Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống
1
/ 20 trang
THÔNG TIN TÀI LIỆU
Thông tin cơ bản
Định dạng
Số trang
20
Dung lượng
727,3 KB
Nội dung
Đánhgiáđadạngditruyềnmộtsốloàicây
dược liệuViệtNamthuộcchiĐảngSâm
(Codonopsis sp)bằngkỹthuậtANDmãvạch
Nguyễn Thị Thanh Nga
Trường Đại học Khoa học Tự nhiên
Luận văn ThS. ngành: Ditruyền học; Mã số: 60 42 70
Người hướng dẫn: PGS.TS. Đinh Đoàn Long
Năm bảo vệ: 2012
Abstract. Tìm hiểu chi codonopsis; tổng quan về mãvạchAND (DNA barcode);
một mãvạchANDđược sử dụng rộng rãi và tình hình nghiên cứu; ứng dụng mã
vạch AND trên thực vật. Trình bày các phương pháp nghiên cứu: tách chiết AND
tổng số; kiểm tra sản phẩm AND sau tách chiết; phương pháp nhân bản gen đích
bằng kỹthuật PCR; tinh sạch sảm phẩm PCR và giải trình tự; phương pháp phân tích
số liệu. Kết quả nghiên cứu: tách chiết AND tổng số; khuyếch đại vùng gen nghiên
cứu bằngkỹthuật PCR.
Keywords. Sinh học; Ditruyền học; Đadạngdi truyền; Câydược liệu; Kỹthuật
AND mãvạch
Content
MỞ ĐẦU
Việt Namnằm trong vùng khí hậu nhiệt đới gió mùa nóng và ẩm nên có nguồn tài
nguyên thực vật phong phú và đadạng Theo kết quả điều tra của Viện DượcLiệu (Bộ Y tế),
tính đến năm 2005 đã ghi nhận được 3948 loài thực vật và nấm lớn; 52 loài tảo biển, 408 loài
động vật và 75 loại khoáng vật có công dụng làm thuốc. Trong tổng số 3948 loàicây thuốc,
gần 90 % là các cây mọc tự nhiên, tập tung chủ yếu ở các quần xã rừng, chỉ có gần 10 % là
các câythuốc trồng. Bộ Y tế cũng đã thống kê, mỗi năm ở ViệtNam tiêu thụ từ 30 - 50 tấn
dược liệu khác nhau để dùng trong y học cổ truyền hoặc làm nguyên liệu cho công nghiệp
dược và xuất khẩu. Trong số đó, trên 2/3 được khai thác từ nguồn câythuốc mọc tự nhiên
hoặc trồng trọt trong nước. Riêng từ nguồn câythuốc tự nhiên đã cung cấp tới hơn 20.000
tấn mỗi năm. Khối lượng dượcliệu này trên thực tế mới chỉ bao gồm từ hơn 200 loàiđược
khai thác và đưa vào thương mại có tính phổ biến hiện nay. Bên cạnh đó, còn nhiều loàidược
liệu khác vẫn được thu hái, sử dụng tại chỗ trong cộng đồng và hiện chưa có những con số
thống kê cụ thể. Những sốliệu này cho thấy nguồn dượcliệu ở nước ta rất phong phú và đa
dạng, việc sử dụng dượcliệu làm thuốcđã có từ lâu đời và rất phổ biến, có vai trò quan trọng
trong nền kinh tế - xã hội. Vấn đề đặt ra là làm sao xác định chính xác các loài thực vật được
dùng làm thuốc để tránh nhầm lẫn với những loài khác? Đặc biệt giữa các loài có đặc điểm
hình thái tương tự nhau.
Trong y học cổ truyền các nước, nhìn chung các nguồn dược liệu, các hợp chất bổ
sung và các loạithuốc thảo dược thường được xác định ở cấp độ loài qua tên khoa học (tên
La tinh) của chúng, và đây là đơn vị cơ bản cho việc chuẩn bị của các công thức thảo dược.
Dược điển quốc gia Trung Quốc quy định ngành công nghiệp dược phẩm và các nhà quản lý
luôn bắt đầu mô tả các loạithuốc thảo dượcbằng cách xác định tên các loài thực vật được sử
dụng. Thật không may, dượcliệu thay thế hoặc được làm giả do cố ý (ví dụ vì lý do lợi
nhuận) hoặc vô ý (chẳng hạn do sai sót khi ghi chép hoặc thiếu kiến thức) xuất hiện không
hiếm trong thực tế và có thể gây nguy cơ nghiêm trọng trong việc sử dụng các thuốc thảo
mộc để trong điều trị và hỗ trợ điều trị tương đối phổ biến hiện nay.
