Như vậy, ngoại trừ trường hợp nghiên cứu trên các cây có khả năng cố định đạm là cây đậu mèo và cỏ lạc cảnh thì các nghiên cứu khác trên các các cây chủ như vừng, ngô đều cho thấy sự khác biệt với kết quả nghiên cứu. Nguyên nhân có thể là do đặc điểm sinh học của cây chủ cũng như thành phần chủng nấm rễ được sử dụng.
4.5.2. Ảnh hưởng của vật liệu sinh học đến tính chất đất thí nghiệm
Kết quả bảng 4.8 cho thấy, trước và sau khi sử dụng VLSH trong khoảng thời gian là 8 tuần thì đa phần các chỉ tiêu nông hóa của đất không có sự thay đổi.
Bảng 4.8. Ảnh hưởng của xử lý vật liệu sinh học đến một số chỉ tiêu nông hóa của đất sau 8 tuần thí nghiệm
Chỉ tiêu Trước thí nghiệm Sau thí nghiệm Đối chứng VLSH Tính chất vật lý pHH2O 5,81 5,85 5,76 Độ ẩm (%) 10,35 12,72 20,31 Tính chất hóa học OC (%) 0,26 0,26 0,27 N (%) 0,06 0,07 0,07 P2O5 (%) 0,08 0,09 0,08 K2O (%) 0,78 0,80 0,80 Tính chất sinh học VSVTS (10 6TB/g) 1,65 1,84 2,58 Nấm rễ (BT/100g đất) 5 19 283
Các chỉ tiêu về độ ẩm, số bào tử nấm rễ có sự khác biệt giữa công thức sử dụng VLSH và đối chứng. Cụ thể: độ ẩm trong đất tăng hơn so với đối chứng do đất có độ che phủ nên hạn chế được sự thoát hơi nước từ đất. Số lượng bào tử nấm rễ của công thức dùng VLSH cao hơn so với trước thí nghiệm là 56,6 lần và so với đối chứng là 14,89 lần. Sự thay đổi rất ít của đa số chỉ tiêu phân tích trên có thể là do nguyên nhân thực hiện thí nghiệm chưa đủ dài để các chủng nấm rễ và cây chủ phát huy được hiệu quả. Sự khác biệt về số lượng bào tử có thể là do sự sai khác về nguồn dinh dưỡng bổ sung khi mà đất trước thí nghiệm không được bổ sung dinh dưỡng như hai công thức thí nghiệm.
So sánh thu kết quả bảng 4.8 với kết quả đạt được của Nông Thị Quỳnh Anh (2014) khi nghiên cứu về sử dụng VLSH tái tạo thảm thực vật trên đất dốc, số liệu cho thấy sự tương đồng giữa hai nghiên cứu trong tất cả các chỉ tiêu nông hóa của đất thí nghiệm.
Kết quả bảng 4.8 là phù hợp với nghiên cứu của Nguyễn Thị Minh và Nguyễn Thanh Nhàn (2016) khi nghiên cứu về VLSH tái tạo thảm thực vật làm tiểu cảnh. Các chỉ tiêu dinh dưỡng tổng số, pH đều không có sự khác biệt. Tuy vậy, trong nghiên cứu của các tác giả, chỉ số VSV tổng số có sự sai khác giữa đối chứng và công thức sử dụng VLSH. Chỉ tiêu VSV tổng số ở công thức sử dụng VLSH gấp 10 lần so với đối chứng. Ngoài ra, số bào tử nấm rễ của công thức dùng VLSH cao hơn so với đối chứng là 5,52 lần. Tỷ lệ này thấp hơn so với kết quả nghiên cứu đạt được. Sự khác biệt này có thể là khác nhau về tính chất đất khi mà pH đất thí nghiệm trong nghiên cứu của Nguyễn Thị Minh và Nguyễn Thanh Nhàn là 6,50 hoặc cây chủ khác nhau và đặc biệt là VLSH sử dụng thêm chủng vi khuẩn cố định đạm Rhizobium nhằm tạo ra sự hiệp đồng với nấm rễ.
