Trang 1 ------NGUY N TH ÁNH HÒA ỄỊNGHIÊN C U PHÁT TRI N QUE TH NHANH ỨỂỬPHÁT HI N S NHI M VIRUS RUBELLA ỆỰỄỞ NGƯỜILUẬN VĂN THẠC SĨKỸ THUẬT CHUYÊN NGÀNH: CÔNG NGHỆ SINH HỌC NGƯỜI ƯỚN
Trang 1-NGUY N TH ÁNH HÒA Ễ Ị
NGHIÊN C U PHÁT TRI N QUE TH NHANH Ứ Ể Ử
PHÁT HI N S NHI M VIRUS RUBELLA Ệ Ự Ễ Ở NGƯỜI
CHUYÊN NGÀNH: CÔNG NGHỆ SINH HỌC
1.TS.NGÔ THU HƯỜNG 2.PGS.TS.KHUẤT HỮU THANH
Trang 2LỜI CAM ĐOAN
LỜI CẢM ƠN
DANH MỤC CÁC CHỮ VIẾT TẮT
DANH MỤC HÌNH
DANH MỤC BẢNG
MỞ ĐẦU 1
CHƯƠNG I: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 3
1.1 Đặc điểm của virus Rubella 3
3
4
5
5
6
7
10
11
13
1.2 Tình hình nhiễm virus Rubella trên thế giới và Việt Nam 13
13
14
1.3 Các phương pháp phát hiện virus Rubella 15
15
realtime PCR 15
(Immunofluorescent antibody-IFA) 16
16
Trang 31.4 Thiết kế que thử nhanh dựa trên phương pháp sắc ký miễn dịch 18
1.4.1 Nguyên lý 18
19
CHƯƠNG II: VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 23
2.1 Vật liệu 23
23
23
.24
2.2 Phương pháp nghiên cứu 24
2.2.1. 24
- 25
vàng 30
31
CHƯƠNG III KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 32
3.1 Nghiên cứu tinh chế kháng thể kháng Rubella 33
3.2 Thiết lập điều kiện tạo que thử 37
40
41 41
42
43
44
Trang 4 49
3.4 Lựa chọn dung dịch chuẩn bị mẫu 50
3.5 Đánh giá que thử 51
51
52
52
.53
3.6 Hướng dẫn sử dụng que thử nhanh rubella 55
3.7 Khả năng ứng dụng que thử tại Việt Nam 57
CHƯƠNG IV KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 58
Kết luận 58
Kiến nghị 58
TÀI LIỆU THAM KHẢO 59
Trang 5LỜI CAM ĐOAN
Tác giả
Nguyễn Thị Ánh Hòa
Trang 6LỜI CẢM ƠN
(POLYVAC
PGS
Trang 7
Trang 8Gold Nanoparticles Bovine Serum Albumine Complementary DNA Congenital Rubella Syndrome Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay Fusion Peptide
Immunoglobulin Messenger RNA
№n-Structural Protein Polyacrylamide Gel Electrophoresis Protein A
Phosphate Buffered Saline Polymerase Chain Reaction Ribonucleic Acid
World Health Organization
Trang 9DANH MỤC HÌNH
Hình 1.3 Hình thái virus Rubella 9
19
Hình 3.5 Th .
Hình
Trang 10Trang 11
DANH MỤC BẢNG
-PAGE
Trang 12
trình tiêm ch
Trang 141.1 Đặc điểm của virus Rubella
Trang 15xin (Meruvax
Trang 181.1.6
(15,4%) và G (30,8%)
p150 và p90
Trang 20Hình 1.3 Hình thái virus Rubella
Hình 1.4
a protein E1 và E2
[29]
Trang 211.1.7
glycoloprotein E2 và/
clathrin
(clathrin-alph
Trang 22Hình 1.5[29]
1.1.8
Trang 26không
R, PC
Trang 271.3.3
(Immunofluorescent antibody-IFA)
1.3.4
Trang 29m tra (KT2 - virus Rubella - KT1 -
Trang 34- Màng nitrocellulose (Hãng Biotech)
-
- (Hãng Biotech Absorbent pad H5076, size 20x30 cm)
Trang 3940% Acryamide 1,125 1,5 1,8 1,875 0,188
20% SDS 0,03 0,03 0,03 0,03 0,008 10% APS 0,05 0,05 0,05 0,05 0,02 Temed 0,01 0,01 0,01 0,01 0,005
H2O 3,285 2,91 2,61 2,535 0,904
6,0 6,0 6,0 6,0 1,5
Trang 41Các bước chính trong quá trình tạo cộng hợp kháng thể và hạt nano vàng
(1)
2CO3
(2) Ch
Trang 443.1 Nghiên cứu tinh chế kháng thể kháng Rubella
Trang 46ng hai thành ph n protein chi m t l l n trong huy t thanh Ngoài
c kho i 25 kDa chí
T n không bám c ng ch y 2) xu t hi n t t c
u huy t thanh ngo i tr
ng v i IgG chu i n ng và chu i nh Cáccho th y các thành ph n protein t
qua protein A và c thu l y b ng glycine T k t qu
n k t lu n r c tinh s ch t huykháng th nh b ng ph n m m QuantityOne (Bio-rad, M ) l
nh nBradford Hi u su t tinh ch c là 1,74 mg/ml huy t thanh
, kháng th (IgG) kháng virus Rubella c tinh s
t huy t thanh l n s d ng s c ký ái l c v i gel protein A sepharose Quy
Trang 47 Protein A
Trang 50Kiểm tra sự hoạt động của que thử :
Trang 521,0 g; 0,5 g; 0,1
Hình 3.8 g
3.2.3
Trang 54Hình 3 10 nano vàng (30 phút, 60 phút, 90 phút, 120 phút, 150 phút)
Trang 55Hình 3.11
(CB1, CB2, CB3, CB4, CB5, CB6)
p (hình 3.11
Trang 57NC b105 Whatman 99
Trang 59Hình 3.15
g; 0,1 g; 0,3 g; 0,5 g
3.3.4 lai
oC, 25oC, 37oC
Trang 60oC trong 30 phút