Trong công tác kiểm nghiệm dượcliệu hiện nay, phương pháp được dùng chủ yếu dựa
trên phân tích hình thái vĩ mô (quan sát bằng mắt) và vi mô (quan sát tiêu bản hiển vi) của
mẫu vật. Tuy vậy, phương pháp hình thái học gặp trở ngại sau khi các nguyên liệu thực vật đã
qua xử lý hoặc sơ chế. Vì vậy, các phương pháp bổ sung giúp xác định chính xác các loàicây
thuốc dựa trên hệ gen (ADN) đặc thù của chúng đãđược phát triển vào cuối những năm
1990. Trong thực tế, các nhà phân loại học phân tử hiện nay đang hình dung ra danh mục tất
cả các loài sinh vật sống trên trái đất bằng cách sử dụng kỹthuật gọi là mãvạch ADN (DNA
barcode) thông qua việc xác định được các trình tự DNA ngắn đặc trưng của chúng và dùng
chúng như “mã vạch” để nhận biết các mẫu sinh học kể cả khi chúng đãđượcsơ chế hoặc
bảo quản lâu dài.
Từ thực tế trên, chúng tôi tiến hành đề tài “Đánh giá tính đadạngditruyềnmộtsốloài
Codonopsis ở ViệtNambằngkỹthuậtmãvạch ADN”. Đề tài góp phần xác định các mãvạch
có thể phân biệt được các loàithuộcchi Codonopsis bằng cách kết hợp giữa phương pháp
phân loại hình thái truyền thống với phương pháp phân tích trình tự ADN của một gen mã
vạch như ITS, matK, trnK.
Chƣơng 1. TỔNG QUAN TÀI LIỆU
1.1. Chi Codonopsis
1.1.1. Phân loại học
Chi Codonopsis có đặc điểm phân loại học như sau:
Liên giới: Eukaryota (Sinh vật nhân thực)
Giới: Plantae (Thực vật)
Phân giới: Viridaeplantae (Thực vật xanh)
Ngành: Magnoliophyta (Thực vật có hoa; Mộc lan; Hạt kín)
Lớp: Magnoliopsida (Thực vật hai lá mầm)
Phân lớp: Asteriades
Bộ: Asterales (Bộ Cúc)
Họ: Campanulaceae (Họ Hoa chuông; Cát kiến)
Phân họ: Campanuloideae
Chi: Codonopsis
1.1.2. Sơ lược đặc điểm hình thái và phân bố
Chi Codonopsis gồm những câydạngcây cỏ, sống lâu năm, leo bằng thân quấn. Rễ
hình trụ dài, đường kính có thể đạt 1,5 – 2 cm, phân nhánh, đầu rễ phình to có nhiều vết sẹo
lồi, thường chỉ có một rễ trụ mà không có rễ nhánh, càng nhỏ về phía đuôi, lúc tươi màu
trắng, sau khi khô thì rễ có màu vàng sẫm, có nếp nhăn.
Thân mọc thành từng cụm vào mùa xuân, bò trên mặt đất hay leo vào cây khác, thân
màu tím sẫm, có lông thưa, phần ngọn không lông. Lá mọc cách hình trứng hay hình trứng
tròn, đuôi lá nhọn, phần gần cuống hình tim, mép nguyên, màu xanh hơi pha vàng, mặt trên
có lông nhung, mặt dưới mầu trắng xám nhẵn hoặc có lông rải rác, dài 3 – 8 cm, rộng 2 – 4
cm. Hoa màu xanh nhạt, mọc riêng lẻ ở kẽ nách lá, có cuống dài 2-6cm, đài tràng hình
chuông, gồm 5 phiến hẹp, 5 cánh có vân màu tím ở họng, lúc sắp rụng trở thành màu vàng
nhạt, chia làm 5 thùy, nhụy 5, chỉ nhụy hơi dẹt, bao phấn đính gốc. Quả bổ đôi, hình chùy
tròn, 3 tâm bì, đầu hơi bằng, có đài ngắn, lúc chín thì nứt ra. Có nhiều hạt màu nâu nhẵn bóng
Hnh 1. Hnh thái loài Codonopsis pilosula
Mộtsốloài Codonopsis được dùng trong y học cổ truyền các nước có thể kể đến gồm
có:
- Đảngsâm leo (Codonopsis pilosula): cây thảo lâu năm, thân mọc bò hay leo. Rễ hình
trụ dài, đường kính có thể tới 1-1,7cm. Lá mọc đối có khi mọc cách hay hơi vòng. Hoa (Hnh
1) mọc đơn độc ở nách lá. Đài 5, Tràng hình chuông màu vàng nhạt, chia 5 thùy, nhị 5. Bầu 5
ô, quả nang, phía trên có một núm nhỏ hình nón, khi chín có màu tím đỏ.
- Đảng sâm, Kim tiền báo, Thổ đảngsâm
(Codonopsis javanica (Blume) Hook.f.) còn có
tên là cây Đùi gà, Mằn rày cáy (Tày), Cang hô
(Mèo); đó là cây cỏ lâu năm, thân leo. Rễ hình
trụ, phân nhánh, lá mọc đối, ít khi mọc so le hình
tim, nhẵn hoặc có ít lông, đầu lá nhọn, mép lá
nguyên hoặc có khía răng nhỏ, bấm vào lá có
nhựa mủ. Phiến lá dài 3 – 8 cm, rộng 2 – 4 cm.
