin) Hạt melanin được tiết ra trong những tế bào keratin qua cơ chế được mô tả khá ít Cơ chế hóa học của melanin là phức tạp và chưa được hiểu nhiều do những đặc điểm của nó là 1 phức hợp của nhiều polymer, những chất trung gian tự oxy hoá nhanh chóng và không ổn định, phương pháp hòa tan melanin làm thay đổi cấu trúc cơ bản của nó
Sự tạo màu lông và màu biểu bì có cơ chế tương tự nhau Trong nang lông, sắc tố được chuyển từ tế bào melanin sang tế bào keratin kề bên; trong lông, sắc tố
Trang 165 được thêm vào trong những tế bào keratin đang phát triển mà nó sẽ tạo thành thân lông Trong da tế bào melanin được tìm thấy trong ngăn biểu bì gần màng đế Hạt melanin được chuyển vào tế bào keratin thường tạo mũ trên nhân, bảo vệ vật liệu di truyền khỏi tia UV Màu của lông là do tế bào melanin trong hành lông chuyển melanin vào những tế bào kerarin khi lông kéo dài ra, và sau đó hóa sừng
Melanin thường được mô tả trong hai lớp chính: eumelanin màu nâu hay đen và pheomelanin (do bởi sự hợp thành của cysteine) màu vàng hay đỏ Sự phân loại hay thể hiện tình trạng sắc tố liên quan đến hai yếu tố: số lượng melanin được tạo ra và số lượng liên quan của eumelanin hay pheomelanin Việc thiếu 1 hay cả hai loại melanin liên quan đến tóc trắng Eumelanin chiếm ưu thế thì cho lông nâu hay đen và pheomelanin chiếm ưu thế thì cho lông vàng hay đỏ
Cuối cùng, màu lông không chỉ đơn thuần là kết quả của thành phần hoá học của nhiều polymer melanin Sự phân tán ánh sáng cũng ảnh hưởng tới màu lông
2.4 Cấu tạo của keratin
Theo Eggling (2001, 2003), keratin thuộc nhóm protein cấu trúc, là những protein dạng sợi Keratin hình thành màng bảo vệ cho toàn bộ động vật có xương sống: da, lông, tóc, vuốt, móng, sừng, vảy, mỏ Đơn vị cơ bản của lông là một sợi protein dài hình thành trong cấu trúc alpha xoắn ốc bậc hai Ba trong số những protein xoắn alpha xoắn quanh một cái khác hình thành nên cấu trúc gọi là tiền fibrin Trong vòng xoắn, một sợi fibrin được tạo từ bảy tiền fibrin và được sắp xếp theo một kiểu gồm chín tiền fibrin xoắn xung quanh hai tiền fibrin Sau đó hàng trăm sợi fibrin gắn vào một loại protein dạng keo để hình thành sợi fibrin lớn Những sợi fibrin lớn này sẽ được gắn vào trong thân của tế bào lông chết Đường kính một sợi lông điển hình có khoảng 10 tế bào lông
Những sợi protein trong lông và những keratin alpha khác liên kết chéo trong một mức độ bởi những cầu nối 2 hóa trị giữa những phần cystein để hình thành những cầu nối disulfide Càng nhiều cầu nối disulfide giữa các sợi thì protein càng cứng Keratin alpha có thể phân loại thành mềm hay cứng phụ thuộc vào thành phần chứa sulfur của nó (số lượng cystein trong sợi polypeptide) Keratin ít sulfur của da thì mềm dẻo hơn keratin nhiều sulfur của móng, sừng, vuốt
Trang 176 Thông thường những công trình nghiên cứu sử dụng mẫu lông để thao tác thường liên quan đến những loài động vật quý hiếm, sắp tiệt chủng hay tìm nạn nhân trong các vụ mất tích
