Tuyển chọn vi khuẩn lactic kháng với vi khuẩn gây bệnh hoại tử gan tụy cấp tính (vibrio parahaemolyticus) trên tôm thẻ chân trắng (penaeus vannamei) (tt)

TÓM TẮT Tuyển chọn vi khuẩn lactic (LAB) kháng với vi khuẩn gây bệnh hoại tử gan tụy cấp tính (Vibrio parahaemolyticus) tôm thẻ chân trắng (Penaeus vannamei) thực Trường Đại học Cần Thơ từ tháng 12/2014 đến 4/2017 Mục tiêu nghiên cứu tìm chủng LAB có khả phòng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính (AHPND) tôm thẻ chân trắng Nghiên cứu thực với nội dung (1) Phân lập sàng lọc LAB chỉ tiêu: hình thái, sinh lý, sinh hóa; (2) Xác định tính đối kháng LAB với vi khuẩn V parahaemolyticus phương pháp khuếch tán giếng thạch, đồng thời xác định khả kháng V parahaemolyticus bacteriocin khả chịu đựng nồng độ muối chủng LAB kháng với V parahaemolyticus mạnh tiến hành; (3) Thử nghiệm ảnh hưởng LAB bổ sung vào thức ăn lên khả kháng AHPND; (4) Định danh chủng LAB có khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính tôm thẻ Kết phân lập phân lập 94 chủng LAB bao gồm: 30 chủng ở Trà Vinh, 25 chủng ở Sóc Trăng, 39 chủng ở Bến Tre Trong đó, số lượng LAB phân lập ruột tôm 51 chủng, ruột cá rô phi 42 chủng chủng từ bùn Kết sàng lọc chỉ tiêu hình thái cho thấy tất khuẩn lạc phân lập có màu trắng đục, tròn, lồi, có kích cỡ 1-2 mm sau 48 nuôi cấy môi trường MRS agar bổ sung 1,5% NaCl Đối với chỉ tiêu sinh lý cho thấy kính hiển vi LAB có hình cầu hình que, Gram dương, khơng sinh bào tử Kết xác định đặc điểm sinh hóa chỉ tất chủng LAB lựa chọn có khả làm tan CaCO3, âm tính oxidase catalase dương tính với O/F Kết xác định tính đối kháng phương pháp khuếch tán giếng thạch cho thấy hầu hết 94 chủng LAB phân lập có khả kháng với vi khuẩn V parahaemolyticus Trong 94 chủng phân lập có 82 chủng LAB có khả kháng với V parahaemolyticus chỉ ở mức yếu (+) trung bình (++) Mười hai chủng LAB laị có khả kháng V parahaemolyticus ở mức cao (+++) với vòng kháng khuẩn lớn 16 mm, đặc biệt có 05 chủng LAB (T3.1, RP5.4.1, T4.2, RP5.5.1, RP6.5) có khả kháng V parahaemolyticus mạnh với vòng kháng khuẩn từ 17,5-18,5 mm Kết thử nghiệm khả tạo bacteriocin tính kháng khuẩn LAB với V parahaemolyticus cho thấy chủng LAB không có khả ức chế vi khuẩn V parahaemolyticus thí nghiệm Các chủng LAB dùng thí nghiệm phát triển ở độ mặn từ 0-25‰ phát triển tốt ở độ mặn 5‰ với thời gian nuôi 48 phát triển chậm ở độ mặn 25‰ với thời gian nuôi 96 Kết xác định thời gian mật số LAB khác iii lên khả kháng vi khuẩn V parahaemolyticus cho thấy mật số LAB đến 107 CFU/mL với thời gian nuôi từ 24 đến 96 không có khả kháng vi khuẩn V parahaemolyticus Kết thử nghiệm ảnh hưởng việc bổ sung LAB vào thức ăn lên tỷ lệ sống khả kháng AHPND tôm thẻ chân trắng cho thấy ở nghiệm thức có bổ sung LAB vào thức ăn khơng cảm nhiễm V parahaemolyticus tỷ lệ sống tôm cao khác biệt không có ý nghĩa thống kê so với nghiệm thức đối chứng âm đồng thời tôm không có dấu hiệu AHPND Trái lại, nghiệm thức cảm nhiễm V parahaemolyticus, tôm có dấu hiệu bệnh lý đặc trưng AHPND Tỷ lệ bệnh cao nghiệm thức đối chứng dương (70%) thấp ở nghiệm thức bổ sung chủng LAB1 LAB5 (20%) Tỷ lệ chết cao ở nghiệm thức VP+LAB3 (70,02%), nghiệm thức đối chứng dương (54,43%) thấp ở nghiệm thức VP+LAB1,VP+LAB2 VP+LAB5 (20,33-26,66%) Tóm lại, tỷ lệ sống khả kháng AHPND cải thiện đáng kể cho tôm ăn thức ăn có bổ sung LAB1, LAB2, hoặc LAB5 Kết thử nghiệm khả kháng AHPND LAB có bổ sung thành phần acid glutamic, đường trehalose, KH2PO4, K2HPO4 với tỷ lệ C, N, P 15, 1, 0,1 cho thấy hầu hết nghiệm thức bổ sung thành phần trên, tỷ lệ sống tôm thấp so với nghiệm