3.3.6.1. Tốc độ tăng trưởng
Tốc độ tăng trưởng của cá chim vây vàng trong hai đợt ương được thể hiện ở bảng sau:
Bảng 3.9: Tăng trưởng về chiều dài của cá trong hai đợt ương
Đợt 1 Đợt 2 Ngày tuổi L (mm) DLG (mm/ngày) Ngày tuổi L (mm) DLG (mm/ngày) 1 2,2 - 3 2,55 ± 0,29 5 3,2 - 3,5 3,4 ± 0,13 10 3,2 - 4 3,79 ± 0,25 0,138 12 4 - 6 5,63 ± 0,57 0.319 19 7 - 8,5 7,67 ± 0,48 0,431 19 10 - 16 12,43 ± 1,79 0.971 24 10 - 15 13,33 ± 1,45 1,132 29 27 - 38 32,97 ± 3,39 2.054 29 14 - 22 18,7 ± 2,45 1,074 40 55 - 68 59,5 ± 3,64 2.412 39 36 - 39 36,7 ± 1,6 1,8 45 55 - 72 63,83 ± 4,74 0.866 50 60 - 70 64,93 ± 2,89 2,566 60 60 - 75 71,33 ± 2,34 0,64
Trong đợt 1, sự tăng trưởng về chiều dài của cá khá chậm và không đều. Từ ngày tuổi thứ 1 đến ngày tuổi thứ 19, tốc độ tăng trưởng tuyệt đối trung bình ngày (DLG) của cá rất chậm, cao nhất chỉ đạt 0,43 mm/ngày. Từ ngày tuổi 19-24, DLG đạt 1,132 mm/ngày. Nhưng từ ngày 24 đến ngày 29, sự sinh trưởng của cá giảm xuống, DLG chỉ đạt 1,074 mm/ngày. Từ ngày thứ 29 của quá trình ương, tốc độ tăng trưởng của cá bắt đầu tăng lên và đạt giá trị cao nhất là 2,57 mm/ngày ở giai đoạn 40 tới 50 ngày ương do trong giai đoạn này cá bắt đầu quen với sử dụng thức ăn công nghiệp, nước được thay hàng ngày.
Trong đợt ương thứ 2, cá phát triển nhanh và đồng đều hơn, do các khâu kỹ thuật như cho ăn, khẩu phần cho ăn, siphon và thay nước… được thực hiện một cách khoa học và và hợp lí hơn (hình 3.18). Từ ngày tuổi thứ 5 đến ngày tuổi 12, DLG của cá đạt 0,319mm/ngày, cao nhất ở giai đoạn từ ngày 29 đến ngày 40, cá tăng trưởng chiều dài bình quân là 2,412mm/ngày, cao hơn rất nhiều so với đợt 1. Chiều dài lớn nhất của cá đợt 1 sau 60 ngày ương là 75 mm, nhưng trong đợt ương 2, chỉ sau ngày 45 ương, chiều dài lớn nhất của cá đã là 72 mm. Do đó, trong đợt ương thứ 2 cá giống được xuất bán sau 45 ngày ương, so với 60 ngày ương của đợt 1.
Hình 3.18: Chiều dài trung bình của cá trong hai đợt ương
0 10 20 30 40 50 60 0 10 20 30 40 50 60 70
Chiều dài trung bình đợt 1 Chều dài trung bình đợt 2
Ngày tuổi mm
So sánh với kết quả ương cá chim vây vàng của Hà Quang Tố (2010) thì tốc độ tăng trưởng về chiều dài của cá chim vây vàng trong nghiên cứu này lớn hơn nhiều. Sau 60 ngày ương cá đạt chiều dài 71,33 ± 2,34 mm so với 48,65 ± 6,40 mm.
3.3.6.2. Tỉ lệ sống
Tỷ lệ sống của cá chim vây vàng qua hai đợt ương được thể hiện ở bảng sau. Bảng 3.10: Tỉ lệ sống của cá chim vây vàng.
Đợt 1 Đợt 2
Ngày tuổi
Số lượng (con) TLS (%) Số lượng (con) TLS (%)
0 144999 100 237174 100 3 129736 89,47 221872 93,55 10 76315 52,63 114761 48,39 30 38157 26,31 53555 22,58 40 22894 15,79 46424 19,57 50 22795 15,72 46354 19,54 60 22795 15,72 46354 19,54
Hình 3.19: Đồ thị biểu diễn tỉ lệ sống của cá trong hai đợt ương. 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 0 3 10 30 40 45 60 Đ?t 1 Đ?t 2 Đợt 1 Đợt 2 Tỷ lệ sống (%) Ngày ương
Trong cả hai đợt ương, do chất lượng trứng kém nên cá nở ra yếu và dị hình nhiều. Hết ngày thứ 3, kiểm tra và ước lượng cá theo phương pháp thể tích xác định tỉ lệ sống của ấu trùng chỉ còn 89.97% ở đợt 1 và đợt 2 là 93.55%. Ngày thứ 3 đến ngày thứ 10, tỉ lệ sống giảm càng nhiều, lúc này nguyên nhân là cá chuyển sang ăn thức ăn ngoài, một phần do các yếu tố môi trường chi phối. Ngày thứ 10-30, quá trình siphon và thay nước đã làm cá chết nhiều. Từ ngày 30 đến 40 cá hao hụt ít hơn vì cá cũng đã lớn, cá chết chủ yếu vì siphon, thay nước và phân cỡ. Cá từ ngày tuổi 40 trở đi hao hụt rất ít nên tỉ lệ sống vẫn giữ nguyên ở mức 15.72% ở đợt 1 và 19.54% ở đợt 2.
Hệ thống trại được sử dụng lâu năm, vì thế các bể ương đã xuống cấp nghiêm trọng. Bể rò rỉ do các vết nứt, xi măng cũng đã bong và sần sùi bạc màu, chất lượng bể vì thế rất kém đã ảnh hưởng rất lớn đến tỉ lệ sống của ấu trùng. Một nguyên nhân nữa là do kĩ thuật quản lý bể ương chưa tốt, các thao tác như siphon, thay và cấp nước, phân cỡ, quản lí thức ăn và cho ăn cùng công việc quản lí môi trường chưa được tốt khiến tỉ lệ sống của cá thấp.
3.3.7. Kĩ thuật phòng và trị bệnh
Trong hai đợt ương vừa qua do xử lý nguồn nước kỹ, các dụng cụ được giữ vệ sinh cẩn thận nên không thấy sự xuất hiện của bệnh trên đàn cá ương.
Nguyên tắc phòng bệnh được thực hiện như sau: giữ vệ sinh trong các thao tác kĩ thuật, cho ăn không quá dư thừa, cần siphon và thay nước thường xuyên tránh để nước bẩn tạo môi trường thuận lợi cho mầm bệnh phát triển. Quản lý các yếu tố môi trường phù hợp trong ngưỡng thích hợp cho cá. Sử dụng chế phẩm sinh học như maz-zal liều lượng 1ppm để phân hủy các chất mùn bã hữu cơ, ổn định độ pH, kích thích vi sinh vật và sinh khối tảo phát triển.
Trước khi thả cá, dùng Trimeseptol trong thành phần có chứa 80mg Trimethoprim + 400mg Sulfamethoxazole có công dụng phòng nấm đỏ. Liều lượng sử dụng là 1ppm.
Hình 3.20: Trimeseptol phòng nấm đỏ.
3.3.8. Thu hoạch và vận chuyển
Sau 45-60 ngày ương cá đạt kích cỡ nuôi thương phẩm từ 6.0-7.5cm. Trước khi thu hoạch cá, phải rút nước trong bể xuống còn 35-40cm đồng thời cấp nước mới vào để cá có môi trường mới, trong sạch trước khi vận chuyển. Lưu ý, trước khi thu hoạch một ngày thì chỉ cho cá ăn vừa phải, đến ngày xuất cá thì không cho ăn nữa.
Dùng vợt vớt cá ra thau hoặc xô, sau đó đếm cá theo số lượng khách hàng yêu cầu, đếm cá và bỏ sang xô khác có sục khí. Tùy vào quãng đường vận chuyển xa hay gần mà chọn cách vận chuyển phù hợp. Có 2 cách vận chuyển: vận chuyển hở và vận chuyển kín.
Vận chuyển hở sử dụng cho việc vận chuyển cá với quãng đường ngắn từ 200km trở lại. Chúng ta sử dụng các bể compsite có lót túi nilon, đổ nước vào túi, lắp dây dẫn khí và đá bọt nối với bình oxi nguyên chất. Bỏ cá vào bể và buộc miệng túi ni lông lại có chèn 1 ống nhựa thoát khí. Việc buộc miệng túi tránh cho cá và nước bị bắn ra ngoài khi đi ở đường gồ ghề.