Hoa (Hnh 2) mọc riêng rẽ ở kẽ lá, hình chuông
màu trắng hoặc hơi vàng, họng có vân tím.
Hnh 2. Hoa của loài C. javanica
- Đảngsâm hoa xanh (Codonopsis viridiflora M.xim) lá mọc đối hay mọc cách, dài 2 –
3 cm, hai mặt đều có lông gai ngắn, lá nguyên không có răng cưa, cuống lá tương đối ngắn,
Hoa mọc đơn trên ngọn, tràng hình chuông, dài khoảng 1 cm màu xanh vàng, trong có nếp
nhăn ngắn. Loài này mới chỉ tìm thấy ở khu tự trị A-pa tỉnh Tứ Xuyên, Trung Quốc.
- Đảngsâm hoa ống (Codonopsis tubulosa Kom) cây thảo thân lá đều có lông dài, lá
hẹp dài hình bầu dục, 3-8cm, đuôi lá có răng thưa. Cánh hoa sâu, dài bằng nửa ống hoa, tràng
hình ống, dài độ 3cm, phân bố ở khu Tây Sương tỉnh Tứ Xuyên, Trung Quốc.
- Xuyên đảngsâm(Codonopsis tangshen
Oliv); hình thái cơ bản giống loài C. pilosula
(Franch) Nannf nhưng lá hình trứng hay hình
trứng đuôi nhọn, mặt lá không có lông, chỉ rìa
lá có lông nhung. Sau khi ra hoa (Hnh 3) thì
có quả đuôi màu trắng tím, trong hoa có sọc
nhỏ màu tím, cuống dài, hình dẹt, to hơn loại
trên, ở chổ núi cao mưa nhiều về mùa thu quả
chín không nứt.
Hnh 3. Hoa Codonopsis tangsheng
- Đảngsâm mõm chó (Codonopsis nervosa Nannf) lá mọc đối, hình trứng dài 1-1,5cm, mép
nguyên, hai mặt đều có lông. Hoa (Hnh 4a) có tràng hình chuông dài độ 1,5cm, màu lam
nhạt, trong có thới màu tím đậm.
Ngoài ra còn có các loài Codonopsis lanceolata Benth. et Hook. (Hnh 4b) có rễ hình
chùy và loài Codonopsis ussuriensis Hemsl (Hnh 4c) có rễ hình củ tròn, thường được trộn
lẫn với Codonopsis để bán ở Trung Quốc. Ở Việt Nam, trong thời gian 1961 – 1985, Viện
Dược liệuđã phát hiện Đảngsâm(Codonopsis spp.) tập trung ở 14 tỉnh miền núi phía Bắc;
còn ở phía Nam, chỉ có ở khu vực Tây nguyên. Vùng phân bố tập trung nhất là các tỉnh Lai
châu, Sơn La, Lào Cai, Hà Giang, Cao Bằng, Lạng Sơn, Gia Lai, Kon Tum, Quảng Nam, Đà
Nẵng và Lâm Đồng.
Hnh 4. Hoa của các loài (a) Codonopsis nervosa, (b) Codonopsis lanceolata, và (c)
C. ussuriensis.
1.1.3. Thành phần hóa học và giá trị sử dụng của Codonopsis trong y học cổ
truyền
Bộ phận chính của Codonopsis được dùng làm thuốc là rễ. Dựa vào chất lượng của rễ
sau khi thu hoạch, người ta chia ra làm 5 loại sau: Tây đảng sâm, Đông đảng sâm, Lộ đảng
sâm, Điều đảng sâm, Bạch đảng sâm.
Về thành phần hóa học, trong rễ của Codonopsis đến nay đã tìm thấy sucrose,
glucose, fructose, galactose, arabinose, mannose, xylose, rhamnose, inulin, nhiều loại
alcaloid, scutellarein glucoside, CP1 – 4, syringin, N-Hexyl b-D-glucopyranoside, ethyl a-D-
fructofuranoide, tangshenoside I, choline.
Codonopsis và các dịch chiết hoặc thành phần của chúng có các tác dụng dược lý như
sau: tác dụng tăng lực, tác dụng đối với hệ tiêu hóa, tác dụng đối với hệ tim mạch, tác dụng
đối với máu và hệ thống tạo máu, đối với điều hòa huyết áp, đối với đáp ứng miễn dịch của
cơ thể, đối với hệ thần kinh trung ương, ngoài ra Codonopsis còn có tác dụng kháng khuẩn.
Hiện nay ở Việt Nam, các loàithuộcchi Codonopsis được liệt vào Sách Đỏ ViệtNam
do bị khai thác thường xuyên, liên tục (gần như không có giới hạn), cùng với nạn tàn phá
rừng làm nương rẫy (ở Tây Bắc, Tây Nguyên) cũng làm cho vùng phân bố tự nhiên của các
loài này bị thu hẹp nhanh chóng.