thức không bổ sung trường hợp có không có cảm nhiễm V parahaemolyticus Đối với nghiệm thức không cảm nhiễm V parahaemolyticus tơm khơng có biểu bệnh lý đặc trưng AHPND, tỷ lệ sống tôm từ 82- 88,2% Kết phân tích mô bệnh học không thấy mẫu gan tụy có dấu bất thường Tuy nhiên, nghiệm thức có cảm nhiễm V parahaemolyticus bở sung C, N, P tỷ lệ sống tôm thấp so với nghiệm thức lại Tỷ lệ sống thấp ở nghiệm thức đối chứng dương có bổ sung không bổ sung C, N, P (47 52%) tỉ lệ sống cao nghiệm thức LAB1 (76 78%) Kết mô bệnh học cho thấy ở nghiệm thức bổ sung :C, N, P LAB đồng thời cảm nhiễm V parahaemolyticus gan tụy tôm ít bị ảnh hưởng cảm nhiễm AHPND Việc bổ sung LAB vào thức ăn đặc biệt chủng LAB1 có khả làm hạn chế AHPND tôm thẻ Kết định danh chủng LAB1 phương pháp giải trình tự đoạn gen 16S-rRNA xác định chủng vi khuẩn Lactobacillus plantarum Từ khóa: AHPND, LAB, Lactobacillus plantarum, Tôm thẻ chân trắng (Penaeus vannamei), Vibrio parahaemolyticus iv ABSTRACT Isolation and selection of lactic acid bacteria (LAB) that can antagonize V parahaemolyticus causing acute hepatopancreatic necrosis disease (AHPND) in white-leg shrimp (Penaeus vannamei) were conducted from December 2014 to April 2017 at Can Tho University The objectives of this research were selecting LAB strains that can antagonize V parahaemolyticus and using these strains to prevent from AHPND in culture shrimp The study was carried out with following four major contents: (1) Isolating and screening LAB strains by using morphological, physiological and bio-chemical characteristics (2) Determining their antagonism against V parahaemolyticus of LAB strains by using agar well diffusion method Experiment can also determine their resistance to V parahaemolyticus by bacteriocin and the ability of salt tolerance of LAB strains that resist to the virulence V parahaemolyticus also conducted (3) The effects of dietary LAB additive on resistance to AHPND This experiment was conducted to determine the effects of dietary LAB additive on survival and the resistance to AHPND (4) Identification of LAB strain that is resistant to AHPND in white-leg shrimp The result of isolation 94 LAB strains including: 30 strains from TraVinh, 25 strains from Soc Trang and 39 strains from Ben Tre The number of LAB in gut of white-leg shrimp, gut of nile tilapia and shrimp pond sediment were 51, 42 and strains respectively Screening results for morphological characters showed that all the isolated colonies were milky, round, convex, 1-2 mm in size and capable of dissolving CaCO3 after 48 hours of culture on MRS agar supplemented with 1,5% NaCl Physiological properties also indicate that the LAB has a spherical (56 stains) and rod (38 strains) shaped, Gram-positive, non-spore-forming Biochemical characteristics have shown that all strains of LAB indicate negative reaction for oxidase and catalase but positive for O/F The results of antagonistic determination by agar-well diffusion method showed that almost of 94 isolated LAB strains were resistant to V parahemolyticus Of these, 82 strains of LAB were weak (+) and medium (++) resistant to V parahaemolyticus Only 12 strains of LAB were strongly resistant (+++) to V parahaemolyticus with zone of inhibition greater than 16mm Five strains of LAB (T3.1, RP5.4.1, T4.2, RP5.5.1, RP6.5) showed the strongest resistance to V parahaemolyticus with antibacterial rings from 17,5 to 18,5mm The results of resistance trials to V parahaemolyticus of the strains of LAB by bacteriocin indicated that they were not able to inhibit V parahaemolyticus