* Schnabel và ctv (2000) sử dụng mẫu máu và nang lông trong thí nghiệm mô tả đặc điểm, tiêu chuẩn hoá, và cung cấp tính hợp lệ cho một tập hợp microsatellite đa hình cao dùng cho việc kiểm tra nguồn gốc tổ tiên của bò bizon Bắc Mỹ và gia súc * James và ctv (2004) đã sử dụng mẫu máu, cơ, lông trong thí nghiệm ước định mức độ biến đổi di truyền và sự khác nhau về quần thể trong những quần thể bị giam cầm của loài động vật hữu nhũ lớn đang bị đe dọa, heo vòi Baird (Tapirus bairdii)
* Maxime Galan và ctv thuộc Viện nghiên cứu Nông Nghiệp Pháp (2003) phân biệt những loài hươu bằng DNA ly trích từ lông và phương pháp PCR
- Hươu đỏ và con hoẵng là hai trong số những động vật móng guốc ở Châu Âu Chúng đều phân bố trên một khu vực địa lý rộng lớn Không có kỹ thuật đáng tin cậy nào cho phép phân biệt chúng dựa vào nghiên cứu mẫu lông hay mẫu phân do chúng phân bố chồng chéo nhau Các nhà khoa học đã giới thiệu một phương pháp kiểm tra để phân biệt những mẫu lông của nai đỏ và hoẵng bằng sử dụng phương pháp PCR
- Mẫu lông được lấy ở mông Nhú lông được cắt khoảng 2 mm tính từ điểm gốc của lông Họ sử dụng đồng thời hai tiến trình ly trích, Dneasy Tissue Kit dùng cho ly trích DNA từ móng và lông của QIAamp và phương pháp dựa trên Chelex -100 của Biorad
- Trong giai đoạn kiểm tra sơ bộ, họ ly trích DNA từ những mẫu lông tươi từ những con vật đã biết về loài Họ so sánh mật độ khuếch đại bằng sử dụng mẫu da và thấy rằng sản phẩm cũng tốt như đối với mẫu lông được ủ (2 – 3 năm) Mật độ của sản phẩm PCR từ mẫu lông tươi thì nhiều hơn so với mẫu lông được ủ DNA cũng có chất lượng kém hơn vì thế mẫu không được khuếch đại
- Trong thí nghiệm thứ hai, người ta thực hiện để đánh giá độ lặp lại của việc khuếch đại DNA của một mẫu khi sử dụng mẫu lông được ủ Họ ly trích và khuếch đại DNA 2 lần từ 15 mẫu lông của từng cá thể của những loài chưa biết Đọc trên gel được 5 mẫu trong 15 mẫu trong lần chạy PCR đầu tiên (33,3% thành công) và 8 trong 15 lần trong lần chạy PCR thứ 2 Bốn mẫu không ra trong lần thứ 1 đã ra trong lần thứ 2, trong khi 1 mẫu ra trong lần thứ 2 đã không ra trong lần thứ 1 Đối với
Trang 187 những mẫu đã cho kết quả trong cả 2 lần chạy, theo dõi mẫu có băng giống nhau và thấy rằng độ lặp lại đạt 100% trong việc xác định loài
- Các nhà khoa học nhận thấy tỷ lệ khuếch đại thành công khá thấp chắc chắn liên quan đến điều kiện ủ trong tube làm cho DNA thêm biến tính, cùng với số lượng nhỏ lông của từng cá thể có khả năng dùng làm mẫu Ngoài ra, DNA ty thể rất dễ bị biến tính với DNAse vì kích thước nhỏ của nó và nó nằm ngoài nhân Có thể những mẫu được ủ trong những điều kiện thích hợp, cụ thể trong chai khô và không bịt kín (ví dụ đậy bằng giấy), và việc thu một số lượng lớn mẫu lông từ từng con có thể làm tăng tỷ lệ thành công của việc khuếch đại Và nồng độ DNA thấp có khả năng do đã không lấy được DNA ty thể khi dùng pippet hút dung dịch trong từ tube phản ứng
2.6 Nguyên tắc của PCR
Theo Gerard Morel và ctv (1998), phương pháp PCR sử dụng những trình tự DNA ngắn như đoạn mồi (oligonucleotides), một enzyme tái tạo DNA, một DNA
polymerase chịu nhiệt (ví dụ Taq polymerase) (Sake và ctv, 1985; Haase và ctv, 1990),
