ẢNH HƯỞNG CỦA MÔI TRƯỜNG NUÔI VÀ TỶ LỆ THU HOẠCH LÊN SỰ PHÁT TRIỂN CỦA TẢO

Mục tiêu đề tài Tìm hiểu ảnh hưởng của từng môi trường nuôi, tỷ lệ thu hoạch lên sự phát triển của tảo Thalassiosira sp., nhằm tìm ra môi trường dinh dưỡng và mật độ tối ưu nhất cho tả

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ

KHOA THỦY SẢN

TRẦN THỊ KIM NGÂN

ẢNH HƯỞNG CỦA MÔI TRƯỜNG NUÔI VÀ TỶ LỆ THU

HOẠCH LÊN SỰ PHÁT TRIỂN CỦA TẢO

Thalassiosira sp

LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP NGÀNH NUÔI TRỒNG THỦY SẢN CHUYÊN NGÀNH QUẢN LÝ THỦY SẢN

2012

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ

KHOA THỦY SẢN

TRẦN THỊ KIM NGÂN

ẢNH HƯỞNG CỦA MÔI TRƯỜNG NUÔI VÀ TỶ LỆ THU

HOẠCH LÊN SỰ PHÁT TRIỂN CỦA TẢO

Thalassiosira sp

LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP NGÀNH NUÔI TRỒNG THỦY SẢN CHUYÊN NGÀNH QUẢN LÝ THỦY SẢN

Cán bộ hướng dẫn

TS Trần Sương Ngọc

2012

TÓM TẮT

Đề tài nghiên cứu được thực hiện nhằm tìm ra môi trường dinh dưỡng và

mật độ tối ưu nhất cho tảo Thalassiosira sp phát triển góp phần làm tăng hiệu

quả của hệ thống nuôi tảo Đề tài được thực hiện với hai thí nghiệm: Thí nghiệm

1 ảnh hưởng của 6 môi trường dinh dưỡng Walne; Ukeles; Ben-Amozt; Guillard

f/2; Algal-l; phân N:P:K lên sự phát triển của tảo Thalassiosira sp Thí nghiệm 2 nhằm tìm ra tỷ lệ thu hoạch tốt nhất lên sự phát triển tảo Thalassiosira sp vởi

điều kiện nuôi ở độ mặn 25ppt, ánh sáng phía trước bình tam giác 2700-3400 lux, mật độ cấy ban đầu 3x105 tb/ml Kết quả cho thấy cả 6 môi trường đều có thể sử

dụng để nuôi cấy tảo Thalassiosira sp., tuy nhiên nuôi tảo ở môi trường Guillard

f/2 cho mật độ tảo cao nhất, sau 6 ngày nuôi mật độ đạt 1,99 ± 0,18 triệu tb/ml

Với 4 tỷ lệ thu hoạch (20%, 30%, 40%, 50%) thì nghiệm thức thu hoạch 50% với tốc độ tăng trưởng (0,69) và sản lượng thu hoạch cao nhất (77,8 tỷ tế bào) so với các nghiệm thức còn lại

LỜI CẢM TẠ

Trong khoảng thời gian thực hiện đề tài em đã nhận được rất nhiều sự động viên chia sẽ và giúp đỡ từ gia đình, thầy cô và bạn bè để có thể hoàn thành tốt đề tài dù gặp nhiều khó khăn

Em xin chân thành bày tỏ lòng biết ơn chân thành đến cô Trần Sương

Ngọc, cô Trần Thị Thanh Hiền đã tận tình hướng dẫn, luôn quan tâm và động

viên em tạo mọi điều kiện để em có thể thực hiện tốt đề tài

Ngoài ra, em cũng chân thành cảm ơn thầy Nguyễn Văn Thường, cố vấn

lớp Quản lý K35 trong suốt 4 năm qua đã hướng dẫn em trong suốt quá trình học tập

Cuối cùng em cũng gửi lời cảm ơn đến quý thầy cô cán bộ khoa Thủy sản,

chị Đàm Thùy Nga lớp NTTS K34, tập thể lớp Quản lý K35 và các bạn trong

phòng thí nghiệm tảo suốt thời gian qua đã giúp đỡ em những lúc em khó khăn nhất

Em xin chân thành cảm ơn!!!

MỤC LỤC

TÓM TẮT i

LỜI CẢM TẠ ii

MỤC LỤC iii

DANH SÁCH HÌNH vi

DANH SÁCH BẢNG vii

VIẾT TẮT viii

Chương I GIỚI THIỆU 1

1.1 Mục tiêu đề tài 2

1.2 Nội dung đề tài 2

Chương II 3

LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU 3

2.1 Đặc điểm sinh học của tảo Thalassiosira sp 3

2.1.1 Đặc điểm phân loại Thalassiosira sp 3

2.1.2 Hình thái - cấu tạo 3

2.1.3 Sinh sản 3

2.4.1 Phân bố 4

2.2 Các yếu tố ảnh hưởng đến sự phát triển của tảo 4

2.2.1 Ánh sáng 4

2.2.2 Nhiệt độ 6

2.2.3 Độ mặn 6

2.2.4 pH 7

2.2.5 Sục khí 7

2.2.6 Dinh dưỡng 8

2.2.7 Mật độ cấy ban đầu 9

2.3 Sự phát triển của quần thể tảo 10

2.3.1 Giai đoạn đầu 10

2.3.2 Giai đoạn tăng trưởng nhanh 10

2.3.3 Giai đoạn tăng trưởng chậm 10

2.3.4 Giai đoạn ổn định 11

2.3.5 Giai đoạn suy tàn 11

2.4 Thành phần sinh hóa của tảo 11

2.4.1 Protein 12

2.4.2 Lipid và thành phần acid béo 12

2.4.3 Cacbohydrate 13

2.4.4 Vitamin và khoáng chất 13

2.5 Các hình thức nuôi tảo 14

2.5.1 Nuôi thu hoạch toàn bộ (Batch culture) 14

2.5.2 Nuôi liên tục (Continuous culture) 14

2.6 Các nghiên cứu về nuôi tảo Thalassiosira sp 15

2.7 Các ứng dụng của tảo Thalassiosira sp 16

Chương III 18

VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 18

3.1 Địa điểm 18

3.2 Vật liệu nghiên cứu 18

3.3 Bố trí thí nghiệm 19

3.3.1 Thí nghiệm 1 19

3.3.2 Thí nghiệm 2 21

3.4 Các yếu tố theo dõi 21

3.5 Xử lý số liệu 22

CHƯƠNG IV 23

KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 23

4.1 Ảnh hưởng của môi trường dinh dưỡng lên sự phát triển của tảo Thalassiosira sp 23

