Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống
1
/ 32 trang
THÔNG TIN TÀI LIỆU
Thông tin cơ bản
Định dạng
Số trang
32
Dung lượng
1,24 MB
Nội dung
ĐỒÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
MỞ ĐẦU
Công nghệ sinh học như một thân cây mà những rễ chính của cây này là vi sinh
vật học, di truyền học, sinh hóa học, điện tử học, nông học, công nghệ học…và trên
vòm lá với hàng nghìn quả đó là các loại sản phẩm phục vụ trồng trọt, chăn nuôi, y
học, năng lượng mới, vật liệu mới, tuyển khoáng, bảo vệ môi trường
Nhờ ứng dụng các thành tựu mới mẻ của công nghệ sinh học như kỹ thuật nuôi
cấy mô tế bào, kỹ thuật tái tổ hợp di truyền, người ta có thể tạo ra được những giống
cây trồng không những có năng suất cao mà còn chống chịu được với sâu bệnh, hạn
hán và điều kiện nghèo phân bón. Nhờ bỏ qua được việc lai chéo và khắc phục được
sự tương khắc sinh sản mà việc lai tạo giống rút ngắn được nhiều thời gian. Kỹ thuật
tái tổ hợp AND và các kỹ thuật in vitro mở ra khả năng lai khác loài và làm tăng
nhanh tính đa dạng di truyền.
Đối với các loại cây trồng có giá trị thương mại lớn, kỹ thuật nuôi cấy mô đã
đem lại những hiệu quả kinh tế hết sức rõ rệt.
Hiện nay, người ta đã bắt đầu ứng dụng khả năng nuôi cấy tế bào thực vật tách
rời ở qui mô công nghiệp để thu nhận các sản phẩm, các hoạt chất sinh học có giá trị
kinh tế cao.
Nuôi cấy mô tế bào thực vật là một ngành khoa học trẻ có nhiều triển vọng, được
ứng dụng nhiều trong các lĩnh vực kinh tế. Ý thức được triển vọng to lớn của ngành
khoa học hiện đại này, chúng tôi xin giới thiệu quyển sách công nghệ nuôi cấy mô tế
bào thực vật nhằm phục vụ sinh viên, học viên sau đại học và các cơ quan có liên
quan.
Trong những năm gần đây, kỹ thuật nuôi cấy mô và tế bào thực vật đã không ngừng
phát triển và thu được những thành tựu đáng kể. Kỹ thuật này ra đời nhanh chóng có vị
trí quan trọng trong lĩnh vực công nghệ sinh học về sản xuất giống cây trồng. Ưu điểm
nổi bật của phương pháp này là có thể nhân nhanh, giữ được đặc điểm di truyền ổn
định, có thể sản xuất với số lượng cá thể lớn trong thời gian ngắn. Cây nuôi cấy mô
thường được trẻ hoá cao độ và có rễ giống như cây mọc từ hạt. Trong lúc cây hom
lại thường không có rễ cọc, rễ cây không thể làm đâm sâu xuống đất như cây mọc từ
hạt và thường có hiện tượng bảo lưu cục bộ (topophisis). Vì thế nuôi cấy mô tế bào
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 1
ĐỒ ÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
còn là một biện pháp trẻ hoá giống trong sản xuất lâm nghiệp. Mặc dù nuôi cấy mô đòi
hỏi kỹ thuật phức tạp, giá thành cao, song vẫn được nhiều nơi áp dụng, đặc biệt là
phối hợp với giâm hom, tạo thành công nghệ mô - hom đang được sử dụng khá
phổ biến trong sản xuất lâm nghiệp. Từ những thực tế nêu trên tôi chọn đề tài: “Tìm
hiểu về tổng quan các phương pháp nuôi cấy mô để nhân giống cho cây thân gỗ”
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 2
ĐỒ ÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
CHƯƠNG 1: TỔNG QUAN VỀ PHƯƠNG PHÁP NUÔI CẤY MÔ
1.1. Khái niệm nuôi cấy mô và nhân giống cây thân gỗ
Nuôi cấy mô là phạm trù khái niệm chung cho tất cả các loại nuôi cấy nguyên
liệu thực vật hoàn toàn sạch vi sinh vật trên môi trường dinh dưỡng nhân tạo ở điều
kiện môi trường.
Nhân giống in vitro hay còn gọi vi nhân giống được sử dụng đặc biệt cho việc
ứng dụng các kỹ thuật nuôi cấy mô để nhân giống thực vật, bắt đầu bằng nhiều bộ
phận khác nhau của thực vật có kích thước nhỏ, sinh trưởng ở điều kiện vô trùng trong
các ống nghiệm hoặc trong các loại bình nuôi cấy khác.
Thực tế, các nhà vi nhân giống dùng thuật ngữ nhân giống in vitro và nuôi cấy
mô thay đổi cho nhau để chỉ cho mọi phương thức nhân giống thực vật trong điều kiện
vô trùng. Thuật ngữ đồng nghĩa là nuôi cấy in vitro.
Nhân giống bằng nuôi cấy mô (propagation by tissue culture). Vi nhân giống
(micropropagation) là tên gọi chung cho các phương pháp nuôi cấy in vitro cho các bộ
phận nhỏ được tách khỏi cây (George, 1930) đang được dùng phổ biến để nhân giống
thực vật, trong đó có cây thân gỗ. Các bộ phận được dùng để nuôi cấy có thể là chồi
bất định, chồi bên, chồi đỉnh, bao phấn, phôi và các bộ phận khác như vỏ cây, lá non,
thân mầm. Song nuôi cấy mô cho chồi bên và chồi bất định (Preece, 1997, Tripepi,
1997) là những phương pháp chính được dùng trong nhân giống cây rừng mà không đề
cập các nội dung khác.
Nuôi cấy mô thường được trẻ hoá cao độ và có rễ giống như cây mọc từ hạt,
thậm chí không có sự khác biệt đáng kể so với cây mọc từ hạt. Trong lúc cây hom lại
thường không có rễ cọc, rễ cây không thể đâm sâu xuống đất như cây mọc từ hạt và
thường có hiện tượng bảo lưu cục bộ (topophisis) như đã đề cập ở trên. Ví dụ: cây
mô keo lai ở giai đoạn 1-2 tháng tuổi (cũng như các loài cây bố mẹ là Keo tai tượng và
Keo lá tràm) cũng có đủ các loại lá kép một lần, kép hai lần và lá giả, lại có rễ theo
kiểu rễ cọc như những cây mọc từ hạt điển hình, thì cây hom cũng của giống này lại
chỉ có lá giả của cây trưởng thành và không có rễ cọc (nghĩa là tính trẻ hoá bị hạn chế,
còn tính bảo lưu cục bộ thì biểu hiện rõ rệt). Vì thế nuôi cấy mô còn là biện pháp trẻ
hoá giống trong sản xuất lâm nghiệp. Mặc dầu nuôi cấy mô đòi hỏi kỹ thuật phức tạp,
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 3
ĐỒ ÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
giá thành cao, song vẫn được nhiều nơi áp dụng, đặc biệt là phối hợp với giâm hom,
tạo thành công nghệ mô - hom đang được sử dụng khá phổ biến trong sản xuất lâm
nghiệp.
Tuy vậy, tính trẻ hoá của cây nuôi cấy mô vẫn kém hơn cây mọc từ hạt,
Brand và Lineberger (1992) nghiên cứu so sánh mức độ trẻ hoá của cây mô, cây
hom lấy từ cành của cây trưởng thành và cây ghép của cây Bulô (Betula sp.) đã thấy
rằng sau 1 tháng cây nuôi cấy mô có các băng protein giống như cây mọc từ hạt, sau 4-
8 tháng lại giống với cây trưởng thành, còn cây ghép và cây hom lấy từ cành của cây
trưởng thành sau 4-8 tháng đã có một số cây có hoa, trong lúc cây mọc từ hạt nhanh
nhất cũng phải sau 8 năm mới có hoa (Grosdova, 1985). Điều đó chứng tỏ cây nuôi
cấy mô tuy có mức độ trẻ hoá cao hơn cây ghép và cây hom lấy từ cành của cây
trưởng thành (chứ không phải lấy từ chồi của cây đã trẻ hoá) song không thể trẻ như
cây mọc từ hạt.
1.2. Lịch sử phát triển
Năm 1838, nhà thực vật học Matthias Jacob Schleiden và năm 1839 nhà động vật
học Theodor Schwann mới chính thức xây dựng học thuyết tế bào. Học thuyết khẳng
định rằng: Mỗi cơ thể động thực vật đều bao gồm những thể tồn tại hoàn toàn độc lập,
riêng rẽ và tách biệt, đó chính là tế bào.
Haberlandt (1902) là người đầu tiên đề xướng ra phương pháp nuôi cấy tế bào
thực vật để chứng minh cho tính toàn thể của tế bào. Theo ông mỗi tế bào bất kì của
một thể sinh vật đa bào đều có tiềm tàng để phát triển nhanh thành một cá thể hoàn
chỉnh. Năm 1898 Ông bắt đầu những thí nghiệm nuôi cấy tế bào đơn tách từ nhu mô
lá, tượng tầng của tầng biểu bì và lông hút của nhiều loài thực vật nhưng không thu
được kết quả nào. Năm 1934, White nuôi cấy thành công đầu rễ cà chua
(Lycopersicum esculentum) trong môi trường lỏng có bổ sung muối khoáng, glucose,
đầu rễ sinh trưởng khá mạnh và tạo nên hệ rễ nhỏ có cả rễ phụ. Nhưng sự sinh trưởng
này chỉ diễn ra trong một thời gian rồi chậm dần và ngừng hẳn mặc dù đã chuyển sang
môi trường mới. Cùng trong thời gian này, Kogl lần đầu tiên xác định được vai trò của
IAA, 1 hormone thực vật đầu tiên thuộc nhóm auxin có khả năng kích thích sự tăng
trưởng và phân chia tế bào. Năm 1939, ba nhà khoa học Gautheret, Nobecourt và
White đã đồng thời nuôi cấy mô sẹo thành công . Năm 1955, Miller và cs đã phát minh
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 4
ĐỒ ÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
cấu trúc và sinh tổng hợp của kinetin- một cytokinin đóng vai trò quan trọng trong
phân bào và phân hoá chồi ở mô nuôi cấy. Đến năm 1957, Skoog và Miller đã khám
phá vai trò của tỷ lệ nồng độ các chất auxin: cytokinin trong môi trường đối với sự
phát sinh cơ quan (rễ hoặc chồi). Khi tỷ lệ auxin/ cytokinin (ví dụ: nồng độ IAA/ nồng
độ kinetin) nhỏ hơn 1 và càng nhỏ, mô có xu hướng tạo chồi. Ngược lại khi nồng độ
IAA/ nồng độ kinetin lớn hơn 1 và càng lớn, mô có xu hướng tạo rễ. Tỷ lệ nồng độ
auxin và cytokinin thích hợp sẽ kích thích phân hoá cả chồi và rễ, tạo cây hoàn chỉnh.
Năm 1949, Limmasets và Cornuet đã phát hiện rằng virus phân bố không đồng
nhất trên cây và thường không thấy có virus ở vùng đỉnh sinh trưởng. Năm 1952,
Morel và Martin đã tạo ra cây sạch bệnh virus của 6 giống khoai tây từ nuôi cấy đỉnh
sinh trưởng. Ngày nay, kỹ thuật này với một số cải tiến đã trở thành phương pháp loại
trừ bệnh virus được dùng rộng rãi đối với nhiều loài cây trồng khác nhau. Năm 1952,
Morel và Martin lần đầu tiên thực hiện vi ghép in vitro thành công. Kỹ thuật được ứng
dụng rộng rãi trong tạo nguồn giống sạch bệnh virus và tương tự virus ở nhiều cây
trồng nhân giống bằng phương pháp vô tính khác nhau, đặc biệt là tạo giống cây ăn
quả sạch bệnh. Năm 1960, Morel đã thực hiện kỹ thuật nuôi cấy đỉnh sinh trưởng
trong nhân nhanh các loại địa lan Cymbidium, mở đầu công nghiệp vi nhân giống thực
vật.
Năm 1960, Cocking tách được tế bào trần. Năm 1971, Takebe và cs đã tái sinh
được cây từ tế bào trần mô thịt lá ở thuốc lá. Năm 1972, Carlson và cs lần đầu tiên
thực hiện lai tế bào sôma giữa các loài, tạo được cây từ dung hợp tế bào trần của 2 loài
thuốc lá Nicotiana glauca và N. langsdorfii. Năm 1978, Melchers và cs tạo được cây
lai soma "Cà chua Thuốc lá" bằng lai xa tế bào trần của 2 cây này. Đến nay, việc tái
sinh cây hoàn chỉnh từ tế bào trần hoặc từ lai tế bào trần đã thành công ở nhiều loài
thực vật.
