Chế phẩm được bảo quản trong túi polyetylen

Một phần của tài liệu Nghiên cứu sản xuất chế phẩm vi sinh vật hữu hiệu để áp dụng trong xử lý chất thải rắn sinh hoạt hữu cơ làm phân bón hữu cơ sinh học tại đà nẵng (Trang 57)

3.1.5. Quy trình sản xuất chế phẩm vi sinh vật

Sau các kết quả thu được từ các nghiên cứu ở trên, đề tài xây dựng nên một quy trình sản xuất chế phẩm vi sinh vật, các bước thực hiện của quy trình được thể hiện ở hình 3.3.

Từ 03 chủng Bacillus, thơng qua q trình khảo sát động thái sinh trưởng, ảnh hưởng của nhiệt độ và pH của các chủng. Ta xây dựng nên được quy trình sản xuất chế phẩm vi sinh vật để ứng dụng xử lý chất thải rắn sinh hoạt hữu cơ thành phân bón hữu cơ.

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ Hình 3.3: Sơ đồ quy trình sản xuất chế phẩm vi sinh vật

Các bước tiến hành:

Bước 1: Cấy truyền giống gốc sang môi trường các ống nghiệm thạch nghiêng để thu được ống giống cấp 1, ủ trong tủ ấm 32°C trong 48 giờ. Thao tác thực hiện trong tủ cấy vô trùng.

Bước 2: Sấy chất mang ở nhiệt độ 130°C trong 3 giờ. Bảo quản trong tủ cách ẩm trong thời gian chờ hỗn hợp dịch sinh khối vi khuẩn.

Bước 3: Lên men thu sinh khối trong môi trường dịch thể NA, từ ống nghiệm thạch nghiêng ta tiến hành thu và cấy dịch vi khuẩn sang môi trường dịch thể NA ở pH=7, ni trên máy lắc 150 vịng/phút trong 48 giờ ở nhiệt độ thường.

Bước 4: Phối trộn dịch thể NA chứa các chủng vi sinh vật theo tỉ lệ 1:2:1 (CT1:CT10:R35).

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ

đó sấy ở 40°C trong 60 giờ.

Bước 6: Sau quá trình sấy 60 giờ. Thu được chế phẩm vi sinh vật, bảo quản trong túi polyetylen ở nhiệt độ thường.

3.1.6. So sánh chế phẩm nổi bật trên thị trường.

Chế phẩm mà đề tài nghiên cứu sản xuất được là chế phẩm dạng bột, nên sẽ tiến hành so sánh với các chế phẩm dạng bột EMIC, Emuniv và S.EM.

Tiêu chí so sánh là mật độ tế bào vi sinh vật.

Bảng 3.8: Mật độ tế bào của các chế phẩm dạng bột

Tên chế phẩm dạng bột Kết quả mật độ tế bào (CFU/g) TCVN 7304-1:2003 (CFU/g) So sánh với TCVN 7304- 1:2003 Chế phẩm từ đề tài 36,3x 108 1x108 Đạt Chế phẩm EMIC ≥ 108 1x108 Đạt Chế phẩm Emuniv ≥ 108 1x108 Đạt Chế phẩm S.EM ≥ 108 1x108 Đạt

Dựa trên kết quả từ bảng 3.8, ta thấy chế phẩm vi sinh vật được sản xuất từ đề tài nghiên cứu so sánh với các chế phẩm dạng bột nổi bật trên thị trường thì đều đảm bảo mật độ tế bào ≥ 108 CFU/g và đạt TCVN 7304-1:2003 [43].

3.2. Nghiên cứu ứng dụng chế phẩm vi sinh vật hữu hiệu để xử lý chất thải rắn sinh hoạt hữu cơ làm phân bón hữu cơ sinh học

3.2.1. Xây dựng quy trình ủ phân

CTRSH hữu cơ được lựa chọn để tiến hành ủ phân là CTRSH hữu cơ dễ phân huỷ được lấy từ trạm trung chuyển khu vực Thuận Phước (dưới chân cầu Thuận Phước).