và tri–photphat deoxyribonucleotides (dNTPs): dATP, dGTP, dTTP, dCTP Sau bước tách hai mạch của trình tự đích (thông thường do gia nhiệt ở 95oCtrong 5 phút), đoạn mồi bắt cặp hay lai với trình tự đích trong bước thứ hai
Trang 198
Hình 2.2 Chu kỳ thứ hai trong phản ứng PCR (Nguồn Dale và ctv, 2002)
Nhiệt độ bắt cặp này được xác định bởi nhiệt độ nóng chảy (Tm) và trình tự đoạn mồi sử dụng (thông thường khoảng giữa 37oC và 60oC) Bước này được theo sau bởi sự kéo dài của đoạn mồi theo hướng 5' đến 3' bằng cách thêm triphotphat deoxyribonucleotide vào nhóm 3'OH cuối của đoạn mồi bởi DNA polymerase Mỗi base được thêm vào bổ sung với base của sợi DNA mẫu Sự kéo dài được thực hiện trên hai sợi DNA khoảng thời gian từ 65 đến 75 giây Sự biến tính, bắt cặp (hay lai) và kéo dài được lặp lại 20 đến 30 lần để khuếch đại đoạn DNA đích theo cấp số nhân Trong pha lỏng của phản ứng PCR, với DNA sợi đôi, số bản copy tại điểm kết thúc của phản ứng theo lý thuyết là 2n (n, số chu kỳ), nhưng phản ứng không bao giờ đạt tối ưu nhất và sản phẩm thường chỉ đạt khoảng 70%
* Những thành phần tham gia vào phản ứng PCR (Lê thị Thu Phương, 2004)
- Taq polymerase xúc tác tổng hợp DNA theo chiều 5' – 3' trong suốt quá
trình phản ứng dưới sự hiện diện của Mg2+
Trang 209 - Đoạn mồi là những đoạn oligonucleotide, có trình tự bổ sung với trình tự base của hai đầu mạch khuôn để khởi đầu quá trình tổng hợp DNA
- dNTPs làm thành nguyên liệu cho phản ứng DNA
- Dung dịch đệm: quan trọng nhất là ion Mg2+ Mg2+ rất cần cho quá trình
liên kết các dNTPs, xúc tác cho enzyme Taq polymerase, làm tăng nhiệt độ nóng chảy
của DNA mạch kép Dung dịch đệm tiêu chuẩn chứa 50 mM KCl và khuếch đại tốt những đoạn DNA > 500 bp
- Mẫu DNA làm khuôn mẫu trong phản ứng * Nguyên tắc của multiplex
- Theo Sambrook và ctv (2001), multiplex PCR là một thuật ngữ được sử dụng khi có nhiều hơn một cặp đoạn mồi được dùng trong PCR Mục đích của multiplex PCR là khuếch đại nhiều đoạn trong DNA đích cùng một lúc và do đó bảo tồn DNA mẫu, tiết kiệm thời gian, giảm phí tổn Số lượng của mỗi phản ứng khuếch đại được giảm tương ứng với số lượng của đoạn mồi được sử dụng trong phản ứng - Multiplex PCR rất khó để thiết lập Cần phải chú ý để bảo đảm tất cả đoạn mồi trong phản ứng có nhiệt độ nóng chảy tương đương, để những đoạn mồi không phản ứng với nhau, những sản phẩm khuếch đại có kích thước gần nhau nhưng có thể phân biệt với nhau trên gel
2.7 Nguyên tắc xác định giới tính và gen halothane 2.7.1 Nguyên tắc xác định giới tính
Theo trích dẫn từ Nguyễn Văn Út (2005), Schorder và ctv (1990) cho rằng việc sử dụng đoạn mồi chuyên biệt nhiễm sắc thể (NST) Y trong phản ứng PCR giúp khuếch đại trình tự DNA chuyên biệt đực Sự hiện diện hay vắng mặt của sản phẩm PCR cho phép xác định giới tính
Thông thường, kèm với sự khuếch đại trình tự chuyên biệt NST Y, người ta nhân bản đồng thời một trình tự trên NST sinh dưỡng (Chen và ctv, 2004) hoặc một trình tự trên NST X (Alves và ctv, 2003) để làm yếu tố kiểm soát sự hiện diện của vật liệu và các điều kiện phù hợp cho phản ứng nhân bản
2.7.2 Nguyên tắc xác định gen halothane
Gen halothane có hai alen N và n hình thành 3 kiểu gen NN, Nn và nn Bằng