Năm 1964, Guha và Maheshwari lần đầu tiên thành công trong tạo được cây đơn
bội từ nuôi cấy bao phấn của cây cà Datura. Kỹ thuật này sau đó đã được nhiều tác giả
phát triển và ứng dụng rộng rãi trong tạo dòng đơn bội (1x), dòng thuần nhị bội kép
(2x), cố định ưu thế lai (nuôi cấy bao phấn hoặc hạt phấn của dòng lai F1 để tạo giống
thuần mang tính trạng ưu thế lai).
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 5
ĐỒ ÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
Năm 1959, Tulecke và Nickell đã thử nghiệm sản xuất sinh khối mô thực vật quy
mô lớn (134 lít) bằng nuôi cấy chìm. Năm 1977, Noguchi và cs đã nuôi cấy tế bào
thuốc lá trong bioreactor dung tích lớn 20,000 lít. Năm 1978, Tabata và cs đã nuôi tế
bào cây thuốc ở quy mô công nghiệp phục vụ sản xuất shikonin. Họ đã chọn lọc được
dòng tế bào cho sản lượng các sản phẩm thứ cấp (shikonin) cao hơn. Năm 1985,
Flores và Filner lần đầu tiên sản xuất chất trao đổi thứ cấp từ nhân nuôi rễ tơ ở
Hyoscyamus muticus. Những rễ này sản xuất nhiều hoạt chất hyoscyamine hơn cây tự
nhiên. Hiện nay, công nghệ nuôi cấy tế bào và mô (ví dụ, mô rễ của nhân sâm) trong
các bioreactor dung tích lớn đã được thương mại hoá ở mức công nghiệp để sản xuất
sinh dược.
1.3. Nguyên lý thực hiện
1.3.1. Cơ sở khoa học của phương pháp nuôi cấy mô tế bào
1.3.1.1. Tính toàn năng của tế bào thực vật
Nguyên lý cơ bản của nhân giống nuôi cấy mô tế bào là tính toàn năng của tế bào
thực vật. Mỗi tế bào bất kỳ của cơ thể thực vật đều mang toàn bộ lượng thông tin di
truyền cần thiết và đầy đủ của cả thực vật đó còn gọi là bộ gen (genome). Đặc tính của
thực vật được thể hiện ra kiểu hình cụ thể trong từng thời kỳ của quá trình phát triển
phụ thuộc vào sự giải mã các thông tin di truyền tương ứng trong hệ gen của tế bào.
Do đó, khi gặp điều kiện thích hợp, trong mối tương tác qua lại với điều kiện môi
trường, cơ quan, mô hoặc tế bào đều có thể phát triển thành một cá thể mới hoàn
chỉnh mang những đặc tính di truyền giống như cây mẹ.
1.3.1.2. Sự phân hoá và phản phân hoá của tế bào
Quá trình phát sinh hình thái trong nuôi cấy mô là kết quả phân hoá và phản phân
hoá tế bào. Cơ thể thực vật trưởng thành là một chỉnh thể thống nhất bao gồm nhiều cơ
quan chức năng khác nhau, trong đó có nhiều loại tế bào khác nhau, thực hiện chức
năng cụ thể khác nhau. Các mô có được cấu trúc chuyênmôn hoá nhất định nhờ vào
sự phân hoá.
Phân hoá tế bào là sự chuyển hoá các tế bào phôi sinh thành các tế bào của
mô chuyên hoá, đảm nhận các chức năng khác nhau trong cơ thể. Quá trình phân hoá
có thể diễn như sau:
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 6
ĐỒ ÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
Tế bào phôi sinh Tế bào dẫn Tế bào phân hoá chức năng
Khi tế bào đã phân hoá thành mô chức năng, chúng không hoàn toàn mất khả
năng phân chia của mình. Trong trường hợp cần thiết, ở điều kiện thích hợp,chúng lại
có thể trở về dạng giống như tế bào phôi sinh và tiếp tục thực hiện quá trình phân hoá,
quá trình này gọi là sự phản phân hoá của tế bào.
Về bản chất thì sự phân hoá và phản phân hoá là một quá trình hoạt hoá phân hoá
gen. Tại một thời điểm nào đó trong quá trình phát triển cá thể, có một số gen được
hoạt hoá để cho ra tính trạng mới, một số gen khác lại bị ức chế hoạt động. Quá
trình này xảy ra theo một chương trình đã được mã hóa trong cấu trúc của phân tử
DNA của mỗi tế bào. Khi tế bào nằm trong cơ thể thực vật, chúng bị ức chế bởi các tế
bào xung quanh. Khi tách tế bào riêng rẽ, gặp điều kiện bất lợi thì các gen được
hoạt hoá, quá trình phân chia sẽ được xảy ra theo một chương trình đã định sẵn
trong DNA của tế bào (Vũ Văn Vụ, 1994).
