GIỚI THIỆU 1.1 Đặt vấn đề Cua biển (Scylla paramamosain) là một trong những đối tượng nuôi quan trọng ở khu vực Tây Thái Bình Dương (Keenan, 1999). Với đặc điểm tăng trọng nhanh, kích cỡ lớn, giàu dinh dưỡng (Overton and Macintosh, 1997, Parado-Estepa and Quinitio, 1999), nên chúng được tiêu thụ mạnh ở nhiều nước trên thế giới (Le Vay, 2001; Walton et al., 2006a). Do đó diện tích nuôi biển ngày càng được mở rộng và hình thức nuôi ngày càng đa dạng (Hungria et al., 2017), đã đem lại một nguồn thu nhập tốt cho cư dân, sống ở vùng ven biển thuộc các nước Đông Nam Á (Overtonand and Macintosh, 1997; Le Vay, 2001; Walton et al., 2006a). Nhằm đáp ứng cua giống cho nhu cầu nuôi thương phẩm, giảm phụ thuộc vào nguồn giống tự nhiên. Các giải pháp cải tiến kỹ thuật để xây dựng quy trình sản xuất giống đã được áp dụng (De Pedro et al., 2007; Nghia et al., 2007a). Tuy nhiên, tỷ lệ sống của ấu trùng ở các trại giống còn thấp dưới 15%, do nhiễm vi khuẩn, nấm (Lavilla and Peña, 2004) và nguyên sinh động vật (Cholik, 1999; Dat, 1999), tập tính ăn nhau ở tất cả các giai đoạn (Quinitio, 2004), thiếu hiểu biết về nhu cầu dinh dưỡng của ấu trùng (Quinitio, 2004). Một số báo cáo cho thấy, trứng bị hư trong quá trình ấp hoặc ấu trùng cua biển chết rất nhiều khi bị nhiễm các loại nấm Lagenidium (Cholik, 1999), Sirolpidium (Nakamura et al., 1995), Hematonidium sp. (Hudson and Shields, 1994), Halipthoros sp. (Leaño, 2001), các loài nguyên sinh động vật như: Epistylic sp., Acineta sp., Lagenophrys sp. (Hudson and Lester, 1994) và Zoothamnium sp. (Dat, 1999; Cholik, 1999). Bên cạnh đó, vi khuẩn Vibrio harveryi cũng làm cho ấu trùng Zoea chết rất nhanh (Lightner, 1993; Parenrenri et al., 1993). Để hạn chế thiệt hại do bệnh gây ra trong quá trình ương, các trại giống đã dùng mycostatic và mycocidal (Liopo and Sanvictores, 1986), trifluralin (De Pedro et al., 2007), formalin (Lightner, 1993; De Pedro et al., 2007) và Oxytetracylin (Azam, 2013) để phòng nấm, nguyên sinh động vật và vi khuẩn. Tuy nhiên, việc sử dụng các loại hóa chất này cho hiệu quả trước mắt nhưng về lâu dài thì nó sẽ hình thành các chủng vi khuẩn kháng thuốc (Thạch Thanh và ctv., 1999). Hơn nữa, việc sử dụng kháng sinh và các hóa chất bị cấm sẽ để lại tồn lưu trong môi trường, trong cơ thể động vật thủy sản. Nó ảnh hưởng đến sức khỏe con người và vật nuôi (De Pedro et al., 2007). Là một tác nhân oxy hóa mạnh, Ozon có hiệu quả sát trùng cao đối với các sinh vật gây bệnh như vi khuẩn, virut, nấm và nguyên sinh động vật (Liltved et al., 2006; Schneider et al., 1990), phân hủy nhanh và ít để lại tồn lưu cho môi trường (Summerfelt and Hochheimer, 1997; Von Gunten, 2003; Tạ Văn Phương, 2006). Ozon được xem là giải pháp khắc phục những vấn đề trên. Tuy vậy, hiện nay ozon chỉ là giải pháp lựa chọn trong xử lý nước, trong ương ấu trùng tôm (Thạch Thanh và ctv., 1999; Trần Thị Kiều Trang và ctv., 2006; Nguyễn Lê Hoàng Yến, 2008), trong hệ thống tuần hoàn (Summerfelt and Hochheimer, 1997; Summerfelt et al., 1997; Christensen et al., 2000; Krumins et