Cấu trúc tế bào

Một phần của tài liệu tổng quan về các vi sinh vật chỉ thị và các biện pháp kiểm soát vi sinh vật trong thực phẩm (Trang 44 - 89)

Có bốn phân tử DNA và ba plasmid tròn được xác định: Plasmid – 1 chứa 66.320bp.

Plasmid – 2 chứa 17.963bp. Plasmid – 3 chứa 57.660bp.

- Các plasmid mã hóa một sộ gen bao gồm: transposases, protein kháng đa

thuốc và sự phát triển của một chất ức chế ppGpp. E.faecalis nhiễm sắc thể là

37.38%.

- Ngoài ra e.faecalis cũng chứa gen 3Ebp(mã hó cho màng sinh học và pili) quy

định OG1RF operons gây viêm nội tâm mạc của E.faecalis. Sử dụng operons để sản

xuất pili bề mặt. Các pili bề mặt được sử dụng để bám vào bề mặt tế bào và là kháng nguyên của con người trong quá trình viêm nội tâm mạc.

d. Triệu chứng và biện pháp phòng ngừa:

- Viêm họng, viêm hạch có mủ, viêm khớp, viêm thận cấp tính, viêm các van tim. Gây đau dạ dày và mùi hôi ở cổ họng.

- Triệu chứng: Đau họng, sốt, mẩn đỏ da, tiêu chảy và nôn mửa. Xuất hiện sau 12 – 14h kéo dài 2 – 3 ngày.

- Nấu chín kỹ và làm lạnh sâu, vệ sinh sạch sẽ, vệ sinh cá nhân sạch sẽ.

CHƯƠNG III. CÁC PHƯƠNG PHÁP XÁC ĐỊNH VI SINH VẬT TRONG THỰC PHẨM 3.1. Các phương pháp truyền thống phân tích các chỉ tiêu vi sinh vật:

3.1.1. Định lượng vi sinh vật bằng phương pháp đếm trực tiếp: a. Đếm trực tiếp bằng buồng đếm hồng cầu trên kính hiển vi: a. Đếm trực tiếp bằng buồng đếm hồng cầu trên kính hiển vi:

Số lượng vi sinh vật được xác định bằng buồng đếm trên kính hiển vi. Thường áp dụng để xác định mật độ vi sinh vật đơn bào có kích thước lớn như nấm men, nấm mốc, tảo và protozoa.

Ưu điểm: Quy trình này cho phép xác định nhanh chóng mật độ vi sinh vật cứa

trong mẫu.

Nhược điểm:

- Không phân biệt được tế bào sống và tế bào chết.

- Dễ nhầm lẫn tế bào vi sinh vật với các vật thể khác trong mẫu.

- Khó đạt được độ chính xác cao.

- Không thích hợp với huyên phù vi sinh vật có mật độ thấp

Đơn vị tính: tế bào/ml tế bào/g CFU/ml CFU/g MPN/ml MPN/g

Hình 3.1 : Cách đếm tế bào trong buồng đếm hồng cầu

- Pha loãng mẫu cần đếm sao cho trong mỗi ô nhỏ của buồng đếm có khoảng 5 – 10 tế bào vsv. Mẫu phải được pha loãng bằng dung dịch pha loãng chứa 0.1% pepton và 0.1% laurylsulphat và 0.01% methyl blue, tất cả các dung dịch pha loãng đều phải lọc trước khi sử dụng.

- Đặt một giọt mẫu đã được pha loãng vào buồng đếm, dùng nắp kính đậy lại và lau thật sạch vật kính và buồng đếm. Thể tích mẫu chứa trong buồng đếm là khoảng không gian giữa đĩa đếm và vật kính, sau đó để ổn định trong 5 phút. Đếm ngẫu nhiên 50 – 100 ô nhỏ. Tính trung bình số lượng vi khuẩn trong các ô nhân với 20.000 và dộ pha loãng mẫu trước đó ta được số lượng tế bào trong 1ml.

b. Đếm trực tiếp bằng kính hiển vi huỳnh quang: Các chất nhuộm phát huỳnh quang: Các chất nhuộm phát huỳnh quang:

- Acridin cam (AODC)

- 4’,6-dianodino-2-phenyl-indol (DAPI)

- Fluorescein isothiocyanate (FTTC)

Ưu điểm:

- Loại bỏ sai số do các chất vẩn.