Quá trình phát sinh hình thái trong nuôi cấy mô, tế bào thực vật thực chất là kết
quả của quá trình phân hoá và phản phân hoá tế bào. Kỹ thuật nuôi cấy mô, tế bào xét
cho đến cùng là kỹ thuật điều khiển sự phát sinh hình thái của tế bào thực vật (khi
nuôi cấy tách rời trong điều kiện nhân tạo và vô trùng) một cách định hướng
dựa vào sự phân hoá và phản phân hoá của tế bào trên cơ sở tính toàn năngcủa tế bào
thực vật. Để điều khiển sự phát sinh hình thái của mô nuôi cấy, người ta thường bổ
sung vào môi trường nuôi cấy hai nhóm chất điều tiết sinh trưởng thực vật là Auxin
và Cytokinin. Tỷ lệ hàm lượng hai nhóm chất này trong môi trường khác nhau sẽ tạo
ra sự phát sinh hình thái khác nhau theo quy luật được biểu thị ở sơ đồ bên. Theo sơ
đồ, khi trong môi trường nuôi cấy có tỷ lệ nồng độ Auxin (IAA, IBA, NAA, 2,4-
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 7
ĐỒ ÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
D)/Cytokinin (BAP, Kinetin, Zeatin, TDZ) thấp thì sự phát sinh hình thái của mô
nuôi cấy theo hướng tạo chồi, ngược lại nếu tỷ lệ cao thì mô nuôi cấy sẽ theo hướng
tạo rễ còn ở tỷ lệ cân đối sẽ phát sinh theo hướng tạo mô sẹo (callus).
1.2. Các nhân tố ảnh hưởng tới quá trình nhân giống bằng nuôi cấy mô tế bào
Nhân giống bằng nuôi cấy mô tế bào gồm nhiều giai đoạn kế tiếp nhau, quá trình
này có thể chia thành các nhân tố sau:
1.2.1. Môi trường nuôi cấy
Trong nuôi cấy in vitro, môi trường nuôi cấy và điều kiện bên ngoài được xem
là vấn để quyết định sự thành bại của quá trình nuôi cấy. Môi trường nuôi cấy được
xem là phần đệm để cung cấp các chất dinh dưỡng cần thiết cho sự tăng trưởng
và phân hoá mô trong suốt quá trình nuôi cấy in vitro. Cho đến nay, đã có nhiều môi
trường dinh dưỡng được tìm ra (MS-62, WPM, WV3, N6, B5, LS…) tuỳ thuộc vào
đối tượng và mục đích nuôi cấy. Vấn đề lựa chọn môi trường thích hợp cho cây sinh
trưởng và phát triển tối ưu trong từng giai đoạn của nôi cấy mô là rất quan trọng. Môi
trường nuôi cấy của hầu hết các loài thực vật bao gồm các muối khoáng đa lượng, vi
lượng, nguồn các bon, các acid amine và các chất điều hoà sinh trưởng (cũng có thể bổ
sung thêm một số chất phụ gia khác như than hoạt tính, nước dừa …) tuỳ từng loài,
giống, nguồn gốc mẫu, thậm chí từng cơ quan trên cùng cơ thể mà dinh dưỡng cần
cho sự sinh trưởng tối ưu của chúng khác nhau. Vì vậy, vấn đề cần lựa chọn môi
trường thích hợp cho sinh trưởng, phát triển tối ưu cho từng giai đoạn của hệ mô
trong nuôi cấy mô rất quan trọng, số lượng và các loại hoá chất phải cần độ chính xác
cao và phù hợp cho từng giai đoạn, đối tượng cụ thể.
Môi trường nuôi cấy bao gồm thành phần sau:
+ Nguồn các bon: trong nuôi cấy mô, các tế bào chưa có khả năng quang hợp để tổng
hợp nên chất hữu cơ do vậy người ta phải đưa vào môi trường một lượng hợp chất
các bon nhất định để cung cấp năng nượng cho tế bào và mô (Debengh, 1991). Nguồn
cácbon ở đây là các loại đường khoảng 20-30 mg/l có tác dụng giúp mô tế bào thực vật
tổng hợp các hợp chất hữu cơ, giúp tế bào tăng sinh khối, ngoài ra nó đóng vai trò là
chất thẩm thấu chính của môi trường. Người ta thường sử dụng 2 loại đường đó là
saccarose và glucose (Trần Văn Minh, 1994).
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 8
ĐỒ ÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
+ Nguồn Nitơ: tỷ lệ nguồn nitơ tuỳ thuộc vào loài cây và trạng thái phát triển mô.
Thông thường, nguồn nitơ được đưa vào môi trường ở hai dạng là NH
4
+
và NO
3
-
(nitrat). Trong đó, việc hấp thụ NO
3
-
của các tế bào thực vật tỏ ra có hiệu quả hơn so
với NH
4
+
. Nhưng đôi khi NO
3
-
gây ra hiện tượng “kiềm hóa” môi trường vì vậy giải
pháp sử dụng phối hợp cả 2 nguồn nitrơ với tỷ lệ hợp lý được sử dụng rộng rãi nhất.
+ Các nguyên tố đa lượng: là những nguyên tố khoáng như: N, P, K, S, Mg, Ca… cần
thiết và thay đổi tuỳ đối tượng nuôi cấy. Nhìn chung, các nguyên tố này được sử dụng
ở nồng độ trên 30 ppm (tỷ lệ phần nghìn). Các nguyên tố này có chức năng cung cấp
nguyên liệu để mô hoặc tế bào thực vật xây dựng thành phần cấu trúc hoặc giúp
cho quá trình trao đổi chất giữa các tế bào thực vật với môi trường được thuận lợi.
Có nhiều môi trường với thành phần, tỷ lệ các chất khác nhau, chúng ta có thể lựachọn
sử dụng. Nói chung, môi trường giàu Nitơ và Kali thích hợp cho việc hình thànhchồi,
còn môi trường giàu Kali sẽ thúc đẩy quá trình trao đổi chất mạnh hơn. Thành phần
khoáng của một môi trường cấy được xác định do sự cân bằng nồng độ của những ion
khác nhau trong dung dịch (nồng độ ion thể hiện bằng mg/l). Việc lựa chọn thành
phầnvà hàm lượng khoáng cho một đối tượng nuôi cấy là rất khó đòi hỏi người làm
công tác nuôi cấy mô phải có những hiểu biết cơ bản về sinh lý thực vật đối với dinh
dưỡng khoáng.
+ Nhóm nguyên tố vi lượng: Fe, Cu, BO, Zn, Mn, Co, I… là các nguyên tố rất quan
trọng và không thể thiếu cho sự phát triển của mô và tế bào do chúng đóngvai trò quan
trọng trong các hoạt động của enzym. Chúng được dùng ở nồng độ thấp hơn nhiều so
với các nguyên tố đa lượng để đảm bảo sinh trưởng và phát triển bình thường của cây
(Nguyễn Văn Uyển, 1993).
+ Các vitamin: Mặc dù cây nuôi cấy mô có thể tự tổng hợp được Vitamin, nhưng
không đủ cho nhu cầu (Czocnowki, 1952). Do đó, để cây sinh trưởng tối ưu một số
Vitamin nhóm B được bổ sung vào môi trường với lượng nhất định tuỳ theo từng hệ
mô và giai đoạn nuôi cấy. Các Vitamin B1 (Thiamin) và B6 (Pyridocin) là những
Vitamin cơ bản nhất thường dùng trong môi trường nuôi cấy với nồng độ thấp
khoảng 0,1-1mg/l (Trần Văn Minh, 1994).
+ Dung dịch hữu cơ: có thành phần không xác định như nước dừa, dịch chiết nấm
men, cà rốt, chối, khoai tây được bổ sung vào môi trường có tác dụng kích thích
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 9
ĐỒ ÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG
sinh trưởng mô sẹo và các cơ quan. Nước dừa đã được sử dụng vào nuôi cấy mô từ
năm 1941 và được sử dụng khá rộng rãi trong các môi trường nhân nhanh in vitro.
Trong nước dừa thường chứa các acid amine, acid hữu cơ, đường, ARN và DNA.
Đặc biệt trong nước dừa còn có chứa những hợp chất quan trọng cho nuôi cấy mô
như: Myoinoxitol, các hợp chất có hoạt tính Auxin, các Gluxit của Cytokinin
(Nguyễn Văn Uyển, 1993).
+ Chất làm đông cứng môi trường: Agar (thạch) là một loại Polysacharid của tảo có
khả năng ngậm nước khá cao 6-12g/l. Độ thoáng khí của môi trường thạch có ảnh
hưởng rõ rệt đến sinh trưởng mô nuôi cấy. Nồng độ thạch dao động trong
khoảng 6-10g/l tuỳ thuộc mục tiêu nuôi cấy.
1.4.2. Các chất điều hoà sinh trưởng
Các Phytohormon là những chất có tác dụng điều hoà sinh trưởng và phát triển của
thực vật. Chúng đóng vai trò quan trọng trong quá trình sinh trưởng và phát triển của
thực vật như: phân chia, biệt hoá tế bào… ngoài ra còn có ảnh hưởng đến quá trình
lão hoá mô và nhiều quá trình khác. Các phytohormon có thể chia thành 5
nhóm: Auxine, Cytokinin, Giberillin, Ethylen, Abscisic acid. Chúng là yếu tố quan
trọng nhất trong môi trường quyết định đến sự thành công của kết quả nuôi cấy.
+ Auxin: Nhóm này gồm có các chất chính là: IBA (3-Indol butyric acid), IAA (Indol
acetic acid), NAA (Nathyl acetic acid),… trong nuôi cấy mô thực vật Auxin
thường được sử dụng để kích thích sự phân chia tế bào, biệt hoá rễ, hình thành mô sẹo,
kìm hãm sự phát triển chồi và tạo ra các rễ phụ (Nguyễn Văn Uyển, 1993).
+ Cytokinin: Được bổ sung vào môi trường chủ yếu để kích thích sự phân chia tế
bào và quyết định sự phân hoá chồi bất định từ mô sẹo và cơ quan. Các hợp chất
thường sử dụng là: Kinetine (6- Furfuryl aminopurine - C10H9N05), BAP (6-
Benzyl amino purine), Zip (Izopentenyl adenin), Zeatin… Trong các chất này thì
Kenitin và BAP được sử dụng phổ biến nhất vì chúng có hoạt tính cao và giá thành rẻ.
Tuỳ vào từng hệ mô và mục đích nuôi cấy mà Cytokinin được sử dụng ở các nồng độ
khác nhau. Ở nồng độ thấp (10-7- 10-6M) chúng có tác dụng kích thích sự phân bào, ở
nồng độ 10-6- 10-5M chúng kích thích sự phân hoá chồi. Trong nuôi cấy
SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 10
[...]... môi trường vật lý được quan tâm đó là ánh sáng, độ ẩm, nhiệt độ + Ánh sáng: Đây là yếu tố cần thiết cho sự phát triển và phát sinh hình thái của các mô nuôi cấy Ánh sáng có ảnh hưởng tới mẫu cấy thông qua thời gian chiếu sáng, cường độ ánh sáng và chất lượng ánh sáng SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 11 ĐỒÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG Thời gian chiếu sáng có vai trò quan trọng trong quá trình... trên cơ sở thí nghiệm tái sinh chồi ban đầu, tiếp tục thử nghiệm môi trường tối ưu cho quá trình nhân nhanh chồi bằng cách thay đổi thành phần chất khoáng và sự có mặt của Cytokynin (BAP, Kinetin) riêng rẽ hay phối hợp SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 29 ĐỒÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG + Tạo rễ và huấn luyện: là giai đoạn chuyển chồi từ môi trường nhân nhanh sang môi trường tạo rễ để có thể hoàn... qua hai con đường nuôi cấy cơ quan và nuôi cấy phôi Thông dụng là nuôi cấy cơ quan nuôi cấy cơ quan và nuôi cấy phôi khác nhau ở chỗ phát sinh chồi ngọn hay chồi bên đầu tiên và sau đó phát triển rễ, cây hoàn chỉnh được tái tạo Trong nuôi cấy phôi thì phôi phát sinh đầu tiên sau đó hình thành lá mấm và rễ, là giai đoạn nảy mầm thành cây hoàn chỉnh 2.2.1.1 Nuôi cấy cơ quan Các bước nhân giống và môi trường... thấp - Tỷ lệ sống cao - Tốc độ sinh trưởng nhanh Kết quả bước cấy gây này phụ thuộc rất nhiều vào cách lấy mẫu Quan trọng nhất vẫn là đỉnh sinh truởng, chồi nách, sau đó là đoạn hoa tự, hoa, đoạn thân, mảnh lá, rễ… Chọn đúng phương pháp khử trùng sẽ đưa lại tỷ lệ sống cao và môi trường dinh dưỡng thích hợp sẽ đạt được tốc độ sinh trưởng nhanh 2.2.2.3 Nhân nhanh chồi - Thành phần và điều kiện môi trường... và điều kiện môi trường phải được tối ưu hóa nhằm đạt mục đích nhân nhanh - Quy trình cấy chuyển để nhân nhanh chồi khoảng 1- 2 tháng tùy loại cây Hệ số nhân nhanh là 2 - 8 lần/ 1 lần cấy chuyển Nhìn chung giai đoạn 3 thường yêu cầu 1036 tháng và cũng không nên kéo dài quá lâu Ví dụ từ đỉnh sinh trưởng của 1 cây chuối chọn lọc ban đầu, người ta chỉ nên nhân khoảng 2000 - 3000 chồi sau 7 - 8 lần cấy... dị sôma Đối với các cây khác như mía, hoa cúc, phong lan sau 1 năm có thể nhân được trên 1 triệu chồi từ 1 cây mẹ ban đầu Những khả năng tạo cây đó là: - Phát triển chồi nách - Tạo phôi vô tính - Tạo đỉnh sinh trưởng mới Trong giai đoạn này cần nghiên cứu các tác nhân kích thích phân hóa cơ quan, đặc biệt là chồi như: - Bổ sung tổ hợp phytohormone mới (tăng cytokinin giảm auxin) Tăng tỷ lệ auxin/cytokinin... Thời gian tối thiểu cho sự thích nghi là 2-3 tuần, trong thời gian này cây phải được chăm sóc và bảo bệ trước những yếu tố bất lợi sau: - Mất nước nhanh làm cho cây bị héo khô - Nhiễm vi khuẩn và nấm gây nên hiện tượng thối nhũn - Cháy lá do nắng 2.3 Một số quy trình cụ thể 2.3.1 Qui trình nhân giống cây keo lai Keo lai là loài cây trồng quan trọng và rất có triển vọng trong nhiều chương trình trồng rừng... nhỏ có thể vận chuyển đi xa dễ dàng và thuận lợi, đồng thời cây con tạo ra trong điều kiện vô trùng được xác nhận là sạch bệnh Do vậy, bảo đảm an toàn, đáp ứng các qui định về vệ sinh thực vật quốc tế Sản xuất quanh năm: Quá trình sản xuất có thể tiến hành vào bất kỳ thời gian nào, không phụ thuộc mùa vụ 1.3.2 Hạn chế của vi nhân giống Hạn chế về chủng loại sản phẩm: Trong điều kiện kỹ thuật hiện nay,... người ta khảo sát tốn rất nhiều thời gian, vì vậy việc đưa cây ra vườn để thích nghi vơi điều kiện bên ngoài phải hết sức chú trọng SVTH: NGUYỄN THANH NHIỀU_LỚP 12SHLT 30 ĐỒÁN CÔNG NGHỆ 1 GVHD: ĐẶNG ĐỨC LONG KẾT LUẬN Ở các nước trong khu vực nói chung và nước ta nói riêng, xu hướng phát triển trồng rừng lấy gỗ đang được khuyến khích vì diện tích rừng tự nhiên đang bị thu hẹp, trong khi nhu cầu dùng... Khả,2006, Cẩm nang ngành lâm nghiệp [3]Nguyễn Thị Duy Khoa, 2010,Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật [4]http://tailieu.vn/xem-tai-lieu/nghien-cuu-khoa-hoc-nuoi-cay-mo-mot-so-giong-keolai-moi-chon-tao-.1100536.html [5]http://vst.vista.gov.vn/home/database /an_ pham_dien_tu/nong_thon_doi_moi/2006/ 2006_00028/MItem.2006-07-11.1417/MArticle.2006-07-11.1603/marticle_view [6]http://vi.scribd.com/doc/69081048/QUY-TRINH-NHAN-GI%E1%BB%90NGKEO-LAI-B%E1%BA%B0NG-PH%C6%AF%C6%A0NG-PHAP-NUOI-C%E1%BA . gian rồi chậm dần và ngừng hẳn mặc dù đã chuyển sang
môi trường mới. Cùng trong thời gian này, Kogl lần đầu tiên xác định được vai trò của
IAA, 1 hormone. Do vậy, bảo đảm an toàn, đáp ứng các qui định về vệ sinh thực vật quốc tế.
Sản xuất quanh năm: Quá trình sản xuất có thể tiến hành vào bất kỳ thời gian