Lý giải cho sự khác nhau về tỷ lệ số lượng bào tử của công thức sử dụng VLSH so với đối chứng, nguyên nhân về pH đất có thể được chú ý khi mà có một vài nghiên cứu cho thấy sự phụ thuộc của mật độ bào tử nấm trong rễ cũng như trong đất đối với sự thay đổi của pH đất. Kết quả của Võ Thị Tú Trinh và Dương Minh (2017) cho thấy: tỷ lệ xâm nhiễm của nấm trong rễ ngô dao động và có tương quan thuận với giá trị pH đất (từ 3,6 – 5,8) tại vùng trồng ngô. Thí nghiệm của Medeiros et al. (1994) kết luận rằng, trên cây lúa miến (Sorghum), tỷ lệ cộng sinh ở chi Glomus spp gia tăng khi giá trị pH tăng dần trong khoảng 4,0 - 7,0, tỷ lệ cộng sinh thấp ở pH 4,0 và cao ở pH 5,0; 6,0; 7,0. Kết quả khảo sát cũng phù hợp với nghiên cứu của Trần Thị Dạ Thảo (2012) về tỷ lệ cộng sinh trên cây ngô cũng tăng dần theo sự gia tăng giá trị pH trong khoảng từ 4,0 - 6,0. Theo Giovannetti (2000), pH đất ảnh hưởng đến khả năng xâm nhiễm, hình thành bào tử và sự mọc mầm của bào tử. Kết quả của Wang et al.,(1993) sự khi nghiên cứu về ảnh hưởng của pH tới nấm rễ AM cũng đã cho thấy số lượng bào tử trong đất tăng lên theo giá trị pH từ 4,50 đến 7,50.
PHẦN 5. KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ
5.1. KẾT LUẬN
Dựa trên kết quả nghiên cứu đạt được, các kết luận được đưa ra như sau: - Hai chủng nấm rễ Gigaspora sp6 và Dentiscutata nigra được tuyển chọn đều là những chủng sinh trưởng phát triển nhanh, hệ sợi phát triển mạnh, tỷ lệ nảy mầm trên 80% và có sức sống cao.
- Cây đậu xanh được lựa chọn để nhân giống nấm rễ vì sự sinh trưởng và phát triển tốt nhất. Khi xử lý nấm rễ trên cây đậu xanh, kết quả cho thấy chiều dài rễ cây chủ cao lần lượt gấp 1,59 và 1,52 lần so với đối chứng. Cây đậu mèo được lựa chọn để tái tạo TTV ngoài thực địa do có bộ rễ phát triển nhanh nhất. Trong điều kiện phòng thí nghiệm, hạt giống của cây đậu xanh có tỷ lệ nảy mầm lớn, lên đến 99%.
- Tính chất của vật liệu sinh học hoàn toàn phù hợp với yêu cầu về điều kiện sinh trưởng của AM và đáp ứng được việc cung cấp dinh dưỡng cho cây con trong giai đoạn đầu sinh trưởng. Sau 3 và 6 tháng phối trộn, các tính chất vật lý và hóa học của vật liệu không thay đổi nhiều, vẫn đảm bảo được sự sinh trưởng và phát triển của nấm rễ và cây con.
- Khi thực hiện tái tạo TTV, việc tích hợp màng che phủ sẽ đem lại hiệu quả cao hơn do tác dụng giữ ẩm và hạn chế xói mòn của màng che phủ. Trên cơ sở này, quy trình sử dụng VLSH trong việc tái tạo thảm thực vật nhằm bảo vệ đất dốc được xây dựng theo 3 bước sau: (i) Kiểm tra chất lượng VLSH: đảm bảo cho sự sinh trưởng tốt nhất của cây và nấm rễ; (ii) Bổ sung hạt giống (nếu có): hạt giống phải có khả năng nảy mầm tốt và thời gian nảy mầm ngắn; (iii) Tích hợp màng che phủ: có tác dụng giữ ẩm và hạn chế xói mòn, rửa trôi.
- Sử dụng VLSH có tích hợp màng che phủ giúp cây đậu mèo sinh trưởng tốt hơn. Tất cả các chỉ tiêu theo dõi ở công thức có sử dụng VLSH đều cao hơn so với đối chứng. Trong đó, chỉ số LAI đạt 1,17 tại tuần thứ 6 của thí nghiệm, cây bắt đầu phủ kín diện tích khu đất thí nghiệm, giúp tái tạo thành công TTV.
5.2. KIẾN NGHỊ
- Thử nghiệm tái tạo TTV trên đất dốc ở quy mô lớn để khẳng định hiệu quả và khả năng ứng dụng của VLSH
- Cần có những nghiên cứu về ảnh hưởng của VLSH trong việc tái tạo TTV trong các điều kiện độ dốc khác nhau và ở các điều kiện thổ nhưỡng khác nhau.
TÀI LIỆU THAM KHẢO I. Tài liệu tiếng Việt:
1. Đặng Kim Vui (2002). Đặc điểm về cấu trúc rừng thứ sinh phục hồi sau nương rẫy ở huyện Đồng Hỷ - Thái Nguyên. Tạp chí Lâm nghiệp (3).
2. Lê Đồng Tấn (2007). Nghiên cứu cơ sở khoa học và các giải pháp, qui trình phủ xanh đất trống đồi trọc ở Thái Nguyên - Bắc Kạn.
3. Lê Ngọc Công (2003). Các yếu tố ảnh hưởng và khả năng phục hồi tự nhiên của các quần xã thực vật tái sinh trên đất sau nương rẫy tại Thái Nguyên. Tạp chí Lâm nghiệp, (1).
4. Lê Xuân Cường (2013). Phân lập tuyển chọn một số chủng vi khuẩn cố định đạm nội sinh trong rễ cây ngô tại một số địa điểm của tỉnh Dak Lak. Luận văn thạc sỹ. 5. Nguyễn Đắc Bình Minh (2017). Nghiên cứu phát triển bền vững hệ thống rừng
phòng hộ Trung du miền núi Bắc bộ. Tạp chí Lâm nghiệp, (2).
6. Nguyễn Đình Bồng (2015). Chia sẻ kinh nghiệm quản lý, sở hữu đất đai ở một số nước trên thế giới và Việt Nam. Kỷ yếu nghiên cứu khoa học và công nghệ lĩnh vực quản lý đất đai từ năm 2000 đến năm 2015.
7. Nguyễn Thanh Nhàn (2016). Nghiên cứu quy trình sản xuất vật liệu sinh học nhằm tái tạo thảm cỏ làm tiểu cảnh cho khuôn viên.
8. Nguyễn Thị Hoàng Yến (2005). Kết quả bước đầu về phân lập nấm nội cộng sinh với các loài cây gỗ bản địa.
9. Nguyễn Thị Minh (2005). Phân lập và tuyển chọn nấm rễ Arbuscular Mycorrhizae để xử lý cho cây trồng. Tạp chí khoa học đất Việt Nam. (23). tr. 46-51.
10. Nguyễn Thị Minh (2007). Hiệu quả của việc xử lý Arbuscular Mycorrhizae đến sự sinh trưởng và phát triển của cây họ đậu trên đất phù sa sông Hồng. Tạp chí khoa học đất Việt Nam. (28). tr.27-30.
11. Nguyễn Thị Minh và Nguyễn Thanh Nhàn (2016). Tuyển chọn giống Arbuscular mycorrhizae và Rhizobium dùng để sản xuất vật liệu sinh học nhằm tái tạo thảm thực vật làm tiểu cảnh trong khuôn viên. Tạp chí KH Nông nghiệp Việt Nam 2016. 14 (8). tr. 1338-1347.
12. Nguyễn Thị Minh, Nguyễn Thu Hà và Phan Quốc Hưng (2014). Phân lập và tuyển chọn giống Abuscular Mycorrhizae dùng để sản xuất VLSH nhằm tái tạo thảm thực vật phủ xanh. Tạp chí Nông nghiệp và phát triển nông thôn. (3-4). tr. 49-55.
13. Nguyễn Thị Minh, Nguyễn Thu Hà, Phan Quốc Hưng, Nguyễn Tú Điệp và Vũ Thị Xuân Hương (2014). Nghiên cứu xác định các nguyên liệu chính để sản xuất vật liệu sinh học nhằm tái tạo thảm thực vật phủ xanh. Tạp chí Nông nghiệp & Phát triển nông thôn. (6)/2014. tr. 111-116.
14. Nguyễn Tử Siêm và Thái Phiên (1999). Đất đồi núi Việt Nam thoái hoá và phục hồi. NXB Nông nghiệp, Hà Nội.
15. Nông Thị Quỳnh Anh (2014). Xây dựng quy trình sản xuất vật liệu sinh học từ nấm rễ nội cộng sinh Arbuscular mycorhizae nhằm tái tạo thảm thực vật phủ xanh đất trống đồi núi trọc.
16. Trần Lê Bảo Hà (2012). Công nghệ vật liệu sinh học. NXB Giáo dục Việt Nam. 17. Trần Thị Dạ Thảo (2012). Nghiên cứu sự cộng sinh của nấm mycorrhiza trên cây
ngô (Zea mays L.) vùng Đông Nam Bộ. Luận án tiến sĩ Nông nghiệp, chuyên nghành Trồng Trọt, trường Đại học Nông Lâm Thành phố Hồ Chí Minh.
18. Trần Văn Mão (2011). Vi sinh vật có ích tập 2. NXB Nông nghiệp, Hà Nội. 19. Võ Thị Tú Trinh và Dương Minh (2017). Sự phân bố và xâm nhiễm của nấm rễ
nội sinh (Vesicular Arbuscular Mycorrhiza - VAM) trong mẫu rễ và đất trồng bắp tại một số tỉnh đồng bằng sông Cửu Long. Tạp chí Khoa học Trường Đại học Cần Thơ. (53). Phần B (2017). tr. 105-111.
II. Tài liệu tiếng Anh:
20. Amarathus M. (2001). Biological tool improves establishment, growth, diseases and droughr resitance of golf grasses.
21. Atangana A., S. Chang, A.M.I. Degrande and D.P. Khasa (2014). Tropical Agroforestry.
22. Bard E.L., S.M.S. Din and Moawad H (1988). Enhancement of nitrogen fixation in lentil, faba bean, and soybean by dual inoculation with rhizobia and mycorrhizae. Plant and Soil., 108. pp. 117 – 124.
23. Benthlenfalvay G.J. and R.N. Ames (1987). Comparison of two methods for quantifying extraradical mycelium of vesicular - arbuscular mycorrhizal fungi. Soil Sci. Soc. Am. J., 51. pp. 834 – 837.
24. Brudrett M.C. (2012). Coevolution of roots and mycorrhizas of land plants
25. Friberg S. 2001 – Distribution and diversity of arbuscular mycorrhizal fungi in traditional agriculture on the Niger inland delta, Mali, West Africa. CBM:s Skriftserie 3. pp. 53–80.
26. George E., H. Narschner, I. Jakobsen (1995). Role of arbuscular mycorrhizal fungi in uptake of phosphorus and nitrogen from soil. Critical Reviews in Biotechnology, 15. pp. 257-270.
27. Giovannetti M. (2000). Spore germination and presymbiotic mycelial growth. In Arbuscular mycorrhizas: physiology and function.. pp. 47 – 68.
28. Gueye M., H.G. Diem and Y.R. Dommergues (1987). Variation in N2 fixation, N and P contents of mycorrhizal Vigna unguiculata in relation to the progressive development of extraradical hyphae of Glomus mosseae. MIRCEN Journal, 3. pp. 75 – 86.
29. Harier L.A. and Watson (2004). The potential role of arbuscular mycorrhizal (AM) fungi in the bioprotection of plants against soil-borne pathogens in organic and/or other sustainable farming systems.
30. Harikumar (2017). Biometric parameters of field grown sesame influenced by arbuscular mycorrhizal inoculation, rock phosphate fertilization and irrigation. Tropical and Subtropical Agroecosystems, 20. pp. 195 – 202.