1.2. Tổng quan về mãvạch ADN (DNA barcode)
Phương pháp phân loại hình thái có lịch sử phát triển lâu đời và đã xây dựng được
một hệ thống phân loại sinh vật nói chung và thực vật nói riêng tương đối đầy đủ và toàn
diện. Phương pháp phân loại này chủ yếu dựa vào sự khác biệt về hình thái của các cơ quan
trong cơ thể thực vật, đặc biệt là cơ quan sinh sản (hoa). Tuy nhiên, phương pháp này cũng
gặp rất nhiều khó khăn khi cần xác định những mẫu vật đang trong giai đoạn phát triển (chưa
ra hoa), những mẫu có đặc điểm giống nhau do cùng thích nghi với điều kiện môi trường,
hoặc khó nhận biết do có nhiều điểm tương đồng ở bậc phân loại thấp như loài và dưới loài.
Từ giữa những năm 1990, với sự phát triển mạnh mẽ của sinh học phân tử, một phương pháp
nghiên cứu mới trong lĩnh vực phân loại học đã hình thành và được gọi là phương pháp phân
loại học phân tử. Phương pháp này dựa trên các dữ liệu thông tin về hệ gen (ADN) trong và
ngoài nhân hoặc các sản phẩm của chúng (protein). Tùy mục đích hoặc đối tượng nghiên cứu,
người ta có thể lựa chọn các gen (đoạn ADN) khác nhau hoặc các sản phẩm khác nhau của hệ
gen.
Năm 2003, Paul Hebert, nhà nghiên cứu tại Đại học Guelph ở Ontario, Canada, đề
xuất "mã vạch DNA" (DNA Barcode) như là một cách để xác định loài. Mãvạchđược sử
dụng là một đoạn ADN ngắn từ một phần của hệ gen và được dùng giống như cách một máy
quét ở siêu thị phân biệt được các sản phẩm bằng cách nhận diện được các sọc màu đen đặc
chưng của từng sản phẩm. Trong công nghệ mã vạch, có thể hai mặt hàng trông rất giống
nhau và không phân biệt đượcbằng mắt thường, song qua mã vạch, máy quét có thể phân
biệt được. Mộtmãvạch ADN điển hình phải đáp ứng được các yêu cầu sau :
(i) có tính phổ biến cao để có thể thực hiện trên nhiều loài thực vật;
(ii) trình tự có tính đặc hiệu cao và có hiệu suất nhân bản cao;
(iii) có khả năng phân biệt đồng thời được nhiều loài.
1.3. Mộtsốmãvạch ADN đƣợc sử dụng rộng rãi và tnh hnh nghiên cứu
1.3.1. Mãvạch ADN ở động vật
Mã vạch ADN locut gen CO1 ở động vật thường được dùng rộng rãi do có các tiêu
chí: đây là một gen đơn bội, đượcditruyền từ mẹ, gen này cho mức độ phân biệt cao. Đó là
một vùng gen mã hóa cho protein có mặt với nhiều bản sao trong mỗi tế bào. Ở động vật, nó
có tính bảo thủ với những vùng đảo ngược nhỏ, hoặc thường xuyên lặp đi lặp lại đơn
nucleotide. Những đặc điểm này kết hợp với cặp mồi được thiết kế tốt, hiệu quả sử dụng gen
CO1 để phân biệt nhiều mẫu động vật có cùng tổ tiên được ghi nhận tốt, thậm chí hiệu suất
sử dụng cao ngay với các mẫu đãđược lưu giữ qua thời gian dài. Nhiều nghiên cứu cho thấy
CO1 giúp phân biệt được khoảng 98% các loài với nhau. Trong phần còn lại, nó xác định hẹp
đến các cặp hoặc bộ nhỏ của các loài có mối quan hệ gần gũi, nói chung là các loàichỉ vừa
mới tách ra hoặc các loài lai thường xuyên. Ngoài locut gen CO1, các đoạn gen ti thể Cytb
(cytochrome b), gen ribosome 12S, 16S cũng được dùng như ADN mãvạch trong nhận dạng
ở động vật .
1.3.2. Mãvạch ADN ở thực vật
Nếu như các gen ti thể như CO1 và Cytb được dùng rộng rãi cho động vật và mộtsố
loài tảo, thì khi chúng được áp dụng cho các loài thực vật trên cạn lại biểu hiện tính bảo thủ
cao và vì vậy không phù hợp làm ADN mã vạch. Thay vào đó, các vùng rời rạc trong hệ gen
lạp thể đãđược dùng trong các nghiên cứu phát sinh loài (như các vùng exon của các gen
rbcL, atpB, ndhF và matK và vùng intron của các gen trnL và trnL-F). Một vùng trình tự
thông thường khác cho nghiên cứu phát sinh loài thực vật trên cạn là ribosome ITS nhân
(vùng đệm của tiểu đơn vị lớn ADN ribosome). Tính đến năm 2009, đã có khoảng 8 locus
gen được sử dụng làm mãvạch DNA ở các loài thực vật, bao gồm cả hệ gen nhân và hệ gen
lục lạp.
