Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống
1
/ 51 trang
THÔNG TIN TÀI LIỆU
Thông tin cơ bản
Định dạng
Số trang
51
Dung lượng
755,16 KB
Nội dung
TRƢỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ
KHOA THỦY SẢN
NGUYỄN THỊ THÙY TRANG
ẢNH HƢỞNG CỦA TẢO Chlorella LẮNG ĐẾN TỐC ĐỘ
LỌC, CHỈ SỐ ĐỘ BÉO VÀ TỶ LỆ SỐNG CỦA
SÕ HUYẾT (Anadara granosa)
LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP ĐẠI HỌC
CHUYÊN NGÀNH SINH HỌC BIỂN
2013
TRƢỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ
KHOA THỦY SẢN
NGUYỄN THỊ THÙY TRANG
ẢNH HƢỞNG CỦA TẢO Chlorella LẮNG ĐẾN TỐC ĐỘ
LỌC, CHỈ SỐ ĐỘ BÉO VÀ TỶ LỆ SỐNG CỦA
SÕ HUYẾT (Anadara granosa)
LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP ĐẠI HỌC
CHUYÊN NGÀNH SINH HỌC BIỂN
CÁN BỘ HƢỚNG DẪN
PGs.Ts. NGÔ THỊ THU THẢO
2013
LỜI CẢM TẠ
Tôi xin bày tỏ sự biết ơn chân thành và sâu sắc nhất đến cô Ngô Thị Thu
Thảo. Không chỉ là ngƣời hƣớng dẫn, cô đã dành nhiều thời gian quan tâm, chỉ
bảo tận tình và tạo mọi điều kiện thuận lợi cho tôi trong quá trình thực hiện đề tài
và hoàn thành luận văn tốt nghiệp.
Xin gửi lời cảm ơn chân thành đến Ban Giám Hiệu trƣờng Đại học Cần
Thơ, quý thầy cô đang công tác tại khoa Thủy Sản đã tạo nhiều điều kiện thuận lợi
cho và tập thể lớp trong suốt thời gian thực hiện đề tài.
Tôi cũng xin gửi lời cảm ơn đến cô Cố vấn học tập Nguyễn Thị Kim Liên,
tập thể lớp Sinh học biển khóa 36 đã khích lệ, động viên tôi, cùng các anh chị và
các bạn tại trại thực nghiệm Động vật thân mềm đã giúp đỡ, cho tôi những lời
khuyên, những ý kiến đóng góp quý báu trong quá trình thực hiện thí nghiệm và
hoàn thành luận văn.
Cuối cùng, xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc đến gia đình, những ngƣời thân
đã luôn động viên và tạo điều kiện tốt nhất cho tôi trong suốt thời gian học tập tại
trƣờng.
MỤC LỤC
Trang
MỤC LỤC
CHƢƠNG 1: GIỚI THIỆU .................................................................................. 1
1.1. Đặt vấn đề ... ............................................................................................ 2
1.2. Mục tiêu của đề tài ................................................................................... 2
1.3. Nội dung của đề tài .................................................................................. 2
1.4. Thời gian và địa điểm thực hiện .............................................................. 2
CHƢƠNG 2: NỘI DUNG.................................................................................... 3
2.1. Đặc điểm của tảo Chlorella ..................................................................... 3
2.1.1. Đặc điểm phân loại ........................................................................ 3
2.1.2. Đặc điểm phân bố và môi trƣờng sống .......................................... 4
2.1.3. Đặc điểm dinh dƣỡng và sinh trƣởng ............................................ 4
2.1.4. Đặc điểm sinh sản .......................................................................... 5
2.1.5. Thành phần sinh hóa và dinh dƣỡng .............................................. 6
2.2. Đặc điểm của sò huyết Anadara granosa ................................................ 7
2.2.1. Đặc điểm phân loại và hình thái .................................................... 7
2.2.2. Đặc điểm phân bố và môi trƣờng sống .......................................... 8
2.2.3. Đặc điểm dinh dƣỡng ..................................................................... 8
2.2.4. Đặc điểm sinh trƣởng ..................................................................... 9
2.2.5. Đặc điểm sinh sản .......................................................................... 9
2.3. Một số nghiên cứu về thức ăn đối với động vật thân mềm ...................... 10
CHƢƠNG 3: VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP THÍ NGHIỆM ........................ 12
3.1. Đối tƣợng nghiên cứu .............................................................................. 12
3.2. Vật liệu nghiên cứu .................................................................................. 12
3.3. Phƣơng pháp bố trí thí nghiệm, phƣơng pháp thu và xử lý số liệu.......... 13
i
3.3.1. Thí nghiệm 1: Ảnh hƣởng của các hóa chất khác nhau đến hiệu suất
lắng và tỷ lệ sống của tảo Chlorella..................................................................... 13
3.3.2. Thí nghiệm 2: Ảnh hƣởng của tảo Chlorella lắng đến tốc độ sinh
trƣởng, tỷ lệ sống và chỉ số độ béo của sò huyết Anadara granosa ................... 14
3.4. Phƣơng pháp xử lý và phân tích số liệu ................................................. 16
CHƢƠNG 4. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN ....................................................... 17
4.1. Kết quả thí nghiệm 1 ............................................................................... 17
4.1.1. Hiệu suất lắng của tế bào tảo Chlorella ............................................ 17
4.1.2. Tỷ lệ sống của tế bào tảo Chlorella .................................................. 17
4.2. Kết quả thí nghiệm 2 ................................................................................ 18
4.2.1. Kết quả thí nghiệm chính của thí nghiệm 2 ...................................... 18
4.2.1.1. Các yếu tố môi trƣờng .............................................................. 18
4.2.1.2. Khối lƣợng và tỷ lệ sống của sò sau 30 ngày TN ..................... 21
4.2.2. Kết quả thí nghiệm phụ của thí nghiệm 2 .......................................... 25
4.2.2.1. Các yếu tố môi trƣờng .............................................................. 25
4.2.2.2. Khối lƣợng và tỷ lệ sống của sò sau 12 ngày TN ..................... 27
4.2.3. Kết quả đánh giá cho điểm ................................................................ 29
CHƢƠNG 5. KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT .......................................................... 30
TÀI LIỆU THAM KHẢO.................................................................................... 31
PHỤ LỤC ............................................................................................................. 34
ii
DANH SÁCH BẢNG
Bảng 4.1. Hiệu suất lắng (%) của tế bào tảo Chlorella ....................... ............... 17
Bảng 4.2. Tỷ lệ sống (%) của tế bào tảo Chlorella .............................................. 18
Bảng 4.3. Tăng trƣởng khối lƣợng (g) sau 30 ngày TN ...................................... 22
Bảng 4.4. Tốc độ lọc (%) của sò huyết sau 30 ngày TN ..................................... 23
Bảng 4.5. Chỉ số độ béo β và thể trạng CI của sò huyết sau 30 ngày TN .......... 24
Bảng 4.6. Tăng trƣởng khối lƣợng (g) sau 12 ngày TN ..................................... 28
Bảng 4.7. Chỉ số độ béo β và thể trạng CI của sò huyết sau 12gày TN .............. 28
Bảng 4.8. Kết quả đánh giá ảnh hƣởng của thức ăn lắng bằng các hóa chất khác
nhau đến sò huyết ........................................................................... 29
iii
DANH SÁCH HÌNH
Hình 2.1. Tảo Chlorella sp. ................................................................................. 3
Hình 2.2. Sơ đồ vòng đời của Chlorella .............................................................. 5
Hình 2.3. Sò huyết Anadara granosa (Linneus, 1758) ........................................ 7
Hình 4.1. Biến động nhiệt độ (oC) trong 30 ngày ................................................ 19
Hình 4.2. Biến động NH4+/NH3 (mg/L) trong 30 ngày........................................ 20
Hình 4.3. Biến động NO2 (mg/L) trong 30 ngày ................................................. 21
Hình 4.4. Tỷ lệ sống (%) của sò huyết sau 30 ngày TN ...................................... 22
Hình 4.5. Biến động nhiệt độ (oC) trong 12 ngày ................................................ 25
Hình 4.6. Biến động NH4+/NH3 (mg/L) trong 12 ngày........................................ 26
Hình 4.7. Biến động NO2 (mg/L) trong 12 ngày ................................................. 26
Hình 4.8. Tỷ lệ sống (%) của sò huyết sau 12 ngày TN ...................................... 27
iv
TÓM TẮT
Đề tài này gồm 2 thí nghiệm đƣợc thực hiện nhằm đánh giá hiệu quả của việc
sử dụng các loại hóa chất lắng tảo và sử dụng tảo lắng làm thức ăn trong quá trình
nuôi sò huyết.
Thí nghiệm 1: Các loại hóa chất là NaOH, NaOH+PAC và PAC đƣợc sử dụng để
lắng tảo Chlorella sp. với mật độ tảo ban đầu là 2-3 triệu tb/mL. Kết quả cho thấy
khi lắng tảo Chlorella bằng PAC (10mg/L) đạt hiệu suất lắng và tỷ lệ sống của tế
bào tảo cao hơn so với NaOH hoặc NaOH kết hợp với PAC.
Thí nghiệm 2 : Sò huyết với chiều dài trung bình 25,38±1,23 mm đƣợc bố trí
vào keo thủy tinh 10L với mật độ 12con/keo, ở độ mặn 20‰. Sò đƣợc cho ăn 1
ngày/lần theo các nghiệm thức thức ăn khác nhau là: tảo Chlorella ly tâm; tảo
Chlorella lắng bằng các loại hóa chất là NaOH; NaOH kết hợp PAC và PAC, với
mật độ 10.000-30.000 tb/mL. Kết quả sau 30 ngày nuôi cho thấy tỷ lệ sống của sò
đạt cao nhất (94,44 %) ở nghiệm thức sử dụng tảo lắng bằng NaOH + PAC nhƣng
khác biệt không ý nghĩa thống kê so với các nghiệm thức khác (P>0,05). Tốc độ
lọc và tăng trƣởng của sò ở các nghiệm thức cũng khác biệt không có ý nghĩa
thống kê (P >0,05). Sau đó, sò đƣợc chuyển qua nuôi trong 12 ngày và không cung
cấp thức ăn nhằm đánh giá khả năng sống sót. Kết quả cho thấy, tỷ lệ sống của sò
huyết đạt cao nhất ở nghiệm thức tảo ly tâm (89,17%). Kết quả đánh giá ảnh
hƣởng của việc sử dụng tảo đƣợc lắng bằng các loại hóa chất khác nhau đến sinh
trƣởng, tỷ lệ sống và một số chỉ số sinh học của sò huyết cho thấy tảo lắng bằng
NaOH cho kết quả ổn định và cao hơn các nghiệm thức khác là NaOH+PAC hoặc
PAC.
v
CHƢƠNG 1
GIỚI THIỆU
1.1 Đặt vấn đề
Tảo đƣợc xem là nguồn thức ăn không thể thiếu trong nuôi trồng nhiều loài
hải sản nhƣ động vật thân mềm 2 mảnh vỏ, một số loài tôm, cá ở giai đoạn ấu
trùng cũng nhƣ đang trong giai đoạn phát triển. Hiện nay, kỹ thuật nƣớc xanh
trong nuôi trồng thủy hải sản khá là phổ biến, ngoài việc cung cấp thức ăn tự nhiên
cho đối tƣợng nuôi trồng mà còn giúp ổn định môi trƣờng trong nuôi ấu trùng tôm
cá trong bể và ổn định mật độ vi khuẩn (Coutteau, 1996).
Theo Coutteau (1996) có hơn 40 loài tảo khác nhau trên thế giới đã đƣợc
phân lập và nuôi thuần trong hệ thống nuôi thâm canh, trong đó một số giống loài
đƣợc sử dụng rất phổ biến trong sản xuất giống các đối tƣợng hải sản bao gồm tảo
khuê Skeletonema costatum, Thalassiosira pseudonana, Chaetoceros gracilis, C.
calcitrans, tảo có roi Isochrysis galbana, Tetraselmis suecica, Monochrysis lutheri
và tảo lục Chlorella spp. Trong nuôi luân trùng có một số loài tảo đƣợc sử dụng
nhƣ Chlorella, Nannochloropsis, Tetraselmis, Isochrysis,…trong đó Chlorella là
thức ăn rất tốt cho luân trùng do có giá trị dinh dƣỡng cao. Chlorella có thể phát
triển tốt trong bể nuôi cá rô phi nên có thể áp dụng để sản xuất sinh khối tảo rẻ tiền
(Trần Sƣơng Ngọc và Nguyễn Hữu Lộc, 2006).
Hiện nay, cùng với sự phát triển của ngành nuôi trồng thủy sản thì sự đóng
góp của nhóm động vật thân mềm 2 mảnh vỏ là rất đáng kể. Cùng với nghêu thì
hiện nay sò huyết cũng rất đƣợc chú trọng phát triển do mang lại giá trị cao trong
thƣơng mại lẫn giá trị thực phẩm cao. Cùng đi đôi với việc nuôi và sản xuất giống
2 mảnh vỏ là vấn đề thức ăn mà trong đó tảo là nguồn thức ăn chính. Tuy nhiên,
hiện nay trong sản xuất giống và ƣơng ấu trùng thì thƣờng sử dụng nguồn tảo tƣơi
làm cho chi phí gia tăng và không chủ động đƣợc nguồn thức ăn. Trƣớc tình hình
đó, việc nghiên cứu về các biện pháp sử dụng tảo là cần thiết, là mục tiêu lâu dài
nhằm góp phần nâng cao hiệu quả của nghề nuôi và sản xuất giống thân mềm 2
mảnh vỏ.
1
1.2. Mục tiêu của đề tài
Mục tiêu của đề tài nhằm nghiên cứu các biện pháp lắng tảo Chlorella làm
thức ăn cho sò huyết (Anadara granosa), nhằm góp phần chủ động đƣợc nguồn
thức ăn và giảm đƣợc chi phí trong quá trình nuôi và sản xuất giống.
1.3. Nội dung của đề tài
Theo dõi khả năng lắng tảo Chlorella bằng các loại hóa chất khác nhau:
NaOH, NaOH + PAC, PAC (Poly Alumium Chloride) để kiểm tra hiệu quả lắng
và chất lƣợng (tỷ lệ tế bào nguyên vẹn) của tảo sau khi lắng.
Sử dụng các loại tảo lắng bằng hóa chất khác nhau làm thức ăn cho sò
huyết giai đoạn giống.
1.4. Thời gian và địa điểm thực hiện
Địa điểm tiến hành: Trại thực nghiệm Động vật thân mềm- Khoa Thủy SảnĐại học Cần Thơ.
Thời gian tiến hành: 12/2012 – 2/2013.
2
CHƢƠNG 2
TỔNG QUAN TÀI LIỆU
2.1. Đặc điểm của tảo Chlorella
2.1.1. Đặc điểm phân loại
Ngành: Chlorophyta
Lớp: Trebouxiophyceae
Bộ: Chlorellales
Họ: Chlorellaceae
Chi: Chlorella (Beijerinck, 1890)
Loài: Chlorella sp.
Hình 1. Tảo Chlorella sp.
Tảo Chlorella là thực vật có nhân thực đã xuất hiện cách đây 2,5 tỷ năm,
thuộc ngành Chlorophyta và là dạng sống đầu tiên có nhân thật. Các hóa thạch kỷ
tiền Cambri đã chỉ ra sự tồn tại của Chlorella thời kỳ bấy giờ. Vì Chlorella là một
vi tảo nên nó không đƣợc biết đến cho đến cuối thế kỷ 19 và tên của nó cũng bắt
nguồn từ một từ gốc Hy lạp, chloros có nghĩa là màu xanh và ella có nghĩa là nhỏ
bé. Chlorella nằm trong nhóm sinh vật nhân thật của giới sống ở nƣớc ngọt dƣới
dạng một tế bào riêng lẻ. Theo Dƣơng Đức Tiến (1997), Chlorella là tiểu cầu tảo
(có dạng hình cầu, bán cầu hoặc hình elip), không phân nhánh. Không có tiêm
mao, không có khả năng di chuyển chủ động. Kích thƣớc tế bào chỉ bằng tế bào
hồng cầu ngƣời từ 2-10 µm tùy loài, tùy vào điều kiện và giai đoạn phát triển.
Màng tế bào có vách cellulose bao bọc.
3
2.1.2. Đặc điểm phân bố và môi trường sống
Chlorella có khả năng phân bố trong độ mặn từ 0- 35‰, nhƣng độ mặn
thích hợp cho sự phát triển là 10- 20‰. Nhiệt độ có ảnh hƣởng khác nhau đến quá
trình quang hợp của các loài tảo khác nhau và vì thế sản lƣợng tảo cũng khác
nhau. Nhiệt độ tối ƣu cho sự phát triển của Chlorella từ 25- 35oC, nhiệt độ tối đa
là 37 oC. Nhiệt độ dƣới 10oC hoặc trên 35 oC thì tảo sẽ kém phát triển. Cƣờng độ
chiếu sáng cho Chlorella theo từng giai đoạn phát triển có thể từ 500- 10000 lux
(Shigetoh Miyachi et al., 1983). Tảo Chlorella sống rất tốt trong điều kiện môi
trƣờng có pH acid yếu và trung tính, tƣơng đƣơng pH biến thiên từ 6,7- 7,5 (Daeyeon Cho et al., 1994).
2.1.3. Đặc điểm dinh dưỡng và sinh trưởng
Chlorella có màu xanh lá cây nhờ sắc tố quang hợp chlorophyll -a và b
trong lục lạp. Dƣới những điều kiện sống tối ƣu: nhiều ánh sáng, nƣớc trong và
không khí sạch Chlorella sinh sản với tốc độ vô cùng lớn. Thông qua quang hợp
chúng phát triển nhanh chóng chỉ cần lƣợng khí carbon dioxide, nƣớc, ánh sáng
mặt trời, và một lƣợng nhỏ các khoáng chất để tái sản xuất.
Nguồn dinh dƣỡng cung cấp cho tảo là nguồn dinh dƣỡng carbon (vô cơ và
hữu cơ), nguồn dinh dƣỡng nitro và nguồn dinh dƣỡng phosphate. Theo Ephraim
Cohen et al., (1984) nồng độ khí CO2 cung cấp cho hệ thống nuôi tảo Chlorella tốt
nhất là 3%. Nguồn cung cấp carbon có thể là sục khí CO2, HCO3-, hoặc NaHCO3.
Các hợp chất nitrogen mà tảo có thể sử dụng là NO3-, NO2-, NH4+, acid amin, ure,
acid uric, glutamine, asparagin, xanthin, hypoxanthin… Dinh dƣỡng nitro là thành
phần quan trọng của các hợp chất hữu cơ trong cơ thể quang tự dƣỡng nói chung
và trong qúa trình quang hợp nói riêng. Các amino acid, nucleotide là thành phần
cấu tạo nên các đại phân tử DNA, RNA, protein, chlorophyll, các enzyme của pha
sáng và pha tối. Theo Phạm Hữu Giục (1987; 1990) một trong những biểu hiện
của tảo lục sống trong điều kiện thiếu dinh dƣỡng là sự thay đổi màu sắc của
chúng từ màu xanh chuyển sang màu đỏ, da cam, bạch tạng. Những tế bào thiếu
nitro xuất hiện các cetocarotenoid mới (không tồn tại hệ sắc tố bình thƣờng của tảo
là carotenoid thứ cấp). Dinh dƣỡng phosphate là yếu tố chính cần cho sự sinh
trƣởng của tảo, dạng phosphate chính mà tảo có thể hấp thu là phosphate vô cơ
(H2PO4-, HPO42-). Tƣơng tự nhƣ triệu chứng thiếu nitro, tảo sẽ thay đổi màu sắc,
thành phần protein, chlorophyll-a, RNA, DNA, ATP giảm đi, kích thƣớc hình thái
bị thay đổi (Phạm Hữu Giục, 1991).
4
Quá trình sinh sản nói chung đƣợc chia thành nhiều bƣớc: Sinh trƣởng trƣởng thành - thành thục - phân chia.
Đối với Chlorella thời gian chiếu sáng càng lâu thì tốc độ sinh trƣởng càng
nhanh. Theo Bartsh (1961), tốc độ quang hợp của tảo tỷ lệ với sự tăng cƣờng độ
ánh sáng bão hòa nằm trong 400- 600 ft-candl (tƣơng dƣơng 1300- 1900 lux). Nếu
tăng cƣờng độ ánh sáng ở cƣờng độ tốt nhất sẽ tạo điều kiện thuận lợi cho sự phân
chia tế bào của Chlorella, nhƣng khi tăng cƣờng độ ánh sáng cao hơn mức cho
phép thì ngƣợc lại sẽ ức chế quá trình phân chia.
Theo kết quả nghiên cứu của Mayo and Noike (1994) thì pH từ 5,5- 7 thu
đƣợc lƣợng sinh khối Chlorella vulgaris cao nhất. Tại pH bằng 11,5 sự phát triển
của tảo gần sát với 0, nhƣng tại pH bằng 3 tảo vẫn có thể tồn tại.
2.1.4. Đặc điểm sinh sản
Tảo Chlorella sinh sản bằng tự bào tử. Khi gặp điều kiện thuận lợi tảo
Chlorella lớn dần và đạt đến một kích thƣớc nhất định nào đó thì phân đôi.
Nguyên sinh chất thu nhỏ lại và bắt đầu phân chia 1, 2, hoặc 3 lần liên tiếp thành
2, 4, hay 8 khối tế bào riêng rẽ có cả nhân và lục lạp. Mỗi tế bào tự tạo cho mình
một vỏ mới, vỏ cũ vỡ ra và phóng thích các tế bào con. Sự phân bào có thể xảy ra
một ngày một lần làm xuất hiện vô số tảo lục đơn bào nhanh chóng nên nƣớc dần
có màu xanh.
Hình 2. Sơ đồ vòng đời của Chlorella
5
Ngoài ra tảo Chlorella còn gặp hiện tƣợng ức chế, khi nuôi trồng với các
loài tảo khác, tảo Chlorella tiết ra một chất kìm hãm sự sinh trƣởng và sinh sản mà
theo Pratt (1942) chất này là kháng sinh đƣợc gọi là Chlorelin, còn theo Blaw
Jansen (1954) nó là hợp chất của chlorophyll, xanthophyll và carotenoid. Sau một
nồng độ nào đó thì ức chế sinh trƣởng và sinh sản của tảo.
2.1.5. Thành phần sinh hóa và dinh dưỡng
Thành phần hóa học của tế bào tảo Chlorella tùy thuộc theo chế độ sử dụng
môi trƣờng dinh dƣỡng trong quá trình phát triển.
Chlorella rất giàu protein, vitamin và các khoáng chất. Các protein của loài
tảo này có chứa tất cả các amino acid cần thiết cho nhu cầu dinh dƣỡng của ngƣời
và động vật. Rất nhiều vitamin có trong thành của Chlorella pyrenoidosa nhƣ:
Vitamin C, tiền vitamin A (β- caroten), riboflavin (B2), pyridoxine (B6), niacin
(vitamin PP), axit panthothenic (vitamin B3), axit folic (vitamin B9), vitamin B12,
biotin (vitamin H), choline, vitamin K, axit lipoic và inositol. Các sắc tố nhƣ:
sterin, carotenoid, β-caroten, xanthophyll, chlorophyll-a, chlorophyll-b. Các
nguyên tố khoáng ở Chlorella pyrenoidosa gồm có: Photpho, canxi, Kẽm, iod,
Magie, sắt, đồng và tro. Ngoài hàm lƣợng cao các vitamin, amino axit, peptit,
protein, đƣờng và axit nucleic, pyrenoidosa có chứa một chất tan trong nƣớc đƣợc
gọi là yếu tố sinh trƣởng Chlorella (CFG). CFG chiếm khoảng 5% trọng lƣợng
khô của Chlorella pyrenoidosa, là một hợp chất gồm các amino axit, protein và
axit nucleic (Dilove, 1985).
Qua các nghiên cứu cho thấy tảo Chlorella có 23 loại amino acid, trong đó
có các amino acid không thể thay thế nhƣ: Lysine, Methyonine, Trypthophan,
Arginine, Leucine… Ngoài ra, qua thành phần hóa học của tảo còn cho thấy tảo
chứa nhiều chất hữu cơ có giá trị cao, đặc biệt là protein và vitamin nhóm B.
6
2.2. Đặc điểm của sò huyết Anadara granosa
2.2.1. Vị trí phân loại và đặc điểm hình thái
Ngành: Molusca
Lớp: Bivalvia
Lớp phụ: Pteriomorphia
Bộ: Arcoida
Họ: Arcidae
Chi: Anadara
Loài: Anadara granosa (Linneus, 1758)
Hình 3. Sò huyết Anadara granosa (Linneus, 1758)
Sò huyết có vỏ dày chắc, có dạng hình trứng, cá thể lớn có vỏ dài 60 mm,
cao 50 mm, rộng 49 mm. Mặt ngoài của vỏ gờ phóng xạ rất phát triển, có khoảng
18-21 gờ. Trên mỗi gờ phóng xạ có nhiều hạt hình chữ nhật, đối với những cá thể
già ở xung quanh mép vỏ những hạt này không rõ lắm. Bản lề hình thoi, rộng, màu
nâu đen, có nhiều đƣờng đồng tâm hình thoi. Mặt trong của vỏ có màu trắng sứ,
mép vọ có nhiều mƣơng sâu tƣơng ứng với đƣờng phóng xạ của mặt ngoài. Mặt
khớp thẳng, có nhiều răng nhỏ, vết cơ khép vỏ sau lớn hình tứ giác, vết cơ khép vỏ
trƣớc nhỏ hơn hình tam giác (Nguyễn Chính, 1996). Trong máu loài này có huyết
sắc tố (màu đỏ), vì vậy gọi là Sò Huyết. Đây là đặc trƣng mà không loài nhuyễn
thể nào có, tế bào hồng cầu có hình bầu dục, nhân tế bào máu nhìn rất rõ.
7
2.2.2. Đặc điểm phân bố và môi trường sống
Sò huyết phân bố ở nhiều nƣớc trên thế giới nhƣ Trung Quốc, Thái Lan, Ấn
Độ, Malaysia, Úc, Myanma... Ở Việt Nam, sò huyết phân bố nhiều ở vùng triều
Quảng Ninh, Hải Phòng, đầm Thị Nại (Bình Định), Đầm Nại (Ninh Thuận), Bến
Tre, Trà Vinh, Sóc Trăng, Kiên Giang, Cà Mau... Trong đó, Kiên Giang là nơi có
sản lƣợng sò lớn nhất cả nƣớc (Hoàng Thị Bích Đào, 2003).
Giống sò huyết (Anadara) phân bố ở các bãi bùn mềm, ít sóng gió và nƣớc
lƣu thông. Các bãi sò thƣờng gần các cửa sông có dòng nƣớc ngọt đổ vào và nồng
độ muối tƣơng đối thấp từ 15-25‰ (Ngô Trọng Lƣ, 2004). Sò nhỏ sống trên mặt
bùn, sò lớn vùi sâu trong bùn khoảng 1-3cm. Sò không vùi sâu nên yêu cầu về chất
đáy chỉ cần khoảng 15cm bùn mềm nhƣng tốt nhất là nền đáy là bùn pha một ít cát
mịn. Sò có thể sống ở vùng triều (littoral) và vùng dƣới triều (sublittoral) đến độ
sâu vài mét. Nơi thích hợp nhất cho sò là tuyến triều thấp có thời gian phơi bãi từ
6- 10 giờ mỡi ngày, chất đáy thƣờng là bùn dày giàu chất hữu cơ, tốt nhất là nền
đáy bùn mịn (Trƣơng Vũ Kỳ và ctv., 1996).
Sò có khả năng thích nghi với phạm vị biến đổi nồng độ muối rộng từ 10 35‰ (tỉ trọng 1.007 - 1.017), khoảng thích hợp là từ 15 - 30‰. Khi nồng độ muối
giảm thấp dƣới 10‰, nhất là trong mùa mƣa lũ, sò sẽ vùi sâu xuống bùn. Nếu
trong một thời gian ngắn nồng độ muối trở lại thích hợp thì sò chui lên và tiếp tục
sống bình thƣờng, nếu tình trạng nồng độ muối thấp kéo dài có thể làm sò chết.
Phạm vi thích ứng nhiệt độ của sò cũng rất rộng từ 20-30oC.
2.2.3. Đặc điểm dinh dưỡng
Sò huyết bắt mồi thụ động bằng cách tạo ra dòng nƣớc nhờ hoạt động của
mang để lấy thức ăn. Thức ăn đi qua xoang mang, các tia mang và đƣợc lọc ở đó.
Sau 1 – 2 phút sò lại khép kín vỏ một lần để đƣa thức ăn không thích hợp cùng với
nƣớc trong xoang áo ra ngoài (Ngô Trọng Lƣ, 2004).
Nghiên cứu dinh dƣỡng của sò huyết cho thấy thức ăn của sò là mùn bã hữu
cơ (93%) và tảo (7%), trong đó tảo Silic chiếm 92% so với các ngành tảo khác
(Nguyễn Ngọc Lâm và Đoàn Nhƣ Hải, 1998) (trích dẫn bởi Lê Thị Thu Anh,
2012). Ngoài ra, nguyên sinh động vật nhƣ Tintinnopsis và Cocliella cũng đƣợc
tìm thấy trong ruột sò (trích dẫn bởi Trƣơng Quốc Phú, 1999).
Nghiên cứu của Lê Trùng Kỳ và ctv. (2005) cho thấy thức ăn thích hợp cho
sinh trƣởng và tỷ lệ sống của sò huyết ở giai đoạn sống trôi nổi là tảo
8
Nanochloropsis sp., Chaetoceros sp. và Isochrysis sp. ở mật độ 10.000 tb/ml. Sò
trƣởng thành lọc thức ăn từ 10- 100 µm. Nguồn thức ăn của sò huyết hoàn toàn
phụ thuộc vào điều kiện môi trƣờng. Sinh trƣởng của sò gắn liền với nền đáy,
nguồn thức ăn chính là mùn bã hữu cơ và tảo đơn bào sống đáy. Nhiệt độ cũng có
ảnh hƣởng đến tốc độ lọc thức ăn của sò huyết, nhiệt độ càng cao hiệu quả lọc
thức ăn càng lớn, tốc độ sinh trƣởng càng nhanh.
2.2.4. Đặc điểm sinh trưởng
Sò ở vùng hạ triều sinh trƣởng nhanh hơn vùng trung triều, do vùng hạ triều
sò vùi mình trong đáy lâu hơn, thời gian ăn dài hơn. Nhiệt độ càng cao thì lƣợng
bắt mồi càng lớn, tốc độ tăng trƣởng càng nhanh thể hiện qua các đƣờng gân của
vỏ sò.
Sò huyết sinh trƣởng tƣơng đối chậm, sò nhỏ tăng trƣởng nhanh hơn sò
lớn. Trong tự nhiên sò đạt kích thƣớc ~30 mm sau hơn 1 năm. Chúng tăng trƣởng
nhanh vào hai năm đầu, chậm dần khi qua năm thứ ba và tỷ lệ hao hụt cao (Ngô
Trọng Lƣ, 2004). Sò 1, 2, 3 tuổi bình quân chiều dài lần lƣợt là 2 cm, 2,8 cm và
3,2 cm. Sò 3 tuổi là đạt kích thƣớc thƣơng phẩm. Trong tự nhiên sò huyết có thể
sống 7- 8 năm.
Độ mặn thấp có thể làm giảm tốc độ lọc thức ăn dẫn đến giảm sinh trƣởng.
Theo Ngô Thị Thu Thảo và ctv. (2009), tỷ lệ sống của sò huyết chịu ảnh hƣởng
của nồng độ muối. Sò huyết nuôi vỗ ở độ mặn 20‰ có tỷ lệ sống cao hơn so với
10‰ và 30‰. Khi nuôi ở 30‰ chỉ số thành thục và chỉ số tuyến tiêu hóa của sò
có xu hƣớng thấp hơn đối với các cá thể đƣợc nuôi ở các độ mặn còn lại. Tuy
nhiên, chỉ số thể trạng của sò không có sự khác biệt khi nuôi ở những độ mặn khác
nhau.
2.2.5. Đặc điểm sinh sản
Sò huyết thuộc loại đẻ trứng, nhìn bên ngoài khó phân biệt đực cái. Khi
tuyến sinh dục thành thục nó chiếm đầy thể tích nội tạng. Tuyến sinh dục con đực
màu trắng sữa còn con cái màu đỏ cam. Đối với sò thành thục, khi nhiệt độ và tỷ
trọng giảm đột ngột sẽ kích thích sò sinh sản (Ngô Trọng Lƣ, 2004).
Theo Ngô Thị Thu Thảo và Trƣơng Quốc Phú (2009), sò 1 – 2 năm tuổi có
thể thành thục sinh dục và tham gia sinh sản lần đầu tiên. Sò thành thục sinh dục
lần đầu có chiều dài từ 15 – 25 mm (trung bình 20 mm). Chúng có khả năng thành
thục quanh năm, tuy nhiên, tỷ lệ thành thục cao nhất vào tháng 4 (100%) và tháng
9
9 (93%). Sò huyết có thể sinh sản 4 – 5 lần/năm. Ở sò huyết, tỷ lệ cá thể cái
thƣờng lớn hơn cá thể đực (trung bình qua các tháng trong năm là 1:2,1). Tỷ lệ
giới tính của sò hyết thay đổi theo thời gian và nhóm kích thƣớc, sò có kích thƣớc
càng lớn thì tỷ lệ cá thể cái càng tăng. Khi thành thục sò đẻ trứng và tinh trùng vào
nƣớc, trứng thụ tinh sẽ phát triển qua các giai đoạn ấu trùng bánh xe và diện bàn.
Sức sinh sản của sò huyết khác nhau giữa các nhóm tuổi. Cá thể có kích
thƣớc lớn có sức sinh sản tuyệt đối cao hơn cá thể có kích thƣớc nhỏ. Sức sinh sản
tƣơng đối của sò cao nhất khi kích thƣớc nằm trong khoảng 31- 40 mm. Trung
bình sức sinh sản tuyệt đối của sò huyết là 806.000 trứng/ cá thể; sức sinh sản
tƣơng đối là 35.900 trứng/gram (cả vỏ) và 164.000 trứng/gram (không vỏ). Theo
Hoàng Thị Bích Đào (2003) sò có thể sinh sản quanh năm nhƣng màu vụ tập trung
chủ yếu từ tháng 2 – 9, cao điểm nhất là tháng 3 – 5 và tháng 8 – 9. Sò càng lớn
sức sinh sản càng cao. Sức sinh sản của sò huyết A. nodifera tại Đầm Nại (Ninh
Thuận) là 350.300 – 3.788.00 trứng/ cá thể. Sò huyết thành thục sinh sản trong
môi trƣờng nƣớc.
2.3. Kết quả sử dụng tảo lắng làm thức ăn cho động vật thân mềm
Ngô Thị Thu Thảo và Trƣơng Quốc Phú (2012), thức ăn của các loại hàu và
vẹm là các loài tảo đơn bào có kích thƣớc ≤ 10 µm nhƣ Chlorella , Cryptomonas,
Protocetrum, Platymonas, Nannochloropsis. Ở giai đoạn trƣởng thành, theo kết
quả nghiên cứu thức ăn của hàu ngƣời ta thấy rằng thức ăn của hàu gồm có thực
vật phù du và mùn bã hữu cơ. Thực vật phù du thƣờng là các loài tảo khuê nhƣ
Coscinodiscus, Cyclotella, Skeletonema, Navicula, Nitzschia...
Knuckey et al. (2006) cho rằng khi cho hàu Thái Bình Dƣơng (Crassostrea
gigas) ăn bổ sung tảo Chaetoceros mulleri lắng bằng NaOH kết hợp với chất trợ
lắng Magnafloc LT25 đạt tốc độ tăng trƣởng gần 600% sau 25 ngày nuôi thấp hơn
có ý nghĩa thống kê so với bổ sung tảo Chaetoceros mulleri tƣơi nhƣng cao hơn có
ý nghĩa thống kê so với thức ăn không bổ sung tảo. Nhƣng ngƣợc lại, khi thí
nghiệm trên điệp Pecten fumatus thì tốc độ tăng trƣởng tăng lên 300% sau 14 ngày
nuôi khác biệt không có ý nghĩa thống kê so vói bổ sung tảo tƣơi Chaetoceros
mulleri tƣơi và cao hơn có ý nghĩa thống kê so vói thức ăn không bổ sung tảo.
Ngoài ra, trong nghiên cứu của mình Knuckey et al. (2006) đã cho thấy
rằng khi sử dụng tảo Thalassiosira cô đặc bằng phƣơng pháp giảm pH (sử dụng
NaOH kết hợp với Magnafloc LT25) thì hàu Thái Bình Dƣơng cho kết quả tăng
trƣởng tốt hơn đối với phƣơng pháp lắng tảo bằng sắt hay phƣơng pháp ly tâm.
10
Thí nghiệm của Lý Bích Thủy (2012) cho thấy tốc độ tăng trƣởng của
nghêu ăn tảo Chaetoceros lắng bằng Al2(SO4)3 và Nannochloropsis lắng bằng
FeCl3 cao hơn tốc độ tăng trƣởng của nghêu ăn hỗn hợp tảo tƣơi Chaetoceros và
Chlorella.
Thí nghiệm sử dụng các loại tảo lắng làm thức ăn thử nghiệm cho nghêu
giống của Lý Bích Thủy (2012), kết quả sau 90 ngày nuôi cho thấy nghêu đạt tỷ lệ
sống cao nhất (15,63%) khi cho ăn tảo Chaetoceros lắng bằng Al2(SO4)3, tỷ lệ
sống thấp nhất khi cho ăn bằng Nannochloropsis lắng bằng FeCl3 (3,33%). Khi
cho ăn bằng Nannochloropsis lắng bằng NaOH và Al2(SO4)3 thì tỷ lệ sống của
nghêu sau 90 ngày nuôi là bằng 0.
Vấn đề nghiên cứu sử dụng thức ăn nhân tạo phù hợp nhằm thay thế tảo
tƣơi đơn bào giúp giảm giá thành sản xuất tảo đồng thời chủ động và hạn chế sự
phụ thuộc vào nuôi tảo, nhiều nhà nghiên cứu đã tìm những loại thức ăn thay thế
tảo tƣơi nhƣ sử dụng tảo khô (Liang và Millican, 1992), tảo cô đặc bảo quản lạnh
(Donalson, 1991; O’Connor và Nell, 1992), thức ăn nhân tạo có đủ thành phần
dinh dƣỡng nhƣ protein, lipid,…(Jones et al., 1984; Kreeger và Langdon, 1994),
nhƣng cho đến nay vấn đề nghiên cứu hoàn thiện qui trình nuôi tảo và nghiên cứu
tìm thức ăn thay thế tảo tƣơi đang đƣợc tiến hành, xong tảo tƣơi vẫn là thức ăn
không thể thiếu trong ƣơng nuôi ấu trùng nhuyễn thể (Nguyễn Thị Xuân Thu,
2006).
11
CHƢƠNG 3
VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
3.1. Đối tƣợng nghiên cứu
Nguồn tảo Chlorella thuần ở độ mặn 25% đƣợc mua từ Phòng thí nghiệm
Khoa Thủy sản, Trƣờng Đại học Cần Thơ.
Sò huyết giống có chiều dài từ 15- 20mm đƣợc mua từ An Minh, Kiên
Giang và chuyển về khoa Thủy sản, Trƣờng Đại học Cần Thơ. Sau đó, sò đƣợc
thuần ở độ mặn 20‰ trong một tuần rồi tiến hành thí nghiệm.
3.2. Vật liệu nghiên cứu
3.2.1. Dụng cụ và hóa chất thí nghiệm
- Bể xử lý nƣớc: sử dụng bể composit có thể tích 1m3/ bể (2 bể).
- Bể nuôi tảo: bể composit có thể tích 1m3/bể (1 bể).
- Keo thủy tinh 10L/keo (9 keo).
- Hệ thống sục khí: ống dẫn khí, van điều chỉnh, đá bọt, máy thổi khí.
- Dụng cụ kiểm tra môi trƣờng: nhiệt kế, bộ test (NH4+/NH3, NO2-, pH).
- Các dụng cụ khác: cân điện tử, thƣớc kẹp, kính hiển vi, buồng đếm tảo
Improved Neubauer, máy bơm nƣớc, rổ nhựa.
- Hóa chất: NaOH, PAC, chlorine, formol thƣơng mại (40%),...
3.2.2. Nguồn nước sử dụng thí nghiệm
Nƣớc ngọt đƣợc lấy từ nguồn nƣớc máy và nƣớc mặn đƣợc cung cấp từ
ruộng muối Vĩnh Châu, có độ mặn 80 – 100‰. Nƣớc dùng thí nghiệm đƣợc pha
từ hai nguồn nƣớc trên. Nƣớc sau khi pha đƣợc xử lý bằng Chlorine nồng độ
20ppm trong vòng 48 giờ, trung hòa bằng Natri thiosulphate.
3.2.3. Nuôi sinh khối tảo kết hợp với cá rô phi
Nƣớc nuôi sinh khối đƣợc xử lý chlorine với nồng độ 20ppm, trong 48 giờ.
Cá rô phi vằn (Oreochromis niloticus) với kích cỡ 15g/con, mật độ thả nuôi
20 con/bể. Cá đƣợc tắm formol 200ppm trong 30 phút, sau đó thuần hóa ở độ mặn
20‰ và thả vào bể để gây nuôi tảo, mỗi ngày cho cá ăn bằng thức ăn viên có hàm
12
lƣợng đạm 30%, cho ăn 2 lần/ngày (lúc 7h và 17h) với lƣợng thức ăn bằng 3%
trọng lƣợng thân (Trần Công Bình, 2004). Sau 5 – 7 ngày, tảo Chlorella bắt đầu
xuất hiện và phát triển trong bể nuôi cá. Khi tảo trong bể nuôi sinh khối đạt đến
mật độ 105 – 106 tb/ml có thể tiến hành lắng cho sò ăn.
3.3. Phƣơng pháp bố trí thí nghiệm, phƣơng pháp thu và xử lý số liệu
3.3.1. Thí nghiệm 1: Ảnh hƣởng của các hóa chất khác nhau đến hiệu
suất lắng và tỷ lệ sống của tảo Chlorella
3.3.1.1. Bố trí thí nghiệm
Thí nghiệm một nhân tố đƣợc bố trí hoàn toàn ngẫu nhiên gồm 3 nghiệm
thức, mỗi nghiệm thức đƣợc bố trí trong 3 keo thủy tinh 10L, và lặp lại 3 lần. Với
mật độ tảo ban đầu là 2-3 triệu tế bào/mL. Tảo lắng bằng các hóa chất khác nhau
là NaOH (96%), PAC với liều lƣợng lần lƣợt là 60mg/L và 10mg/L (Trƣơng Quốc
Phú, 2008). Thí nghiệm đƣợc bố trí nhƣ sau:
- Nghiệm thức 1: lắng bằng NaOH (60mg/L)
- Nghiệm thức 2: lắng bằng NaOH (30mg/L) + PAC (5mg/L)
- Nghiệm thức 3: lắng bằng PAC (10mg/L)
Thí nghiệm đƣợc tiến hành trong vòng 24h.
3.3.1.2. Thu và xử lý số liệu
* Các yếu tố theo dõi:
- Xác định giá trị pH trƣớc và sau khi sử dụng hóa chất bằng dung dịch pH
Test.
- Mật độ lắng đƣợc xác định bằng cách sử dụng micropipette thu phần nƣớc
phía trên mặt với 3 lần lặp lại sau mỗi 1 giờ. Mẫu đƣợc cố định trong dung dịch
formol 5% và đếm dƣới kính hiển vi bằng buồng đếm Improved Neubauer. Trong
quá trình đếm mẫu, chỉ xác định số tế bào còn nguyên vẹn hình dạng.
- Hiệu suất lắng đƣợc xác định theo công thức:
Hiệu suất lắng (%) =
Ci - Cf
Ci
13
x 100
Trong đó: Ci là mật độ tảo trƣớc khi xử lý hóa chất và Cf là mật độ tảo sau
khi xử lý hóa chất
Quá trình thu mẫu kết thúc khi tốc độ lắng đạt trên 80%.
- Tỷ lệ sống của tế bào tảo đƣợc xác định mỗi 2 ngày bằng công thức:
Tỷ lệ sống (%) =
m
n
x 100
Trong đó: m là số tế bào còn nguyên và n là tổng số tế bào
- Công thức tính mật độ tảo nhƣ sau:
Mật độ tảo (tb/mL) =
a x 104
xH
64
Trong đó: a là số tế bào đếm đƣợc trong tất cả các ô nhỏ và H là hệ số pha
loãng
3.3.2. Ảnh hƣởng của tảo Chlorella lắng đến tốc độ sinh trƣởng, tỷ
lệ sống và chỉ số độ béo của sò huyết Anadara granosa
3.3.2.1. Bố trí thí nghiệm
Sò huyết giống với chiều dài từ 15- 20 mm đƣợc bố trí 12 con/keo thủy tinh
10L (3 con/L), đƣợc cho ăn tảo Chlorella lắng bằng 3 loại hóa chất khác nhau, thí
nghiệm đƣợc bố trí hoàn toàn ngẫu nhiên với 4 nghiệm thức và 3 lần lặp lại nhƣ
sau:
- Nghiệm thức 1: sò huyết đƣợc cho ăn tảo Chlorella tƣơi đem ly tâm
- Nghiệm thức 2: sò huyết đƣợc cho ăn tảo Chlorella lắng bằng NaOH
- Nghiệm thức 3: sò huyết đƣợc cho ăn tảo Chlorella lắng bằng NaOH và
PAC
- Nghiệm thức 4: sò huyết đƣợc cho ăn tảo Chlorella lắng bằng PAC
Tảo đƣợc cho ăn với mật độ 10.000- 30.000 tb/mL (đƣợc kiểm tra mật độ
trƣớc khi cho ăn).
14
Quá trình thí nghiệm đƣợc kéo dài trong 4 tuần. Nƣớc trong mỗi keo nuôi
sò đƣợc thay mới sau mỗi 7 ngày.
3.3.2.2. Thu và xử lý số liệu
* Các yếu tố môi trường
Nhiệt độ đƣợc kiểm tra hằng ngày vào buổi sáng lúc 7h và vào buổi chiều
lúc 14h bằng nhiệt kế.
Các chỉ tiêu pH, NH4+/NH3 (mg/L), NO2- (mg/L) đƣợc thu mẫu mỗi 5 ngày
vào lúc 8h sáng để kiểm tra bằng các bộ Test SERA (Sản xuất tại Đức).
* Tốc độ lọc của sò huyết
Tốc độ lọc thức ăn của sò đƣợc kiểm tra trong vòng 24h bằng cách kiểm tra
mật độ tảo trƣớc và sau khi cho ăn. Tốc độ lọc tảo đƣợc kiểm tra mỗi 3 ngày/lần (2
lần/tuần).
Tốc độ lọc đƣợc tính theo công thức sau:
To – T24
ACR (%/ngày) =
× 100
To
Trong đó: To là mật độ tảo ban đầu lúc cho ăn (tb/mL) và T24 là mật độ tảo
sau 24h cho ăn (tb/mL)
* Tỷ lệ sống của sò huyết
Tỷ lệ sống của sò huyết đƣợc kiểm tra hằng ngày.
Tỷ lệ sống đƣợc tính theo công thức sau:
Tổng số cá thể cuối
TLS (%) =
Tổng số cá thể ban đầu
× 100
* Chỉ số độ béo và chỉ số thể trạng của sò huyết
Trƣớc lúc bố trí thí nghiệm thu 5 con sò và sau khi kết thúc thí nghiệm thu
9 con/ nghiệm thức để kiểm tra chỉ số độ béo và chỉ số thể trạng.
Chỉ số độ béo đƣợc xác định bằng công thức Quayle và Newkirt (1989):
Khối lƣợng thịt x 1000
15
Độ béo (%) =
(Chiều dài)
3
× 100
Chỉ số thể trạng đƣợc tính theo công thức của Broom (1981):
Khối lƣợng thịt sấy khô
CI (mg/g) =
Khối lƣợng vỏ sấy khô
× 1000
3.4. Phƣơng pháp xử lý và phân tích số liệu
Số liệu đƣơc thu thập và xử lý gia trị trung bình, phƣơng sai và độ lệch
chuẩn bằng phần mềm Excel. So sánh thống kê đƣợc thực hiện qua phân tính oneway ANOVA và so sánh các giá trị trung bình với phép thử Duncan bằng phần
mềm thống kê SPSS 16.0 ở mức tin cậy P< 0,05.
16
CHƢƠNG 4
KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
4.1. Kết quả thí nghiệm 1: Ảnh hƣởng của các loại hóa chất khác nhau đến
hiệu suất lắng và tỷ lệ tế bào nguyên vẹn
4.1.1. Hiệu suất lắng của tế bào tảo Chlorella
Mật độ ban đầu của tảo Chlorella là 2.000.000 - 3.000.000 tb/mL. Kết quả
cho thấy tảo lắng bằng PAC có hiệu suất lắng tốt nhất đạt kết quả 88,15% sau 7
giờ lắng, kế đến là NaOH + PAC đạt 85,74% và cuối cùng là NaOH đạt 85,54%
(Bảng 4.1). Trong 5 giờ từ lúc bắt đầu lắng, hiệu suất lắng có sự khác biệt rất có ý
nghĩa thống kê giữa các nghiệm thức (P0,05)
4.1.2. Tỷ lệ nguyên vẹn của tế bào tảo Chlorella
Tảo sau khi lắng đƣợc bảo quản trong tủ mát ở nhiệt độ 10oC, sau hơn 10
ngày thí nghiệm, tỷ lệ sống của tế bào tảo ở tất cả các nghiệm thức đều giảm tới
mức dƣới 50%. Tuy nhiên, nhìn chung thì tỷ lệ sống của tảo lắng bằng PAC
(48,22%) cao hơn so với 2 nghiệm thứ còn lại, nhƣng khác biệt không có ý nghĩa
thống kê giữa các nghiệm thức (Bảng 4.2). Theo Knuckey (2006), tảo lắng khi
17
quan sát dƣới kính hiển vi khó phân biệt với tảo tƣơi và chlorophyll của chúng ít
bị phân hủy sau 2 tuần dự trữ. Harith et al. (2009) cho rằng pH cũng làm ảnh
hƣởng đến tỷ lệ sống của tảo, khi pH càng cao thì tỷ lệ sống càng giảm, khi pH ổn
định bằng 8 thì tỷ lệ sống của tảo có thể đạt 98%. Sử dụng NaOH lắng tảo làm
tăng pH lên 10 và 10,2 tỷ lệ sống của tảo lần lƣợt là 78% và 68%.
Bảng 4.2. Tỷ lệ sống (%)của tế bào tảo Chlorella theo thời gian
Thời gian (giờ)
24
72
120
168
216
264
NaOH
a
91±1,87
80,33±1,94a
67,33±2,45a
59,56±2,6a
53,11±3,14a
46,56±2,3a
Hóa chất lắng tảo
NaOH + PAC
a
90,44±2,19
78,33±1,66b
66,78±2,17a
60,11±3,22a
51,78±1,86a
46,67±3,2a
PAC
90,44±1,51a
78,89±1,27b
62,44±1,42b
61,78±1,72a
50,78±2,11a
48,22±1,92a
Các số liệu có chữ cái giống nhau trong cùng một hàng chứng tỏ khác biệt không có ý nghĩa thống
kê (P>0,05)
4.2. Kết quả thí nghiệm 2 : Ảnh hƣởng của tảo lắng đến tỷ lệ sống, tốc độ lọc
và chỉ số độ béo của sò huyết
4.2.1. Kết quả thí nghiệm tốc độ lọc và tỷ lệ sống của sò huyết trong 30 ngày
4.2.1.1. Các yếu tố môi trường
a) Nhiệt độ (oC)
Trong 30 ngày nuôi nhiệt độ có sự biến động lớn, buổi sáng dao động từ
26-31 C, buổi chiều từ 26-33,5 oC do thí nghiệm đƣợc thực hiện vào mùa mƣa.
Nhiệt độ trung bình khoảng 29oC (Hình 4.1), nằm trong khoảng thích hợp cho sự
phát triển của sò huyết. Biên độ nhiệt thích hợp cho sò từ 20-30oC (Trƣơng Quốc
Phú và Ngô Thị Thu Thảo, 2012).
o
18
34
32
Nhiệt độ (oC)
30
28
26
24
Chiều
Sáng
22
20
1
4
7
10
13
16
19
22
25
28
Ngày
Hình 4.1. Biến động nhiệt độ (oC) trong thời gian thí nghiệm
b) pH
Trong quá trình thí nghiệm pH dao động từ 8-8,7 và không có sự khác biệt
giữa các nghiệm thức. pH có liên quan chặt chẽ đến các yếu tố thủy hóa trong
nƣớc nên cần duy trì hệ pH ổn định giúp sò huyết sinh trƣởng và phát triển tốt
hơn. pH là yếu tố ảnh hƣởng đến đời sống thủy sinh vật, pH từ 6,5-8,5 thích hợp
cho nuôi trồng thủy sản (Trƣơng Quốc Phú, 2006).
c) NH4+/NH3 (mg/L)
Hàm lƣợng NH4+/NH3 có xu hƣớng tăng dần ở ngày 21 trở về sau và không
có sự biến động lớn giữa các nghiệm thức (Hình 4.2). Tuy nhiên, vào ngày thứ 5
hàm lƣợng NH4+/NH3 ở NT2 và NT3 tăng cao đến 1,5 mg/L có thể là hàm lƣợng
thức ăn dƣ thừa nhiều. Tính độc của NH4+/NH3 đối với thủy sinh vật chủ yếu ở
dạng tự do. Hàm lƣợng NH4+/NH3 có liên quan chặt chẽ đến pH và nhiệt độ ao
nuôi, khi pH và nhiệt độ tăng hàm lƣợng NH4+/NH3 trong nƣớc cũng sẽ tăng
(Trƣơng Quốc Phú, 2006). Boyd (1998) hàm lƣợng NH4+/NH3 mà các loài thủy
sản có thể sinh trƣởng là 0,2-2mg/L.
19
1.6
Ly tâm
NaOH+PAC
NH4 + /NH3 (mg/L)
1.4
NaOH
PAC
1.2
1
0.8
0.6
0.4
0.2
0
1
5
10
15
20
25
30
Ngày
Hình 4.2. Biến động hàm lƣợng NH4+/NH3 (mg/L) trong 30 ngày thí nghiệm
d) NO2- (mg/L)
Hàm lƣợng NO2 tăng dần trong quá trình nuôi và giảm sau khi thay nƣớc.
Hàm lƣợng NO2 có thể tăng cao đến 40mg/L, ở nghiệm thức NaOH có hàm lƣờng
NO2 thấp hơn nghiệm thức tảo ly tâm, nghiệm thức tảo lắng bằng NaOH+PAC và
nghiệm thức tảo lắng PAC, tuy nhiên sự khác biệt giữa các nghiệm thức không có
ý nghĩa thống kê (P > 0,05). Mặc dù trong quá trình thí nghiệm có thay nƣớc định
kì, tuy nhiên hàm lƣợng NO2 rất cao do thức ăn là tảo đƣợc lắng bằng các hóa chất
làm các tế bào tảo kết cụm lại với nhau và lắng xuống đáy bể, làm giảm chất lƣợng
nƣớc, làm gia tăng NO2 và ảnh hƣởng đến sức khỏe của sò. Theo Boyd (1998)
hàm lƣợng NO2 nên thấp hơn 0,1 mg/L. Kết quả nghiên cứu của Ngô Thị Thu
Thảo và Trƣơng Trọng Nghĩa (2001) khi khảo sát khả năng chịu đựng stress của
sò huyết (Anadara granosa), sò có xu hƣớng khép chặt vỏ khi điều kiện môi
trƣờng bất lợi và do tập tính sống vùi nên sò huyết có khả năng chịu đựng hàm
lƣợng này khá cao. Chính khả năng khép chặt vỏ đã giúp sò trong thí nghiệm có
khả năng chịu đựng đƣợc sự tăng cao của NO2.
20
60
Ly tâm
NaOH
NaOH+PAC
PAC
NO 2- (mg/L)
50
40
30
20
10
0
1
5
10
15
20
25
30
Ngày
Hình 4.3. Biến động hàm lƣợngNO2 (mg/L) trong 30 ngày thí nghiệm
4.2.1.2. Khối lượng và tỷ lệ sống của sò sau 30 ngày thí nghiệm
a) Tỷ lệ sống của sò huyết
Sau 30 ngảy thí nghiệm, kết quả tỷ lệ sống đạt cao nhất khi cho sò ăn tảo
lắng bằng NaOH + PAC (94,44%), tiếp theo là nghiệm thức cho ăn tảo ly tâm và
nghiệm thức tảo lắng bằng NaOH (88,89%) và thấp nhất là nghiệm thức tảo lắng
bằng PAC 80,56%, tuy nhiên sự khác biệt giữa các nghiệm thức không có ý nghĩa
thống kê (P >0,05). Tỷ lệ sống của sò huyết giảm dần theo thời gian thí nghiệm và
chết nhiều ở những ngày đầu thí nghiệm (Hình 4.4). Tỷ lệ sống của sò huyết có thể
bị ảnh hƣởng bởi nhiều yếu tố nhƣ nền đáy (thiếu đáy bùn, cát bùn), thức ăn là tảo
lắng (hóa chất còn tồn lắng, dễ bị kết cụm, tảo bị chết, thành phần dinh dƣỡng có
thể bị thất thoát trong quá trình lắng), ngoài ra thức ăn dƣ thừa sẽ làm giảm chất
lƣợng nƣớc và làm tăng hàm lƣợng NH3/NH4+, NO2- có thể gây độc cho sò.
21
Ly tâm
NaOH
NaOH+PAC
PAC
100
Tỷ lệ sống (%)
80
60
40
20
0
1
10
20
30
Ngày
Hình 4.4. Tỷ lệ sống (%)của sò huyết trong thời gian thí nghiệm
b) Khối lượng (g) của sò huyết
Khối lƣợng sò giữa các nghiệm thức lúc mới bố trí thí nghiệm khác biệt
không có ý nghĩa, trung bình 5,64±0,75g. Khối lƣợng sò có sự tăng trƣởng dƣơng
ở các nghiệm thức vào 10 ngày đầu, tuy nhiên sự tăng trƣởng khối lƣợng của sò
bắt đầu chậm lại và có xu hƣớng âm từ ngày 20 đến khi kết thúc thí nghiệm (Bảng
4.3). Nhìn chung ở nghiệm thức cho ăn tảo ly tâm, sò giảm khối lƣợng ít hơn các
nghiệm thức còn lại, chỉ giảm 0,04g sau 30 ngày thí nghiệm và khối lƣợng sò
giảm nhiều nhất 0,28g ở nghiệm thức sử dụng thức ăn là tảo lắng bằng NaOH,
nhƣng sự khác biệt giữa các nghiệm thức không có ý nghĩa thống kê (P>0,05).
Bảng 4.3. Khối lƣợng (g) sau 30 ngày thí nghiệm
Ngày thí nghiệm
Tăng khối
lƣợng
Nghiệm thức
1
Tảo ly tâm
NaOH
NaOH+ PAC
PAC
10
a
5,59±0,81
5,7±0,9 a
5,72±0,66 a
5,56±0,63 a
20
a
5,62±0,81
5,67±0,88 a
5,72±0,69 a
5,59±0,62 a
30
a
5,6±0,84
5,6±0,93 a
5,65±0,69 a
5,55±0,59 a
a
5,52±0,83
5,42±0,94 a
5,6±0,7 a
5,41±0,71 a
(g)
-0,04±0,08a
-0,28±0,1a
-0,12±0,08a
-0,14±0,23a
Các số liệu có chữ cái giống nhau trong cùng một cột chứng tỏ khác biệt không có ý nghĩa thống kê
(P>0,05)
22
c) Tốc độ lọc của sò huyết
Nhìn chung, tốc độ lọc của sò huyết tăng dần theo thời gian thí nghiệm. Tốc
độ lọc của sò huyết đạt cao nhất ở nghiêm thức cho sò ăn tảo ly tâm
72,13±17,86% (Bảng 4.4), tuy nhiên sự khác biệt này không có ý nghĩa thống kê
so với các nghiệm thức còn lại (P > 0,05).
Bảng 4.4. Tốc độ lọc (%) của sò huyết trong thời gian thí nghiệm
Nghiệm thức
Ngày thí
nghiệm
Ly tâm
NaOH
NaOH + PAC
PAC
1
43,71±4,71a
75,83±0,95b
69,52±6,3 b
73,06±2,07 b
3
49,28±3,15 a
60,49±27,99 a
53,61±12,51 a
41,87±13,96 a
6
56,15±3,68 a
60,49±28,57 a
58,19±4,4 a
56,5±3,29 a
9
66,58±4,33 a
80,48±4,07 b
81,84±2,31 b
81,09±4,75 b
12
82,76±3,36 a
55,4±8,67 b
36,34±14,62 b
38,62±11,99 b
15
93,86±1,98 a
93,02±0,96 a
68,77±3,54 b
66,18±16,71 b
18
87,9±1,62 a
92,23±2,4 a
62,93±5,9 b
74,45±11,71 b
21
72,62±11,23 a
71,94±21,16 a
67,82±3,12 a
68,29±7,14 a
24
84,4±3,27 a
73,47±8,4 b
71,45±5,69 b
56,43±7,58 c
27
86,34±5,98 a
69,86±2,45 b
85,08±0,83 a
71,04±5,96 b
Trung bình
72,13±17,86a
70,98±20,47a
65,63±14,77a
62,75±15,76a
Các số liệu có chữ cái giống nhau trong cùng một hàng chứng tỏ khác biệt không có ý nghĩa thống kê
(P>0,05)
Các yếu tố khác nhau nhƣ nhiệt độ, mật độ tảo, tình trạng sức khỏe của sò,
kích cỡ thức ăn,…đều có ảnh hƣởng tới khả năng lọc thức ăn của sò. Khi nhiệt độ
tăng, mật độ tảo tăng sẽ làm tăng khả năng lọc của sò huyết Anadara granosa
(Dƣơng Thị Hoàng Oanh, Nguyễn Thị Kim Liên và Huỳnh Trƣờng Giang, 2013).
Kết quả nghiên cứu của Khalil (1996) cũng cho rằng tốc độ lọc của sò Tapes
decussates tăng khi mật độ tảo cho ăn đƣợc tăng lên. Nhƣng một số kết quả nghiên
cứu khác cũng chỉ ra rằng nếu lƣợng thức ăn quá nhiều cũng làm giảm tốc độ lọc
của nhóm hai mảnh vỏ và điều này cũng phụ thuộc vào khả năng lọc của từng
giống loài hai mảnh vỏ khác nhau. Theo Schulte (1975) loài hàu Ostrea virginica
sẽ giảm tốc độ bơm khi mật độ tảo Nitzchia closterium vƣợt quá 7 – 8×104 tb/ml,
còn Loosanoff và Engle (1947) cho rằng với các loài tảo có kích thƣớc nhỏ nhƣ
23
tảo Chlorella khi cho ăn ở mật độ rất cao (5,4×106 tb/ml) mới gây ảnh hƣởng đến
tốc độ lọc của hàu. Tƣơng tự, khi nghiên cứu trên vẹm tím Mytilus edulis thì
Davids (1964) cũng cho rằng đối với tảo rất nhỏ nhƣ Chlorella khi mật độ vƣợt
quá 4×104 tb/ml thì vẹm giảm tốc độ lọc. Thí nghiệm cho sò ăn với mật độ tảo từ
10.000- 30.000 tb/mL, mật độ này không cao do đó tốc độ lọc của sò không bị ảnh
hƣởng bởi việc cho ăn với mật độ cao. Tuy nhiên, trong thí nghiệm đã sử dụng tảo
lắng làm thức ăn cho sò, các loại thức ăn này dễ bị kết cụm và lắng ở đáy bể làm
tăng kích cỡ hạt thức ăn do đó sò có thể giảm ăn. Khả năng lọc thức ăn của sò
huyết từ 10 - 100 µm (Lê Trung Kỳ, 2005).
d) Chỉ số độ béo và chỉ số thể trạng của sò huyết
Sò huyết có chỉ số độ béo ban đầu là 4,49±0,78% và chỉ số này đều giảm ở
tất cả các nghiệm thức. Độ béo của sò huyết giữa các nghiệm thức không có sự
biến động lớn (3,65 - 4,03%), giá trị cao nhất ghi nhận đƣợc ở nghiệm thức sò
huyết cho ăn tảo ly tâm (4,03±0,98%) và khác biệt không có ý nghĩa so với các
nghiệm thức còn lại (Bảng 4.5). Theo Nguyễn Chính và ctv. (2001) chỉ số độ béo
phụ thuộc vào điều kiện môi trƣờng (điều kiện dinh dƣỡng) và mùa vụ sinh sản.
Ngô Anh Tuấn và ctv. (2007) cho rằng ở hàu độ béo và sự thành thục sinh dục có
liên quan mật thiết với nhau. Zhuang và Wang (2004) cho rằng nghêu dầu
(Meretrix meretrix) có kích thƣớc khác nhau có thể điều chỉnh tỷ lệ tiêu hóa khác
nhau để đáp ứng nhu cầu dinh dƣỡng và năng lƣợng, nhƣng kích thƣớc cơ thể
không ảnh hƣởng đến khả năng hấp thu của nghêu. Hệ số độ béo cao khả năng tích
lũy về chất cao và cung cấp đủ chất dinh dƣỡng cho quá trình phát triển của tuyến
sinh dục. Kết quả này cũng đƣợc ghi nhận ở sò huyết (Hoàng Thị Bích Đào,
2004).
Bảng 4.5. Chỉ số độ béo và chỉ số thể trạng của sò huyết sau 30 ngày thí
nghiệm
Nghiệm thức
Chỉ số độ béo (%)
CI (mg/g)
Ban đầu
4,49±0,78a
40,93±7,58 b
Tảo ly tâm
4,03±0,98 ab
32,63±4,13 a
NaOH
4,00±0,63 ab
31,87±5,17 a
NaOH + PAC
3,66±0,69 b
32,08±4,98 a
PAC
3,65±0,65 b
28,32±2,88 a
Các số liệu có chữ cái giống nhau trong cùng một cột chứng tỏ khác biệt không có ý nghĩa thống kê
(P>0,05)
24
Chỉ số thể trạng ban đầu của sò huyết là 40,93±7,58mg/g, sau khi kết thúc thí
nghiệm chỉ số này đã giảm so với ban đầu. Chỉ số CI ở nghiệm thức tảo ly tâm đạt
cao nhất (32,63±4,13mg/g) và thấp nhất ở nghiệm thức PAC (28,32±2,88mg/g)
tuy nhiên sự khác biệt không có ý nghĩa giữa các nghiệm thức (Bảng 4.5). Kết quả
nghiên cứu của Trần Quang Minh (1999) thì vào mùa mƣa nhiệt độ và độ mặn
thấp nghêu thƣờng giảm ăn. Điều tƣơng tự cũng xảy ra đối với sò huyết vì trong
khoảng thời gian thí nghiệm cũng là mùa mƣa. Ngoài ra, trong quá trình thí
nghiệm hàm lƣợng các chất nhƣ NO2-, NH4+/NH3… tăng cao sò phải khép vỏ nên
giảm ăn, hơn nữa sò cũng phải tốn năng lƣợng duy trì hoạt động cơ thể.
4.2.2. Kết quả các yếu tố môi trƣờng và các chỉ số sinh học của sò huyết
trong điều kiện không cho ăn
4.2.2.1. Các yếu tố môi trường
Nhiệt độ trong 12 ngày thí nghiệm dao động từ 27-33oC (Hình 4.5).
34
Nhệt độ (oC)
32
30
28
26
24
22
Chiều
Sáng
20
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
Ngày
Hình 4.5. Biến động nhiệt độ (oC) trong 12 ngày
Trong suốt thời gian thí nghiệm giá trị pH ổn định ở mức 8,7 và nằm trong
mức cho phép.
Hàm lƣợng NH4+ /NH3 cũng có sự gia tăng trong 12 ngày kiểm tra, trong 8
ngày đầu tiên hàm lƣợng này không có khác biệt ở các nghiệm thức, trung bình
dao động từ 0,25 – 0,5 mg/L, tuy nhiên từ ngày thứ 8 đến khi kết thúc thí nghiệm
thì có sự khác biệt ở các nghiệm thức (Hình 4.6), cao nhất ở nghiệm thức NaOH
(1,25 mg/L), thấp nhất ở nghiệm thức tảo ly tâm (0,5 mg/L).
25
1.4
NH4 + /NH3 (mg/L)
1.2
Ly tâm
NaOH
NaOH+PAC
PAC
1
0.8
0.6
0.4
0.2
0
1
4
8
12
Ngày
Hình 4.6. Biến động hàm lƣợng NH4+/NH3 (mg/L) trong 12 ngày
Hàm lƣợng NO2 tăng dần ở tất cả các nghiệm thức, cao nhất là ở nghiệm
thức NaOH (10,89 mg/L) và thấp nhất ở nghiệm thức tảo ly tâm (4,67 mg/L), thể
hiện qua hình 4.7. Hàm lƣợng NO2 ở các nghiệm thức đều vƣợt mức cho phép nhƣ
ở phần thí nghiệm trên, cũng nhờ khả năng khép chặt vỏ nên giúp chúng hạn chế
đƣợc các yếu tố bất lợi bên ngoài tuy nhiên hàm lƣợng này tăng quá cao cũng gây
ảnh hƣởng không tốt đến quá trình sinh trƣởng của sò.
25
Ly tâm
NaOH
NaOH+PAC
PAC
NO 2- (mg/L)
20
15
10
5
0
1
4
8
Ngày
Hình 4.7. Biến động hàm lƣợng NO2 (mg/L) trong 12 ngày
26
12
4.2.2.2. Khối lượng và tỷ lệ sống của sò huyết sau 12 ngày thử nghiệm
a) Tỷ lệ sống của sò huyết
Sau 12 ngày không cho sò ăn, sò ở nghiệm thức tảo ly tâm có khả năng chịu
đói khá tốt với tỷ lệ sống cao nhất đạt 89,17%, và thấp nhất (60,95%) ở khi cho sò
ăn tảo lắng bằng PAC (Hình 4.8), tuy nhiên khác biệt về tỷ lệ sống giữa các
nghiệm thức không có ý nghĩa thống kê (P >0,05). Tỷ lệ sống của sò huyết ở thí
nghiệm này bị ảnh hƣởng bởi khả năng tích lũy thức ăn và năng lƣợng của sò đƣợc
nuôi bằng tảo lắng vì nếu sò có tình trạng sức khỏe tốt, tích lũy nhiều năng lƣợng
thì duy trì hoạt động cơ thể lâu hơn, sẽ cho kết quả tỷ lệ sống tốt hơn.
Ly tâm
NaOH
NaOH+PAC
PAC
100
Tỷ lệ sống (%)
80
60
40
20
0
1
4
8
12
Ngày
Hình 4.8. Tỷ lệ sống (%)của sò huyết sau 12 ngày thí nghiệm
b) Khối lượng
Ở giai đoạn thí nghiệm này thì khối lƣợng sò có xu hƣớng tăng, tăng cao
nhất 0,39g ở nghiệm thức tảo lắng bằng NaOH còn sò ở nghiệm thức tảo ly tâm
khối lƣợng sò đã giảm đi 0,05g (Bảng 4.6) và khác biệt giữa các nghiệm thức
không có ý nghĩa thống kê (P >0,05). Theo Willow (1992) thì tốc độ tăng trƣởng
của loài hai mảnh vỏ là sự kết hợp giữa thời gian thức ăn lƣu giữ trong ruột, khả
năng tiêu hóa, hệ số thức ăn, số lƣợng và chất lƣợng thức ăn.
27
Bảng 4.6. Khối lƣợng (g) sau 12 ngày thử nghiệm khả năng chịu đói của
sò
Ngày thí nghiệm
Nghiệm thức
Tảo ly tâm
NaOH
NaOH+ PAC
PAC
1
4
8
12
5,47±0,58a
5,4±0,78a
5,65±0,53a
5,47±0,69a
5,5±0,51a
5,66±0,72a
5,8±0,55a
5,78±0,46a
5,44±0,51a
5,73±0,7 a
5,73±0,5a
5,74±0,4 a
5,43±0,5a
5,7±0,75a
5,66±0,56a
5,8±0,37a
Tăng khối
lƣợng
(g)
-0,05±0,19a
0,39±0,34a
0,01±0,09a
0,30±0,39a
Các số liệu có chữ cái giống nhau trong cùng một hàng chứng tỏ khác biệt không có ý nghĩa thống
kê (P>0,05).
c) Chỉ số độ béo và chỉ số thể trạng của sò huyết
Chỉ số độ béo của sò đều giảm ở tất cả các nghiệm thức sau 12 không cho
ăn. Độ béo của sò huyết giữa các nghiệm thức không có sự biến động lớn (3,66 4,06%) sau 12 ngày thí nghiệm, giá trị cao nhất ghi nhận đƣợc ở nghiêm thức
NaOH (4,06±0,38%) và khác biệt không có ý nghĩa thống kê so với các nghiệm
thức còn lại (Bảng 4.7).
Chỉ số thể trạng của sò huyết sau khi kết thúc thí nghiệm đã giảm đáng kể
so với ban đầu, do trong thời gian thí nghiệm này sò không đƣợc cho ăn nên phải
tốn nhiều năng lƣợng để duy trì hoạt động sống của cơ thể dẫn đến khối lƣợng cơ
thể giảm sút. Chỉ số CI ở sò cho ăn bằng tảo ly tâm đạt cao nhất (29,21mg/g) và
thấp nhất khi cho ăn tảo lắng bằng PAC hoặc lắng bằng NaOH + PAC
(27,47mg/g) tuy nhiên sự khác biệt không có ý nghĩa giữa các nghiệm thức (Bảng
4.7).
Bảng 4.7. Chỉ số độ béo và thể trạng của sò huyết sau 12 ngày thí nghiệm
Nghiệm thức
Chỉ số độ béo (%)
Chỉ số thể trạng (mg/g)
Ban đầu
Sau 12 ngày
Ban đầu
Sau 12 ngày
Tảo ly tâm
4,03±0,98 a
3,76±0,65a
32,63±4,13 a
29,21±5,45 a
NaOH
4,00±0,63 a
4,06±0,38 a
31,87±5,17 a
28,83±4,32 a
NaOH + PAC
3,66±0,69 a
3,66±0,39 a
32,08±4,98 a
27,47±4,77 a
PAC
3,65±0,65 a
3,91±0,49 a
28,32±2,88 a
27,47±2,41a
Số liệu có chữ cái giống nhau trong cùng một cột chứng tỏ khác biệt không có ý nghĩa thống kê (P>0,05)
28
4.2.3. Kết quả đánh giá cho điểm
Kết quả đánh giá ảnh hƣởng của các loại hóa chất lắng tảo tới chất lƣợng
của tảo Chlorella và sò huyết cho thấy chất lƣợng của sò đạt tốt nhất khi cho ăn
tảo ly tâm và thấp nhất khi cho ăn tảo lắng bằng PAC (Bảng 4.8), khác biệt giữa
các nghiệm thức rất có ý nghĩa thống kê (P0,05)
29
CHƢƠNG 5
KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT
5.1. Kết luận
Sử dụng PAC (30mg/L) để lắng tảo Chlorella đạt hiệu suất lắng 80% sau 5
giờ, tỷ lệ hình dạng tế bào nguyên vẹn đạt 48,22% cao hơn so với lắng bằng
NaOH hoặc NaOH +PAC.
Sò huyết cho ăn tảo lắng bằng NaOH đạt các kết quả cao nhất khi so sánh
với tảo lắng bằng NaOH+PAC họăc PAC.
5.2. Đề xuất
Tiếp tục nghiên cứu các loại hóa chất khác để tăng khả năng lắng tảo nhằm
chủ động nguồn thức ăn nhƣng vẫn duy trì chất lƣợng dinh dƣỡng và không gây
độc cho đối tƣợng ƣơng nuôi.
Mở rộng nghiên cứu sử dụng tảo lắng làm thức ăn trên các đối tƣợng thủy
sản khác.
30
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Davids, C., 1964. The influence of suspension of microorganisms of different
concentrations on the pumping and retention of food by the mussel (Mytilus
edulis). Neth. J. Sea Res. 2:233-249.
Dƣơng Thị Hoàng Oanh, Nguyễn Thị Kim Liên và Huỳnh Trƣờng Giang, 2013.
Ảnh hƣởng của nhiệt độ, mật độ tảo và loại tảo lên tốc độ lọc của sò huyết
(Anadara granosa, Linne. 1758). Tạp chí khoa học, Khoa Thủy Sản, Đại học
Cần Thơ 25 (2013): 158-167.
Hoàng Thị Bích Đào, 2003. Sinh học và sinh sản của sò huyết (Anadara nodifera
von Martens, 1860) tại Đầm Nại – Ninh Thuận. Hội thảo động vật thân mềm
toàn quốc lần thứ 3. NXB Nông nghiệp. Trang 167 – 180.
Khalil, A.M, 1996. The influence of algal concentration and body size on filtration
and ingestion rates of the clam Tapes decussates (L.) (Mollusca :Bivalvia).
Aquaculture Research, 1996, 27, pp. 613-621.
Lê Quang Nhã, 2011. Thử nghiệm ƣơng giống nghêu Bến Tre (Meretrix lyrata)
bằng các loại thức ăn khác nhau. Luận văn tốt nghiệp cao học. Khoa Thủy sản.
Đại học Cần Thơ.
Lê Trung Kỳ, Hứa Ngọc Phúc, Phan Đình Hùng, Nguyễn Thị Xuân Thu, Mai Duy
Minh, La Xuân Thảo và Nguyễn Văn Nhâm, 2005. Thức ăn thích hợp cho sò
huyết Anadara granosa trong sản xuất giống. Tuyển tập báo cáo khoa học hội
thảo động vật thân mềm toàn quốc lần thứ 4, Nha Trang ngày 5 – 6/09/2005.
NXB Nông nghiệp. Trang 363 – 369.
Liang, I and P.F. Millican, 1992. Indoor nersery cultivation of juvenile bivalve
mollusks diets of dried algae. Aquaculture, 102 (3): 231- 243.
Loosanoff, V.L. and Engle, 1947. Effect of different concentrations of
microorganisms on the feeding of oysters. Fishery Bull. Fish Wildl. Serv.
U.S. 51, 31-57.
Lý Bích Thủy, 2012. Nghiên cứu các biện pháp sử dụng tảo trong ƣơng nghêu
giống (Meretrix lyrata). Luận văn tốt nghiệp cao học. Khoa Thủy sản. Đại học
Cần Thơ.
Ngô Thị Thu Thảo và Trƣơng Quốc Phú, 2012. Giáo trình Kỹ thuật nuôi động vật
thân mềm. Trang 41- 54.
31
Ngô Thị Thu Thảo, Hứa Thái Nhân, Trần Ngọc Hải và Huỳnh Hàn Châu, 2009.
Ảnh hƣởng của độ mặn lên sò huyết (Anadara granosa) nuôi vỗ trong hệ
thống nƣớc xanh- cá rô phi. Tạp chí khoa học, Khoa Thủy sản, Đại học Cần
Thơ. Trang 255- 263.
Ngô Thị Thu Thảo, Huỳnh Hàn Châu và Trần Ngọc Hải, 2011. Thử nghiệm nuôi
kết hợp ốc len (Cerithidea obtuse) và sò huyết (Anadara granosa) trong
rừng ngặp mặn. Tạp chí khoa học, Đại học Cần Thơ 2011:17a 30-38.
Ngô Thị Thu Thảo, Trƣơng Trọng Nghĩa. 2001. Ảnh hƣởng của các nồng độ muối
khác nhau đến tốc độ lộc thức ăn, sự sinh trƣởng, tỷ lệ sống và khả năng chịu
đựng stress của sò huyết giống Anadara granosa (Linaeus, 1758). Tuyển tập
bao cáo khoa học hội thảo động vật thân mềm toàn quốc lần thứ hai – Nha
Trang, 3-4/08/2001. Nhà xuất bản Nông nghiệp: 137-142.
Ngô Trọng Lƣ, 2004. Kỹ thuật nuôi ngao, nghêu, sò huyết và trai ngọc. Nhà xuất
bản Nông nghiệp TP. Hồ Chí Minh. 95 trang.
Nguyễn Kiều Diễm, 2011. Ảnh hƣởng của thức ăn và giá thể trong quá trình ƣơng
hàu Crassostrea iredalei giai đoạn ấu trùng và giai đoạn giống. Luận văn tốt
nghiệp cao học. Khoa Thủy sản. Đại học Cần Thơ.
Nguyễn Thị Xuân Thu, 2006. Đặc điểm sinh học kỹ thuật sản xuất giống và nuôi
ốc hƣơng Babylonia areolata (Link, 1807). Nhà xuất bản Nông nghiệp, TP.
Hồ Chí Minh. 77 trang.
O’Conner, W.A., J.A. Nell, 1992. The potential of alga concentrates for the
production of Australian bivalves. In: Allan, G.L., Dall,W., (eds.), Proc.
Aquaculture Nutrition Workshop, Salamander Bay, April 1991.
Brachkishwater Fish Culture Station. Pp 200- 201.
Richard M. Knuckey, Malcolm R. Brown, René Robert and Dion M.F. Frampton,
2006. Production of microalgal concentrates by flocculation and their
assessment as aquaculture feeds. Aquacultural Engineering Vol 3, Issue 3, pp.
300-313.
Santaella, E.G and Aranda, D.A, 1994. Effect of algal food and feeding schedule
on larval growth and survival rates of the queen conch, Strombus
gigas (Mollusca, Gastropoda), in Mexico. Aquaculture Vol 128, Issues 3-4, pp.
261- 268.
Schulte, E.H., 1975. Influence of algal concentration and temperature on the
filtration rate of Mytilus edulis. Marine biology 30. 331-341.
32
Tạ Văn Phƣơng và Trƣơng Quốc Phú, 2006. Thử nghiệm nuôi sò huyết (Anadara
granosa) trong ao nƣớc tĩnh. Tạp chí Nghiên cứu Khoa học, Trƣờng Đại học
Cần Thơ 2006:192-200.
Trần Sƣơng Ngọc và Nguyễn Hữu Lộc, 2006. Nghiên cứu thiết lập hệ thống nuôi
kết hợp luân trùng (Branchionus plicatilis) với bể nƣớc xanh. Tạp chí khoa
học. Khoa Thủy sản. Đại học Cần Thơ. Trang 82- 91.
Trƣơng Quốc Phú và Vũ Ngọc Út, 2006. Giáo trình quản lý chất lƣợng nƣớc ao
nuôi thủy sản. Khoa Thủy sản. Đại học Cần Thơ. 62 trang.
Trƣơng Quốc Phú, 2008. Sử dụng phèn nhôm và phèn sắt trong xử lý nƣớc thải từ
ao nuôi cá tra (Pangasianodon hypophthalmus) thâm canh. Tạp chí khoa học.
Trƣờng Đại học Cần Thơ 2008 (1): 95- 106.
Willows R. I. 1992. Optimal digestive investment: A model for filter feeders
experiencing variable diets. Limnol Occanogr. 37(4), 829-847
Zuharlida Tuan Harith, Fatimah Mohd Yusoff, Mohd Shamzi Mohamed,
Mohamed Shariff Mohamed Din and Arbakariya B.Ariff, 2009. Effect of
different flocculants on the flocculation performance of microalgae,
Chaetoceros calcitrans, cells. African Journal of Biotechnology Vol.8 (21),
pp. 5971- 5978.
Trang web:
http://lohha.com.vn/chi-tiet/tao-chlorella.htm (Ngày 24/1/2013)
http://tailieu.vn/xem-tai-lieu/algae-culture-manual-nuoi-tao-phuc-vu-cho-nuoitrong-thuy-san-.287945.htm (Ngày 9/2/2013)
http://tailieu.vn/xem-tai-lieu/dac-diem-sinh-hoc-so-huyet.1123002.html
2/2/2013)
(Ngày
http://vi.wikipedia.org/wiki/Chlorella (Ngày 24/1/2013)
http://www.ctu.edu.vn/colleges/aquaculture/thuysanweb/modules/news/index.php?
storytopic=29&start=50 (Ngày 3/2/2013)
http://www.fao.org/fishery/species/3503/en (Ngày 24/1/2013)
http://www.tailieudoc.net/d8113-nghien-cuu-san-xuat-giong-so-huyet-o-bac-lieu43-trang.html (Ngày 2/2/2013)
http://www.vienthuysan2.org.vn/?do=news&act=detail&id=234 (Ngày 12/2/2013)
33
PHỤ LỤC
Phụ lục 1: Biến động nhiệt độ (o C) vào buổi sang ở các nghiệm thức trong 30
ngày thí nghiệm
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
4
8
12
16
20
24
28
1
28,63
27,13
28,13
27,88
26,88
27,25
28,15
2
28,63
27,13
28,13
27,88
26,88
27,25
28,15
3
28,63
27,13
28,13
27,88
27,13
27,25
28,28
1
28,63
27,13
28,13
28
27
27,38
28,63
2
28,63
27,13
28,13
28
27
27,5
28,5
3
28,63
27,13
28,13
28
27,25
27,38
28,63
1
28,63
27,13
28,13
28
27
27,5
28,5
2
28,63
27,13
28,13
28
27,38
27,5
28,63
3
28,63
27,13
28,13
28
27,13
27,38
28,5
1
28,63
27,13
28,13
28
27,38
27,5
28,63
2
28,63
27,13
28,13
28
27,38
27,5
28,5
3
28,63
27,13
28,13
28
27,38
27,5
28,63
34
Phụ lục 2: Biến động nhiệt độ (o C) vào buổi chiều của các nghiệm thức trong 30
ngày thí nghiệm
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
4
8
12
16
20
24
28
1
32,38
31,63
30
27,13
29,13
29,25
29,75
2
32,5
31,63
30,25
27,38
29,25
29,25
30
3
32,38
31,63
30,13
27,13
29
29,25
29,88
1
32,5
31,63
30,38
27,5
29,63
29,75
30,38
2
32,25
31,63
30,38
27,5
29,63
29,63
30,38
3
32,25
31,63
30,38
27,5
29,75
29,75
30,5
1
32,25
31,63
30,38
27,38
29,5
29,5
30,5
2
32,25
31,63
30,38
28
29,88
29,75
30,63
3
32,25
31,63
30,38
27,75
29,75
29,63
30,5
1
32,38
31,63
30,38
28
29,75
29,75
30,75
2
32,25
31,63
30,38
28
29,75
29,75
30,75
3
32,38
31,63
30,38
28
29,88
29,63
30,75
35
Phụ lục 3: Biến động nhiệt độ (o C) của các nghiệm thức trong 12 ngày
Chiều
Sáng
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
4
8
12
4
8
12
1
28,25
27,25
27,25
30
30,88
30,83
2
28,25
27,25
27,25
30
30,88
30,83
3
28,25
27,25
27,25
30
31
30,83
1
28,25
27,38
27,25
30,38
31,25
31
2
28,25
27,38
27,25
30,38
31,25
30,83
3
28,25
27,38
27,38
30,38
31,38
31
1
28,25
27,38
27,25
30,38
31,25
30,83
2
28,25
27,38
27,38
30,38
31,38
31
3
28,25
27,38
27,25
30,38
31,38
30,83
1
28,25
27,38
27,38
30,38
31,38
31
2
28,25
27,38
27,25
30,38
31,38
30,83
3
28,25
27,38
27,38
30,38
31,63
31
36
Phụ lục 4: Biến động pH trong 30 ngày thí nghiệm
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
1
5
10
15
20
25
30
1
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
2
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
3
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
1
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
2
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
3
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
1
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
2
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
3
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
1
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
2
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
3
8,2
8,2
8,7
8
8,7
8,5
8,7
37
Phụ lục 5: Biến động pH trong 12 ngày thí nghiệm
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
1
4
8
12
1
8,7
8,7
8,7
8,7
2
8,7
8,7
8,7
8,7
3
8,7
8,7
8,7
8,7
1
8,7
8,7
8,7
8,7
2
8,7
8,7
8,7
8,7
3
8,7
8,7
8,7
8,7
1
8,7
8,7
8,7
8,7
2
8,7
8,7
8,7
8,7
3
8,7
8,7
8,7
8,7
1
8,7
8,7
8,7
8,7
2
8,7
8,7
8,7
8,7
3
8,7
8,7
8,7
8,7
38
Phụ lục 6: Biến động hàm lƣợng NH4+/NH3 (mg/L) trong 30 ngày thí nghiệm
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
1
5
10
15
20
25
30
1
0
0,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
2
0
0,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
3
0
0,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
1
0
0,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
2
0
0,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
3
0
0,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
1
0
1,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
2
0
1,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
3
0
1,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
1
0
1,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
2
0
1,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
3
0
1,5
0,25
0,5
0,25
0,5
0,5
39
Phụ lục 7: Biến động hàm lƣợng NH4+/NH3 (mg/L) trong 12 ngày thí nghiệm
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
1
4
8
12
1
0
0,25
0,5
0,5
2
0
0,25
0,5
0,5
3
0
0,25
0,5
0,5
1
0
0,25
0,5
1
2
0
0,25
0,5
1
3
0
0,25
0,5
1,5
1
0
0,25
0,5
1,5
2
0
0,25
0,5
1,5
3
0
0,25
0,5
0,5
1
0
0,25
0,5
1
2
0
0,25
0,5
1
3
0
0,25
0,5
1
40
Phụ lục 8: Biến động hàm lƣợng NO2- (mg/L) trong 30 ngày thí nghiệm
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
1
5
10
15
20
25
30
1
0
40
40
15
10
30
20
2
0
40
40
20
10
40
15
3
0
40
40
15
10
30
15
1
0
40
40
15
5
40
15
2
0
40
40
15
5
40
15
3
0
40
40
15
5
40
15
1
0
40
40
15
10
40
15
2
0
40
15
15
10
40
15
3
0
40
60
15
10
30
15
1
0
40
40
15
15
40
15
2
0
40
40
15
10
40
20
3
0
40
40
15
15
30
15
41
Phụ lục 9: Biến động hàm lƣợng NO2- (mg/L) trong 12 ngày thí nghiệm
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
1
4
8
12
1
0
4
5
5
2
0
4
5
5
3
0
4
5
5
1
0
4
5
25
2
0
5
5
20
3
0
4
10
20
1
0
4
2,5
15
2
0
4
2.5
20
3
0
4
2,5
5
1
0
2
5
10
2
0
1
5
15
3
0
2
5
25
42
Phụ lục 10: Khối lƣợng sò huyết trong quá trình thí nghiệm
TN 30 ngày
TN 12 ngày
Ngày
NT1
NT2
NT3
NT4
1
10
20
30
1
4
8
12
1
5,65
5,59
5,54
5,52
5,54
5,62
5,62
5,64
2
5,23
5,31
5,30
5,26
5,12
5,17
5,12
5,14
3
5,89
5,94
5,95
5,85
5,83
5,80
5,63
5,58
1
5,80
5,87
5,75
5,51
5,54
5,94
5,86
6,24
2
5,69
5,51
5,51
5,32
5,46
5,64
5,67
5,50
3
5,60
5,63
5,55
5,43
5,23
5,48
5,66
5,65
1
5,75
5,71
5,72
5,56
5,66
5,77
5,80
5,57
2
5,75
5,75
5,63
5,63
5,61
5,91
5,67
5,67
3
5,66
5,71
5,61
5,62
5,66
5,73
5,74
5,72
1
5,51
5.54
5,58
5,34
5,43
5,66
5,79
6,08
2
5,65
5,71
5,68
5,76
5,96
5,93
5,83
5,84
3
5,53
5,51
5,41
5,17
5,16
5,68
5,59
5,53
43
[...]... mật độ tảo sau 24h cho ăn (tb/mL) * Tỷ lệ sống của sò huyết Tỷ lệ sống của sò huyết đƣợc kiểm tra hằng ngày Tỷ lệ sống đƣợc tính theo công thức sau: Tổng số cá thể cuối TLS (%) = Tổng số cá thể ban đầu × 100 * Chỉ số độ béo và chỉ số thể trạng của sò huyết Trƣớc lúc bố trí thí nghiệm thu 5 con sò và sau khi kết thúc thí nghiệm thu 9 con/ nghiệm thức để kiểm tra chỉ số độ béo và chỉ số thể trạng Chỉ số. .. thức: Tỷ lệ sống (%) = m n x 100 Trong đó: m là số tế bào còn nguyên và n là tổng số tế bào - Công thức tính mật độ tảo nhƣ sau: Mật độ tảo (tb/mL) = a x 104 xH 64 Trong đó: a là số tế bào đếm đƣợc trong tất cả các ô nhỏ và H là hệ số pha loãng 3.3.2 Ảnh hƣởng của tảo Chlorella lắng đến tốc độ sinh trƣởng, tỷ lệ sống và chỉ số độ béo của sò huyết Anadara granosa 3.3.2.1 Bố trí thí nghiệm Sò huyết giống... (2006), tảo lắng khi 17 quan sát dƣới kính hiển vi khó phân biệt với tảo tƣơi và chlorophyll của chúng ít bị phân hủy sau 2 tuần dự trữ Harith et al (2009) cho rằng pH cũng làm ảnh hƣởng đến tỷ lệ sống của tảo, khi pH càng cao thì tỷ lệ sống càng giảm, khi pH ổn định bằng 8 thì tỷ lệ sống của tảo có thể đạt 98% Sử dụng NaOH lắng tảo làm tăng pH lên 10 và 10,2 tỷ lệ sống của tảo lần lƣợt là 78% và 68%... Kết quả thí nghiệm 2 : Ảnh hƣởng của tảo lắng đến tỷ lệ sống, tốc độ lọc và chỉ số độ béo của sò huyết 4.2.1 Kết quả thí nghiệm tốc độ lọc và tỷ lệ sống của sò huyết trong 30 ngày 4.2.1.1 Các yếu tố môi trường a) Nhiệt độ (oC) Trong 30 ngày nuôi nhiệt độ có sự biến động lớn, buổi sáng dao động từ 26-31 C, buổi chiều từ 26-33,5 oC do thí nghiệm đƣợc thực hiện vào mùa mƣa Nhiệt độ trung bình khoảng 29oC... 8 Ngày Hình 4.7 Biến động hàm lƣợng NO2 (mg/L) trong 12 ngày 26 12 4.2.2.2 Khối lượng và tỷ lệ sống của sò huyết sau 12 ngày thử nghiệm a) Tỷ lệ sống của sò huyết Sau 12 ngày không cho sò ăn, sò ở nghiệm thức tảo ly tâm có khả năng chịu đói khá tốt với tỷ lệ sống cao nhất đạt 89,17%, và thấp nhất (60,95%) ở khi cho sò ăn tảo lắng bằng PAC (Hình 4.8), tuy nhiên khác biệt về tỷ lệ sống giữa các nghiệm... thống kê (P >0,05) Tỷ lệ sống của sò huyết ở thí nghiệm này bị ảnh hƣởng bởi khả năng tích lũy thức ăn và năng lƣợng của sò đƣợc nuôi bằng tảo lắng vì nếu sò có tình trạng sức khỏe tốt, tích lũy nhiều năng lƣợng thì duy trì hoạt động cơ thể lâu hơn, sẽ cho kết quả tỷ lệ sống tốt hơn Ly tâm NaOH NaOH+PAC PAC 100 Tỷ lệ sống (%) 80 60 40 20 0 1 4 8 12 Ngày Hình 4.8 Tỷ lệ sống (% )của sò huyết sau 12 ngày... duy trì hoạt động sống của cơ thể dẫn đến khối lƣợng cơ thể giảm sút Chỉ số CI ở sò cho ăn bằng tảo ly tâm đạt cao nhất (29,21mg/g) và thấp nhất khi cho ăn tảo lắng bằng PAC hoặc lắng bằng NaOH + PAC (27,47mg/g) tuy nhiên sự khác biệt không có ý nghĩa giữa các nghiệm thức (Bảng 4.7) Bảng 4.7 Chỉ số độ béo và thể trạng của sò huyết sau 12 ngày thí nghiệm Nghiệm thức Chỉ số độ béo (%) Chỉ số thể trạng... mật độ này không cao do đó tốc độ lọc của sò không bị ảnh hƣởng bởi việc cho ăn với mật độ cao Tuy nhiên, trong thí nghiệm đã sử dụng tảo lắng làm thức ăn cho sò, các loại thức ăn này dễ bị kết cụm và lắng ở đáy bể làm tăng kích cỡ hạt thức ăn do đó sò có thể giảm ăn Khả năng lọc thức ăn của sò huyết từ 10 - 100 µm (Lê Trung Kỳ, 2005) d) Chỉ số độ béo và chỉ số thể trạng của sò huyết Sò huyết có chỉ số. .. c) Chỉ số độ béo và chỉ số thể trạng của sò huyết Chỉ số độ béo của sò đều giảm ở tất cả các nghiệm thức sau 12 không cho ăn Độ béo của sò huyết giữa các nghiệm thức không có sự biến động lớn (3,66 4,06%) sau 12 ngày thí nghiệm, giá trị cao nhất ghi nhận đƣợc ở nghiêm thức NaOH (4,06±0,38%) và khác biệt không có ý nghĩa thống kê so với các nghiệm thức còn lại (Bảng 4.7) Chỉ số thể trạng của sò huyết. .. ngày thí nghiệm a) Tỷ lệ sống của sò huyết Sau 30 ngảy thí nghiệm, kết quả tỷ lệ sống đạt cao nhất khi cho sò ăn tảo lắng bằng NaOH + PAC (94,44%), tiếp theo là nghiệm thức cho ăn tảo ly tâm và nghiệm thức tảo lắng bằng NaOH (88,89%) và thấp nhất là nghiệm thức tảo lắng bằng PAC 80,56%, tuy nhiên sự khác biệt giữa các nghiệm thức không có ý nghĩa thống kê (P >0,05) Tỷ lệ sống của sò huyết giảm dần theo