Trang 613.4 Lựa chọn dung dịch chuẩn bị mẫu
t
(SB1) SB 20mM : (SB2): SB 20mM + 0,1% Triton X100 (SB3) SB 20mM+ 2% sucrose :
(SB4) SB 20mM+ 2% sucrose+ 0,1% Triton X100 : (SB5) PBS 50mM pH 7,4 :
Trang 64Hình 3.21
3.5.4
virus Rubella và virus Rubella
:
Trang 65Hình 3.22 que cho virus Rubella
Trang 68i virus R
R
Âm tính Dương tính
Trang 69CHƯƠNG IV KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ Kết luận
-
9 Khán
Trang 70TÀI LIỆU TIẾNG VIỆT
1
2
3
TÀI LIỆU TIẾNG ANH
4 Min-Hsin, C, Joseph, I., (2007) Molecular Virology of Rubella virus
5 Banatvala, J E., Best, Jennifer, M., Bertrand, J., Bowern, Narellea (1970 )
Serological assessment of rubella during pregnancy Br Med J., 3,247 p
6 Vesikari, T., Vaheri, (1968 A ) Rubella: a method for rapid diagnosis of a
recent infection by demonstration of the IgM antibodies Br Med J., 1, 221 p
7 Baublis, J V., Brown, G C (1968) Specific response of the
immunoglobulins to rubella infection Proc Soc Exp Biol Med., pp.128
-206
8 Best, Jenifer M., Banatvala, J E., Wastom, D., (1969 Serum IgM and IgG )
responses in postnatally acquired rubella Lancet, pp.2-65
9 Cohen, Sophia, M., Ducharme, Claire P., Carpenter, Charlotte, A., Deibel,
R (1968) Rubella antibody in IgG and IgM immunoglobulins detected by
immunofluorescence J Lab Clin Med., pp -760 72
10 Desmyter, J., South, Mary A., Rawls, W E (1971 The IgM antibody )
response in rubella during pregnancy J Med Microbiol., pp.4-107
Trang 7111 Haire, M, Hadden, D.S.M (1972) Rapid diagnosis of rubella by direct
immunofluorescent staining of desquamated cells in throat swabs J Med
Microbiol., pp.5-231
12 Centers for Disease Control 001) (2 Control and prevention of rubella: evaluation and management of suspected outbreaks, rubella in pregnant women, and surveillance for congenital rubella syndrome MMWR,
16 Infectious Diseases and immunization Committee, Canadian Paediatric
Society (CPS) (1999) Prevention of congenital rubella syndrome Paediatr
Child Health 4(2), pp.155 7
17 Obstetrics, W., Cunningham, F.G., Hauth, J.C., Leveno, K.J., Gilstrap, L III, Bloom, S.L., Wenstrom, K.D., eds (2001), 21st ed New York: McGraw-, Hill Medical Publishing Division, p.1467
18 Gabbe, S.G., Niebyl, J.R., Simpson, J.L., eds (2002) Obstetrics-normal
Trang 72Purpura in congenital and acquired rubella N Engl J Med 273(25), ,
pp.1362 6
22 Miller, E., Cradock-Watson, J.E, Pollack, T.M (1982) Consequences of
confirmed maternal rubella at successive stages of pregnancy Lancet 2, ,
pp.781 4
23 Gregg, N.M (1941) Congenital cataract following German measles in
the mother Trans Am Ophthalmol Soc, pp.3-35
24 Reef, S.E., Plotkin, S., Cordero, , Katz, M., Cooper, L., Schwartz, B.JF ,
et al (2000) Preparing for congenital syndrome elimination: summary of the
Workshop on Congenital Rubella Syndrome Elimination in the United States
Clin Infect Dis 31, pp.85 95
25 Cooper, L.Z., Preblub, S.R., Alford, C.A (1995) Rubella In: Remington
J.S., Klein J.O., eds Infectious diseases of the fetus and newborn 4th edition
Philadelphia: WB Saunders, p.268
26 Weil, M.L., Itabashi, H., Cremer, N.E., Oshiro, L, Lennette, E.H., Carnay,
L (1975) Chronic progressive panencephalitis due to rubella virus
stimulating subacute sclerosing panencephalitis N Engl J Med 292, pp.994,
Trang 73http://www.benhviennhi.org.vn/news/detail/701/hoi-chung-rubella-
http://tudu.com.vn/vn/suc-khoe-mang-thai/mong-duoc- -van- -ket-qua-xet-tu ve
nghiem-rubella [Accessed 2 Feb 2018]
31 Miocevic, O., Craig, R.C., Laughlin, M J., Buck, R L Slowy, P D.,
Shirtcliff, E.A (2017) Quantitative Lateral Flow Assays for Salivary
Biomarker Assessment: A Review Iowa State University, Ames, IA, United
[online] Available at:
https://www.researchgate.net/figure/Structure-and-sequence-of-a-typical-lateral-flow-test-strip_fig1_317602663 [Accessed 2
Feb 2018]