- Kết quả phản ánh đúng với sinh khối

- Không sử dụng nước cất và nước muối sinh lý để pha loãng mẫu thực phẩm.

- Các dung dịch pha loãng mẫu:

+ Saline peptone water (SPW) NaCl:1g

Peptone: 8.5g

Nước cất vừa đủ:1 lít

+ Buffered peptone water (BPW) NaCl: 5g

Peptone: 10g

Hình 3.2: Pha loãng mẫu

Đối với các mẫu rắn hay bán lỏng: 10g + 90ml dung dịch pha loãng = độ pha

loãng 101 , làm tương tự cho các bước tiếp theo.

Sau đó cấy vào môi trường

Hình 3.3: Cấy vào môi trường

3.1.2. Định lượng Coliform bằng phương pháp đếm khuẩn lạc

3.1.2.1. Nguyên tắc

Mẫu đã được đồng nhất được cấy một lượng nhất định lên môi trường thạch

chọn lọc thích hợp chứa lactose. Sau khi ủ 370C + 10C trong 24 – 48 giờ, đếm số

lượng khuẩn lạc Coliforms điển hình. Xác định lại bằng các phản ứng đặc trưng. Môi trường chọn lọc Coliforms là môi trường chứa lactose, đây là nguồn carbon duy nhất, đồng thời môi trường còn chứa muối mật như một tác nhân chọn lọc và các tác nhận chỉ thị như neutral red, crystal violet. Khẳng định các dòng khuẩn lạc đặc trưng bằng môi trường canh chọn lọc như canh BGBL.

Để tránh các trường hợp không phát hiện được Coliforms do bị tổn thương hay suy yếu do trong quá trình chế biến, bảo quản hay tiếp xúc với môi trường chọn lọc

làm chúng không phát triển thành khuẩn lạc, chúng ta phải phục hồi khả năng hoạt động của Coliforms bằng một môi trường chứa nguồn carbon khác như môi trường tryptone soya agar.

Số lượng Coliforms được xác định bằng số lượng khuẩn lạc điển hình đếm được, hệ số khẳng định và nồng độ pha loãng trước khi cấy mẫu vào đĩa.

3.1.2.2. Môi trường và hóa chất

- Môi trường Tryptone Soya Agar (TSA)

- Violet Red Bile Agar (VRB)

- Brilliant Green Bile Lactose broth (BGBL)

- EC broth

3.1.2.3. Quy trình phân tích

a. Chuẩn bị mẫu

Quá trình chuẩn bị mẫu tương tự như phần định lượng tổng số vi sinh vật hiếu khí. Nhưng quá trình pha loãng mẫu sao cho trong 1ml dung dịch pha loãng mẫu chứa khoảng <100 khuẩn lạc

b. Cấy mẫu và đổ môi trường

Cấy chuyển 1ml dịch pha loãng mẫu đã chọn vào đĩa petri, mỗi nồng độ cấy ít nhất vào 2 đĩa và chọn 2 nồng độ pha loãng liên tiếp để cấy sao cho sau khi mỗi đĩa xuất hiện từ 10 – 100 khuẩn lạc.

Cho vào mỗi đĩa đã cấy mẫu 5ml môi trường TSA đã được đun chảy và làm nguội

đến 450C, trộn đều dịch mẫu với môi trường bằng cách xoay tròn đĩa petri xuôi và

khả năng của Coliforms. Đổ thêm 10 – 15ml môi trường VRB. Chờ môi trường đông

đặc, lật ngược đĩa và ủ ở 37 + 10C trong 24 – 48 giờ.

c. Đọc kết quả

Chọn các đĩa có số đếm từ 10 – 100 khuẩn lạc Coliforms để tính. Khuẩn lạc Coliforms có màu đỏ đến đỏ đậm và đường kính >0,5mm, xung quanh khuẩn lạc có vùng tủa muối mật