4.1.1 Nhiệt độ 23

4.1.2 pH 23

4.1.3 TAN 24

4.1.4 Nitrate (NO3-) 25

4.1.5 Sự phát triển của tảo 26

4.2 Thí nghiệm 2: Ảnh hưởng của tỉ lệ thu hoạch lên sự phát triển của tảo Thalassiosira sp 29

4.2.1 Môi trường dinh dưỡng 29

4.2.2 Nhiệt độ 29

4.2.3 pH 29

4.2.4 TAN 30

4.2.5 Nitrate (NO3-) 31

4.2.6 Sự phát triển của tảo 32

CHƯƠNG V 38

KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 38

5.1 Kết luận 38

5.2 Đề xuất 38

TÀI LIỆU THAM KHẢO 39

DANH SÁCH HÌNH

Hình 2.1: Các pha phát triển của tảo nuôi 11

Hình 4.1 Biến động TAN các nghiêm thức ở thí nghiệm 1 24 Hình 4.2 Biến động NO-

3 các nghiệm thức trong thí nghiệm 1 26 Hình 4.3 Biến động mật độ tảo giữa các nghiệm thức trong thí nghiệm 1 27 Hình 4.4 Biến động TAN các nghiêm thức ở thí nghiệm 2 31 Hình 4.5 Biến động NO-

3 các nghiêm thức ở thí nghiệm 2 32 Hình 4.6 Biến động mật độ tảo giữa các nghiệm thức trong thí nghiệm 2 33 Hình 4.7 Biến động tốc độ tăng trưởng của tảo trong 36

DANH SÁCH BẢNG

Bảng 3.1 Thành phần dinh dưỡng của các môi trường 20

Bảng 4.1 pH trung bình của các nghiệm thức trong thí nghiệm 1 23

Bảng 4.2 Hàm lượng TAN (mg/l) trung bình các nghiệm thức trong thí nghiệm 1 25

Bảng 4.3 Hàm lượng nitrate trung bình (mg/l) các nghiệm thức trong TN1 23

Bảng4.4 Mật độ tảo trung bình giữa các nghiệm thức trong TN 1 (triệutb/ml) 28

Bảng 4.5Tốc độ tăng trưởng của các nghiệm thức trong thí nghiệm 1 29

Bảng 4.6 pH trung bình các nghiệm thức trong thí nghiệm 2 30

Bảng 4.7 Hàm lượng TAN (mg/l) trung bình các nghiệm thức trong TN1 30

Bảng 4.8 Hàm lượng nitrate trung bình (mg/l) các nghiệm thức trong TN2 31

Bảng 4.9 Mật độ tảo trung bình giữa các nghiệm thức trong TN2 34

Bảng 4.10 Tốc độ tăng trưởng giữa các nghiêm thức trong thí nghiệm 2 35

Bảng 4.11 Sản lượng tảo ở các mức thu hoạch khác nhau 36

NT 0%: Nghiệm thức không thu hoạch

NT 20%: Thu hoạch ở tỷ lệ 20%/ngày

NT 30%: Thu hoạch ở tỷ lệ 30%/ngày

NT 40%: Thu hoạch ở tỷ lệ 40%/ngày

NT 50%: Thu hoạch ở tỷ lệ 50%/ngày

Chương I GIỚI THIỆU

Vi tảo là nguồn thức ăn quan trọng để nuôi luân trùng, ấu trùng của các loài thủy sản Trong môi trường nuôi thủy, hải sản tảo vừa là nguồn thức ăn, vừa

có vai trò điều hòa khí hòa tan, cân bằng độ đục cần thiết và ổn định pH môi trường Tuy nhiên mỗi loài vi tảo có vai trò nhất định và riêng biệt đối với mỗi loài thủy sản nuôi trồng Có loài vi tảo có lợi nhưng cũng có loài tảo mang độc tố cho vật nuôi Các loài tảo quan trọng được nghiên cứu nhiều trong những năm qua thuộc nhóm tảo lam, tảo lục, tảo silic… Theo Nguyễn Văn Tuyên (2002), hằng năm, sản phẩm của quang hợp tạo ra khoảng 200 tỷ tấn chất hữu cơ, trong

đó 170 – 180 tỷ tấn được tạo ra do tảo

Ở Việt Nam, phong trào nuôi tôm đang bị suy giảm mạnh do tình hình dịch bệnh, ô nhiễm môi trường ngày càng bùng nổ Để nghề này phát triển bền vững trong tương lai, một trong những điều cần phải làm đó là tạo ra nguồn giống

có sức sống cao, chất lượng tốt Muốn vậy chúng ta phải tập trung vào khâu sản xuất giống Hiện nay, một trong những khó khăn mà bất kỳ trại sản xuất giống nào cũng mắc phải đó là vấn đề về nguồn thức ăn tươi sống, trong đó có vi tảo

Do không cung cấp tảo kịp thời cả về lượng và chất cho ấu trùng, trong khi lượng

ấu trùng lại rất nhiều, đặc biệt là ấu trùng giai đoạn xuống đáy nên đã gây ảnh hưởng lớn đến số lượng cũng như chất lượng ấu trùng được sản xuất ra

Để đa dạng giống loài vi tảo làm thức ăn cho ấu trùng các đối tượng nuôi trồng thủy sản, ngoài việc phân lập được những loài vi tảo bản địa chúng ta còn nhập những loài vi tảo ở nước ngoài về Vì đây chính là những đối tượng đã được

sử dụng phổ biến và đem lại nhiều thành công cho việc sản xuất giống thuỷ sản trên thế giới Từ năm 1940, người Nhật đã đề ra hai phương pháp nuôi tảo silic

Tiến sĩ Fujinaga cho rằng tảo Skeletonema costatum và Chaetoceros sp là thức

ăn quan trọng khởi đầu cho ấu trùng tôm từ giai đoạn Zoea đến giai đoạn

Postlavae Bên cạnh đó, cũng phải nói đến tảo Thalassiosira sp

Thalassiosira sp là một trong những loài tảo khuê sống trôi nổi được

nhập nội, rất giàu dinh dưỡng, đặc biệt là các axit béo không no, cacbohydrat,

protein…hàm lượng DHA + EPA đạt 7,2 mg/ml (Brown al et.,1989), cộng với

kích thước siêu vi của nó nên rất phù hợp với các trại sản xuất cá biển (làm thức

ăn cho copepoda), các trại sản xuất nhuyễn thể (trong giai đoạn nhuyễn thể có kích thước 200 µm trở lên) và các trại sản xuất tôm giống từ giai đoạn mysis đến giai đoạn postlarvae Nó làm tăng tỷ lệ sống và khả năng tăng trưởng của các đối tượng trên Xuất phát từ những tồn tại và nhu cầu nói trên, việc tìm ra một môi

trường nuôi thích hợp và một tỷ lệ thu hoạch hợp lý để giảm giá thành sản xuất và

đảm bảo đáp ứng đủ nhu cầu trong nuôi trồng thủy sản thì đề tài nghiên cứu “Ảnh

hưởng của môi trường nuôi và tỷ lệ thu hoạch lên sự phát triển của tảo

Thalassiosira sp.” đã được thực hiện

1.1 Mục tiêu đề tài

Tìm hiểu ảnh hưởng của từng môi trường nuôi, tỷ lệ thu hoạch lên sự

phát triển của tảo Thalassiosira sp., nhằm tìm ra môi trường dinh dưỡng và mật

độ tối ưu nhất cho tảo phát triển góp phần làm tăng hiệu quả của hệ thống nuôi tảo

1.2 Nội dung đề tài

Ảnh hưởng của môi trường dinh dưỡng lên sự phát triển của tảo Thalassiosira sp Ảnh hưởng của tỷ lệ thu hoạch lên sự phát trển tảo Thalassiosira sp

Chương II LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU

2.1 Đặc điểm sinh học của tảo Thalassiosira sp

2.1.1 Đặc điểm phân loại Thalassiosira sp

Theo Karsten, 1928; Kokubo, 1995 và Kim Đức Trọng, 1965 thì Thalassiosira

sp được phân loại như sau:

2.1.2 Hình thái - cấu tạo

Thalassiosira.sp là một loại tảo khuê có dạng hình hộp, rất mỏng, có

kích thước trung bình từ 6 - 20µm x 8 -15 µm (vào mùa đông kích thước lớn hơn vào mùa hè) Mặt vỏ hình chữ nhật và đường kính dài hơn trục vỏ tế bào

Thalassiosira.sp thường sống đơn độc, đôi khi liên kết với nhau thành

tập đoàn (dạng bản) Có hai hình thức: Các tế bào tập hợp với nhau thành từng nhóm hoặc mắt xích giữa các tế bào (dạng chuỗi) Nếu nó kết hợp với nhau thành nhóm thì nó liên kết bằng sợi kitin nhỏ, còn ở dạng chuỗi các tế bào xoắn chuỗi

với nhau qua bề mặt của màng tế bào Màu của tảo Thalassiosira sp thay đổi từ

màu nâu đến màu xanh hoặc màu vàng tùy thuộc vào số lượng của diệp lục Tuy

nhiên, màu sắc này thay đổi không ảnh hưởng đến chất lượng của tảo

2.1.3 Sinh sản

Theo Hoàng Thị Sản (2007) tất cả các loài tảo silic đều có 2 hình thức sinh sản:

- Sinh sản bằng cách phân đôi tế bào: Mỗi tế bào con nhận 1 mảnh vỏ của tế bào

mẹ và tự tạo lấy 1 mảnh vỏ mới bé hơn lồng vào mảnh vỏ cũ Do đó mà sau nhiều lần phân chia kích thước tế bào giảm dần

- Sinh sản bằng bào tử:

+ Hình thành bào tử nghỉ (bào tử bảo vệ): Trong điều kiện môi trường ngoài bất lợi chất nguyên sinh co lại tế bào tích trữ chất dự trữ, mất nước và hình thành 1 vỏ mới dày cứng gồm 2 mảnh, đôi khi có thêm nhiều gai

+ Hình thành bào tử sinh trưởng: Sau nhiều lần phân chia kích thước tế bào bị nhỏ đi, tảo silic phải dùng hình thức này để khôi phục kích thước tế bào bằng cách nội chất tế bào thoát ra, lớn lên và hình thành vỏ mới

+ Sinh sản vô tính bằng động bào tử

+ Sinh sản hữu tính theo kiểu tiếp hợp: Hai cá thể ở gần nhau tách nắp ra chất nguyên sinh kết hợp với nhau tạo hợp tử Sau đó phân chia giảm nhiễm tạo

vỏ mới bao bọc bên ngoài và thành cơ thể mới

2.4.1 Phân bố

Tảo silic phân bố rất rộng trong môi truờng nước mặn, lợ, ngọt Cũng gặp trên đất đá, trong các thủy vực chúng có thể sống trôi nổi hoặc ở đáy Số lượng loài ở đáy nhiều hơn nhưng số lượng cá thể và sinh khối lại ít hơn so với các loài sống trôi nổi Ở các biển lạnh tảo silic phân bố nhiều hơn các biển ấm Trong những hồ nước ngọt trong suốt chúng có thể phân bố ở độ sâu 50-60 m còn trong nước biển khoảng 100- 350m

Riêng tảo Thalassiosira sp thường sống trong môi trường nước mặn

Chúng được nuôi để làm thức ăn cho nhiều ấu trùng động vật hải sản sống đáy như bào ngư, ốc hương…

2.2 Các yếu tố ảnh hưởng đến sự phát triển của tảo

2.2.1 Ánh sáng

Ánh sáng là yếu tố ảnh hưởng rất mạnh đến sự sinh trưởng và phát triển của vi tảo Đây là nguồn năng lượng chính cho quá trình quang hợp của tảo Ánh sáng ảnh hưởng đến vi tảo trên cơ sở chất lượng ánh sáng (phổ màu), cường độ ánh sáng và thời gian chiếu sáng Trong phòng thí nghiệm, nguồn ánh sáng phổ biến được dùng để nuôi tảo là “ánh sáng lạnh” của đèn huỳnh quang (40 – 80

watts) Từ những thí nghiệm, Kowallik (1987) (Harrison al et., 1990) cho rằng

ánh sáng màu xanh làm tăng hàm lượng protein của tảo, trong khi đó ánh sáng đỏ

làm tăng hàm lượng cacbohydrate Theo Graham al et., (2000) tảo có đặc điểm

hiệu ứng lại với sự tăng lên của cường độ ánh sáng Khi cường độ ánh sáng ở

mức thấp thì tỉ lệ quang hợp thực sẽ cân bằng với tỉ lệ hô hấp Đây gọi là điểm đền bù Khi cường độ ánh sáng lớn hơn điểm đền bù, thì quang hợp sẽ cao hơn so với hô hấp Nếu tảo ở trong điều kiện ánh sáng thấp nhiều giờ chúng sẽ thích nghi bằng cách tăng hàm lượng chlorophyll trong cơ thể Khi ánh sáng nằm trong mức giới hạn thì quá trình quang hợp sẽ tăng lên với sự tăng lên của cường độ ánh sáng Khi ánh sáng tiếp tục tăng lên tốc độ quang hợp giảm và tốc độ quang hợp

sẽ ngược với ánh sáng khi vượt qua giá trị giới hạn cao nhất Mỗi loài tảo khác nhau sẽ thích hợp với mức ánh sáng khác nhau Tảo sẽ giảm hàm lượng chlorophyll trong tế bào khi hàm lượng ánh sáng cao quá giới hạn thích ứng Khi tảo ở trong điều kiện ánh sáng kéo dài thì sẽ dẫn đến sự tổn hại quá trình quang hợp cho tế bào

Theo Guillard (1975), chỉ những loài vi tảo được nuôi làm thức ăn mới thích ứng trong điều kiện chiếu sáng liên tục và ánh sáng khuếch tán chứ không phải ánh sáng mặt trời trực tiếp Lê Viễn Chí (1996) cho rằng hầu hết các loài tảo sống trong môi trường ánh sáng yếu (4.800 – 8.000 lux) và chu kỳ chiếu sáng ngày đêm (12/12) Vi tảo tăng trưởng tốt nhất trong giới hạn cường độ ánh sáng

từ 50 – 300µ mol s-1m-1 (Thịnh L.V., 1999)

Nhiều nghiên cứu chứng tỏ cường độ ánh sáng ảnh hưởng rất lớn lên

thành phần hóa sinh Renaud và cộng sự (1991) khi nghiên cứu Nannochlorosis

oculata ở các chế độ chiếu sáng khác nhau thấy rằng hàm lượng protein,

hydratcarbon tăng khi cường độ ánh sáng tăng Ngược lại hàm lượng lipid giảm

đi Tương ứng hàm lượng acid béo cũng thay đổi: phần trăm Eicosapentaenoic acid 20: 5(n-3) giảm đi khi nuôi ngoài trời

Thể tích tế bào trung bình nhìn chung không thay đổi theo cường độ ánh sáng (Sukenic và Carmeli, 1989) Fabregas và cộng sự (1993) đã minh

chứng được loài Nannochlorosis oculata hấp thụ ammonium trong pha sáng (12

giờ sáng/12 giờ tối) và phân chia tế bào ở pha tối Thể tích tế bào đạt kích thước lớn nhất vào cuối pha sáng

Tuy nhiên khi nuôi sinh khối ngoài trời, cường độ ánh sáng thật sự đến với tế bào tảo thấp hơn nhiều so với cường độ ánh sáng đo được ở bề tăng mặt vì cường độ ánh sáng bị tán xạ theo độ sâu và theo quan hệ số mũ với mật độ tảo (Sukenic và Carmeli, 1989)

Cường độ ánh sáng tối ưu cho sự phát triển của tảo phụ thuộc vào thể tích nuôi, độ sâu cột nước và mật độ tế bào Theo (Anonymous, 1991) cường độ ánh

sáng thích hợp dùng để nuôi vi tảo nằm trong khoảng 1000 – 10000lux, mức tối

ưu khoảng 2500 – 5000lux

2.2.2 Nhiệt độ

Tùy theo từng loài tảo khác nhau mà có khoảng nhiệt độ tối ưu khác nhau Tuy nhiên, nhìn chung nhiệt độ thích hợp cho hầu hết các loài tảo trong khoảng 18 - 240C Khả năng chịu đựng của tảo trong phạm vi 16 - 270C (Anonymous, 1991) Nhiệt độ dưới 160C sinh trưởng của tảo sẽ giảm Nhiệt độ trên 350C sẽ gây chết cho nhiều loài Nhiệt độ thích hợp cho hầu hết các loài tảo phát triển tốt là 20 – 25oC (Coutteau, 1996) Nuôi tảo trong phòng sẽ dễ dàng khống chế được nhiệt độ, trong khi nuôi ngoài trời thời tiết có thể thay đổi bất thường

Một số loài tăng trưởng nhanh hơn, tỷ lệ thuận với nhiệt độ, nhưng chúng

sẽ đạt đến pha cân bằng nhanh và sau đó tàn lụi nhanh chóng Nhiệt độ cao còn gây tác động ngược lên chất lượng dinh dưỡng của tảo nuôi Nhiệt độ thấp hơn

có thể ảnh hưởng đến tăng trưởng của những sinh vật gây nhiễm tảo nuôi Một số loài nguyên sinh động vật và vi khuẩn tăng trưởng chậm ở nhiệt độ thấp Điều này cho phép tảo được giữ lâu ở pha logarit, để đạt tới mật độ thu hoạch trước khi

bị nhiễm (Sato, 1991) Nannochlorosis oculata tăng trưởng tốt nhất trong khoảng

nhiệt độ nước từ 10 – 30oC Ở nhiệt độ 10oC tảo sinh trưởng chậm lại (Jeffrey, Brown và Gakland, 1994)

Tại Nhật, Tetraselmis sp và Tetraselmis tetrathele được nuôi phổ biến làm thức ăn cho ấu trùng tôm He và Trùng banh xe Loài Tetraselmis

tetrathele hàm lượng linolenic acid và EPA cao với biên độ dao động nhiệt độ

khá lớn từ 5 – 33oC, nhiệt độ cực thuận là 25oC (Okauchi, 1991) Ở Trung

Quốc, loài Tetraselmis sp và Tetraselmis subcordiformis được nuôi dưới

vi tảo trong thủy vực Theo Jeffrey và ctv (1994), các loài thích ứng độ mặn rộng (từ 7 – 35ppt) như Ch Calcitrans, Pavlova lutheri…Một số loài vi tảo không thích độ mặn thấp như Sketolema costatum (khoảng chịu đựng từ 14ppt đến

35ppt) Độ mặn thay đổi làm thay đổi áp suất thẩm thấu của tế bào, ảnh hưởng đến quá trình quang hợp, hô hấp, tốc độ tăng trưởng và sự tích lũy glucose (Lê Viễn Chí, 1994) Ngoài ra, độ mặn còn ảnh hưởng đến thành phần sinh hóa và

thành phần acid béo của tảo (Renaud al et., 1991) Sự biến đổi của độ mặn chỉ

ảnh hưởng nhẹ đến hàm lượng protein tổng số, hydratecarbon, chlorophyll a Khi

độ mặn tăng, hàm lượng lipid tổng số tăng rõ rệt trong khoảng độ mặn từ 10 – 15ppt Độ mặn thay đổi dẫn đến thành phần acid béo thay đổi Thành phần acid

béo của Nannochclorosis oculata đạt cao nhất ở độ mặn 35ppt Độ mặn tốt nhất cho sản xuất Nannochclorosis oculata để có hàm lượng lipid và EPA cao nhất là

20 -30ppt (Renaud và Parry, 1994) Theo Mer Médit (2007) thì Tetraselmis

suecica đạt tốc độ tăng trưởng cao nhất (648 x 104 tb/ml) ở độ mặn 25ppt

Tảo biển có khả năng chịu đựng cao với sự thay đổi của nồng độ muối Tuy nhiên, trong nuôi tảo, tảo sẽ phát triển tốt nhất khi độ mặn khác biệt ít so với nơi chúng phân bố

2.2.4 pH

pH của môi trường quá cao hay quá thấp đều làm chậm tốc độ tăng trưởng của tảo nuôi Mức dao động pH thuận lợi cho sự phát triển của hầu hết các loài tảo vào khoảng 7–9 nhưng thích hợp trong khoảng 8.2 – 8.7 (Anonymous, 1991) Tuy nhiên, có những loài chịu được khoảng dao động pH khá rộng như

Isochrysis gabana có thể phát triển tốt trong khoảng dao động từ 5 đến 9

(Fulks và main, 1991) Loài Tetraselmis tetrahele phát triển tốt trong khoảng

dao động của pH từ 8 – 10 (Okauchi, 1991)

Trong hệ thống nuôi nếu pH vượt quá ngưỡng cho phép có thể làm tảo suy tàn Trong trường hợp nuôi tảo ở mật độ cao thì sự bổ sung CO2 nhằm ổn định pH ở dưới 9 trong suốt quá trình phát triển của tảo là cần thiết Khi amonium hoặc nitrate được sử dụng như nguồn cung cấp nitơ cho tảo sẽ dẫn đến sự biến đổi pH của môi trường Sự hấp thụ ion NO3-

sẽ dẫn đến sự tăng pH của môi trường ngược lại sự hấp thu NH4+ sẽ làm giảm pH (Oh_Hama, 1986) Việc sử dụng ure ít làm thay dổi pH của môi trường ngay cả trong điều kiện tự dưỡng hoặc dị dưỡng

2.2.5 Sục khí

Trong nuôi cấy tảo, sục khí có vai trò quan trọng, trước nhất là sự đảo trộn để tránh trường hợp tảo bị lắng xuống đáy, đảm bảo tất cả các tế bào điều

được cung cấp ánh sáng và dinh dưỡng đầy đủ Mặt khác, trong không khí có chứa một lượng CO2 rất cần thiết cho sự quang hợp Việc sục khí sẽ hạn chế sự phân tầng về nhiệt độ nhất là nuôi tảo ngoài trời với thể tích lớn Tùy theo thể tích nuôi mà có sự đảo trộn và cung cấp khí khác nhau Khả năng sục khí mạnh hay yếu phụ thuộc vào các giai đoạn phát triển của tảo và theo từng loài tảo Cường

độ sục khí nên vừa đủ không quá mạnh hoặc quá yếu Theo Guillard (1975) đề nghị nên sục khí nhẹ nhàng vào 1 – 2 ngày đầu mới cấy sau đó sẽ tăng mạnh dần khi tảo đã phát triển mật độ cao

2.2.6 Dinh dưỡng

Dinh dưỡng là một yếu tố vô cùng quan trọng ảnh hưởng đến sự sinh trưởng và phát triển của vi tảo Dinh dưỡng ảnh hưởng rất lớn đến số lượng và

chất lượng của vi tảo (Harrison al et., 1990)

Mật độ của tế bào tảo nuôi có bón phân thường cao hơn nhiều so với mật

độ tảo trong tự nhiên Do đó, việc bổ sung nguồn dinh dưỡng vào môi trường nuôi là vấn đề thiết yếu Thành phần dinh dưỡng đa lượng cần thiết cho tảo nuôi như muối nitơ, muối phốt pho là hai nguồn dinh dưỡng cho quá trình phát triển của tảo và tỷ lệ N:P được đề nghị 6 : 1 (Valero, 1981)

Môi trường bổ sung dinh dưỡng đang được sử dụng rộng rãi trên thế giới

và phù hợp cho hầu hết các loài vi tảo nuôi hiện nay là môi trường Guillard F/2

và môi trường Walne (Coutteau, 1996) Ở Việt Nam môi trường bổ sung dinh dưỡng của Hoàng Thị Bích Mai, 1995 rất phù hợp cho ngành tảo trần, đang được

sử dụng phổ biến tại các cơ quan nghiên cứu và các trại nuôi tôm sú

Nhu cầu Nitơ của tảo lục là cao nhất, sau đó đến tảo lam Tảo khuê

không phù hợp với hàm lượng nitơ cao (De Pauw al et., 1983) Nhưng nếu thiếu

nito sẽ kích thích quá trình tổng hợp của triglycerides gồm số lượng lớn acid béo

không no đa nối đôi và Glycolipids giảm với lipid phân cực (Suen al et., 1987; trích theo Harrison al et., 1990)

Phốtpho là chất không thể thiếu đối với vi tảo vì phốt pho có tác dụng lên

hệ keo dưới dạng các ion Phốtpho ở dạng vô cơ liên kết với các ion kim loại tạo nên hệ đệm đảm bảo cho pH tế bào luôn xê dịch trong phạm vi nhất định (6 - 8),

là điều kiện tốt nhất cho hệ men hoạt động Phốt pho tham gia vào cấu trúc tế bào,

có vai trò quan trọng trong những khâu chuyển hóa trung gian và có ý nghĩa then chốt trong trao đổi năng lượng Phốt pho được xem như là một yếu tố giới hạn trong sự phát triển của tảo Tảo sử dụng chủ yếu là phospho vô cơ Phospho hữu

cơ thường được thủy phân bởi các enzym ngoại bào như phosphoesterase, phosphatase để chuyển sang dạng phospho dễ tiêu Khi giảm hàm lượng phốt

pho trong môi trường nuôi Nannochclorosis oculata gây ra giảm thành phần

acid béo mạch dài đa nối đôi (Harrison và cộng sự, 1990) Do đó, khi nuôi tảo cần bảo đảm tảo nuôi luôn luôn được phát triển trong điều kiện hàm lượng phốt pho đầy đủ

Tăng hàm lượng ni tơ và phốt pho cao hơn trong môi trường Guillard F/2

đã cải thiện được sự tăng trưởng trong một số loài tảo Tảo nuôi ổn định và kéo dài chu kỳ tăng trưởng, với sự tăng trưởng liên tục sau pha logarit (Sato,1991) Ông đã bổ sung thêm mức độ ni tơ cùng phốt pho vào môi trường

nuôi Nannochclorosis oculata ngoài trời và đạt tốc độ tăng trưởng cao hơn

Đối với tảo khuê, Silíc đóng vai trò rất quan trọng vì nó tham gia vào cấu trúc màng tế bào Nhiều công trình nghiên cứu cho thấy khi thiếu Si líc thì sự phát triển tế bào không ngừng trệ nhưng màng tế bào bị thay đổi cấu trúc nên khó xác định được loài Theo Gusep (1952) (trích Hoàng Thị Bích Mai, 1995), tảo Silíc phát triển tốt nhất ở hàm lượng 1 – 3mg/l

Ngoài ra, còn một số khoáng vi lượng và đa lượng cũng rất cần nhưng với hàm lượng nhỏ Các nguyên tố cần thiết cho sinh trưởng trong mô của thực vật nước, để phát triển bình thường tảo cần tới khoảng 20 nguyên tố để xây dựng

tế bào (12 nguyên tố đa lượng: C, H, N, O, P, S, K, Mg, Ca, Na, Cl, Si; 8 nguyên

tố vi lượng: Fe, Cu, Mn, Zn, Mo, Bo, Co,V); và các Vitamin như B1, B6, B12…

2.2.7 Mật độ cấy ban đầu

Mật độ ban đầu là một trong những yếu tố có liên quan mật thiết đến sinh khối và thời gian tảo đạt cực đại (Lê Viễn Chí, 1996; Hoàng Thị Bích Mai, 1995) Tuỳ loài tảo khác nhau mà mật độ gieo cấy ban đầu cũng khác nhau Việc xác định mật độ ban đầu thích hợp rất có ý nghĩa trong thực tế sản xuất Tùy thuộc vào nhu cầu sản xuất, chúng ta có thể tăng mật độ ban đầu ở mức độ nào đó nhằm rút ngắn thời gian tảo đạt sinh khối cực đại.Trong trường hợp khác, cần duy trì lượng tảo nuôi trong thời gian dài thì cần một mật độ nuôi thích hợp

Khi cung cấp mật độ ban đầu càng cao sẽ rút ngắn được thời gian đạt mật

độ cực đại, tuy nhiên mật độ cực đại của tảo muốn đạt cao nhất thì chưa chắc cần mật độ cấy ban đầu cao nhất Mật độ thích hợp cho nuôi sinh khối tảo

Chaetoceros calcitrans trong phòng sản xuất: 2 x 105 - 6 x 105 tb/ml Sự khác nhau về mật độ gieo cấy ban đầu ảnh hưỏng quyết định đến số lượng tế bào tham

gia phân chia trong từng thời điểm khác nhau (Nguyễn Thanh Mai và ctv, 2009)

Ở Tetraselmis sp mật độ thích hợp nhất 300 x 103

tb/ml theo Đặng Thị Thanh Hoà và Phạm Thị Diệu Thơm (1999) E Valenzuela-Espinoza (2007) cho rằng mật độ nuôi cấy thích hợp của tảo Thalassiosira pseudonana là 1,15 ± 0,057x105

tb/ml

2.3 Sự phát triển của quần thể tảo

Sự tăng trưởng của tảo được diễn tả bằng sự phân chia tế bào trong điều kiện nuôi cấy với các chất dinh dưỡng thích hợp sự phát triển của tảo qua 5 giai đoạn (Coutteau, 1996)

2.3.1 Giai đoạn đầu

Là giai đoạn bắt đầu nuôi cấy Ở giai đoạn này các tế bào tảo lớn lên về mặt kích thước nhưng không có sự phân chia nên mật độ tế bào không tăng lên hoặc tăng rất ích Đây là giai đoạn mà sự trao đổi chất của tế bào sẽ thích nghi với các điều kiện vật lý của môi trường để phát triển như là sự tăng lên của enzym

và trao đổi chất bao gồm sự phân chia tế bào và cố định cacbon

Thời gian của giai đoạn này tăng nhanh hay chậm phụ thuộc vào nguồn tảo giống và thành phần của môi trường, pha này sẽ không thay đổi nếu pha này ở giai đoạn tăng trưởng nhanh

2.3.2 Giai đoạn tăng trưởng nhanh

Đây là giai đoạn tế bào phân chia nhanh chống tốc độ này phụ thuộc vào điều kiện môi trường dinh dưỡng, ánh sáng…ở giai đoạn này mật độ tế bào tảo sẽ phát triển theo phương trình sau:

C t =C 0 e mt

Với Ct và Co là mật độ tảo tại thời điểm t và 0

M: tốc độ phát triển đặc trưng Tốc độ này phụ thuộc vào loài tảo, cường độ ánh sáng và nhiệt độ

2.3.3 Giai đoạn tăng trưởng chậm

Ở giai đoạn này tốc đọ phát triển của tảo giảm dần khi các điều kiên về dinh dưỡng, ánh sáng, pH, CO2… trở thành những yếu tố giới hạn Giai đoạn này

sẽ xảy ra nhanh chóng với sự cân bằng giữa tốc độ phát triển và những yếu tố hạn chế, lúc này sự phát triển của tảo sẽ bước vào giai đoạn cân bằng

2.3.4 Giai đoạn ổn định

Sinh khối tảo không thay đổi và đạt mật độ cực đạt Quá trình quang hợp

và phân chia tế bào vẫn xảy ra trong suốt giai đoạn này, nhưng số lượng tế bào mới sinh ra gần ngang bằng với số lượng tế bào chết đi Do đó, ở pha này không

có sự tăng trưởng về số lượng tế bào

2.3.5 Giai đoạn suy tàn

Khi chất lượng nước trở nên xấu đi, các chất dinh dưỡng giảm không đủ tảo phát triển Mật độ tảo giảm nhanh chống và suy tàn Trong thực tế, có nhiều yếu tố ảnh hưởng đến sự suy tàn của tảo như hàm lượng dinh dưỡng trong môi trường nuôi cạn kiệt, không đủ ánh sáng cung cấp, quá nóng hoặc do sự nhiễm các loài tảo khác hoặc Protozoa…

Trong thực tế, công việc nuôi dừng lại do một số nguyên nhân khác nhau gây ra, bao gồm sự cạn kiệt các chất dinh dưỡng, thiếu oxy, nhiệt độ quá cao, pH thay đổi hoặc nhiểm bẩn Mấu chốt của thành công trong sản xuất tảo là duy trì tảo ở pha sinh trưởng theo hàm mũ Khi thời gian nuôi vượt quá 3 pha thì giá trị dinh dưỡng của tảo sản xuất sẽ thấp do tính tiêu hóa giảm, thiếu các thành phần dinh dưỡng và có thể sản sinh ra các chất chuyển hóa độc hại

2.4 Thành phần sinh hóa của tảo

Giá trị dinh dưỡng của những loài tảo khác nhau rõ rệt giữa các loài và

ngay giữa các dòng khác nhau cùng một loài (Enright al et., 1986; Ryther and

Goldman, 1975; trích theo Gladue, 1991) Sự khác nhau này có thể ảnh hưởng đến tăng trưởng, hệ số chất, thời gian chín muồi sinh dục và khả năng đề kháng

1 Giai đoạn đầu tiên

2 Giai đoạn sinh trưởng theo hàm mũ

3 Giai đoạn giảm tốc độ sinh trưởng

4 Giai đoạn ổn định

5 Giai đoạn suy tàn

Hình 2.1: Các pha phát triển của tảo nuôi.

bệnh của những sinh vật tiêu thụ nó như Cá, Động vật thân mềm, Gíap xác…Và chúng được xác định theo các yếu tố: thành phần sinh hóa, khả năng tiêu hóa, kich thước tế bào cũng như sự sản sinh độc tố của loài tảo đó nhìn chung tảo rất giàu dinh dưỡng và hàm lượng acid béo cao phân tử không no (HUFA) vốn là chất rất cần thiết cho ấu trùng tôm, cá biển

Thành phần hóa sinh thô của tảo gồm: Protein, Cacbohydrate, lipid và khoáng chất chiếm 90 – 95% trọng lượng khô của tế bào tảo Phần còn lại chủ

yếu là acid nucleic (chiếm từ 5 – 10%) (Brow al et., 1991) Thành phần này thay

đổi khác nhau tùy thuộc vào từng loài nuôi và điều kiện nuôi như chu kỳ chiếu sáng, bước sóng, nhiệt độ, chế độ dinh dưỡng trong từng môi trường nuôi và thời gian thu hoạch ở các giai đoạn tăng trưởng khác nhau

2.4.1 Protein

Brown al et (1989) đã tiến hành thống kê lại thành phần hóa sinh của

hơn 40 loài tảo thường được sử dụng trong nuôi trồng hải sản thuộc các lớp Prymnesilophyceae, Bacillariophyceae, Chlorophyceae, Prasinophyceae, Cryptophyceae, Eustigmatophyceae, Rhodophyceae Kết quả cho thấy hàm lượng protein của tảo dao động từ 6 – 34% trọng lượng khô Hàm lượng protein cao nhất ở Cryptophyceae chiếm 32% và thấp nhất thuộc lớp tảo Prasinophyceae chiếm 20%

Nhu cầu về giá trị dinh dưỡng của các đối tượng nuôi khác nhau ở các giai đoạn phát triển Ở giai đoạn ấu trùng và cá con thì nhu cầu protein cao hơn ở giai đoạn trưởng thành Theo Watanabe and Chu (1983), tảo có hàm lượng protein cao thì có giá trị dinh dưỡng tốt Tuy nhiên, nhiều nghiên cứu cho thấy

mối quan hệ đó không chặt chẽ Ví dụ I gabalna và P lutheri có hàm lượng protein thấp nhưng lại là thức ăn tốt cho động vật thân mềm Trong khi đó D

tertiolecta có hàm lượng protein rất cao nhưng khi ấu trùng thân mềm sử dụng thì

tốc độ tăng trưởng lại thấp

Vì vậy khi đánh giá giá trị dinh dưỡng của một thành phần nào đó chúng

ta cần đặt trong mối tương quan với các thành phần khác cũng như từng giai đoạn phát triển và đối tượng nuôi cụ thể

2.4.2 Lipid và thành phần acid béo

Nhìn chung, hàm lượng lipid của các loài vi tảo không cao lắm Theo

Brown al et., (1997) hàm lượng lipid của 40 loài vi tảo hiện nay đang được sử

dụng phổ biến trong nuôi trồng thủy sản dao động từ 7 – 23% trọng lượng khô Bacillariophyceae có hàm lượng lipid cao nhất với giá trị trung bình 18%; Prymnesilophyta có hàm lượng 17% và ngành Eustigmatophyta có hàm lượng lipid đạt 13%

Khi nghiên cứu thành phần lipid và acid béo của 10 loài tảo Wolkman al

et., (1989) đã chỉ ra rằng, hàm lượng acib béo không no mạch dài (PUFA) trong 4

loài tảo silic Chaetoceros calcitrans, Chaetoceros gracilis, Thalassiosira

pseudonama và Skeletonema costatum biến động từ 4,6 – 11,1% tổng acid béo

Theo Wolkkman al et., (1968) thì tảo Thalassiosira pseudonama có

thành phần HUFA cao và nó chứa đầy đủ các thành phần dinh dưỡng với số lượng cao

2.4.3 Cacbohydrate

Hàm lượng cacbohydrate trong vi tảo khá cao Theo Brown al et.,

(1989) hàm lượng cacbohydrate cuả các loài tảo dao động từ 5 – 23% trọng lượng khô Trong đó các loài thuộc lớp Chlorophyceae và Prymnesilophyceae có hàm lượng cao nhất đạt 14 -23% trọng lượng khô, các lớp còn lại thấp hơn 10% trọng lượng khô như Prymnessophyceae có hàm lượng cacbohydrate từ 5 – 31% trọng lượng khô, tảo Silíc biến động từ 17 – 24% trọng lượng khô Đối với các loài động vật thân mềm, cacbohydrate đóng vai trò quan trọng, với hàm lượng biến động từ 5 – 30% được coi là loại thức ăn tốt

2.4.4 Vitamin và khoáng chất

Những loại Vitamin chính thường gặp trong tảo nuôi gồm có Thiamin (Vitamin B1), Riboflavin (B2), Pyridoxin (B6), Cyanocobalamin (B12), Biotin, Ascorbic acid (C), Nicotinic acid, Patothenic acid, Choline, Inositol, Tocopherol

(E) và Caroten (Provitamin A) (Brown al et., 1989) Hàm lượng Vitamin có trong

mỗi loài vi tảo là khác nhau Ngoài ra, hàm lượng Vitamin còn phụ thuộc vào các giai đoạn phát triển

Tuy vi tảo có chứa hầu hết các loại Vitamin song trong mỗi loài vẫn còn thiếu một hay vài loại Vitamin Chính sự khác nhau về thành phần Vitamin đã dẫn đến giá trị dinh dưỡng khác nhau của các loài tảo Do đó nên nuôi nhiều loài tảo làm thức ăn hỗn hợp để tạo được đầy đủ các loại Vitamin cung cấp cho vật nuôi tốt hơn

Khoáng: tảo cung cấp một số khoáng quan trọng, có thể sử dụng một lượng nhỏ tảo biển có thể thay thế lượng premix khoáng trong khẩu phần của cá bơn

Tính kháng khuẩn: một trong đặc điểm quan trọng của tảo là tính kháng khuẩn hiệu quả được ghi nhận ở hầu hết các loài tảo khuê

2.5 Các hình thức nuôi tảo

Có nhiều hình thức nuôi tảo khác nhau, tùy thuộc vào thời gian duy trì dịch nuôi trong bể, thời gian thu hoạch và phương pháp thực hiện có thể chia làm hai hình thức chính: Nuôi thu hoạch toàn bộ và nuôi liên tục

2.5.1 Nuôi thu hoạch toàn bộ (Batch culture)

Ở hình thức nuôi này, tảo được cấy vào môi trường nuôi với mật độ thấp và bổ sung dinh dưỡng một lần Tảo nuôi thường được thu hoạch vào giữa hoặc cuối pha logarit và thu toàn bộ thể tích nuôi, khi số lượng tế bào đạt xấp xỉ 75% số lượng tế bào cực đại có thể đạt được Hình thức nuôi này thường được áp dụng khá phổ biến vì phương pháp này đơn giản, ít bị ô nhiễm môi trường nuôi do thời gian nuôi ngắn, nhưng khi mật độ tăng cao trong môi trường nuôi sẽ gây nên giới hạn dinh dưỡng và giới hạn ánh sáng do

sự tự che khuất, ảnh hưởng đến tốc độ tăng trưởng của tảo

2.5.2 Nuôi liên tục (Continuous culture)

Với hình thức này, tảo nuôi được thu hoạch liên tục theo một tỷ lệ pha loãng nhất định và sẽ được cung cấp thường xuyên môi trường dinh dưỡng Tảo nuôi duy trì được tình trạng phát triển ổn định ở một tốc độ sinh trưởng tốt nhất Nuôi lên tục khắc phục được giới hạn dinh dưỡng và ánh sáng khi mật độ tảo tăng cao, tảo có thể cung cấp liên tục cho nhu cầu sản xuất Nuôi liên tục có thể chia thành nhiều dạng nuôi:

Nuôi ổn định hàm lượng phân bón (Chemostat culture)

Tảo nuôi được thu hoạch và pha loãng liên tục theo một tỷ lệ không đổi bằng dòng môi trường dinh dưỡng chảy vào và dòng chảy ra để thu tảo, giữ cho hàm lượng muối dinh dưỡng trong dịch nuôi luôn ổn định Bằng các tỷ lệ pha loãng khác nhau, có thể tạo được lô thí nghiệm ở nhiều mức độ để nghiên cứu sự sinh trưởng và thành phần sinh hóa của tảo

Nuôi ổn định mật độ tảo hoặc ổn định độ đục (Turbidostat culture)

Tương tự phương pháp nuôi ổn định hàm lượng phân bón, nhưng ở đây mật độ tảo sẽ được duy trì ổn định nhằm tránh sự che khuất ánh sáng khi nghiên cứu ảnh hưởng của ánh sáng đến thành phần sinh hóa

Nuôi bán liên tục (Semi – continuous culture)

Tảo nuôi sẽ được định kỳ thu hoạch theo một tỷ lệ thu hoach nhất định

Theo Phạm Thị Lam Hồng (1999) cho rằng đối với tảo Nannochlorosis oculata

có tỷ lệ thu hoạch tốt nhất là 60% Trong khoảng thời gian không đổi và được cung cấp lại môi trường dinh dưỡng mới nhằm duy trì thể tích nuôi ban đầu Mật độ tảo nuôi ban đầu thấp và thường được thu hoạch, pha loãng vào cuối pha logarit Hình thức nuôi này có thể thực hiện được ở trong phòng hay nuôi ngoài trời, giới hạn được số lượng bể nuôi Mặt hạn chế của phương pháp này là vấn đề ô nhiễm môi trường nuôi thường xảy ra trong quá trình nuôi

Khi nuôi tảo qui mô lớn để cung cấp cho sản xuất, hai hình thức nuôi thu hoạch từng phần và nuôi bán liên tục được sử dụng chủ yếu Các hình thức nuôi ổn định dinh dưỡng và ổn định độ đục thường chỉ sử dụng cho nghiên cứu trong phòng thí nghiệm, ít được sử dụng cho sản xuất do phức tạp và tốn kém Tùy thuộc vào mục đích nuôi mà có thể lựa chọn hình thức nuôi Ở Thái Lan, trong qui trình sản xuất giống tôm càng xanh, hình thức nuôi thu hoạch toàn bộ được sử dụng nhằm hạn chế sự nhiễm khuẩn môi trường nuôi (Kongkeo, 1991)

Hiện nay, để hạn chế những tồn tại trên, nhiều nước trên thế giới đã sử dụng túi ni lông trong suốt với nhiều kích cỡ khác nhau để nuôi tảo như Hawaii (Gladue, 1991), Singapore (Lim, 1991) ), Thai lan (Kongkeo, 1991) ), Trung Quốc (Chen, 1991), Đài Loan (Pi, 1991)…

2.6 Các nghiên cứu về nuôi tảo Thalassiosira sp

Tuy Thalassiosira sp là một loài tảo mới nhưng cũng có một số ít nghiên

cứu về loài tảo này như là nghiên cứu về ảnh hưởng của các môi trường dinh

dưỡng khác nhau, mật độ cấy ban đầu, độ mặn lên sự phát triển tảo Thalassiosira

pseudonana của Phạm Dũng và Chu Văn Ninh (2012) thu được các kết quả tảo

tăng trưởng tốt nhất ở môi trường Guillard f/2 (250,5 ± 2,63 x 10 4 tế bào/ml) so với hai môi trường TRML trung bình (244,08 ± 5,76 x 10 4 tế bào / ml) và hỗn hợp trung bình (225,92 ± 4,39 x 10 4 tế bào / ml) (P <0,05) Sau 10 ngày, mật độ