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ Hình 3.4: Quy trình tiến hành ủ phân

Hình 3.5: Lựa chọn chất thải rắn hữu cơ tại Thuận Phước

Vị trí ủ phân: Tại trung tâm cơng nghệ sinh học Đà Nẵng Các bước thực hiện ủ phân sau khi tạo ra chế phẩm: Bước 1: Phối trộn

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ

 Chất thải rắn sinh hoạt hữu cơ dễ phân hủy 20kg được băm nhỏ đạt kích thước từ 3-5cm.

 Chia vào thùng xốp có kích thước 38x35x25cm (DxRxC) mỗi thùng chứa 5kg. Sau đó cho 150 g phân lân và 100 g phân vôi vào mỗi thùng, trộn đều. Đối với mẫu I (đối chứng) không bổ sung chế phẩm, đối với mẫu II, mẫu III, mẫu IV tiến hành bổ sung chế phẩm với tỉ lệ lần lượt 2% (100 g), 5% (250 g) và 10% (500 g)

Bước 2: Đảo trộn và kiểm tra độ ẩm

 Tiến hành đảo trộn đều khối ủ, sau đó tiến hành kiểm tra độ ẩm bằng phương pháp đo nhanh, đến khi độ ẩm đạt 50 – 60%.

Bước 3: Che phủ khối ủ

 Sau khi trộn đều, tiến hành đo các thông số nhiệt độ, chiều cao khối ủ. Sau đó, che đậy thùng bằng nắp thùng, để nơi khơ ráo thống mát, tránh trời mưa.

Bước 4: Ủ và kiểm tra các thông số

 Lần lượt kiểm tra độ ẩm và chiều cao, 3 ngày tiến hành kiểm tra nhiệt độ và ghi chép các thông số độ ẩm, nhiệt độ, chiều cao, pH và đánh giá cảm quan của mỗi cơng thức thí nghiệm.

 Ở ngày thứ 28, 29, 30 tiến hành đo thơng số nhiệt độ để kiểm tra độ chín (hoại mục) của các công thức ủ. Đồng thời lấy mẫu để tiến hành phân tích chỉ số OC, tổng N và P2O5.

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ Hình 3.7: Các thùng ủ sau khi bổ sung chế phẩm

3.2.2. Đánh giá các yếu tố ảnh hưởng đến quá trình ủ phân và chất lượng sản phẩm phân ủ phân ủ

3.2.2.1. Tính chất cảm quan của phân ủ

Tất cả các mẫu ủ đã bị thay đổi về thành phần cơ giới, màu và mùi so với thời điểm ban đầu. Sự thay đổi về thành phần cơ giới trong các mẫu ủ là như nhau ở các thời gian từ 0 – 7 ngày và về sau thì xuất hiện sự khác nhau do thành phần chế phẩm bổ sung vào các mẫu là khác nhau.

Cụ thể thì mẫu ủ bổ sung chế phẩm có sự khác biệt rõ rệt về mùi khi tiến hành kiểm tra đánh giá cảm quan, điều đó khẳng định sự hiệu quả của chế phẩm vi sinh vật bổ sung vào trong quá trình ủ phân.

Bảng 3.9: Tính chất cảm quan của phân ủ

Chỉ tiêu

đánh giá Mẫu ủ

Thời gian đánh giá

Ngày 0 - 7 Ngày 8-15 Ngày 16-23 Ngày 24-30

Màu sắc

I Màu nâu Màu nâu đen Màu nâu đen Màu xám đen xẫm

II Màu nâu Màu nâu đen Màu nâu đen Màu xám đen xẫm

III Màu nâu Màu nâu xẫm Màu nâu đen Màu nâu đen

IV Màu nâu Màu nâu xẫm Màu nâu đen Màu nâu đen

Mùi

I Chua Hôi Nồng Hôi Nồng Hôi

II Chua Hôi Nồng Hôi Nồng Hôi

III Chua nhẹ Hôi Hôi nhẹ Hôi nhẹ

IV Chua nhẹ Hôi nhẹ Hôi nhẹ Hôi nhẹ

Thành phần

I Tơi xốp Mủn Mủn Mủn

II Tơi xốp Mủn Mủn Mủn

III Tơi xốp Tơi xốp Mủn tơi Mủn tơi

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ Hình 3.8: Các mẫu ủ tại thời điểm ngày thứ 30

3.2.2.2. Sự thay đổi nhiệt độ trong quá trình ủ phân

Nhiệt độ là một trong những thông số quan trọng cần phải theo dõi trong quá trình ủ phân bởi vì nó ảnh hưởng đến hoạt động của vi sinh vật trong q trình ủ phân, đồng thời nó cịn là yếu tố kiểm sốt vi sinh vật gây bệnh.

Kết quả ghi nhận trong quá trình ủ phân được thể hiện qua hình 3.9, có thể thấy nhiệt độ tăng nhanh trong 03 ngày đầu tiên, ngưỡng cao nhất là 52,6°C ở mẫu IV và 50,2°C ở mẫu III. Đây là 2 mẫu được bổ sung chế phẩm vi sinh nhiều nhất với mẫu III là 250g/5kg (5%) và mẫu IV là 500g/5kg (10%). Mẫu I và II là những mẫu khơng bổ sung và bổ sung ít nên sự hoạt động của vi sinh vật là yếu hơn. Và phải kể đến yếu tố nhiệt độ bên ngồi cũng ảnh hưởng ít nhiều đến sự hoạt động của các mẫu ủ khi nhiệt độ bên ngồi thất thường, có thời điểm mưa dài ngày và thời điểm nắng gắt đã ảnh hưởng đến quá trình sinh nhiệt của các mẫu ủ.

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ Hình 3.9: Đồ thị sự thay đổi nhiệt độ trong quá trình ủ phân

Theo kết quả thu được từ hình 3.10, có thể thấy được nhiệt độ trong đống ủ được chia làm 3 giai đoạn chính:

Giai đoạn tăng nhiệt: Thơng thường, trong thời gian 1 – 3 ngày là giai đoạn mà các VSV trong chế phẩm bắt đầu thích nghi với mơi trường, nhưng theo kết quả thu được thì nhiệt độ tăng cao, điều đó cho thấy sự hợp lý vì 03 chủng VSV mà đề tài sử dụng để sản xuất chế phẩm đều được phân lập tại thành phố Đà Nẵng, nên 03 chủng VSV đã thích nghi tốt với mơi trường ủ, khiến cho giai đoạn hiếu nhiệt xảy ra ngay tại thời điểm bắt đầu. Nhiệt độ giai đoạn này của các mẫu ủ tăng cao từ 29°C và đạt ngưỡng nhiệt cao nhất 44,9°C, 41,9°C, 50,2°C và 52,6°C (thứ tự lần lượt mẫu I, mẫu II, mẫu III và mẫu IV) trong cả quá trình ủ. Ở giai đoạn này, các tác nhân vi sinh vật bổ sung vào đã thúc đẩy quá trình phân huỷ diễn ra và q trình này giải phóng năng lượng làm nhiệt độ đống ủ tăng nhanh, kích thích hoạt động của các vi sinh vật ưu nhiệt, đồng thời tiêu diệt các vi sinh vật gây bệnh có trong nguyên liệu ủ.

Giai đoạn giảm nhiệt: Giai đoạn này nhiệt độ ủ giảm sâu và có trường hợp thấp hơn ở mức độ ban đầu 26,1°C của mẫu I và 25,2°C của mẫu II. Trong thời gian này, nhiệt độ trong đống ủ giảm dần xuống do hoạt động của các VSV giảm cùng với việc lượng chất hữu cơ có thể phân huỷ cũng giảm đi bởi q trình tăng nhiệt trước đó. Bắt đầu từ ngày thứ 12 đến ngày thứ 24, có sự biến động nhiệt độ trong đống ủ, nhiệt tăng từ ngày 12 đến ngày thứ 18, và giảm từ ngày 18 đến ngày 24, trong giai đoạn này đã có sự hoạt động của các VSV ưa ấm, quá trình phân huỷ vẫn tiếp tục diễn ra nhưng trong thời gian ngắn. 20.0 25.0 30.0 35.0 40.0 45.0 50.0 55.0 0 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 Nhiệt độ ( °C) Ngày

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ

Giai đoạn chín: Từ ngày ủ thứ 24 đến 30, nhiệt độ trong các mẫu ủ đã khơng cịn biến động nhiều, chứng tỏ nguyên liệu hữu cơ đã ngừng chuyển hố nên khơng cịn giải phóng năng lượng. Vậy sau 24 ngày ủ thì quá trình phân huỷ đã dừng lại.

3.2.2.3. Sự thay đổi độ ẩm trong quá trình ủ phân

Độ ẩm là yếu tố quan trọng trong q trình ủ phân, độ ẩm có tác động trực tiếp lên hoạt động của vi sinh vật. Bên cạnh đó, độ ẩm cịn làm thay đổi đáng kể nhiệt độ của quá trình ủ, khi nhiệt độ tăng, độ ẩm giảm và ngược lại khi nhiệt độ thấp độ ẩm lại cao. Nếu độ ẩm thấp (< 30%) sẽ hạn chế hoạt động của vi sinh vật. Khi độ ẩm quá lớn (> 65%), quá trình phân huỷ chất thải sẽ diễn ra chậm. Độ ẩm tối ưu cho quá trình ủ phân là 50% – 60%.

Hình 3.10: Đồ thị sự thay đổi độ ẩm trong quá trình ủ phân

Dựa theo các kết quả phép đo nhanh độ ẩm mỗi 03 ngày được biểu thị ở hình 3.10, tại thời điểm ban đầu độ ẩm các mẫu là 55%. Nguyên liệu ủ là CTRSH hữu cơ hồn tồn nên lượng nước sinh ra trong q trình phân huỷ lớn, các mẫu ủ bổ sung lượng chế phẩm nhiều mẫu III (5%) và mẫu IV (10%) có sự chênh lệch độ ẩm lớn so với mẫu I và mẫu II. Chứng tỏ sự hoạt động của vi sinh vật trong chế phẩm dẫn đến sản sinh ra nhiệt, và nhiệt độ cao làm độ ẩm khối ủ giảm. Vào ngày thứ 30 độ ẩm trong đống ủ ở mẫu I, mẫu II và mẫu III lần lượt là 77%, 78% và 68%, trong đó có mẫu IV đạt độ ẩm thấp nhất ở ngày cuối cùng 60% và cũng là mẫu ủ có dải độ ẩm thay đổi thấp nhất trong các mẫu ủ, thấp thứ nhì là mẫu III. Điều đó càng chứng tỏ cho sự hoạt động của chế phẩm vi sinh vật bổ sung vào các mẫu ủ.

45 50 55 60 65 70 75 80 85 0 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 Độ ẩm (%) Ngày

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ 3.2.2.4. Sự thay đổi pH trong q trình ủ phân

pH là một thơng số quan trọng ảnh hướng đến quá trình ủ phân. pH ảnh hưởng trực tiếp đến hoạt động của các vi sinh vật. Hệ vi sinh vật phát triển tốt ở pH 6-7. Trong thời gian đầu, pH thường ở mức 6,0 và sau đó giảm xuống do acid hữu cơ sinh ra trong vài ngày, rồi tăng lại cho đến cuối thời gian ủ phân.

Từ hình 3.11, giá trị pH của các mẫu ủ thay đổi trong khoảng 5,5 – 7. Dựa vào khả năng hoạt động tốt của 03 chủng vi khuẩn Bacillus trong chế phẩm theo kết quả nghiên cứu ở trên (mục 3.1.1.5) thì vi khuẩn trong các mẫu ủ vẫn hoạt động tốt. Sau thời điểm 30 ngày ủ, kết quả thu được ở mẫu I và mẫu II là pH= 6,1, ở mẫu III là pH= 6,4 và ở mẫu IV là pH= 6,9. Các giá trị pH sau 30 ngày ủ phân đạt trong khoảng giá trị được quy định ở TCVN 7185:2002 [37].

Hình 3.11: Đồ thị sự thay đổi pH trong quá trình ủ phân 3.2.2.5. Sự thay đổi chiều cao lớp nguyên liệu trong quá trình ủ phân 3.2.2.5. Sự thay đổi chiều cao lớp nguyên liệu trong quá trình ủ phân

Dựa trên kết quả theo dõi mỗi 03 ngày từ hình 3.12, ta thấy được sự thay đổi mạnh của chiều cao lớp ủ. Chiều cao ban đầu của mẫu I là 5,8cm; của mẫu II là 6,3cm; mẫu III là 7,2cm và mẫu IV là 10,1cm. Chiều cao ban đầu khác nhau là do sự bổ sung của chế phẩm vi sinh vật vào các mẫu, mẫu I không bổ sung, mẫu II bổ sung 100 g (2%), mẫu III bổ sung 250 g (5%) và mẫu IV bổ sung 500 g (10%). Vì chiều cao các mẫu ủ ở thời điểm ban đầu là không tương đồng nên ta sẽ so sánh tỉ lệ % chiều cao thay đổi của từng mẫu. Đối với mẫu I thì ban đầu 5,8cm và ở ngày cuối cùng cao 2,2cm thì giảm 61,8% so với ban đầu, mẫu II thì ban đầu là 6,3cm và ngày cuối 2,3cm thì giảm 63,2% so với ban đầu, mẫu III thì lần lượt là 7,2cm và 3,0cm giảm 58,3% và mẫu IV thì ban

4.0 5.0 6.0 7.0 8.0 0 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 pH Ngày

THƯ VIỆN TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA – ĐẠI HỌC ĐÀ NẴNG. Lưu hành nội bộ

đầu 10,1cm và ngày cuối 3,5cm giảm 65,4% so với tại thời điểm ban đầu.

Với việc bổ sung chế phẩm vào các mẫu ủ II, III và IV thì sự phân huỷ các chất hữu cơ diễn ra mạnh với bằng chứng là sự chênh lệch chiều cao lớp ủ tại thời điểm ban đầu là khá lớn, mẫu IV cao hơn mẫu I (mẫu đối chứng) là 4,3cm, mẫu III chênh lệch mẫu I là 1,4cm nhưng sau 30 ngày ủ thì sự chênh lệch chiều cao lớp ủ giảm thiểu rõ rệt, 3,5cm so với 2,2cm của mẫu IV và I, 3cm so với 2,2cm của mẫu III và I. Và sự chênh lệch cũng thể hiện ở các mẫu ủ có chế phẩm, giữa mẫu IV và III thì sự chênh lệch chiều cao ban đầu và sau 30 ngày ủ lần lượt là 2,9cm và 0,5cm. Điều đó cho thấy sự hoạt động tốt của chế phẩm.

Hình 3.12: Đồ thị sự thay đổi chiều cao lớp nguyên liệu ủ 3.2.2.6. Đánh giá độ chín của phân ủ 3.2.2.6. Đánh giá độ chín của phân ủ

Độ chín là một chỉ tiêu quan trọng cho biết thời gian hỗn hợp nguyên phụ liệu ủ hoại mục hoàn tồn. Độ chín được xác định bằng phương pháp đo nhiệt độ sản phẩm theo TCVN 7185: 2002 [37].

Sử dụng thiết bị đo nhanh, cắm sâu vào trong mỗi thùng xốp chứa mẫu thí nghiệm. Sau 15 phút, đọc nhiệt độ lần thứ nhất. Đo, ghi chép và theo dõi sự thay đổi về nhiệt độ trong thời gian 3 ngày liên tiếp, mỗi ngày đo một lần vào một thời điểm nhất định. Phân

Một phần của tài liệu Nghiên cứu sản xuất chế phẩm vi sinh vật hữu hiệu để áp dụng trong xử lý chất thải rắn sinh hoạt hữu cơ làm phân bón hữu cơ sinh học tại đà nẵng (Trang 57)