Hình 3.4: Khuẩn lạc Coliforms trên môi trường VRB

d. Khẳng định

Trong trường hợp mẫu có chưa các nguồn carbon khác không phải lactose, để tránh các trường VSV sử dụng các nguồn carbon trong mẫu để lên men và tạo khuẩn lạc tương tự như Coliforms, giai đoạn khẳng định là cần thiết. Quy trình khẳng định thực hiện như sau: chọn 5 khuẩn lạc nghi ngờ trên đĩa đã đếm được với

các hình dạng khác nhau cấy chuyển sang môi trường canh BGBL và ủ ở 370C trong

24 – 48 giờ. Phản ứng dương tính khi vi sinh vật sinh khí trong ống Durnham. Tỷ lệ xác nhận là tỷ số giữa số khuẩn lạc cho kết quả dương tính với số khẩn lạc khẳng định

Hình 3.5: Kết quả khẳng định Coliforms trên môi trường BGBL

e. Cách tính kết quả

Dựa vào số khuẩn lạc đếm được và tỷ lệ xác định, tính mật độ của Coliforms theo công thức:

N

A (CFU/g hay CFU/ml) = x R

n1vf1 + … + nivfi

Trong đó: N: tổng số khuẩn lạc đếm được

ni: số đĩa có số khuẩn lạc được chọn tại mỗi độ pha loãng

v: thể tích cấy vào mỗi đĩa

fi: độ pha loãng có số khuẩn lạc được chọn tại các đĩa đếm

R: tỷ lệ xác nhận

Kết quả Coliforms được làm tròn chẵn chục và được biểu diễn ở dạng số mũ có cơ số thập phân.

3.1.3.1. Nguyên tắc

Tổng số vi sinh vật hiếu khí được đếm bằng cách đổ đĩa và ủ trong điều kiện

hiếu khí ở 300C/72h + 6h hoặc 370C/48h + 6h

3.1.3.2. Môi trường và thiết bị nuôi cấy

a. Môi trường

- Dung dịch pha loãng mẫu: Saline Pepton Water (SPW) hoặc Buffer Pepton

Water (BPW)

- Môi trường nuôi cấy: Plate Count Agar (PCA)

b. Thiết bị

- Tủ ấm 300C + 10C

3.1.3.3. Quy trình phân tích

a. Chuẩn bị mẫu

Cân chính xác 10 g (hoặc 25 g) mẫu cho vào bao PE vô trùng, sau đó thêm vào 90ml (hoặc 225 ml) dung dịch pha loãng mẫu. Tiến hành đồng nhất mẫu bằng máy dập mẫu (stomacher). Thời gian dập mẫu tùy thuộc vào từng loại mẫu nhưng không quá 2,5 phút. Tất cả các thao tác trên phải thực hiện trong điều kiện vô trùng. Khi

đó, ta sẽ có được dung dịch pha loãng là 10-1.

Dich pha loãng sẽ được pha loãng theo dãy thập phân bằng cách dùng micropipette (pipetman) vô trùng chuyển 1ml vào ống nghiệm chứa 9ml dung dịch

pha loãng  đồng nhất, ta sẽ có được dịch pha loãng 10-2. Tiếp tục thực hiện tương

tự để có được các độ pha loãng cần thiết.

b. Đổ đĩa

Chọn 2 hay 3 độ pha loãng liên tiếp dự kiến chứa từ 25 – 250 tế bào vi sinh vật. Dùng micropipette với các đầu tip vô trùng để chuyển 1ml dịch pha loãng vào giữa đĩa petri vô trùng. Tương ứng với mỗi độ pha loãng cấy từ 2 – 3 đĩa. Sau khi cấy, đổ vào mỗi đĩa 10 – 15ml môi trường PCA đã nấu chảy và làm nguội đến 45 –

500C. Trộn đều mẫu vào môi trường bằng cách xoay tròn đĩa petri xuôi và ngược chiều kim đồng hồ từ 3 – 5 lần. Đặt đĩa lên mặt phẳng ngang cho thạch đông đặc

c. Nuôi ủ

Các đĩa được lật ngược lại và nuôi ủ ở 300C trong 72 giờ

d. Đọc kết quả

Hình 3.6. Tổng số vi sinh vật hiếu khí

Đếm tất cả các khuẩn lạc xuất hiện trên các đĩa sau khi ủ. Chọn các đĩa có số đếm từ 25 – 250 tế bào vi sinh vật để tính. Mật độ tổng vi sinh vật hiếu khí trong 1g mẫu được tính như sau:

N

A (CFU/g) =

n1Vf1 + … + niVfi

Trong đó: A: số tế bào vi khuẩn (khuẩn lạc) trong 1g mẫu

N: Tổng số khuẩn lạc đếm được trên các đĩa đã chọn n: số lượng đĩa cấy tại độ pha loãng thứ i

Ví dụ: trong một trường hợp phân tích 1g mẫu cụ thể thu được kết quả sau: Nồng độ pha loãng 10-3 10-4 Kết quả Đĩa 1 235 26 Đĩa 2 246 21 235 + 246 + 26 A = = 2,4.105 cfu/g 2 x 1 x 10-3 + 1 x 1 x 10-4

Các kết quả tổng số vi sinh vật hiếu khí thường được biểu diễn dưới dạng số mũ của cơ số thập phân.

3.1.4. Phương pháp màng lọc vi sinh vật: - Kích thước lỗ lọc 0.47ìm hay 0.22ìm. Đường kính và màng lọc phụ thuộc vào đường kính phễu lọc thường là 45mm.

- Phễu lọc, giá đỡ màng lọc phải được vô trùng sau mỗi lần lọc.

- Mật độ VSV trong dịch lọc thích hợp : < 150 khuẩn lạc/ màng. - Thể tích dịch lọc trong 1 lần: 50 – 10ml

- Nếu thể tích dịch lọc nhỏ hơn thì phải pha loãng bằng dung dịch pha loãng hay nước cất vô trùng.

Hình 3.8 : Các bộ phận của thiết bị lọc vi sinh vật

Ưu điểm: Xác định được mật độ VSV cụ thể trong một thể tích mẫu lớn: 10ml,

100ml…

Nhược điểm: Không thích hợp cho việc phân tích các mẫu thực phẩm rắn.

3.1.5.Phương pháp MPN (phương pháp tối khả) : 3.1.5.1.Nguyên tắc:

Mẫu được pha loãng thành một dãy thập phân, 2 nồng độ kế tiếp nhau khác nhau 10 lần. Mẫu được ủ trong môi trường thích hợp có ống durham. Mỗi nồng độ pha loãng được lặp lại 3 ống. Theo dõi sự sinh hơi trong từng ống nghiệm. Xác định ống dương tính ở mỗi nồng độ pha loãng và dựa vào bảng MPN để suy ra số lượng nhóm vi sinh vật tương ứng hiện diện trong 1g hoặc 1ml mẫu ban đầu.

3.1.5.2.Sơ đồ quy trình kiểm nghiệm:

1ml (10-1) + 9ml nước vô trùng 1ml(10-2) + 9ml nước cất vô trùng

Stormacher

Hình 3.9: Sơ đồ quy trình kiểm nghiệm

Bước 1: 10gr thực phẩm + 90ml Nacl 0.85% hoặc là nước vô trùng, Stormacher

thu được nồng độ 10-1, mục đích đồng nhất để phân bố đều vi sinh vật.

Bước 2: Pha loãng mẫu để giảm số lượng vi sinh vật có trong mẫu ban đầu.

Lấy 1ml mẫu ở nồng độ 10-1 cho vào ống nghiệm thứ nhất, sau đó cho 9ml nước vô

trùng, ta được ống nghiệm có nồng độ 10-2. Sau đó lấy 1ml mẫu ở nồng độ 10-2 cho

vào ống nghiệm thứ hai, cho thệm 9ml nước cất vô trùng thu được ống nghiệm có

nồng độ 10-3. Làm tương tự như trên ta được ống nghiệm có nồng độ 10-4, 10-5…

Bước 3:Nuôi cấy dịch mẫu trong môi trường Laury Tryptose (LT) ở 3 nồng độ

liên tiếp (10-1, 10-2, 10-3) như sau: Mỗi nồng độ lấy 3 ống nghiệm cho vào mỗi ống

nghiệm 1 ống durham, cho môi trường LT vào 9 ống nghiệm sao cho nghập ống durham. Ghi 3 nồng độ liên tiếp bên ngoài ống nghiệm (mỗi nồng độ 3 ống nghiệm).

Tiếp đến cho 1ml dung dịch mẫu ở nồng độ 10-1 vào 3 ống nghiệm có ghi nồng độ

10-1 (chứa môi trường LT), tương tự cho các nồng độ ở các nồng độ tiếp theo. (hình)

ủ ở 37oC/24h.

Những lưu ý khi tiến hành nuôi cấy vi khuẩn lên môi trường Laury Trytose (LT):

- Tiến hành gần ngọn lửa đèn cồn để tránh nhiễm khuẩn.

- Nhớ lắc mẫu trước khi tiến hành nuôi cấy vi khuẩn trên môi trường Laury

Trytose.

Bước 4: Đọc kết quả các ống Laury trytose. Có 3 trường hợp xảy ra: + Ống durham không thay đổi.

+ Ống durham nổi lên trên. + Ống durham sinh hơi.

Đọc kết quả trong các ống LT dương tính, sau đó cấy chuyển các ống LT dương tính nà vào các ống môi trường BGBL 2% bằng cấy cấy que cấy vòng nhúng vào môi trường LT dương tính ở trên, rồi cho vào ống có môi trường BGBL. Ghi nồng độ tên

sản phẩm, ủ 37oC/24h.

Ống LT +: môi trường đục và ống durham nổi hoặc có bọt khí trong ống (thể tích bọt khí trong ống = 1/10 thể tích ống durham).

Ống LT -: Không có hiện tượng gì xảy ra.

Bước 5: Đọc kết quả ống BGBL dương tính, lập tye lệ các ống BGBL dương tính ở 3 nồng độ liên tiếp. Tra bảng Mac Crady tìm số MPN tương ứng.

+ Ống BGBL dương tính: Môi trường vẩn đục và ống durham nổi, có bọt khí. + Ống BGBL âm tính: Không có hiện tượng gì xảy ra.

Bước 6: Tính kết quả

Tổng số coliform (cfu/g hoặc cfu/ml) = Số MPN x 10n

n là số nguyên dương của nồng độ pha loãng đầu tiên được nuôi cấy.

Bước 7: Từ kết quả tính được, so sánh với tiêu chuẩn về an toàn vệ sinh thực phẩm.

3.2. Các phương pháp hiện đại:

sức, tốn kém,… Để khắc phục các nhược điểm này, nhiều phương pháp nhanh và tự động được phát triển và thương mại hóa. Các phương pháp này được gọi chung là các phương pháp không truyền thống và có đặc điểm chung là cho kết quả nhanh hơn phươn pháp truyền thống.

3.2.1. Phương pháp phát quang sinh học ATP trong giám sát vệ sinh:

Adenosin triphotphat (ATP) được tìm thấy trong tất cả các tế bào sống nên sự phát hiện ATP là dấu hiệu nhận biết vật chất sống đang tồn tại. ATP có thể được phát hiện một cách nhanh chóng bởi lượng ánh sáng phát ra thông qua sự kết hợp với enzume luciferase nhờ một máy đo ánh sáng. Kỹ thuật này có thể phát hiện

được 1pg(10-15g) tương ứng với khoảng 1000 tế bào vi khuẩn (10-15gATP/tế bào). Độ

nhạy này có được khi sử dụng các hóa chất thương mại đắt tiền, sự phân tích thường chỉ diễn ra vài phút và vì thế phương pháp này được xem là nhanh hơn và thuận lợi hơn so với phương pháp đếm khuẩn lạc.

Việc dùng phương pháp đo hàm lượng ATP để xác định rõ số vi sinh vật đang hiện diện đã được biết đến vào năm 1960. Tuy nhiên, phương pháp này đòi hỏi nhiều sự cải tiến trong việc thiết kế máy đo lượng ánh sáng phát ra ( giảm giá thánh và có thể mang đi được ) và những hóa chất ổn định sự phát sang. Phương pháp này ứng dụng trong 3 lĩnh vực: giám sát vệ sinh, kiểm tra những chất lỏng như nước

Một phần của tài liệu tổng quan về các vi sinh vật chỉ thị và các biện pháp kiểm soát vi sinh vật trong thực phẩm (Trang 44 - 89)

Tải bản đầy đủ (PDF)

(89 trang)