al. 2001; Tango and Gagnon, 2003; Summerfelt, 2003), xử lý mầm bệnh trên trứng cá (Schneider et al., 1990; Liltved et al., 2006; Sharrer and Summerfelt, 2007; Summerfelt et al., 2009), nhưng chưa có một công trình nghiên cứu nào công bố về việc sử dụng ozon trong ương ấu trùng cua biển. Do đó, việc “Nghiên cứu sử dụng ozon trong sản xuất giống cua biển S. paramamosain Estampador, 1949” là rất cần thiết, nhằm hạn chế, thay thế sử dụng thuốc kháng sinh hoặc hóa chất bị cấm trong quá trình sản xuất giống cua biển.
BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ NGUYỄN VIỆT BẮC NGHIÊN CỨU SỬ DỤNG OZON TRONG SẢN XUẤT GIỐNG CUA BIỂN (Scylla paramamosain Estampador, 1949) LUẬN ÁN TIẾN SĨ NGÀNH NUÔI TRỒNG THỦY SẢN 2021 MỤC LỤC LỜI CẢM TẠ i TÓM TẮT ii ABSTRACT iv LỜI CAM KẾT vi MỤC LỤC vii DANH MỤC BẢNG xiii DANH MỤC HÌNH xv DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT xv Chương 1: GIỚI THIỆU 1.1 Đặt vấn đề 1.2 Mục tiêu nghiên cứu 1.2.1 Mục tiêu tổng quát 1.2.2 Mục tiêu cụ thể 1.3 Phạm vi nghiên cứu 1.4 Ý nghĩa nghiên cứu 1.5 Điểm nghiên cứu 1.6 Nội dung nghiên cứu 1.7 Thời gian thực Chương 2: LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU 2.1 Đặc điểm sinh học cua biển 2.1.1 Đặc điểm phân loại 2.1.2 Phân bố 2.1.3 Môi trường sống cư trú 2.1.4 Vòng đời 2.1.5 Đặc điểm sinh sản 2.1.5.1 Sự thành thục cua biển 2.1.5.2 Di cư sinh sản 2.1.5.3 Tập tính bắt cặp, đẻ trứng ấp trứng 2.1.5.4 Sự phát triển giai đoạn ấu trùng 2.1.6 Đặc điểm sinh trưởng 10 2.1.6.1 Lột xác tái sinh 10 2.1.6.2 Các giai đoạn trình lột xác 11 2.1.6.3 Các yếu tố điều khiển trình lột xác 12 2.1.6.4 Tuổi thọ kích thước tối đa cua 12 2.1.7 Đặc điểm dinh dưỡng 13 2.2 Sản xuất giống cua biển 13 2.2.1 Lựa chọn cua mẹ nuôi vỗ 13 2.2.2 Hệ thống nuôi vỗ 14 vii 2.2.3 Khẩu phần ăn chế độ cho ăn 14 2.2.4 Sinh sản 15 2.2.5 Ấp nở 16 2.2.6 Ương ấu trùng Zoea 16 2.2.6.1 Lựa chọn ấu trùng 16 2.2.6.2 Nước ương ấu trùng 17 2.2.6.3 Nhiệt độ 17 2.2.6.4 Độ mặn 17 2.2.6.5 Ánh sáng 17 2.2.6.6 Bể ương 18 2.2.6.7 Thay nước xiphon 18 2.2.6.8 Thức ăn giàu hóa thức ăn 19 2.2.7 Ương megalop 21 2.3 Một số bệnh cua mẹ, trứng ấu trùng cua biển 23 2.3.1 Bệnh vi khuẩn 23 2.3.1.1 Vi khuẩn phát sáng 23 2.3.1.2 Vi khuẩn sợi 23 2.3.2 Nấm 23 2.3.3 Ký sinh trùng 24 2.4 Phòng trị bệnh 24 2.5 Hiện trạng sản xuất giống cua biển ĐBSCL 25 2.5.1 Kết cấu trại sản xuất giống cua biển 25 2.5.2 Nuôi vỗ ấp cua trứng 26 2.5.3 Ương ấu trùng 27 2.5.4 Ương cua giống 28 2.5 Ozon nuôi trồng thủy sản 30 2.5.1 Cơ chế tạo ozon yếu tố ảnh hưởng đến suất ozon 30 2.5.2 Cơ chế oxy hóa ion vô cơ, ammoniac hydro sulfua ozon 30 2.5.2.1 Cơ chế phản ứng nhóm halogen với ozon 31 2.5.2.2 Cơ chế phản ứng ion Fe2+ Mn2+ với ozon 33 2.5.3 Cơ chế oxy hóa hợp chất hữu ozon 33 2.5.3.1 Aldehyd, Alcohol, Xeton axit Carbocylic 33 2.5.3.2 Anken 34 2.5.4 Cơ chế diệt mầm bệnh ozon 34 2.5.5 Ứng dụng ozon nuôi trồng thủy sản 35 2.5.5.1 Cải thiện chất lượng nước 35 2.5.5.2 Khử trùng nguồn nước cho hệ thống nuôi 36 2.5.5.3 Cải thiện tỷ lệ sống suất hệ thống nuôi 38 2.5.5.4 Cải thiện