bacteria All LAB strains used in the experiment were able to grow at a salinity of 0-25ppt, but grew well in 5ppt of salinity in 48 hours of culture They grew much slower in 25ppt of salinity in 96 hours of culture The results of the effects of different time culture and density of LAB on V v parahaemolyticus resistance ability showed that at the density of LAB from 107 CFU/mL or less and culture time from 24 to 96 hours, LAB were not resistant to V parahaemolyticus The results of the effect of dietary LAB additive on survival rate and resistance to AHPND in Penaeus vannamei showed that the survival rate of shrimp was very high from 82,23 to 92,23% in the treatments of dietary LAB additive without challenged with V parahaemolyticus, and there were not significantly different to the negative control treatment (87,77%) The highest survival rate was obtained in the treatment of dietary LAB5 additive (92,23%) In addition, shrimps did not show any symptoms of AHPND However, in the challenged treatments with V parahaemolyticus, shrimps showed the typical clinical signs of AHPND The AHPND rate was highest in positive control treatment (70,02%) and the lowest in VP+LAB1 VP+LAB5 treatments (20%) The mortarity rate was highest in VP+LAB3 treatment (70,02%), followed by the positive control treatment (54,43%) and very low in VP+LAB1,VP+LAB2 and VP+LAB5 treatments (20,33-26,66%) In summary, the survival rate and the resistance to AHPND were significantly improved in white-leg shrimp feeding with diets containing LAB1, LAB2, or LAB5 strains The results of the effects of dietary LAB additive and acid glutamic, Trehlose, KH2PO4, K2HPO4 supplementation into water with C, N, P ratio 15, 1, 0,1 on survival rate and resistance to AHPND in Litopenaeus vannamei showed that almost of treatments with C, N, P supplementation indicated the survival rate of shrimp were lower than those without C, N, P supplementation in case with or without V parahaemolyticus challenged In non-challenged V parahaemolyticus treatments, there were no signs of AHPND on shrimps The survival rate of shrimp was 82-88,2% for C, N, P non-supplementaiton treatment and 82% for C, N, P supplementation treatment Results from histological analyses did not show any abnormalities of hepatopancreas However, treatments with C, N, P supplementation and V parahaemolyticus challenged showed the survival rate of shrimp was lower than did of the other treatments The lowest survival rate was found in positive treatments with or without C, N, P supplementation (47% and 52%, respectively) and the highest survival rate was LAB1 treatments (76% and 78%) Results from histological analyses showed that in the treatments with C, N, P supplement, dietary LAB additive with V parahaemolyticus challenged, shrimp’s hepatopancreas were less affected by AHPND Dietary LAB additive (especially LAB1 strain) was able to reduce the effect of AHPND on white-leg shrimp The result of identification with RNA sequencing (16s-rRNA) have shown that LAB1 strain was Lactobacillus plantarum Keywords: AHPND, LAB, Lactobacillus plantarum, Penaeus vannamei, Vibrio parahaemolyticus vi MỤC LỤC LỜI CAM ĐOAN i LỜI CẢM TẠ ii TÓM TẮT iii ABSTRACT vi DANH SÁCH BẢNG xiii DANH SÁCH HÌNH xiv DANH MỤC TỪ VIẾT TẮT xvi Chương 1: GIỚI THIỆU 1.1 Đặt vấn đề 1.2 Mục tiêu tổng quát 1.3 Mục tiêu cụ thể 1.4 Nội dung nghiên cứu 1.5 Ý nghĩa nghiên cứu 1.6 Điểm luận án Chương 2: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 2.1 Sơ lược tôm thẻ chân trắng 2.1.1 Hiện trạng nghề nuôi tôm thẻ chân trắng giới 2.1.2 Hiện trạng nghề nuôi tôm thẻ chân trắng ở Việt Nam 2.2 Sơ lược tình hình dịch bệnh hoại tử gan tụy cấp tính nước 2.2.1 Tình hình bệnh hoại tử gan tụy cấp tính giới 2.2.2 Tình hình nghiên cứu bệnh hoại tử gan tụy cấp ở Việt Nam 10 2.3 Tổng quan vi khuẩn gây bệnh hoại tử gan tụy cấp tính nghiên cứu độc lực V parahaemolyticus 11 2.3.1 Các thông tin liên quan đến đặc điểm chủng vi khuẩn V parahaemolyticus gây bệnh tôm 11 2.3.2 Gen độc lực chủng vi khuẩn V parahaemolyticus gây bệnh tôm 13 2.3.3 Đặc điểm dịch tễ học 15 2.3.4 Các nghiên cứu độc lực V parahaemolyticus 16 2.3.5 Các yếu tố môi trường tác động đến vi khuẩn V parahaemolyticus 17 2.3.6 Một số giải pháp áp dụng phòng bệnh hoại tử gan tụy 18 vii 2.4 Đặc điểm sinh học vi khuẩn lactic 20 2.4.1 Sơ lược vi khuẩn lactic 20 2.4.2 Đặc tính chung vi khuẩn lactic 22 2.4.3 Ảnh hưởng yếu tố môi trường lên phát triển LAB 22 2.4.4 Khả kháng với kháng sinh 24 2.4.5 Cơ chế kháng khuẩn vi khuẩn lactic 24 2.4.6 Các nghiên cứu khả kháng khuẩn vi khuẩn lactic nuôi trồng thủy sản 27 Chương 3: PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 38 3.1 Thời gian địa điểm nghiên cứu 38 3.2 Vật liệu nghiên cứu 38 3.2.1 Dụng cụ trang thiết bị phục vụ nghiên cứu 38 3.2.2 Hóa chất, môi trường nuôi cấy vi khuẩn 38 3.3 Phương pháp nghiên cứu 39 3.3.1 Phân lập LAB từ nhiều nguồn khác 39 3.3.2 Xác định tính đối kháng chủng vi khuẩn phân lập với vi khuẩn V parahaemolyticus điều kiện in vitro 41 3.3.3 Thử nghiệm khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp bổ sung chủng LAB vào thức ăn 43 3.3.4 Định danh chủng LAB có khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính 49 3.4 Phương pháp xử lý số liệu 50 Chương 4: KẾT QUẢ THẢO LUẬN 51 4.1 Phân lập chủng LAB xác định chỉ tiêu hình thái sinh lý sinh hóa 51 4.1.1 Phân lập LAB 51 4.1.2 Xác định chỉ tiêu hình thái, sinh lý sinh hóa LAB 52 4.2 Kết xác định tính đối kháng vi khuẩn lactic với vi khuẩn V parahaemolyticus điều kiện in vitro 53 4.2.1 Kết xác định khả tạo bacteriocin tính kháng khuẩn LAB với V parahaemolyticus 57 4.2.2 Kết thí nghiệm khảo sát ảnh hưởng mật số nuôi vi khuẩn lactic thời gian ủ khác lên khả kháng V parahaemolyticus 59 viii 4.2.3 Thử nghiệm nồng độ muối khác ảnh hưởng lên mật số vi khuẩn lactic 59 4.3 Thử nghiệm khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp chủng LAB phương pháp cho ăn 61 4.3.1 Biến động yếu tố môi trường lô thí nghiệm 61 4.3.2 Kết kiểm tra chất lượng tôm thí nghiệm 62 4.3.3 Ảnh hưởng việc bổ sung LAB vào thức ăn lên tỷ lệ sống khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính tôm thẻ chân trắng (Penaeus vannamei) 64 4.4 Thử nghiệm khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính chủng vi khuẩn lactic có bổ sung thành phần C,N,P (acid glutamic, KH2PO4, K2HPO4, đường trehalose) vào môi trường nước thí nghiệm 74 4.4.1 Mật số vi khuẩn Vibrio nước 74 4.4.2 Mật số vi khuẩn Vibrio tổng ruột tôm thí nghiệm 76 4.4.3 Mật số Vibrio có khuẩn lạc màu xanh ruột tôm thí nghiệm 78 4.4.4 Mật số vi khuẩn lactic ruột tôm thí nghiệm 80 4.4.5 Dấu hiệu bệnh lý tỷ lệ sống 82 4.4.6 Kết phân tích mô bệnh học 86 4.5 Kết định danh LAB có khả kháng mạnh với vi khuẩn V parahaemolyticus 87 4.5.1 Kết định danh LAB1 phương pháp giải trình tự gen 16s 87 4.5.2 Kết định danh LAB2 LAB5 phương pháp giải trình tự gen 16s 89 4.5.3 Kết định danh LAB3 phương pháp giải trình tự gen 16s 90 4.5.4 Kết định danh LAB4 phương pháp giải trình tự gen 16s 91 Chương KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT 93 5.1 Kết luận 93 5.2 Đề xuất 93 DANH MỤC BÀI BÁO ĐÃ CÔNG BỐ 94 TÀI LIỆU THAM KHẢO 95 ix DANH SÁCH BẢNG Bảng 2.1: Tỷ lệ thành phần nguyên tố protein vi khuẩn 12 Bảng 2.2: Các sản phẩm biến dưỡng kiểu hoạt động vi khuẩn lactic 25 Bảng 2.3: Sự phân bố số lượng mẫu thu thí nghiệm 39 Bảng 2.4: Các chỉ tiêu hình thái sinh lý, sinh hóa 41 Bảng 3.3: Thí nghiệm bổ sung LAB vào thức ăn lên tỷ lệ sống khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính tôm thẻ chân trắng 46 Bảng 3.4: Các nghiệm thức thử nghiệm xác định hiệu phòng AHPND tôm thẻ chân trắng LAB điều kiện có bổ sung glutamic acid, đường trehalose, KH2PO4, K2HPO4 49 Bảng 4.1: Các chỉ tiêu hình thái, sinh lý sinh hóa vi khuẩn lactic 52 Bảng 4.3: Biến động yếu tố thủy lý hóa lô thí nghiệm 61 Bảng 4.4: Biến động mật số Vibrio nước thí nghiệm 65 Bảng 4.5: Mật số vi khuẩn Vibrio tổng ruột tôm thẻ 67 Bảng 4.6: Mật số LAB ruột tôm thẻ thí nghiệm 70 Bảng 4.7: Biến động mật số Vibrio nước thí nghiệm 75 Bảng 4.8: Biến động mật độ vi khuẩn Vibrio tổng ruột tôm thí nghiệm 77 Bảng 4.9: Biến động mật độ vi khuẩn Vibrio có khuẩn lạc màu xanh ruột tôm thí nghiệm 78 Bảng 4.10: Biến động mật số LAB ruột tôm thí nghiệm 80 x DANH SÁCH HÌNH Hình 2.1: Sản lượng tôm nuôi giới Hình 2.2: Sản lượng tơm thẻ nuôi ở chấu Á giai đoạn 2011-2018 Hình 2.3: Diễn biến diện tích ni tơm thẻ chân trắng giai đoạn 20082014 Hình 2.4: Biểu bệnh hoại tử gan tụy cấp tính tơm 14 Hình 2.5: Mô bệnh học tôm hoại tử gan tụy AHPND 15 Hình 2.6: Cây phát sinh lồi vi khuẩn lactic 21 Hình 4.1: Các chủng LAB phân lập từ ruột tơm 51 Hình 4.2: Các chủng LAB phân lập từ ruột cá rô phi 51 Hình 4.3: Các chủng LAB phân lập từ bùn 52 Hình 4.4: Khả kháng khuẩn LAB với V parahaemolyticus Trà Vinh 54 Hình 4.5: Khả kháng V parahaemolyticus chủng vi khuẩn lactic phân lập Trà Vinh 55 Hình 4.6: Khả kháng khuẩn LAB với V parahaemolyticus Sóc Trăng 55 Hình 4.7: Khả kháng khuẩn vi khuẩn lactic với vi khuẩn V parahaemolyticus ở tỉnh Sóc Trăng 56 Hình 4.8: Khả kháng khuẩn LAB với V parahaemolyticus Bến Tre 56 Hình 4.9: Khả kháng khuẩn vi khuẩn lactic với vi khuẩn V parahaemolyticus ở tỉnh Bến Tre 57 Hình 4.10: Kết xác định khả tạo bacteriocin tính kháng khuẩn LAB với V parahaemolyticus 59 Hình 4.11: Biến động mật số LAB ở nồng độ muối khác với thời gian nuôi 48 60 Hình 4.12: Biến động mật số LAB ở nồng độ muối khác với thời gian nuôi 72 96 60 xi Hình 4.13: Kết kiểm tra WSSV tôm thẻ thí nghiệm 63 Hình 4.14: Kết kiểm tra AHPND tơm thẻ thí nghiệm 64 Hình 4.15: Tỷ lệ chết tôm qua từng mốc thời gian thí nghiệm 71 Hình 4.16: Tỷ lệ chết tơm thẻ cho ăn thức ăn có bổ sung LAB 71 Hình 4.17: Mơ bệnh học tơm thí nghiệm 74 Hình 4.18: Hình tơm gan tụy tôm 83 Hình 4.19: Tỷ lệ chết tơm qua từng giai đoạn thí nghiệm 84 Hình 4.20: Tỷ lệ sống tôm thẻ chân trắng sau 14 ngày cảm nhiễm 85 Hình 4.21: Kết mơ bệnh học gan tụy tôm 87 Hình 4.22: Kết tương đồng chủng LAB1 với Lactobacillus plantarum 88 Hình 4.23: Kết tương đồng chủng LAB2 với Pediocococcus pentosaceus 89 Hình 4.24: Kết tương đồng chủng LAB5 với Pediocococcus pentosaceus 90 Hình 4.25: Kết tương đồng chủng LAB3 với Lactococus garvieae 91 Hình 4.26: Kết tương đồng chủng LAB4 với Lactobacillus fermentum 92 xii Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology In: P H A Sneath, N S Mair, M E Sharpe, and J G Holt (Eds) Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology, , Vol 2, Baltimore: Williams and Wilkins, pp 1209 - 1234 Kaneko T and R.R Cowell, 1973 Ecology of Vibrio parahaemolyticus in Chesapeake Bay J Bacteriol 113: 24-32 Kaneko T and R.R Cowell, 1975 Adsorption of Vibrio parahaemolyticus onto chintin and copepods Appl Microbiol 20: 693-699 Karthik K., N S Muneeswaran, H V Manjunathachar, M Gopi, A Elamurugan and S Kalaiyarasu 2014 Bacteriophages: Effective Alternative to Antibiotics Adv Anim Vet Sci (3S): – Karthik R, A C Pushpam, Y Chelvan, M C Vanitha, 2016 Effcacy of probiotic and nitrifer bacterial consortium for the enhancement of Litopenaeus Vannamei aquaculture Int J Vet Sci Res 2(1): 001-006 Karthikeyan V., S.W Santosh, 2009 Isolation and partila characterization of bacteriocin produced from Lactobacillus plantarum African Journal of Microbiology Research, Vol 3: pp 233 – 239 Khuất Hữu Thanh, Nguyễn Đăng Phúc Hải, Bùi Văn Đạt, Võ Văn Nha, 2009 Phân lập tuyển chọn số chủng vi khuẩn có đặc tính probiotics tạo chế phẩm ni tơm sú Tạp chí Khoa học Cơng nghệ Trường Đại học Kỹ Thuật, số 74: 113-116 kimura T., Yamano K., Nakano H., Momoyama K., Hiraoka M & Inouye K 1996 Detection of penaeid rod-shaped DNA virus (PRDV) by PCR Fish Pathology 31: 93–98 Klaenhammer T.R., 1987 Plasmid-directed mechanisms for bacteriophage defense in lactic streptococci FEMS Microbiol Rev 46:313-325 Klayraung S., H Viernstein, J Sirithunyalug and S Okonogi, 2008 Probiotic properties of Lactobacilli isolated from Thai traditional food Sci Pharm, Vol 76: pp 485 – 503 Klayraung, S., H Viernstein, J Sirithunyalug and S Okonogi 2008 Probiotic properties of Lactobacilli isolated from Thai traditional food Sci Pharm, Vol 76: pp 485 – 503 Klein G., 2003 Taxonomy, ecology and antibiotic resistance of enterococci from food and the gastro – intestinal tract International Journal of Food Microbiology, vol 88, pp 123-131 Kos B., Suskovic J.,Vukovic S., Simpraga M., Frece J and Matosic S., 2003 104 “Adhesion and aggregation ability of probiotic strains Lactobacillus acidophilus M92” Journal of Applied Microbiology, vol 94, pp 981-987 Kuipers O.P., G Buist, J Kok, 2000 Current strategies for improving food bacteria Res Microbiol 151, 815-822 Kwai, L.T, Ung, E H, Choo, S W, Yew, S M, Wee, W Y, and Yap, K P., 2014 An AP1, &3 PCR Positive non - Vibrio parahaemolitycus bacteria with AHPND histopathology Paper presented at the 9th Symposium on Diseases in Asian Non-Vibrio Parahaemolyticus gây bệnh hoại tử gan tụy cấp (AHPND) tôm nuôi 698 Aquaculture (DAA9), Ho Chi Minh city, Vietnam, 24-28 November, 2014 Book of abstract, p 77 Lavilla–Pitogo C.R., L D De la Pena, 1998 Bacterial disease in shrimp (Penaeus monodon) culture in Philippines Fish Pathol 33 (4), 405-411 Lê Hồng Phước, Lê Hữu Tài Nguyễn Văn Hảo, 2012 Diễn biến hội chứng hoại tử gan tụy ao nuôi tôm thâm canh huyện Trần Đề, tỉnh Sóc Trăng Trung tâm Quốc gia Quan trắc Cảnh báo Mơi trường Phòng ngừa Dịch bệnh Thủy sản Khu Vực Nam Bộ Lê Hữu Tài, Nguyễn Văn Hảo Lê Hồng Phước, 2012 Một số kết chẩn đốn mơ bệnh học phân tích siêu cấu trúc hội chứng hoại tử gan tụy tôm nuôi Đồng Bằng Sông Cửu Long http://fof.hcmuaf.edu.vn/data/file/33_%20LH%20Tai%20et%20al-RIA2Ket%20qua%20chan%20doan%20mo%20benh%20hoc _hoi%20chung %20hoai%20tu%20gan%20tuy _.pdf (truy cập ngày 19/9/2017) Lê Ngọc Thùy Trang, Phạm Minh Nhựt, 2014 Phân lập khảo sát yếu tố ảnh hưởng đến khả sản sinh hợp chất kháng khuẩn Lactobacillus plantarum Tạp chí sinh học 36 (97-106) Lê Tấn Hưng, Võ Thị Hạnh, Lê Thị Bích Phương, Trương Thị Hồng Vân, Võ Minh Sơn 2003 Nghiên cứu sản xuất chế phẩm probiotic BioII kết thử nghiệm ao nuôi tôm Báo cáo khoa học hội nghị cơng nghệ sinh học tồn quốc năm 2003 Nhà xuất Khoa học Kỹ thuật, 75-79 Lê Xuân Phương, 2008 Vi sinh vật học mơi trường Chương trình Thư viện Học liệu Mở Việt Nam 122 trang http://voer.edu.vn/c/2494eee1 (truy cập ngày 10/10/2017) Leaño, E M., and Mohan, C.V (2012) Early mortality syndrome threatens Asia’s shrimp farms GlobalAquaculture Advocate, pp 38 - 39 Lee J., 2009 Preliminary Study on Developing In vitro Assay of Pathogenic 105 Vibrio parahaemolyticus in Pacific Oyster (Crassostrea gigas) An Undergraduate Thesis Submitted to Oregon State University.153 pages Lee K.K., Y.L Chen and P.C Liu, 1999 Hemostasis of tiger prawn Penaeus monodon affected by Vibrio harveyi, extracellular products, and a toxiccysteine protease Blood Cells Mol Dis 25: 180-192 Lewus C B., A Kaiser and T J Montville, 1991 Inhibition of Food – borne bacterial pathogens by bacteriocin from lactic acid bacteria isolated from meat Applied and Environmental Microbiology, Vol 57: 1683 – 1688 Lightner D V., 1996 Viral diseases In A Handbook of Pathology and Diagnostic Procedures for Diseases of Penaeid Shrimp ed McVey, A: 172 Baton Rouge, LA: World Aquaculture Society Lightner D.V., C R.Redman, B L.Pantoja, L M.Noble, L Nunan, Loc Tran, 2013 Documentation of an Emerging Disease (Early Mortality Syndrome) in SE Asia & Mexico 1-52 Lightner D.V., R M Redman, C R Pantoja, B L Noble, Loc Tran, 2012 Early Mortality Syndrome Affects Shrimp in Asia Global Aquaculture Advocate, January/February 2012:40 Lindgren S., W Dobrogosz, 1990 Antogonistic activities of lactic acid bacteria in food and feed fermentation FEMS Microbiol Letters Volume 87, Issues 1–2, September 1990, Pages 149-163 Liu S Q., 2003 Review article: Practical implications of lactate and pyruvate metabolism by lactic acid bacteria in food and beverage fermentations Int J Food Microbiol 83, 115-131 Loc Tran, L Nunan, R M Redman, L L Mohney, C R Pantoja, K Fitzsimmons, D V Lightner, 2013 Determination of the infectious nature of the agent of acute hepatopancreatic necrosis syndrome affecting penaeid shrimp Diseases of aquatic organisms 105: 45–55 Loc Tran, Phuc Hoang, Thinh Nguyen and Donald V Lightner, 2013 Thí nghiệm xác định đường lây tác nhân gây bệnh hội chứng hoại tử gan tụy cấp (AHPNS) hày hội chứng tôm chết sớm (EMS), http://fof.hcmuaf.edu.vn/data/file/HNKHTTSTQ%202013/59_%20THLo c%20et%20al-HPhuc-EMS%20tom.pdf (ngày truy cập 19/9/2017) Loc Tran., N Linda., R.M Redman., L.L Mohney., R.P Carlos., F Kevin and D.V Lightner, 2012 Determination of the infectious nature of the agent of acute hepatopancreatic necrosis syndrome affecting penaeid shrimp 106 Diseases of aquatic organisms Vol 105: 45-55, 2013 Lombardo F., G Gioacchini, O Carnevali, 2011 Probiotic-based nutritional effects on killifish reproduction Fisheries and Aquaculture Journal, Vol 2011: FAJ-33 1-11 Lonvaud-Funel, A 2001 Biogenic amines in wines: role of lactic acid bacteria FEMS Microbiology Letters 199, 9-13 Ma C W., Y S Cho and K H Oh 2009 Removal of pathogenic bacteria and nitrogens by Lactobacillus spp JK-8 and JK-11 Aquaculture 287: 266– 270 Mahawar B P 2012 Multilocus sequence typing for differentiation of closely related species of indigenous probiotic Lactobacilli Master science in Dairy Microbiology, Nation Dairy Research Institute, pp 30 - 31 Maldonado-Lobon, J A., M Gil-Campos, J Maldonado, K Flores-Rojas, M V RodriguezBenitez, A D Valero, F Lara-Villoslada, M Olivares and J Fonolla (2014) Safety of consumption during the first months of life of an infant formula supplemented with Lactobacillus fermentum CECT5716 Evaluation at years of age Workshop on Probiotics, Prebiotics and Health, Scientific Evidence Valencia, Spanish Association of Probiotics and Prebiotics Manefield M., L Harris, S A Rice, R De Nys and S Kjelleberg, 2000 Inhibition of luminescence and virulence in the black tiger prawn (Penaeus monodon) pathogen Vibrio harveyi by intercellular signal antagonists Applied and Environmental Microbiology 66: 2079-2084 Martinis H., K J Swanepoel, W Gunter 2001 The geometry of minkowski spaces - a survey Part I Volume 19, Issue 2, pp 97-142 Maurilio Lara-Flores, Miguel AOlvera-Novoa, Beatrıź EGuzmán-Méndez, WilberthLópez-Madrid 2003 Use of the bacteria Streptococcus faecium and Lactobacillus acodophilus, and the yeast Saccharomyces cerevisiae as growth promoters in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) Aquaculture 216 (193-201) McCarter L., 1999 The multiple identities of Vibrio parahaemolyticus J Mol Mirobial Biotechnol (1999) 51-57 McCarthy S.A., A DePaola., D.W Cook., C.A Kaysner and W.E Hill, 1999 Evaluation of alkaline phosphatase and digoxigeninlabelled probes for detection of the thermolabile hemolysin (tlh) gene of Vibrio 107 parahaemolyticus Lett Appl Microbiol 28: 66-70 Metchnikoff E, 1908 Prolongation of life: Optimistic studies William Heinemann, London 384 pages Michetti, P., G Dorta, P.H Wiesel, D Brassart, E Verdu, M Herranz, C Felley, N Porta, M Rouvet, A.L Blum and I Corthesy-Theulaz, 1999 Effect of whey-based culture supernatant of Lactobacillus acidophilus (johnsanii) La1 on Helicobacter pylori infection in humans Digestion 60: 203-209 Mishra and Prasad (2005) Application of in vitro methods for selection of Lactobacillus casei strains as potential probiotics Journal of food microbiol 103(1): 109-115 Mishra C., J Lambert, 1996 Production of anti-microbial substances by probiotics Asia Pacific Journal of Clinical Nutrition, 5: 20-24 Moriarty D., 1997 The role of microorganisms in aquaculture ponds Aquaculture 151: 333-349 Mroz, Z., W Krasucki, E Grela, J Matras and U Eidelsburger, 1997 The effects of propionic and formic acids as a blend (Lupro-Cid®) in graded dosages on the health, performance and nutrient digestibility (ileal/overall) in sows In: Proc Soc Nutr Physiol 9, 169-181 NACA, 2012 Final report: Asia Pacific Emergency Regional Consultation on the Emerging Shrimp Disease: Early Mortality Syndrome (EMS)/Acute Hepatopancreatic Necrosis Syndrome (AHPNS) Network of Aquaculture Centres in Asia-Pacific Bangkok, Thailand 9-10 August 2012 131 pages Nash G., C Nithimathachoke., C Tungmandi., A Arkarjamorn., P Prathanpipat and P Ruamthaveesub, 1992 Vibriosis and its control in pond-reared Penaeus monodon in Thailand In: M Shariff, R.P Subasinghe and J.R Authur (eds.) Diseases in Asian Aquaculture Fish Health Section, Asian Fisheries Society, Manila, Philippines 143-155 Natesan Sivakumar, Muthuraman Sundararaman and Gopal Selvakumar, 2012 Probiotic effect of Lactobacillus acidophilus against Vibriosis in juvenile shrimp (Penaeus monodon) African journal of Biotechnology Vol 1191 PP 15811-15818 Newman S.G., 2013 AHPND Inferences Based on Behavior of Vibrio Bacteria The Global Magazine for Farmed Seafood November/December 2013, Page 34 108 Ngô Thị Phương Dung, Huỳnh Thị Yến Ly and Huỳnh Xuân Phong, 2011 Phân lập tuyển chọn vi khuẩn lactic có khả sinh chất kháng khuẩn Tạp chí khoa học Trường Đại học Cần Thơ 19a: 176-184 Nguyễn Khoa Diệu Hà, 2009 Nghiên cứu phân lập nhóm vi khuẩn lactic từ hệ tiêu hóa cá tra thịt giống, nước ao ni cá Tra có đặc tính phân hủy phân tử tín hiệu đối kháng Edwardsiella ictaluri Luận văn cao học chuyên ngành Nuôi trồng Thủy sản Trường Đại học Cần Thơ Nguyễn Lân Dũng, Nguyễn Đình Quyến Phạm Văn Ty, 2000 Vi sinh vật học, Nhà Xuất Bản Giáo Dục, 2000 Nguyễn Trọng Nghