Phân lập và tuyển chọn một số chủng xạ khuẩn có khả năng sinh tổng hợp enzyme ngoại bào và đối kháng vi sinh vật 4

15 4 0
Phân lập và tuyển chọn một số chủng xạ khuẩn có khả năng sinh tổng hợp enzyme ngoại bào và đối kháng vi sinh vật  4

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

Thông tin tài liệu

56 CHƯƠNG 4 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 4 1 Kết luận Từ các mẫu đất lấy từ 2 tỉnh Bến Tre và Long An, 40 chủng xạ khuẩn đã được phân lập 40 chủng xạ khuẩn này được khảo sát khả năng sinh tổng hợp amylase, cellulase, protease ngoại bào cũng như khả năng đối kháng với vi khuẩn và nấm mốc gây bệnh của chúng Kết quả cho thấy rằng + 1940 chủng xạ khuẩn có khả năng sinh tổng hợp amylase ngoại bào, 5 chủng cho hoạt tính amylase cao là CNXK 40, CNXK 72, CNXK 65 2, CNXK 99 và CNXK 91 2 với đường kính vòng phâ.

CHƯƠNG KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 4.1 Kết luận Từ mẫu đất lấy từ tỉnh Bến Tre Long An, 40 chủng xạ khuẩn phân lập 40 chủng xạ khuẩn khảo sát khả sinh tổng hợp amylase, cellulase, protease ngoại bào khả đối kháng với vi khuẩn nấm mốc gây bệnh chúng Kết cho thấy rằng: + 19/40 chủng xạ khuẩn có khả sinh tổng hợp amylase ngoại bào, chủng cho hoạt tính amylase cao CNXK 40, CNXK 72, CNXK 65.2, CNXK 99 CNXK 91.2 với đường kính vịng phân giải tinh bột 26; 23; 18; 12 11 mm + 21/40 chủng xạ khuẩn ghi nhận có khả sinh tổng hợp cellulase ngoại bào, chủng có hoạt tính cellulase ngoại bào cao là CNXK 99, CNXK 52, CNXK 72, CNXK 55 CNXK 75 với đường kính vịng phân giải CMC 22; 18; 18; 15 14 mm + 20/40 chủng xạ khuẩn ghi nhận có khả sinh tổng hợp protease ngoại bào, chủng có hoạt tính protease ngoại bào cao CNXK 72, CNXK 83, CNXK 55 , CNXK 65.2 CNXK 116 với đường kính vịng phân giải casein 22; 22; 19; 17 16 mm + 5/40 chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với B.subtilis, 12/40 chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với B.cereus, 1/40 chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với E.coli 4/40 chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với S.aureus +15/40 chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với Fusarium sp., 7/40 chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với Fusarium equiseti, 12/40 chủng có khả đối kháng với nấm Neoscytaidium dimidiatum, 9/40 chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với Aspergilus sp., 5/40 chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với Aspergilus fumigatus, 8/40 chủng xạ khuần có khả đối kháng với Colletotrichum sp có 9/40 chủng xạ khuẩn có khả đối kháng với Penicillum chermesinum 4.2 Kiến nghị Cần có nghiên cứu để xác định loại môi trường lên men, điều kiện môi trường nuôi cấy: nguồn C, N; nhiệt độ, pH,…thích hợp cho chủng xạ khuẩn CNXK 56 sinh tổng hợp nhiều enzyme ngoại bào có hoạt tính sinh học cao, sinh tổng hợp nhiều hợp chất kháng khuẩn nấm mốc gây bệnh Đánh giá tác động dịch nuôi cấy xạ khuẩn lên nảy nầm hệ sợi tơ nấm mốc, khảo sát nồng độ dịch nuôi cấy tối thiểu để ức chế nảy mầm bào từ tác động đến trương phình hệ sợi tơ nấm mốc Tinh loại enzyme ngoại bào có hoạt tính cao từ chủng xạ khuẩn CNXK Xác định mốc nhiệt độ pH phản ứng cho enzyme amylase, cellulase, protease có hoạt tính mạnh Đồng thời đánh giá khả bền nhiệt, bền pH, tác động ion kim loại lên hoạt tính loại enzyme Đánh giá khả bền nhiệt, bền pH tác động proteinase K lên hoạt tính đối kháng dịch nuôi cấy chủng xạ khuẩn CNXK vi khuẩn nấm mốc gây bệnh Tách chiết xác định hợp chất có khả kháng khuẩn kháng mốc 57 PHỤ LỤC Phụ lục 1: Hình ảnh số chủng xạ khuẩn phân lập 58 Phụ lục 2: Hình ảnh vi thể số chủng xạ khuẩn phân lập 59 Phụ lục 3: Khả sinh tổng hợp amylase ngoại bào số chủng xạ khuẩn sau ngày nuôi cấy môi trường Gause I Phụ lục 4: Khả sinh tổng hợp cellulase ngoại bào số chủng xạ khuẩn sau ngày nuôi cấy môi trường Gause - CMC Phụ lục 5: Khả kháng khuẩn dịch nuôi cấy xạ khuẩn (C: Bacillus cereus) 60 Phụ lục 6: Khả kháng nấm mốc dịch nuôi cấy xạ khuẩn (A: Fusarium sp.; C: Colletrotrichum sp.; D: Aspergillus sp.; F: Penicillium Chermesinum; G: Neoscytalidium dimidiatum) 61 TÀI LIỆU THAM KHẢO [1] Nguyễn Lân Dũng, Phạm Văn Ty, Dương Văn Hợp, Nguyễn Liên Hoa, Đinh Thúy Hằng, Đào Thị Lương, Nguyễn Thị Hoài Hà, Lê Hoàng Yến, Nguyễn Kim Nữ Thảo, Nguyễn Văn Bắc, Hoàng Văn Minh, "Vi sinh vật học" Nhà xuất Khoa học Kỹ thuật Hà Nội, 2012 [2] Hoàng Hải, Dư Ngọc Thành., “Vi sinh vật đại cương” Nhà xuất Nông nghiệp Hà Nội, 2008 [3] M Sharma, P Dangi, and M Choudhary, “Actinomycetes: Source, Identification, and Their Applications” International Journal of current Microiology and Ápplied Sciences, 2014, vol 3, no 3, pp 801-832 [4] B Prapagdee, C Kuekulvong, and S Mongkolsuk, “Antifungal potential of extracellular metabolites produced by Streptomyces hygroscopicus against phytopathogenic fungi” International Journal of Biological Sciences, vol 4, no 5, pp 330–337, 2008, doi: 10.7150/ijbs.4.330 [5] Z Zheng, Z Zheng, Wei Zeng, Y Huang, Z Yang, J Li, H Cai, W Su, “Detection of antitumor and antimicrobial activities in marine organism associated actinomycetes isolated from the Taiwan Strait, China” FEMS Microbiol Letters, vol 188, no 1, pp 87–91, 2000, doi: 10.1016/S0378-1097(00)00215-9 [6] Y Ouhdouch, M Barakate, and C Finance, “Actinomycetes of Moroccan habitats: Isolation and screening for antifungal activities” Euprope Journal of Soil Biology, vol 37, pp 69– 74, 2001 [7] M Oskay, A Ü Tamer, and C Azeri, “Antibacterial activity of some actinomycetes isolated from farming soils of Turkey” African Juournal Biotechnology, vol 3, no 9, pp 441–446, 2004, doi: 10.5897/ajb2004.000-2087 [8] Khưu Phương Yến Anh, “Nghiên cứu xạ khuẩn có khả đối kháng nấm gây bệnh đạo ôn lúa phân lập từ đất huyện thoại sơn , tỉnh an giang,” 2015 [9] Nguyễn Thị Phong Lan, Võ Thị Thu Ngân, Trần Phước Lộc, Trần Hà Anh, “Tuyển chọn chủng xạ khuẩn (Streptomyces spp.) đối kháng nấm Pyricularia grisea gây bệnh đạo ôn hại lúa” Tạp chí Khoa học Phát triển, vol 13, no 8, pp 1442–1451, 2015 [10] L D Sette, V