tỷ lệ nở 38 viii 2.5.5.5 Loại bỏ tảo độc độc tố 39 2.5.5.6 Cải thiện chất lượng thức ăn tươi sống 40 2.5.6 Những hạn chế ozon 40 2.5.7 Độc tính ozon 41 2.5.7.1 Dư lượng oxy hóa hệ thống RAS 42 2.5.7.2 Sản phẩm ozon hóa 43 2.5.7.3 Liều lượng ozon thời gian tiếp xúc 43 2.5.7.4 Bromat thủy sinh vật 44 2.5.7.5 Ảnh hưởng ozon bromat đến sức khỏe người 46 2.5.8 Loại bỏ dư lượng chất khử trùng (DBP) 46 Chương 3: VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 48 3.1 Phương pháp tiếp cận 48 3.2 Thời gian địa điểm nghiên cứu 48 3.3 Vật liệu nghiên cứu 48 3.4 Hóa chất 49 3.5 Nguồn nước dùng thí nghiệm 49 3.6 Thiết kế hệ thống lọc sinh học nuôi vỗ cua mẹ 49 3.7 Nguồn cua mẹ tiêu chí lựa chọn cua mẹ ni vỗ 49 3.8 Nguồn ấu trùng 50 3.9 Chuẩn bị thức ăn ương ấu trùng 50 3.9.1 Gây nuôi tảo Chlorella tảo Nannochloropis 50 3.9.2 Gây nuôi luân trùng 50 3.9.3 Phương pháp làm giàu luân trùng 50 3.9.4 Ấp artemia bung dù 50 3.9.5 Cho nở ấu trùng artemia 51 3.9.6.Phương pháp giàu hóa artemia 51 3.10 Chế độ cho ăn 51 3.11 Sơ đồ nghiên cứu 51 3.12 Phương pháp bố trí thí nghiệm 52 3.12.1 Khảo sát khả hòa tan trì hàm lượng ozon thể tích nước khác 52 3.12.1.1 Khảo sát khả hịa tan ozon thể tích nước khác 52 3.12.1.2 Khảo sát khả trì ozon thể tích nước khác 52 3.12.2 Xác định ảnh hưởng ozon lên trứng cua biển Scylla paramamosain 53 3.12.3 Ảnh hưởng ozon lên giai đoạn ấu trùng cua biển 54 3.12.4 Đánh giá quy trình sử dụng ozon xây dựng quy trình sử dụng ozon thực tế sản xuất giống cua biển 56 3.13 Phương pháp phân tích xử lý số liệu 57 3.13.1 Phương pháp phân tích yếu tố mơi trường 57 ix 3.13.2 Phân tích mơ học 57 3.13.3 Tỷ lệ sống trứng 58 3.13.4 Xác định mật độ vi khuẩn 59 3.13.5 Hiệu diệt vi khuẩn 59 3.13.6 Xác định mật độ ký sinh trùng nấm 59 3.13.7 Sức sinh sản tương đối 59 3.13.8 Tỷ lệ trứng thụ tinh 59 3.13.9 Tỷ lệ trứng thải 60 3.13.10 Tỷ lệ dị hình 60 3.13.11 Tỷ lệ nở 60 3.13.12 Chỉ số biến thái (Larval Stage Index = LSI) 60 3.13.13 Sinh trưởng 61 3.13.14 Tốc độ tăng trưởng đặc biệt 61 3.13.15 Tỷ lệ sống ấu trùng 61 3.13.16 Chất lượng ấu trùng 61 3.14 Phương pháp xử lý số liệu 62 Chương 4: KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 63 4.1 Khảo sát khả hòa tan trì hàm lượng ozon thể tích nước khác 63 4.1.1 Thể tích lít 63 4.1.1.1 Khả hòa tan 63 4.1.1.2 Khả trì 63 4.1.2 Thể tích 60 lít 64 4.1.2.1 Khả hòa tan 64 4.1.2.2 Khả trì 64 4.1.3 Thể tích 1000 lít 64 4.1.3.1 Khả hòa tan 64 4.1.3.2 Khả trì 65 4.2 Ảnh hưởng ozon lên trứng cua biển Scylla paramamosain 66 4.2.1 Ảnh hưởng nồng độ ozon thời gian xử lý lên phát triển phôi 66 4.2.1.1 Độ dày vỏ trứng 66 4.2.1.2 Tỷ lệ sống trứng 68 4.2.2 Ảnh hưởng chu kỳ xử lý ozon đến chất lượng trứng cua biển S paramamosain 69 4.2.2.1 Biến động yếu tố môi trường 69 4.2.2.2 Các tiêu sinh sản 70 4.2.2.3 Tỷ lệ nhiễm nấm ký sinh trùng trứng 71 4.2.2.4 Mật độ vi khuẩn trứng cua biển 72 x 4.2.2.5 Chất lượng ấu trùng 74 4.3 Ảnh hưởng ozon lên giai đoạn ấu trùng cua biển 75 4.3.1 Nồng độ ozon thích hợp cho giai đoạn ấu trùng cua biển 75 4.3.1.1 Giai đoạn Zoea1 75 4.3.1.2 Giai đoạn Zoea2 75 4.3.1.3 Giai đoạn Zoea3 76 4.3.1.4 Giai đoạn Zoea4 76 4.3.1.5 Giai đoạn Zoea5 77 4.3.1.6 Giai đoạn megalop 78 4.3.1.7 Giai đoạn Cua1 78 4.3.2 Ảnh hưởng tần suất sử dụng ozon đến tỷ lệ sống biến thái ấu trùng cua biển 79 4.3.2.1 Các yếu tố môi trường 79 4.3.2.2 Biến động mật độ vi khuẩn tổng Vibrio sp nước ương ấu trùng 81 4.3.2.3 Tỷ lệ nhiễm Protozoa ấu trùng 83 4.3.2.4 Tỷ lệ dị hình ấu trùng 84 4.3.2.5 Chỉ số biến thái ấu trùng cua biển 85 4.3.2.6 Tăng trưởng ấu trùng cua biển qua giai đoạn 86 4.3.2.7 Tỷ lệ sống ấu trùng cua biển 87 4.4 Đánh giá quy trình sử dụng ozon xây dựng quy trình sử dụng ozon thực tế sản xuất giống cua biển 88 4.4.1 Đánh giá quy trình sử dụng ozon 88 4.4.1.1 Các yếu tố môi trường 88 4.4.1.2 Biến động mật độ vi khuẩn tổng vi khuẩn Vibrio spp 90 4.4.1.3 Tỷ lệ nhiễm protozoa 91 4.4.1.4 Tỷ lệ dị hình ấu trùng 92 4.4.1.5 Chất lượng ấu trùng 94 4.4.1.6 Chỉ số biến thái ấu trùng cua biển 94 4.4.1.7 Tăng trưởng ấu trùng cua biển qua giai đoạn 96 4.4.1.8 Tỷ lệ sống 97 4.4.2 Đánh giá chất lượng cua giống 98 4.4.2.1 Biến động yếu tố môi trường 98 4.4.2.2 Chiều rộng mai cua 99 4.4.2.3 Tăng trưởng khối lượng cua giống 100 4.4.2.4 Thời gian lột xác 101 4.4.2.5 Tỷ lệ sống 102 4.4.3 Xây dựng quy trình sử dụng ozon thực tế sản xuất giống cua biển 103 4.4.3.1 Xử lý nước ương 103 xi 4.4.3.2 Xử lý trứng ương ấu trùng 105 4.4.3.3 Một số lưu ý ứng dụng ozon sản xuất giống cua biển 107 Chương 5: KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT 109 5.1 Kết luận 109 5.2 Đề xuất 109 TÀI LIỆU THAM KHẢO 110 PHỤ LỤC 144 xii DANH MỤC BẢNG Bảng 2.1: Các giai đoạn ấu trùng cua biển (Scylla sp.) Bảng 2.2: Kết cấu trại sản xuất giống cua biển ĐBSCL 26 Bảng 2.3: Các đặc điểm kỹ thuật nuôi vỗ cua mẹ ĐBSCL 26 Bảng 2.4: Đặc điểm kỹ thuật ương ấu trùng Zoea1 đến Cua1 ĐBSCL 28 Bảng 2.5: Một số yếu tố kỹ thuật ương cua giống ĐBSCL 29 Bảng 3.1: Chế độ cho ăn áp dụng cho ấu trùng cua biển 51 Bảng 3.2: Phương pháp phân tích yếu tố mơi trường 57 Bảng 4.1: Ảnh hưởng nồng độ ozon thời gian tiếp xúc đến độ dày vỏ trứng cua biển 67 Bảng 4.2: Ảnh hưởng nồng độ ozon thời gian tiếp xúc đến tỷ lệ sống (%) trứng ấu trùng cua biển 68 Bảng 4.3: Biến động số yếu tố môi trường hệ thống sau 11 ngày thí nghiệm 69 Bảng 4.4: Các tiêu sinh sản cua mẹ 70 Bảng 4.5: Tỷ lệ nhiễm nấm ký sinh trùng trứng cua biển 72 Bảng 4.6: Mật độ vi khuẩn tổng vi khuẩn Vibrio sp trứng cua biển 73 Bảng 4.7: Chất lượng ấu trùng sau nở 74 Bảng 4.8: Tỷ lệ sống biến thái ấu trùng cua biển giai đoạn Zoea nồng độ ozon khác 75 Bảng 4.9: Tỷ lệ sống biến thái ấu trùng cua biển giai đoạn Zoea nồng độ ozon khác 76 Bảng 4.10: Tỷ lệ sống biến thái ấu trùng cua biển giai đoạn Zoea nồng độ ozon khác 76 Bảng 4.11: Tỷ lệ sống biến thái ấu trùng cua biển giai đoạn Zoea nồng độ ozon khác 77 Bảng 4.12: Tỷ lệ sống biến thái ấu trùng cua biển giai đoạn Zoea5 nồng độ ozon khác 77 Bảng 4.13: Tỷ lệ sống biến thái ấu trùng cua biển giai đoạn Megalop nồng độ ozon khác 78 Bảng 4.14: Tỷ lệ sống biến thái ấu trùng cua biển giai đoạn Cua1 nồng độ ozon khác 78 Bảng 4.15: Biến động môi trường nước ương thí nghiệm 80 Bảng 4.16: Biến động mật độ vi khuẩn nước trước sau xử lý ozon 81 Bảng 4.17: Tỷ lệ nhiễm protozoa ấu trùng cua 83 Bảng 4.18: Tỷ lệ dị hình ấu trùng xử lý ozon với tần suất khác 84 Bảng 4.19: Chỉ số biến thái ấu trùng cua biển xử lý ozon với tần suất khác 86 xiii Bảng 4.20: Chiều dài (mm) giai đoạn ấu trùng cua biển xử lý ozon với tần suất khác 87 Bảng 4.21: Tỷ lệ sống ấu trùng cua biển qua giai đoạn xử lý ozon với tần suất khác 87 Bảng 4.22: Biến động môi trường nước bể ương thí nghiệm ương ấu trùng với quy trình ương khác 88 Bảng 4.23: Mật độ vi khuẩn môi trường nước bể ương ương với quy trình khác 90 Bảng 4.24: Tỷ lệ nhiễm bệnh protozoa ấu trùng cua biển ương ấu trùng với quy trình khác 91 Bảng 4.25: Tỷ lệ dị hình ấu trùng cua biển ương với quy trình khác 93 Bảng 4.26: Chất lượng ấu trùng sau gây sốc formol độ mặn 94 Bảng 4.27: Chỉ số biến thái ấu trùng cua biển ương với quy trình khác 95 Bảng 4.28: Chiều dài (mm) giai đoạn ấu trùng cua biển ương với quy trình khác 96 Bảng 4.29: Tỷ lệ sống ấu trùng cua biển qua giai đoạn 97 Bảng 4.30: Biến động yếu tố môi trường bể nuôi cua giống 98 Bảng 4.31: Tăng trưởng chiều rộng mai (CW) cua biển 99 Bảng 4.32: Tăng trưởng khối lượng cua giống 101 Bảng 4.33: Thời gian lột xác cua nuôi qua lần lột xác 102 Bảng 4.34: Quy trình xử lý ozon thực tế sản xuất 107 xiv DANH MỤC HÌNH Hình 2.1: Hình dạng phân loại cua biển Hình 2.2: Vịng đời cua biển Scylla sp Hình 3.1: Sơ đồ bố trí thí nghiệm đề tài 52 Hình 4.1: Biến động hàm lượng ozon nước với thể tích L 63 Hình 4.2: Khả trì ozon thể tích L 63 Hình 4.3: Biến động hàm lượng ozon nước với thể tích 60 L 64 Hình 4.4: Khả trì ozon thể tích 60 L 64 Hình 4.5: Biến động hàm lượng ozon nước với thể tích 100 L 65 Hình 4.6: Khả trì ozon thể tích 1000 L 65 Hình 4.7: Cấu trúc mơ trứng cua sau tiếp xúc với ozon nồng độ khác 67 Hình 4.8: Zoothamnium sp ký sinh ấu trùng cua 84 Hình 4.9: Tốc độ tăng trưởng tương đối chiều rộng mai 100 Hình 4.10: Tốc độ tăng trưởng tương đối trọng lượng 101 Hình 4.11: Tỷ lệ sống cua nuôi 102 Hình 4.12: Quy trình xử lý nước cho trại sản xuất cua biển 103 Hình 4.13: Máy trộn khí theo hình thức ventuary 104 Hình 4.14: Ventuari trộn ozon đường ống 105 Hình 4.15: Sơ đồ xử lý nước đường ống cấp nước 105 Hình 4.16: Lắp máy ozon cho trại sản xuất giống cua biển 106 xv Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 1 3 3 3,6133 3,6333 3,7067 Sig 1,000 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 Z5 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 1 3 3 Sig 4,4800 4,5167 4,5500 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 ME Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 4,2400 4,2567 Sig 4,1967 1,000 ,220 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 D9 Tỷ lệ sống Homogeneous Subsets Z2 Subset for alpha = 0.05 NT N 185 1,000 Duncana 73,8333 3 86,1000 87,2000 Sig 1,000 ,741 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 Z3 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 40,0667 3 66,9000 69,0000 Sig 1,000 ,567 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 Z4 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 34,6667 3 57,1333 61,4333 Sig 1,000 ,115 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 Z5 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 25,8667 186 3 3 Sig 35,0667 43,7000 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 ME Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 26,6333 30,6333 Sig 19,8000 1,000 ,124 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 CUA1 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 7,2333 8,8133 Sig 2,2867 1,000 ,129 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 E Đánh giá chất lượng cua giống E1 Chiều rộng mai cua biển Homogeneous Subsets CW1 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 4,2500 187 1,000 4,3800 4,3933 Sig ,182 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 CW2 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 3 5,1767 5,6100 5,8733 Sig 1,000 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 CW3 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 3 6,6033 6,8233 7,4467 Sig 1,000 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 CW4 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 3 Sig 7,9433 8,0967 9,1667 1,000 1,000 188 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 CW5 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 3 9,7200 10,6433 11,8700 Sig 1,000 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 E2 Tốc độ tăng trưởng tương đối chiều rộng mai Homogeneous Subsets SGRCW1 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 13,8667 15,0000 Sig 17,5667 ,073 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 SGRCW2 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 3 Sig 4,4667 5,9667 8,0267 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 189 1,000 SGRCW3 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 2 3,9067 3 4,1000 Sig 4,1000 4,6633 ,465 ,063 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 SGRCW4 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 2,6233 2,7233 Sig 3,2767 ,336 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 SGRCW5 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 3,0400 3,1267 Sig 2,2733 1,000 ,717 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 E3 Tăng trưởng khối lượng cua giống Homogeneous Subsets 190 W1 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 ,02400 ,02600 ,02600 ,02667 Sig ,059 ,468 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 W2 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 ,05100 ,05767 ,06100 Sig 1,000 ,131 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 W3 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 ,09700 3 Sig ,14133 ,16233 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 W4 NT N Subset for alpha = 0.05 191 1,000 Duncana 3 ,19333 ,30967 ,31800 Sig 1,000 ,326 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 W5 Subset for alpha = 