Vận chuyển kín sử dụng cho việc vận chuyển xa với số lượng nhiều. Chúng ta sử dụng 2 túi ni lông có kích thước 20 x 40 cm lồng vào nhau, sau đó cấp 4-5l nước, nhiệt độ 25-27oC có bổ sung vitamin C với liều lượng 5-10ppm. Cá trước khi đóng vào túi cũng phải được thuần qua nước ở nhiệt độ 25-27oC từ 10-15 phút.
Mật độ chuyển cá tùy vào quãng đường, thường từ 50-60 con/túi. Bỏ cá vào túi và đóng oxi nguyên chất. Thể tích oxi: nước là 3:1. Chuyển túi ni lông đã đóng cá lên ô tô, trong khoang chứa nên chứa đá lạnh và kín để giữ nhiệt độ nước trong túi luôn ở 25-27oC trong suốt quá trình vận chuyển.
CHƯƠNG 4: KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT Ý KIẾN
4.1. KẾT LUẬN
1. Trước tiên, phải khử trùng xung quanh trại kết hợp quét dọn và lau chùi tất cả các dụng cụ cũng như các hệ thống bể trước khi đưa vào sản xuất.
2. Phải nuôi sinh khối được tảo và luân trùng với số lượng đủ để có thể ương cá. Nước để sử dụng cho việc nuôi tảo phải được xử lí cẩn thận với chlorine và lọc cơ học. Trong quá trình nuôi tảo, thường xuyên lọc tảo và san tảo. Sử dụng môi trường F2 để nuôi tảo với 1mL F2/1L tảo. Khu vực nuôi luân trùng phải cách xa khu vực nuôi tảo, cung cấp tảo, men bánh mì và selco plus xanh cho luân trùng. Sử dụng 50-100ppm selco plus vàng để làm giàu ít nhất 3h trước khi cho ấu trùng cá chim ăn.
3. Sau khi trứng nở, tắt sục khí ít nhất 15 phút để ấu trùng cá nổi lên mặt nước, trứng hỏng chìm xuống đáy, sau đó hút trứng hỏng ra và múc cá vào bể. Tránh không được đổ trứng hỏng vào bể sẽ nhanh làm bẩn nước.
4. Bước sang ngày tuổi thứ 2, chúng ta phải cấp tảo và luân trùng vào bể ương. Mật độ tảo từ 4-5x104 tb/mL ngày cấp 2 lần sáng chiều, luân trùng 20- 30ct/mL ngày cấp 2-4 lần. Riêng artemia từ ngày tuổi thứ 8 có thể cho cá ăn dạng bung dù, mật độ trung bình 5-7ct/mL, khi cho ăn nau-artemia, chúng ta phải làm giàu bằng selco plus ít nhất 3h trước khi cho ăn.
5. Mật độ ương nuôi cá từ 19-31 con/lít.
6. Từ ngày tuổi 18, bắt đầu tập cho cá ăn thức ăn công nghiệp NRD của công ty INVE Thái Lan, cỡ viên thức ăn 300-500 m. Khi cá ăn thức ăn công nghiệp mạnh thì ngưng cho ăn artemia, tăng kích cỡ viên thức ăn lên để phù hợp cỡ miệng.
7. Phân cỡ và san thưa mật độ nhằm giảm tỉ lệ phân đàn. Nên 5-10 ngày phân cỡ 1 lần.
8. Tiến hành thay nước và siphon từ ngày tuổi thứ 10, ban đầu thay ít nước sau đó có thể thay 100% lượng nước trong bể. Từ ngày tuổi 30 trở về trước, 3-4
ngày thay nước và siphon 1 lần. Nhưng từ ngày 40 trở đi, mỗi ngày thay nước một lần vào sáng sớm hoặc chiều mát.
9. Quản lí các yếu tố môi trường bể ương trong khoảng thích hợp tránh gây sốc và căng thẳng cho cá, làm ảnh hưởng tới sự tăng trưởng và tỷ lệ sống của cá. Nhiệt độ trong khoảng 24-30oC, độ mặn 22-33‰, pH: 7.3-8.5.
10. Ở ngày ương thứ 7, chúng ta có thể sử dụng maz-zal với liều lượng 1ppm vào bể cá để phân giải các chất thải, khí độc, ổn định môi trường.
11. Tốc độ tăng trưởng bình quân trên ngày của cá chim ở trước 30 ngày tuổi tương đối chậm, tăng nhanh từ ngày ương 30 đến ngày 45. Sau 40 ngày ương, cá đạt kích thước chiều dài là 36,7 ± 1,664 mm ở đợt 1 và 59,5 ± 3,64 mm ở đợt 2.
12. Qua 2 đợt ương, tỉ lệ sống đợt 1 là: 15,72% , đợt 2 là: 19,54%.
4.2. ĐỀ XUẤT Ý KIẾN
1. Không nên siphon trước ngày tuổi thứ 10, từ ngày tuổi thứ 8 nên giảm bớt lượng luân trùng đưa vào, thay vào đó hãy sử dụng artemia và nau-artemia để hạn chế chất bẩn trong bể ương.
2. Trước khi siphon 1-2 ngày, sử dụng maz-zal liều lượng 1ppm để ổn định môi trường, phân giải chất hữu cơ và khí độc. Sau khi siphon xong cấp lại nước và sử dụng 0.5ppm maz-zal để ổn định môi trường cho bể ương.
3. Chất lượng bể ương đã xuống cấp, cần sửa mới lại hoặc sơn mới một lớp sơn chống thấm.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Tài liệu tiếng Việt
1. Thái Thanh Bình và Trần Thanh, 2008. Kết quả bước đầu nghiên cứu nuôi thâm canh cá chim vây vàng (Trachinotus blochii Lacepede, 1801) trong ao bằng thức ăn công nghiệp. Tóm tắt báo cáo hội thảo khoa học trẻ toàn quốc về nuôi trồng thủy sản, Viện Nghiên Cứu NTTS I Bắc Ninh. Nhà xuất bản Khoa học Tự nhiên, trang 19.
2. Nguyễn Kim Độ, Thái Bá Hồ, Ngô Trọng Lư, 2004. Kỹ thuật nuôi một số loài cá. Kỹ thuật nuôi cá lồng biển, tập 1, trang 33 -108. NXB Nông Nghiệp TP.HCM.
3. Ngô Vĩnh Hạnh, 2007. Dự án nhập công nghệ sản xuất giống cá chim vây vàng (Trachinotus blochii Lacepede, 1801). Báo cáo Khoa học, Trường Cao Đẳng Thủy sản Bắc Ninh.
4. Hoàng Thị Hồng, 2009. Tìm hiểu kỹ thuật ương nuôi cá mú (Epinephelus coioides Hamitol, 1822) giống giai đoạn từ 40 đến 70 ngày tuổi tại công ty TNHH Cương Lan, Nha Trang - Khánh Hòa. Đồ án tốt nghiệp chuyên ngành nuôi trồng thủy sản, Trường Đại học Nha Trang.
5. Lại Văn Hùng, 2004. Dinh dưỡng và thức ăn trong nuôi trồng thủy sản. NXB Nông Nghiệp TP. HCM.
6. Lại Văn Hùng và Ngô Văn Mạnh, 2011. Thử nghiệm sản xuất giống cá chim vây vàng (Trachinotus blochii Lacepede, 1801) tại Khánh hòa. Báo cáo tổng kết đề tài KHCN tỉnh Khánh Hòa.
7. Bùi Trọng Khiêm, 2008. Tìm hiểu kỹ thuật ương nuôi cá chim vây vàng (Trachinotus blochii Lacepede, 1801) trong bể xi măng. Đồ án tốt nghiệp chuyên ngành nuôi trồng thủy sản, Trường Đại học Nha Trang.
8. Kungvankij P., Pudadera, B.J., Tiro L.B., Potestas I.O., Tookwinas S., Ruangpan L., 1994. Sinh học và kỹ thuật nuôi cá chẽm (Lates calcarifer
9. Nguyễn Địch Thanh, 2005. Bài giảng kỹ thuật nuôi cá biển. Khoa Nuôi trồng Thủy sản, Đại học Nha Trang.
10. Nguyễn Duy Toàn, 2005. Nghiên cứu ương nuôi cá chẽm mõm nhọn (Psamoperca waigrenus Cuvier & Valenciennes, 1828) giai đoạn cá hương lên cá giống bằng các loại thức ăn khác nhau tại Nha Trang - Khánh Hòa, luận văn Thạc sỹ ngành NTTS, Trường Đại học Nha Trang.
11. Hà Quang Tố, 2011. Tìm hiểu kỹ thuật ương nuôi cá chim vây vàng (Trachinotus blochii Lacepede, 1801) trong bể xi măng. Đồ án tốt nghiệp chuyên ngành nuôi trồng thủy sản, Trường Đại học Nha Trang.
12. Nguyễn Đình Trung, 2004. Quản lý chất lượng nước. NXB Nông Nghiệp TP.HCM.
13. Dương Tuấn, 1981. Sinh lý cá. NXB Nông Nghiệp TP.HCM. 14. http://www.baomoi.com.
15. http://agriviet.com/home/threads/599-Cap-nhat-tinh-hinh-nuoi-ca-bien-khu-vuc- chau-A-Thai-Binh-
Duong?s=d5104a6e381c676799727a59c186786b#ixzz1y9dqHmX5
Tài liệu tiếng Anh
16. http://www.fishbase.com
17. Cheng, S.C, (19900. Reports on the artificial propagation of pompano (Trachinotus blochii). Fish World 4:140-160. (in Chinese).
18. Ho Y. SS., Chen C. M. and Chen W. Y., 2005. Induced Spawing of Snubnose Pompano (Trachinotus ovatus) and Its Early Development. Journal of Taiwan fisheries reseach 13, 25-32 (English abstract).
19. Juniyanto N. M., Akbar S. and Zakimin, 2008. Breeding and seed production of silver pompano (Trachinotus blochii Lacepede, 1801) at the Mariculture Development Center of Batam. Aquaculture Aria Magazine, Vol. XIII No. 2 April -June 2008, 46 - 48.
20. Nur. Muflich juniyanto, Syamsul Akbat and Zakimin (2008). Breeding and seed production of Siliver pompano (Trachinotus blochii Lacepede, 1801) at the Mariculture Development Center of Batam. Volume XIII No. 2, 46 - 48 pp. 21. Turker J. W., 2000. Marine fish culture. Kluwer Academic Publisher. Boston/ Dordrecht/ London, 750 pp.
22. David A. Bengtson, 2003. UK. Live Feeds in Marine Aquaculture, 377pp. 23. Yeh S., P., Yang J. and Chu T., W, 1998. Marine fish seed industry in Taiwan. Aquafine (www.aquafine.com/article/seed.php).
23. Rimmer M., 2008. Production update-marine finfish aquaculture in Asian – Pacific region. Aquaculture Asia Magazine. Vol. XIII No. 1, January – March 2008; 48 – 51.
24. Hambrey J., 2000. Global prospects for cage aquaculture of marine finfish: input costs, market value comparative advantage. In Cage Aquaculture in Asia: Proceedings of the First International Synposium on Cage Aquaculture in Asia (ed. I.C. Liao and C.K. Lin), pp. 193 – 206. Asian Fisheries Society, Manila, and World Aquaculture Society – Southeast Asian Chapter, Bangkok.
25. Schipp G., 1996. Barramundi farming in the Northern Territory. Aquaculture Branch Fisheries Division, Department Primary Industry and Fisheries, GPO Box 990 Darwin NT 0801, 44 pages.
26. Ho Y. S., Chen C. M. and Chen W. Y., 2005. Induced Spawning of Snubnose Pompano (Trachinotus ovatus) and Its Early Development. Journal of Taiwan fisheries research 13: 25-32 (English abstract).
27. Hjelt K.A., 2000. The Norwegian regulation sestym and the history of the Norwegian salmon farming industry. In Cage Aquaculture in Asia: Proceedings of the First International Synposium on Cage Aquaculture in Asia (ed. I.C. Liao and C.K. Lin), pp. 1 – 12. Asian Fisheries Society, Manila, and World Aquaculture Society – Southeast Asian Chapter, Bangkok.
28. Liao I.C. & Chang E.Y., 2002. Timing and factors affecting cannibalism in red drum, Sciaenops acellatus, larvae in captivity. Environmental Biology of fishes 63; 229 – 233.
29. Lan P. H., Cremer. C. M., Chappell. J., Hawke. J., O’Keefe. T., 2007. Growth performance of Pompano (Tranchinotus blochii) fed fishmeal and soy