1.4. Ứng dụng mãvạch ADN trên thực vật
1.4.1. Ứng dụng ở thực vật nói chung
Nghiên cứu mãvạch ADN thực vật đã vượt xa nhiệm vụ so sánh các vùng ADN khác
nhau để tiến tới những ứng dụng thực tế hơn. Các ứng dụng này có thể được chia thành hai
loại rộng. Một là để cung cấp cái nhìn sâu hơn vào phân loại học ở cấp độ loài và đóng góp
vào quá trình phân loại học: nhận diện và phân chia ranh giới giữa các loài. Ứng dụng thứ
hai, là hỗ trợ quá trình nhận diện các mẫu vật không nhận biết được hoặc chưa xác định được
thuộc loài nào. Mãvạch DNA thực vật có khả năng cung cấp cái nhìn sâu vào phân loại cấp
độ loài trong những nhóm có hình thái đơn giản, nhóm có phân bố rất rộng, nhóm có kích
thước nhỏ, và / hoặc những nhóm đãđược phân loại nhưng không đầy đủ, chưa tương xứng
với đặc điểm đadạng của chúng (ví dụ như mộtsố trường hợp không thể dựa trên nguyên tắc
phân loại hình thái học để đánh giá, phân loại, hoặc đãđược phân loại nhưng chưa thực sự
triệt để).
1.4.2. Ứng dụng mãvạch ADN trong nhận biết cây dƣợc liệu
Thực vật dùng làm thuốc thảo dược luôn cần được xác định ở cấp độ loài, vì vậy, xác
định chính xác là một bước quan trọng để có thể đảm bảo về chất lượng sản phẩm và có tầm
quan trọng trong việc nghiên cứu các đặc tính của sự đadạngdi truyền, phát sinh loài và phát
sinh vùng địa lý cũng như bảo vệ các loài có nguy cơ tuyệt chủng. Cùng với sự phát triển của
thị trường thảo dược, sự giả mạo các nguyên liệu thảo dượcthuốc cũng trở thành vấn đề toàn
cầu. Các nguyên liệu thảo dược này có thể được thay thế bằng các loại thảo mộc khác có
quan hệ họ hàng gần gũi, thậm chí từ những nguyên liệugiả mạo. Việc giả mạo các nguyên
liệu thảo dược thường là do:
(i) vật liệu không phân biệt đượcbằng đăc điểm hình thái
(ii) những vật liệu có tên tương tự nhau, và
(iii) việc thay thế những nguyên liệu có giá trị kinh tế bằng nguyên liệu khác
rẻ tiền hơn.
Tuy nhiên, việc xác định chính xác các nguyên liệu thảo dược làm thuốc theo
phương pháp truyền thống như sự đánhgiá cảm quan và phương pháp hóa học đôi khi gặp
nhiều khó khăn, đặc biệt là những nguyên liệu có nguồn gốc từ thực vật đãđược chế biến một
phần hoặc ở dạng bột. Vì vậy, phương pháp sử dụng các dấu chuẩn phân tử rõ ràng là chính
xác và phổ biến hơn. Việc nhận biết các nguyên liệu thảo dược sử dụng phương pháp mã
vạch ADN có thể bảo vệ người dụng tránh khỏi tác dụng độc hại của các loạithuốcgiả mạo,
đặc biệt trong nhiều trường hợp có thể nguy hiểm đến tính mạng. Dưới đây trình bày mộtsố
mã vạch ADN đãđược nghiên cứu và ứng dụng trong các câydược liệu.
Vùng gen ITS cung cấp số lượng thông tin đặc trưng lớn nhất và khả năng xử lý tốt
nhất 6 mẫu của Hedyotis L có họ với Rubiaceae. ITS đãđược sử dụng thành công để phân
biệt 14 lòai Hedyotis L, bao gồm cả loài chính thống trong phương thuốc điều trị khối u
“Baihuasheshecao” có nguồn gốc từ H. diffusa Willd, và cả loàigiả mạo có nguồn gốc từ H.
corymbosa (L.) Lam.
Maturase K trình tự này đã thành công trong việc xác định các loạithuốc thảo dược
"Dahuang" có nguồn gốc từ Rheum palmatum L (Polygonaceae), R. tanguticum (Maxim. ex
Regel) Maxim. ex Balf, R. officinale Baill., và loài gần gũi Rheum L. với mức độ biến đổi
nội bộ loài và giữa các loài khác nhau là cao. Vì vậy, nó thường được sử dụng để xác định
các nguyên liệu thảo dược ở những vị trí địa lý khác nhau.
trnH-psbA cho thấy tỷ lệ khuếch đại thành công cao nhất (100%) và tỷ lệ sai khác là
83% trong số chín locus thử nghiệm, bao gồm cả ITS, rbcL và matK. Vì vậy, trnH - psbA
được coi như 1 trình tự hữu ích để phân biệt các loài thảo mộc với loàigiả mạo nó. Nó được
dùng để phân biệt loàigiả mạo Shihu Bulbophyllum odoratissimum (Sm.)Lindl. ex. Hook.f.
