Nghiên cứu hoạt tính sinh học trong nguyên liệu ban đầu

Một phần của tài liệu nghiên cứu quy trình chế biến trà hòa tan từ lá cóc đỏ lumnitzera littorea và khảo sát hoạt tính sinh học của sản phẩm (Trang 56 - 61)

PHẦN II: VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

2.3. NỘI DUNG NGHIÊN CỨU

2.3.6. Nghiên cứu hoạt tính sinh học trong nguyên liệu ban đầu

Sau khi thu được cao tổng và cao nước, sẽ tiến hành nghiên cứu khả năng ức chế enzyme α-glucosidase, khả năng kháng oxy hóa và khả năng kháng khuẩn.

Cân 100g nguyên liệu bột lá Cóc đỏ được xử lý theo sơ đồ quy trình điều chế cao theo sơ đồ 2.2 để thu nhận bán thành phẩm cao chiết nước với cồn

2.3.6.1. Khảo sát khả năng ức chế enzyme α-glucosidase

Khả năng ức chế enzyme α-glucosidase được đánh giá theo phương pháp của Apostolidis và cộng sự. Thí nghiệm được thực hiện trên cao cồn và cao nước theo bố trí thí nghiệm ở bảng 2.2.

Bảng 2. 2: Khảo sát khả năng ức chế enzyme α-glucosidase Mẫu thí nghiệm Nồng độ (µg/ml)

0 10 50 100 200

Cao cồn E1 E2 E3 E4 E5

Cao nước F1 F2 F3 F4 F5

Acarbose G1 G2 G3 G4 G5

Quy trính xác định khả năng ức chế enzyme α-glucosidase của dịch chiết lá Cóc đỏ được trình bày theo sơ đồ 2.6.

Sơ đồ 2. 6: Phản ứng ức chế enzyme α-glucosidase

Thuyết minh quy trình

Một hỗn hợp phản ứng chứa 60 µL dung dịch đệm phosphate 100 mM ( pH=6.8), 20 µL mẫu thí nghiệm được pha trong dung dịch DMSO tại các nồng độ khác nhau theo bảng bố trí thí nghiệm 2.2 và 100 µL dung dịch p-nitrophenyl-α-D-glucopyranoside 200 µM (trong dung dịch đệm phosphate 100 mM), được ủ trong các đĩa 96 giếng ở 37

0C trong 10 phút. Tiếp theo, thêm vào hỗn hợp 20 µL dung dịch α-glucosidase 0.3 U/mL pha trong đệm phosphate. Hỗn hợp phản ứng được ủ ở 37 0C trong 10 phút. Sau đó, phản ứng được dừng bằng cách thêm 20 µL dung dịch NaOH 50 mM. Độ hấp thụ của

Enzyme α-glucosidase Mẫu thí nghiệm

Lắc đều

Ủ 20 phút, ở nhiệt độ phòng

Lắc đều Ủ ở nhiệt độ phòng

Đo quang phổ ở 405 nm

Tính toán

Giá trị I%

p-nitrophenyl-α-D glucosidase

mẫu thí nghiệm được đo ở bước sóng 405 nm và được so sánh với mẫu đối chứng bằng cách thay thế 20 µL dung dịch mẫu thí nghiệm bằng dung dịch đệm phosphate.

Acarbose đã được sử dụng làm mẫu đối chứng dương.

Xử lý kết quả:

% Ức chế α-glucosidase= x100 A

A A

control sample control

Trong đó:

Acontrol: độ hấp thụ của chứng âm Asample:độ hấp thụ của mẫu thử

Khả năng ức chế enzyme α-glucosidase được đánh giá bằng giá trị IC50. Giá trị IC50 của mỗi mẫu được tính dựa trên phương pháp hồi quy từ đồ thị giữa % ức chế enzyme α-glucosidase với nồng độ chất ức chế.

2.3.6.2. Khảo sát khả năng kháng oxy hóa

Hoạt tính kháng oxy hóa được đánh giá dựa trên khả năng đánh bắt gốc tự do DPPH• theo phương pháp được mô tả bởi Goldschmidt và Ren. Thí nghiệm được thực hiện trên cao cồn và cao nước theo bố trí thí nghiệm ở bảng 2.3.

Bảng 2. 3: Khảo sát sự kháng oxy hóa Mẫu thí

nghiệm

Nồng độ (µg/ml) 0 10 50 100 200 Cao cồn E1 E2 E3 E4 E5 Cao nước F1 F2 F3 F4 F5

Acid ascorbic

G1 G2 G3 G4 G5

Quy trính xác định khả năng đánh bắt gốc tự do DPPH• của dịch chiết lá Cóc đỏ được trình bày theo sơ đồ 2.9

Sơ đồ 2. 7: Quy trình thử hoạt tính bắt gốc tự do DPPH•

Thuyết minh quy trình

Tiến hành lấy 100 µL dung dịch mẫu thí nghiệm được pha trong ethanol tại các nồng độ khác nhau theo bố trí thí nghệm bảng 2.3 (từ 10 đến 200 µg/mL) và 100 µL dung dịch DPPH• 0.2 mM, được trộn đều và ủ trong bóng tối trong 30 phút tại nhiệt độ phòng. Sau đó, mẫu thí nghiệm được đem đi đo độ hấp phụ tại bước sóng 517 nm

Xử lý kết quả:

Hoạt tính chống oxy hóa được tính theo công thức:

DPPH (%) = 100 × (ODc − ODm) ODc

Trong đó:

ODc: giá trị mật độ quang OD của chứng âm ODm: giá trị mật độ quang OD của mẫu thử

Từ kết quả hoạt tính kháng oxy hóa và nồng độ mẫu, dựng đường chuẩn. Dựa vào đường chuẩn tính được IC50 (khả năng đánh bắt 50% DPPH của mẫu). Giá trị IC50

càng thấp tương ứng với khả năng kháng oxy hóa càng cao và ngược lại.

Mẫu thí nghiệm

Dung dịch mẫu

Dung dịch sau ủ

Đo OD 512mm

DPDH (O,2mm)

Sơ đồ 2. 8: Nghiên cứu khả năng kháng khuẩn 2.3.6.3. Khảo sát khả năng kháng khuẩn

Khả năng kháng khuẩn được đánh giá theo phương pháp của Mahesh và cộng sự, được xác định dựa vào sự hình thành vòng kháng khuẩn được tạo ra trên đĩa petri. Thí nghiệm được thực hiện trên cao cồn và cao nước theo bố trí thí nghiệm ở bảng 2.4.

Bảng 2. 4. Bố trí thí nghiệm khảo sát khả năng kháng khuẩn từ cao chiết từ lá Cóc đỏ

Quy trính xác định khả năng kháng khuẩn của dịch chiết lá Cóc đỏ được trình bày theo sơ đố 2.10.

Cao chiết

Nồng độ (mg/ml)

50 100 150 200

Cồn M50 M100 M150 M200

Nước N50 N100 N150 N200

Ampicilin L1 L2 L3 L4

Đổ môi trường thạch MHA

Tran vi khuẩn trên đĩa petri

Đục lỗ 2mm

Bơm dung dịch mẫu vào giếng (µl)

Ủ ở 37Oc/ 24 giờ

Thuyết minh quy trình

Dịch vi khuẩn (E.ColiSalmonella) với nồng độ 108 CFU/ml được trải đều trên bề mặt đĩa môi trường MHA và được để khô trong 15 phút ở nhiệt độ phòng trong điều kiện vô trùng trước khi đục giếng. Mẫu thí nghiệm tại các dãy nồng độ khác nhau theo bố trí thí nghiệm bảng 2.5 được bơm vào các giếng trên đĩa thạch. Sau đó, mẫu được ủ trong 24 giờ ở nhiệt độ 37 0C. Kháng sinh thương mại ampicillin được sử dụng như chất đối chứng dương trong thí nghiệm.

Xử lý kết quả:

Khả năng kháng khuẩn của cao chiết lá Cóc đỏ dựa vào đường kính vòng vô khuẩn (mm) trên đĩa petri.

Một phần của tài liệu nghiên cứu quy trình chế biến trà hòa tan từ lá cóc đỏ lumnitzera littorea và khảo sát hoạt tính sinh học của sản phẩm (Trang 56 - 61)

Tải bản đầy đủ (PDF)

(123 trang)