M De Oliveira, and G P Manfio, “Isolation and characterization of alachlordegrading actinomycetes from soil” Antonie van Leeuwenhok, vol 87, no 2, pp 81–89, 2005, doi: 10.1007/s10482-004-1129-2 62 [11] N M Zin, C S Loi, N M Sarmin, and A N Rosli, “Cultivation-dependent characterization of endophytic actinomycetes” Research Journal of Microbiol., vol 5, no 8, pp 717–724, 2010, doi: 10.3923/jm.2010.717.724 [12] F Kafilzadeh and F Dehdari, “Amylase activity of aquatic actinomycetes isolated from the sediments of mangrove forests in south of Iran” Egyptian Journal Aquatic Research, vol 41, no 2, pp 197–201, 2015, doi: 10.1016/j.ejar.2015.04.003 [13] F N M Da Vinha, M P Gravina-Oliveira, M N Franco, A Macrae, E P Silva Bon, R P Nascimento, R R R Coelho, “Cellulase production by Streptomyces viridobrunneus SCPE-09 using lignocellulosic biomass as inducer substrate” Appl Biochem Biotechnol., vol 164, no 3, pp 256–267, 2011, doi: 10.1007/s12010-010-9132-8 [14] K A El-Tarabily, M H Solimana, A H Nassara, H A Al-Hassania, K Sivasithamparamc, F McKennad and G E St J Hardyb, “Biological control of Sclerotinia minor using a chitinolytic bacterium and actinomycetes” Plant Pathol., vol 49, no 5, pp 573–583, 2000, doi: 10.1046/j.1365-3059.2000.00494.x [15] V J Mehta, J T Thumar, and S P Singh, “Production of alkaline protease from an alkaliphilic actinomycete” Bioresources Technololy., vol 97, no 14, pp 1650–1654, 2006, doi: 10.1016/j.biortech.2005.07.023 [16] A Pandey, I Ali, K S Butola, T Chatterji, and V Singh, “Isolation and characterization of actinomycetes from soil and evaluation of antibacterial activities of actinomycetes against pathogens” International Journal of Applied Biology and Pharmaceutical Technolog, vol 2, no 4, pp 384–392, 2011 [17] Trịnh Thới An, “Phân lập tuyển chọn chủng xạ khuẩn có khả sinh chất kháng nấm Pythium sp.”, Tạp chí Khoa học Đại học Sư phạm TP.HCM, no 1992, pp 113–121, 2014 18] B G E T Jayashantha, “Actinobacteria” University Kelaniya-Sri Lanka, pp 1–16, 2015 [19] S T Williams and E M H Wellington, “Actinomyces” University Liverpool, Liverpool, England, vol 9, no 9, 1982, doi: 10.2134/agronmonogr9.2.2ed.c45 [20] Q Li, X Chen, Y Jiang, and C Jiang, “Morphological Identification of Actinobacteria” Actinobacteria-Basics Biotechnological Applications, no i, 2016, doi: 10.5772/61461 [21] C Mendez, A F Brana, M B Manzanal, and C Hardisson, “Role of substrate mycelium in colony development in Streptomyces” Canadian Journal Microbiology, vol 31, no 5, pp 446–450, 1985, doi: 10.1139/m85-083 63 [22] S Wood, “A method for the examination of the substrate mycelium of actinomycetes by scanning electron microscopy” Journal of Genery Microbiology, vol 131, no 9, pp 2493– 2495, 1985, doi: 10.1099/00221287-131-9-2493 [23] J Willey, J Schwedock, and R Losick, “Multiple extracellular signals govern the production of a morphogenetic protein involved in aerial mycelium formation by Streptomyces coelicolor” Genes Developments, vol 7, no 5, pp 895–903, 