(Orchidaceae) có nguồn gốc từ loài Dendrobium Sw. với tỷ lệ sai khác trong trình tự là từ
2% đến 3,1%.
Tiểu đơn vị lớn của ribulose-bisphosphate carboxylase-rbcL trình tự này có chất
lượng cao khi làm thử nghiệm trên 7 locus. Tuy mức độ biến đổi thấp giữa các loài khác nhau
nhưng rbcL vẫn cho phép nhận biết được nguyên liệu thảo dược với loạigiả mạo nó (Ví dụ,
thảo dược dương xỉ "Mianmaguanzhong" có nguồn gốc từ Dryopteris crassirhizoma Nakai
(Dryopteridaceae) có 19 nucleotide là đa hình trong trình tự rbcL khi đối chiếu với loàigiả
mạo).
Chƣơng 2. VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
2.1. Vật liệu nghiên cứu
2.1.1. Vật liệu thực vật
Các mẫu thực vật được sử dụng trong nghiên cứu do Khoa Tài nguyên Dượcliệu
(Viện Dược Liệu, Bộ Y tế) cung cấp.
Bảng 1. Địa điểm thu mẫu và thông tin mẫu sử dụng trong nghiên cứu
Chi thực vật
Nhóm mẫu
Địa điểm thu mẫu
Kí hiệu mẫu
Codonopsis
Codonopsis sp.
C2
Codonopsis sp.
Thị trấn Sa Pa, Lào Cai
C4
Đảng Sâm vỏ trắng
Thôn I, xã Hòa Bình, TP Kontum
C11; C12
Codonopsis sp.
Lô trồng T, Đa Sal, Lạc Dương,
Lâm Đồng
C13; C14;
C15
Codonopsis sp.
Mọc hoang, Đa Sal, Lạc Dương,
Lâm Đồng
C16; C17;
C18
Đảng Sâm
Xã Long Hẹ, Huyện Thuận Châu,
Sơn La
C20; C21
2.1.2. Hóa chất
Các hóa chất sử dụng trong nghiên cứu được đặt từ các hãng uy tín đảm bảo về chất
lượng và độ tin cậy như Qiagen, Fermentas, Sigma…
2.1.3. Thiết bị sử dụng trong nghiên cứu
Một số thiết bị chính được sử dụng trong nghiên cứu này gồm: cân điện tử Satorius
XB 200A (Thụy Sỹ), bể ổn nhiệt, máy đo quang phổ, máy đo ph, máy li tâm, máy PCR.
2.1.4. Các cặp mồi sử dụng trong nghiên cứu
Hai cặp mồi được sử dụng để nhân bản đoạn hai gen đích là gen ITS và gen matK,
trình tự và thông tin về hai cặp mồi được thể hiện ở Bảng 5
Bảng 2. Các cặp mồi sử dựng trong nghiên cứu
Gen
đích
Tên mồi
Trnh tự mồi
Nhiệt độ
gắn mồi
Kích
thƣớc
P1f
5’-ATT GAA TGG TCC GGT GAA GTG
TTC G-3’
55
o
C
900bp
ITS
P2r
5’-AAT TCC CCG GTT CGC TCG CCG
TTA C-3’
matK
matK-390f
5’-CGA TCT ATT CAT TCA ATA TTT
C-3’
52
o
C
900bp
matK-1326r
5’- TCT AGC ACA CGA AAG TCG
AAG T-3’
2.2. Phƣơng pháp nghiên cứu
2.2.1. Tách chiết ADN tổng số
Các mẫu thực vật được tách chiết lấy ADN tổng sốbằng quy trình mini-CTAB và kit
DNeasy® Plant Mini Kit của hãng Qiagen.
2.2.2. Kiểm tra sản phẩm ADN sau tách chiết
ADN tổng số của các mẫu thực vật sau khi tách chiết sẽ được điện di trên gel agarose
1%, trong đệm TBE 1X, ở hiệu điện thế 90V với marker 1kb.
Nồng độ và độ tinh sạch của ADN tổng sốđược kiểm tra qua phương pháp đo mật độ
quang phổ hấp phụ ở bước sóng 260 và 280nm. Pha loãng dịch chiết 100 lần (5µl mẫu +
450µl DDW), mỗi mẫu đo ba lần và giá trị trung bình của ba lần đo được lấy làm kết quả
cuối cùng. Độ tinh sạch của mẫu thể hiện qua thông số A
260/280
, thông thường A
260/280
=1,6-2.0
được coi là mẫu tinh sạch, nồng độ ADN của mẫu được tính thông qua giá trị
1,0A
260
=50µg/µl.
2.2.3. Phƣơng pháp nhân bản gen đích bằngkỹthuật PCR
Thể tích mỗi phản ứng PCR của mỗi mẫu là 25µl, được thực hiện trên máy PCR 9700.