31. Howeler R.H., E. Sieverding S.R. Saif (1987). Practical aspects of mycorrhizal technology in some tropical crops and pastures. Plant and Soil, 100. pp. 149 – 283 32. Jihane T., M. Chliyeh, A. Ouazzani, R. Benkirane1 and A. Douira (2014). Effect
of the Arbuscular Mycorrhizal Fungi on the Growth and Root Development of Selected Plant Species Suggested for Slope Revegetation. Int. J. Pure App. Biosci. 2 (5). pp. 163-177.
33. Johnson NC, Gehring CA. 2007. Mycorrhizas: Symbiotic mediators of rhizosphere and ecosystem processes. In Z. Cardon and J. Whitbeck (eds). The Rhizosphere – an Ecological Perspective. Academic Press.
34. Kandowangko N.Y. and Y. Retnowati (2014). Growth Characteristics of Three Cultivars Maize Plants in Symbiosis with Arbuscular Mycorrhiza Fungi. Department of Biology Education, Science Faculty, State University of Gorontalo 35. Kaur S. and O.S. Singh (1988). Response of ricebean to single and combined
inoculation with Rhizobium and Glomus in a P - deficient sterilized soil. Plant and Soil, 112. pp. 293 – 29.
36. Kuldeep Y., S. Narender and A. Aggarwal (2012). Arbuscular Mycorrhizal Technology for the Growth Enhancement of Micropropagated Spilanthes acmella Murr. Plant Protect Science Vol. 48, 2012, No. 1. pp. 31–36.
37. Louis I. and G. Lim (1988). Differential response in growth and mycorrhizal colonization of soybean to inoculation with two isolates of Glomus clarum in soils of different P availability. Plant and Soil, 112. pp. 37 – 43.
38. Marumoto T., N.Kawano, T. Ezaki and H. Okabe (1999). Plant restoration in Volcanic Denuded land using Mycorrhizae fungi. Soil and Microbiology vol 53 (2). pp. 81-90.
39. Medeiros C.A.B., R.B. Clark and J. R. Ellis (1994). Effects of excess aluminium on mineral uptake in mycorrhizal sorghum. Journal of Plant Nutrition, 17(8): 1399 - 1416. 40. Morton J.B. (1998). Taxonomy of mycorrhizal fungi: Classificationnonmenclature
and identification, 32. pp. 276-324.
41. Mridha M. A. U. and Dhar (2003). Status of biodiversity of arbuscular mycorrhizal fungi in different tree species growing in Betagi community forests. 42. Smith M.S and C. Mbow (2014). Agroforestry from the past into the future:
editorial overview
43. Smith S.E. and D.J. Read (1997) Mycorrhizal Symbiosis (Academic Press, San Diego), Ed 2.
44. Smith S.E. and V. Gianinazzi-Pearson (1988) Physiological interactions between symbionts in vesicular-arbuscular mycorrhizal plants. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 39. pp. 221–244.
45. Subramanian K. S. (2009). Role of arbuscular mycorrhizal fungus (Glomus intraradices) – (fungus aided) in zinc nutrition of maize. Journal of Agricultural Biotechnology and Sustainable Development Vol. 1(1). pp. 029-038.
46. Tabassum Y. and A. Kawsar (2016). Influence of arbuscular mycorrhizal fungi, rhizobium inoculation and rock phosphate on growth and quality of Lentil. Pak. J. Bot., 48(5) . pp. 2101-2107.
47. Wang G.M. (1993). Effects of pH on arbuscular mycorrhiza. Field observations on the long-term liming experiments at Rothamsted and Woburn. ew PhytoL (1993), 124, 465 – 472.
48. Yamamoto K., T.Marumoto and Hiroaki Okabe (2006). Plant fixation and soil quality teb years after the arial reforestation efforts in the quality of Fugendake, Unzen, Japan reforestation engineering Journal vol.32.
49. Zaki Anwar Siddiqui, Mohd. Sayeed Akhtar and Kazuyoshi Futai (2008). Mycorrhizae: Sustainable Agriculture and Forestry, Springer Science.