0.05 NT Duncana N 3 ,41400 ,71100 ,77333 Sig 1,000 ,075 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 E4 Tốc độ tăng trưởng tương đối khối lượng Homogeneous Subsets SGRW1 Subset for alpha = 0.05 nt Duncana N 3 20,7667 30,6667 Sig 30,6667 35,0667 ,068 ,360 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 SGRW2 nt N Subset for alpha = 0.05 192 Duncana 3 16,7667 17,9667 Sig 23,0333 ,418 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 SGRW3 Subset for alpha = 0.05 nt Duncana N 3 11,7000 17,9333 19,3667 Sig 1,000 ,083 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 SGRW4 Subset for alpha = 0.05 nt Duncana N 3 10,2667 10,6000 Sig 12,5333 ,586 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 SGRW5 Subset for alpha = 0.05 nt N 193 Duncana 3 8,6000 9,5333 Sig 9,5333 10,4667 ,147 ,147 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 E5 Thời gian lột xác Homogeneous Subsets Lan1 Subset for alpha = 0.05 nt Duncana N 3 2,1367 3 2,2200 Sig 1,9100 1,000 ,136 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 Lan2 Subset for alpha = 0.05 nt Duncana N 3 4,2000 3 4,3200 Sig 3,6933 1,000 ,102 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 Lan3 Subset for alpha = 0.05 nt N 194 Duncana 5,0600 5,1467 3 5,3700 Sig ,200 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 Lan4 Subset for alpha = 0.05 nt Duncana N 6,3000 6,3833 3 6,6567 Sig ,063 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 Lan5 Subset for alpha = 0.05 nt Duncana N 8,5233 8,7167 3 Sig 8,7167 8,9000 ,151 ,169 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 E6 Tỷ lệ sống Post Hoc Tests Homogeneous Subsets TLS NT N Subset for alpha = 0.05 195 Duncana 3 92,7667 92,7667 Sig 87,9667 1,000 1,000 Means for groups in homogeneous subsets are displayed a Uses Harmonic Mean Sample Size = 3,000 F Một số hình ảnh bố trí thí nghiệm F1 Hệ thống bể ni cua mẹ F2: Bình nhựa (carboy) dùng để ni tảo Chlorella tảo Nannochloropsis F3: Bể nuôi luân trùng Brachionus plicatilis 196 Bể ni ln trùng Brachionus plicatilis F4: Thí nghiệm khảo sát ảnh hưởng nồng độ ozon thời gian đến tỷ lệ sống phôi trứng cua biển F5: Thí nghiệm xử lý cua trứng với tần suất xử lý ozon khác F6: Thí nghiệm nồng độ ozon thích hợp cho giai đoạn ấu trùng cua biển 197 F7: Thí nghiệm ương ấu trùng cua biển với tần suất xử lý ozon khác F8:Đánh giá quy trình sử dụng ozon sản xuất giống cua biển F9: Bể nuôi tăng trưởng cua giống 198 199 ... trình nghiên cứu công bố việc sử dụng ozon ương ấu trùng cua biển Do đó, việc ? ?Nghiên cứu sử dụng ozon sản xuất giống cua biển S paramamosain Estampador, 1949” cần thiết, nhằm hạn chế, thay sử dụng. .. trứng cua biển S paramamosain Ảnh hưởng ozon lên giai đoạn ấu trùng cua biển S paramamosain Đánh giá quy trình sử dụng ozon xây dựng quy trình sử dụng ozon thực tế sản xuất giống cua biển S paramamosain. .. Do đó, cần sử dụng biện pháp phịng bệnh an tồn như: UV, Ozon Probiotic 2.5 Hiện trạng sản xuất giống cua biển ĐBSCL 2.5.1 Kết cấu trại sản xuất giống cua biển Trong trại sản xuất giống, bể chứa