Quy trình nhiệt để nhân bản các đoạn gen được tóm tắt ở Bảng 6. Thể tích cụ thể của các
thành phần trong một phản ứng PCR được thể hiện ở Bảng 7 và Bảng 8.
Bảng 3. Thành phần của phản ứng PCR
STT
Thành phần
Nồng độ
Thể tích (µl)
1
dd H
2
O
12.75
2
Tag buffer
10X
2.5
3
MgCl
2
25mM
2.0
4
DNTPs
10mM
2.5
5
Mồi xuôi
10pmol
1.0
6
Mồi ngược
10pmol
1.0
7
Tag DNA polymerase
1u/µl
0.25
8
ADN khuôn
3
9
Tổng thể tích
25
Bảng 4. Chu trnh nhiệt cho gen ITS
Bước
Nhiệt
độ(
o
C)
Thời gian
Chu
kỳ
Khởi
động
94
4p
1
Biến tính
94
40s
35
Gắn mồi
55
1p
Kéo dài
72
1p
Ổn đinh
72
7p
1
Bảo quản
4
∞
Bảng 5. Chu trnh nhiệt cho gen matK
Bước
Nhiệt
độ(
o
C)
Thời gian
Chu
kỳ
Khởi
động
94
60s
1
Biến tính
94
30s
35
Gắn mồi
52
20s
Kéo dài
72
50s
Ổn đinh
72
5p
1
Bảo quản
4
∞
2.2.4. Tinh sạch sản phẩm PCR và giải trnh tự
Sản phẩm PCR sau khi tinh sạch sẽ được gửi đi giải trình tự tại hãng Bioneer tại Hàn
Quốc
2.2.5. Phƣơng pháp phân tích sốliệu
Các chuỗi DNA đượcso sánh và liên kết với nhau bằng chương trình BioEdit trình
(phiên bản 4.1.4). Cây phát sinh được xây dựng dựa trên trình tự ADN của vùng gen ITS và
gen matK bằng phương pháp tiết kiệm tối đa (MP) và Bayesian trên phần mềm PAUP
(version 4.0 beta 10).
Chƣơng 3. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
3.1. Tách chiết ADN tổng số
Chúng tôi đã tách chiết thành công 12 mẫu Codonopsis (xem Bảng 9)
Hnh 5. Kết quả điện di ADN tổng số các mẫu Codonopsis trên gel agarose 1%,
marker 1kb
Bảng 6. Kết quả đo OD mộtsố mẫu nghiên cứu
Mẫu
A
260/280
[ADN] µg/µl
C2
1,50
86,2
C4
1,63
108,9
C11
1,52
85,1
C12
1,61
121,5
C13
2,00
170,6
C14
1,96
98,8
C15
2,00
170,6
C16
2,00
229,0
C17
1,95
191,3
C18
1,9
107
C20
1,85
84,5
C21
1,87
81,0
3.2. Khuyếch đại vùng gen nghiên cứu bằngkỹthuật PCR
Kết quả PCR thu được như sau: chúng tôi đã nhân thành công 11/12 mẫu Codonopsis
với gen ITS (Hnh 6), 10/12 mẫu Codonopsis với gen matK (Hnh 7).
Hnh 6. Ảnh điện dimộtsố sản phẩm PCR khuyếch đại vùng gen ITS của mẫu
Codonopsis trên gel agarose 1%, M: marker 100bp
Hnh 7. Ảnh điện di sản phẩm PCR nhân đoạn gen matK của mẫu Codonopsis trên gel
agarose 1%, M: marker 100bp
3.3. Phân tích kết quả
3.3.1. Phân tích sự đa hnh trnh tự ADN trên các vùng gen nghiên cứu
[...]... có thể giúp nhận di n loài và dưới loài như mộtmãvạch phân tử, đồng thời công nghệ này có thể được dùng cho các nghiên cứu tiếp theo về tiến hóa học phân tử và nghiên cứu bảo tồn nguồn gen của loàidượcliệu quý Kiến nghị 1 Tiếp tục thu thập thêm các mẫu thuộcchi Codonopsis để đánhgiá toàn di n hơn nữa tính đadạng và phân bố của chi này ở ViệtNam 2 Nghiên cứu và ứng dụng các mãvạch phân tử này... tính đa dạng và phân bố của chi này ở ViệtNam 2 Nghiên cứu và ứng dụng các mãvạch phân tử này cho các nguồn dượcliệu quý khác ở ViệtNam References Tiếng Việt 1 Võ Văn Chi (1999), Từ điển câythuốcViệt Nam, NXB Y học 2 Viện DượcLiệu (2003), Câythuốc và động vật làm thuốc ở Việt Nam, NXB Giáo Dục 3 Huỳnh Thị Thu Huệ, Nguyễn Đăng Tôn, Cao Xuân Hiếu, Nguyễn Thùy Dương, Lê Thị Thu Hiền, Trần Thị Phương... rRNA của cây Bình vôi”, Tạp chí Công nghệ SInh học, 1, pp 203-209 4 Đỗ Bích Huy (1993), Tài nguyên câythuốcViệt Nam, NXB Khoa học Kỹthuật 5 Đỗ Tất Lợi (1999), Những câythuốc và vị thuốcViệt Nam, NXB Y học 6 Đinh Đoàn Long, Đỗ Lê Thăng (2008), Cơ sở di truyền học phân tử và tế bào, NXB Đại học Quốc Gia Hà Nội 7 Nguyễn Đức Thành, Nguyễn Thúy Hạnh, Trần Quốc Trọng (2007), “Kết quả sử dụng mộtsố chuỗi... Sa Pa, Lào Cai) 5 Kết quả phân tích trình tự ADN và cây phát sinh chủng loại thu được, có thể kết luận vùng gen matK có khả năng phân biệt tốt hơn vùng gen ITS, vùng gen matK có thể được sử dụng để phân biệt các dưới loài của chi Codonopsis 6 Nghiên cứu này lần đầu tiên ứng dụng mãvạch ADN trong phân tích đa dạngditruyền các loài Codonopsis ở Việt Nam, và cùng các kết quả nghiên cứu trước đây trên...3.3.1.1 Phân tích sự đa hình trình tự ADN trên gen ITS Align trình tự ADN vùng gen ITS của 12 mẫu nghiên cứu cùng với 10 trình tự ADN vùng gen ITS của các loàithuộcchi Codonopsis đãđược công bố trên GenBank bằng phần mềm Bioedit, cho thấy chi u dài vùng ITS giữa các loài dao động từ 638 đến 650 bp, GC trong vùng này khoảng từ 60,3% đến 62,5%, có 113 điểm sai khác giữa các loài, chi m 17,4% trên toàn... xuất hiện, chi m 7% trên toàn bộ trình tự 2 Từ kết quả so sánh và phân tích trình tự ADN vùng gen ITS có thể xác định các mẫu nghiên cứu C2, C11, C12, C13, C14, C15, C16, C17, C18, C20, C21 thuộcloài C javanica và mẫu C4 thuộcloài C tangshen 3 Với sự tương đồng 100% trong trình tự, vùng gen ITS là rất bảo thủ ở loài C javanica và C tangshen, rất có ý nghĩa trong kiểm định dượcliệu 4 Xây dựng cây phát... khác là 2,6% 3.3.2 Xây dựng cây phát sinh chủng loạiCây chủng loại phát sinh cho thấy mẫu nghiên cứu là C4 nằm cùng nhánh với C tangshen, với chỉsố bootrap là 65%, còn lại các mẫu đều nằm cùng nhánh với C javanica với chỉsố bootstrap rất cao 100%, điều này phù hợp với kết quả phân tích tính đa dạng trong trình tự vùng gen ITS Hình 8 Cây phát sinh chủng loại xây dựng bằng phƣơng pháp MP chạy trên... phương pháp Tiết kiệm tối đa (Maximum Parsimony) và Bayesian dựa trên khung đọc riêng rẽ từng gen ITS và matK cho kết quả tương đồng, cho thấy độ đáng tin cậy của cây thu được cũng như của 2 phương pháp MP và Bayesian sử dụng để xây dựng cây chủng loại phát sinh trong chi Codonopsis Các cây phân loại xây dựng đượcmột lần nữa cho kết luận xác định các mẫu nghiên cứu thuộc hai loài C javanica (đối với... dưới loài KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ Kết luận Từ các kết quả thu được, chúng tôi đưa ra mộtsố kết luận chính như sau: 1 Đã khuếch đại thành công hai vùng gen ITS và matK, và kết quả phân tích sự đa hình trên mỗi vùng gen cho thấy vùng gen ITS kích thước từ 638-650 bp xuất hiện 113 điểm đa hình, chi m 17,4% trên toàn bộ trình tự vùng gen, có độ đa hình cao hơn so với gen matK kích thước 871 bp với 61 điểm đa. .. (2007), “Kết quả sử dụng mộtsố chuỗi gen lục lạp trong nghiên cứu đa dạngditruyền và xuất xứ cây lâm nghiệp”, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 5, pp 77-83 Tiếng Anh 8 A., H.R (2005), “Medicinall plants: historical and cross-cultural usage patterns”, AEP, 15, pp 686-699 9 Albach D C., L.H.Q., Zhao N., Jensen S R (2007), “Molecular systematics and phyotchemistry of Rehmannia (Scrophulariaceae)”, Biochem Syst . Đánh giá đa dạng di truyền một số loài cây
dược liệu Việt Nam thuộc chi Đảng Sâm
(Codonopsis sp) bằng kỹ thuật AND mã vạch
Nguyễn. đa dạng di truyền một số loài
Codonopsis ở Việt Nam bằng kỹ thuật mã vạch ADN”. Đề tài góp phần xác định các mã vạch
có thể phân biệt được các loài thuộc