1993, doi: 10.1101/gad.7.5.895 [24] J C Ensign, “Formation, properties, and germination of actinomycete spores” Annu Rev Microbiol., vol 32, no 149, pp 185–219, 1978, doi: 10.1146/annurev.mi.32.100178.001153 [25] A Dietz and J Mathews, “Classification of Streptomyces spore surfaces into five groups” Applications Microbiology, vol 21, no 3, pp 527–533, 1971, doi: 10.1128/aem.21.3.527533.1971 [26] W J Li, P Xu, S K Tang, L H Xu, R M Kroppenstedt, E Stackebrandt and C L Jiang, “Prauserella halophilia sp nov and Prauserella alba sp nov., moderately halophilic actinomycetes from saline oil,” International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, vol 53, no 5, pp 1545–1549, 2003, doi: 10.1099/ijs.0.02611-0 [27] S A Waksman and R E Curtis, “Ecology of Actinomycetes” Soil Sciences, vol 37, no 1, pp 189–216, 1983, doi: 10.1146/annurev.mi.37.100183.001201 [28] H S Chaudhary, B Soni, A R Shrivastava, and S Shrivastava, “Diversity and versatility of actinomycetes and its role in antibiotic production” Journal Applied Pharmaceutical Science, vol 3, no 8, 2013, doi: 10.7324/JAPS.2013.38.S14 [29] D Peschen, H P Li, R Fischer, F Kreuzaler, and Y C Liao, “Fusion proteins comprising a Fusarium-specific antibody linked to antifungal peptides protect plants against a fungal pathogen,” Nature Biotechnology, vol 22, no 6, pp 732–738, 2004, doi: 10.1038/nbt970 [30] S H Son, Z Khan, S G Kim, and Y H Kim, “Plant growth-promoting rhizobacteria, Paenibacillus polymyxa and Paenibacillus lentimorbus suppress disease complex caused by root-knot nematode and Fusarium wilt fungus” Journal of Applied Microbiology, vol 107, no 2, pp 524–532, 2009, doi: 10.1111/j.1365-2672.2009.04238.x [31] Mobolaji Felicia Adegboye, “Taxonomy and ecology of antibiotic producing actinomycetes” African Journal of Agricultural Reseearch, vol 7, no 15, pp 2255–2261, 64 2012, doi: 10.5897/ajarx11.071 [32] E Busti, P Monciardini, L Cavaletti, R Bamonte, A Lazzarini, M Sosio and S Donadio, “Antibiotic-producing ability by representatives of a newly discovered lineage of actinomycetes” Microbiology, vol 152, no 3, pp 675–683, 2006, doi: 10.1099/mic.0.28335-0 [33] A Lazzarini, L Cavaletti, G Toppo, and F Marinelli, “Rare genera of actinomycetes as potential producers of new antibiotics” Antonie van Leeuwenhoek, vol 78, no 3–4, pp 399–405, 2000, doi: 10.1023/A:1010287600557 [34] K Rachedi, F Zermanea, R Tird, F Ayachef, R Durane, B Laugae, S Karamae, M Simone, A Boulahrouf, “Effect of sulfonylurea tribenuron methyl herbicide on soil Actinobacteria growth and characterization of resistant strains” Brazilian Journal of Microbiology, vol 49, no 1, pp 79–86, 2018, doi: 10.1016/j.bjm.2017.05.004 [35] A De Schrijver and R De Mot, “Degradation of pesticides by actinomycetes,” Critical Reviews in Microbiology., vol 25, no 2, pp 85–119, 1999, doi: 10.1080/10408419991299194 [36] N A Al-Dhabi, G A Esmail, A K M Ghilan, and M V Arasu, “Isolation and screening of Streptomyces sp Al-Dhabi-49 from the environment of Saudi Arabia with concomitant production of lipase and protease in submerged fermentation,” Saudi Journal of Biology Sciences, vol 27, no 1, pp 474–479, 2020, doi: 10.1016/j.sjbs.2019.11.011 [37] Shu-Mei Zhang, “Isolation and characterization of antifungal lipopeptides produced by endophytic Bacillus amyloliquefaciens TF28” African Journal Microbiolog Research, vol 6, no 8, pp 1747–1755, 2012, doi: 10.5897/ajmr11.1025 [38] T L M Stamford, N P Stamford, L C B B Coelho, and J M AraĂjo, “Production and characterization of a thermostable α-amylase from Nocardiopsis sp endophyte of yam bean,” Bioresource Technology, vol 76, no 2, pp 137–141, 2001, doi: 10.1016/S09608524(00)00089-4 [39] D S Ningthoujam, P Kshetri, S Sanasam, and S Nimaichand,“Screening, Identification of Best Producers and Optimization of Extracellular Proteases from Moderately Halophilic Alkalithermotolerant Indigenous Actinomycetes” World Applied of Sciences Journal, vol 7, no 7, pp 907–916, 2009 [40] J J Song and K Soytong, “Research and development on bio-products for Crop Production 65 in China: A short communication,” International Journal of Agricultural Technology, vol 14, no 1, pp 131–141, 2018 [41] J L You, L X Cao, G F Liu, S N Zhou, H M Tan, and Y C Lin, “Isolation and characterization of actinomycetes antagonistic to pathogenic Vibrio spp from nearshore marine sediments,” World Journal of Microbiology and Biotechnology, vol 21, no 5, pp 679–682, 2005, doi: 10.1007/s11274-004-3851-3 [42] L T H Tan, K G Chan, L H Lee, and B H Goh, “Streptomyces bacteria as potential probiotics in aquaculture” Fronties Microbiology., vol 7, no FEB, pp 1–8, 2016, doi: 10.3389/fmicb.2016.00079 [43] R E de Lima Procópio, I R da Silva, M K Martins, J L de Azevedo, and J M de Araújo, “Antibiotics produced by Streptomyces” Brazilian Journal of Infectious Diseases, vol 16, no 5, pp 466–471, 2012, doi: 10.1016/j.bjid.2012.08.014 [44] G L Cai, C L Wei, Y Q Ji, M W Hui, T Liu, and W L De, “Identification of an antifungal metabolite produced by a potential biocontrol Actinomyces strain A01" Brazilian Journal of Microbiology, vol 39, no 4, pp 701–707, 2008, doi: 10.1590/S151783822008000400020 [45] L Lo Grasso, D Chillura-Martino, and R Alduina, “Production of Antibacterial Compounds from Actinomycetes,” Actinobacteria - Basics Biotechnological Applications, 2016, doi: 10.5772/61525 [46] F Van Bambeke, “Glycopeptides in clinical development: Pharmacological profile and clinical perspectives” Current Opinion Pharmacology, vol 4, no 5, pp 471–478, 2004, doi: 10.1016/j.coph.2004.04.006 [47] E A Campbell, N Korzheva, A Mustaev, K Murakami, S Nair, A Goldfarb, and S A Darst, “Structural mechanism for rifampicin inhibition of bacterial RNA polymerase” Cell, vol 104, no 6, pp 901–912, 2001, doi: 10.1016/S0092-8674(01)00286-0 [48] T J Walsh, H C Standiford, A C Reboli, J F John, M E Mulligan, B S Ribner, J Z Montgomerie, M B Goetz, C G Mayhall, D Rimland, D A Stevens, S L Hansen, G C Gerard, and R J Ragual, “Randomized double-blinded trial of rifampin with either novobiocin or trimethoprim-sulfamethoxazole against methicillin-resistant Staphylococcus aureus colonization: Prevention of antimicrobial resistance and effect of host factors on outcome”, Antimicrobial Agents and Chemotherapy, vol 37, no 6, pp 1334–1342, 1993, 66 doi: 10.1128/AAC.37.6.1334 [49] P P Singh, Y C Shin, C S Park, and Y R Chung, “Biological control of Fusarium wilt of cucumber by chitinolytic bacteria” Phytopathology, vol 89, no 1, pp 92–99, 1999, doi: 10.1094/PHYTO.1999.89.1.92 [50] F Fukamizo, “Chitinolytic Enzymes: Catalysis, Substrate Binding, and their Application” Current Protein and Peptide Science, vol 1, no 1, pp 105–124, 2005, doi: 10.2174/1389203003381450 [51] A Sadeghi, A R Hessan, H Askari, S Aghighi, and G H Shahidi Bonjar, “Biological control potential of two Streptomyces isolates on Rhizoctonia solani, the causal agent of damping-off of sugar beet” Pakistan Journal Biology Science, vol 9, no 5, pp 904–910, 2006, doi: 10.3923/pjbs.2006.904.910 [52] I M S M E W Tahtamouni, K M Hameed, “Biological control of Sclerotinia sclertiorum using indigenous chitinolytic Actinomycetes in Jordan” The Plant Pathology Journal, pp 107–114, 2006 [53] C H Yang and W H Liu, “Purification and properties of a maltotriose-producing αamylase from Thermobifida fusca,” Enzyme Microbial Technology, vol 35, no 2–3, pp 254–260, 2004, doi: 10.1016/j.enzmictec.2004.05.004 [54] Lê Thu Hiền, Hà Minh Thanh, Vũ Phương Bình, Trần Ngọc Kháng, “Nghiên cứu vi khuẩn, xạ khuẩn đối kháng với nấm Fusarium oxysporum gây bệnh héo vàng cà chua, dưa chuột,” pp 1009–1017 [55] A Schatz, E Bugie, and S A Waksman, “Streptomycin, a substance exhibiting antibiotic activity against gram-positive and gram-negative bacteria” Clinical Orthopaedics and Related Research, no 437, pp 3–6, 2005, doi: 10.1097/01.blo.0000175887.98112.fe [56] H T Dulmage, “The production of neomycin by Streptomyces fradiae in synthetic media.,” Applied Microbiology., vol 1, no 2, pp 103–106, 1953, doi: 10.1128/aem.1.2.103106.1953 [57] R Gonzalez, L Islas, A M Obregon, L Escalante, and S Sanchez, “Gentamicin Formation in Micromonospora purpurea: Stimulatory Effect of Ammonium” Journal of Antibiotics, vol 48, no 6, pp 479–483, 1995, doi: 10.7164/antibiotics.48.479 [58] C R Wang, Y G., Davies, J E., Hut Chinson, “Plasmid DNA in the erythromycin producing microorganism Streptomyces erythreus NBRC 2338,” Journal of Antibiotic, vol 67 53, no 9, pp 1689–1699, 2019, doi: 10.1017/CBO9781107415324.004 [59] J I Mitchell, P G Logan, K E Cushing, and D A Ritchie, “Novobiocin‐resistance sequences from the novobiocin‐producing strain Streptomyces niveus” Molecular Microbiology, vol 4, no 5, pp 845–849, 1990, doi: 10.1111/j.1365-2958.1990.tb00655.x [60] Trần Thị Hồng, Nguyễn Thị Kim Cúc, Phậm Thị Thúy Hoài, Phạm Việt Hoàng “Phân lập vi sinh vật đối kháng số nguồn bệnh nấm thực vật đánh giá hoạt tính chúng in vitro in vivo" Tạp chí Khoa học Công Nghệ, vol 52, no 4, p 419, 2014, doi: 10.15625/0866-708X/52/4/3238 [61] Nguyễn Thanh Sơn, Lê Thị Thúy Ái, “Phân lập tuyển chọn chủng xạ khuẩn có khả sinh tổng hợp hợp chất tự nhiên có hoạt tính sinh học vườn Quốc gia Nam Cát Tiên khu sinh thái Cam Ranh,” vol 4, pp 1210–1216, 2009 [62] Nguyễn Thị Hồng, Nguyễn Ngọc Phương, “Phân lập tuyển chọn chủng xạ khuẩn từ rừng ngập mặn Cần Giờ kháng nấm Fusarium sp.” Tạp chí khoa học DHSP TPHCM, pp 59– 71, 2013 [63] Chu Đức Hà, Nguyễn Văn Giang, Nguyễn Thị Thu, “Nghiên cứu đặc điểm sinh học chủng xạ khuẩn VS18 đối kháng với nấm Corynaspora cassiicola” Tạp chí Khoa học Cơng nghệ Việt Nam, vol 6, no 79 pp 64–67, 2017 [64] D Liu, R Yan, Y Fu, X Wang, J Zhang, and W Xiang, “Antifungal, Plant GrowthPromoting, and Genomic Properties of an Endophytic Actinobacterium Streptomyces sp NEAU-S7GS2,” Frontiers Microbiology, vol 10, no September, pp 1–16, 2019, doi: 10.3389/fmicb.2019.02077 [65] L Hankin, R P Poincelot, and S L Anagnostakis, “Microorganisms from Composting Leaves: Ability to Produce Extracellular Degradative Enzymes” vol 2, no 1976, pp 296– 308 [66] R Jog, G Nareshkumar, and S Rajkumar, “Plant growth promoting potential and soil enzyme production of the most abundant Streptomyces spp from wheat rhizosphere” Journal Applied Microbiology., vol 113, no 5, pp 1154–1164, 2012, doi: 10.1111/j.13652672.2012.05417.x.2010 [67] P M de Souza and P de O e Magalhães, “Application of microbial α-amylase in industrya review” Brazilian Journal Microbiology, vol 41, no 4, pp 850–861, 2010, doi: 10.1590/s1517-83822010000400004 68 [68] Lê Thị Hiền, Đinh Văn Lợi, Vũ Thị Vân, Nguyễn Văn Giang, “Phân lập tuyển chọn chủng xạ khuẩn Streptomyces đối kháng nấm bệnh cây” Tạp chí Khoa học Phát triển, vol 12, no 5, pp 656–664, 2014.actinomycetes strains for the production of antifungal metabolites,” African Journal [69] A L Grigorevski De Lima, R Pires Do Nascimento, E P Da Silva Bon, and R R R Coelho, “Streptomyces drozdowiczii cellulase production using agro-industrial by-products and its potential use in the detergent and textile industries,” Enzyme Microbial Technology, vol 37, no 2, pp 272–277, 2005, doi: 10.1016/j.enzmictec.2005.03.016 [70] Trần Hoàng Dũng, Huỳnh Văn Hiếu, Trần Duy Dương, Nguyễn Thành Công, “Phân lập chủng vi sinh vật có khả phân giải cellulose mạnh phục vụ sản xuất chế phẩm phân hủy rơm rạ” Tạp chí Khoa học Công nghệ Việt Nam, vol 60, no 6, pp 32–36, 2018 [71] N A El-Sersy, H Abd-Elnaby, G M Abou-Elela, H A H Ibrahim, and N M K ElToukhy, “Optimization, economization and characterization of cellulase produced by marine Streptomyces ruber” African Journal of Biotechnology, vol 9, no 38, pp 6355– 6364, 2010, doi: 10.5897/AJB10.677 [72] V N Jeyadharshan, “Production and Partial Purification of Protease by Actinomyces Species,” International Journal of Sciences Research Publicatuions, vol 3, no 1, pp 2250– 3153, 2013 [73] A A Al-Askar, Y M Rashad, E E Hafez, W M Abdulkhair, Z A Baka, and K M Ghoneem, “Characterization of alkaline protease produced by Streptomyces griseorubens E44G and its possibility for controlling Rhizoctonia root rot disease of corn” Biotechnology and Biotechnological Equipment, vol 29, no 3, pp 457–462, 2015, doi: 10.1080/13102818.2015.1015446 [74] S Ramesh, M Rajesh, and N Mathivanan, “Characterization of a thermostable alkaline protease produced by marine Streptomyces fungicidicus MML1614” Bioprocess and Biosystems Engineering, vol 32, no 6, pp 791–800, 2009, doi: 10.1007/s00449-009-03051 [75] J Solecka, J Zajko, M Postek, and A Rajnisz, “Biologically active secondary metabolites from Actinomycetes” Central European Journal of Biology, vol 7, no 3, pp 373–390, 2012, doi: 10.2478/s11535-012-0036-1 [76] M Arifuzzaman, M R Khatun, and H Rahman, “Isolation and screening of actinomycetes 69 from Sundarbans soil for antibacterial activity,” African Journal of Biotechnology, vol 9, no 29, pp 4615–4619, 2010, doi: 10.5897/AJB10.339 [77] N Kumar, R K Singh, M SK, S AK, and P UC, “Isolation and screening of soil Actinomycetes as source of antibiotics active against bacteria,” International Journal of Microbiology Research, vol 2, no 2, pp 12–16, 2010, doi: 10.9735/0975-5276.2.2.12-16 [78] K Kathiresan, R Balagurunathan, and M M Selvam, “Fungicidal activity of marine actinomycetes against phytopathogenic fungi” Indian Journal of Biotechnology, vol 4, pp 271–276, 2005 [79] H Sharma and L Parihar, “Antifungal activity of extracts obtained from actinomycetes” Journal of Yeast and Fungal Research, vol 1, no 10, pp 197–200, [80] A Kavitha, M Vijayalakshmi, P Sudhakar, and G Narasimha, “Screening of actinomycetes strains for the production of antifungal metabolites” African Journal Microbiol Research, vol 4, no 1, pp 027–032, 2010 70 ... ảnh vi thể số chủng xạ khuẩn phân lập 59 Phụ lục 3: Khả sinh tổng hợp amylase ngoại bào số chủng xạ khuẩn sau ngày nuôi cấy môi trường Gause I Phụ lục 4: Khả sinh tổng hợp cellulase ngoại bào số. .. tính đối kháng dịch ni cấy chủng xạ khuẩn CNXK vi khuẩn nấm mốc gây bệnh Tách chiết xác định hợp chất có khả kháng khuẩn kháng mốc 57 PHỤ LỤC Phụ lục 1: Hình ảnh số chủng xạ khuẩn phân lập 58.. .sinh tổng hợp nhiều enzyme ngoại bào có hoạt tính sinh học cao, sinh tổng hợp nhiều hợp chất kháng khuẩn nấm mốc gây bệnh Đánh giá tác động dịch nuôi cấy xạ khuẩn lên nảy nầm

Ngày đăng: 15/07/2022, 10:56

Hình ảnh liên quan

Phụ lục 1: Hình ảnh một số chủng xạ khuẩn được phân lập - Phân lập và tuyển chọn một số chủng xạ khuẩn có khả năng sinh tổng hợp enzyme ngoại bào và đối kháng vi sinh vật  4

h.

ụ lục 1: Hình ảnh một số chủng xạ khuẩn được phân lập Xem tại trang 3 của tài liệu.
Phụ lục 2: Hình ảnh vi thể của một số chủng xạ khuẩn được phân lập - Phân lập và tuyển chọn một số chủng xạ khuẩn có khả năng sinh tổng hợp enzyme ngoại bào và đối kháng vi sinh vật  4

h.

ụ lục 2: Hình ảnh vi thể của một số chủng xạ khuẩn được phân lập Xem tại trang 4 của tài liệu.

Từ khóa liên quan

Tài liệu cùng người dùng

  • Đang cập nhật ...

Tài liệu liên quan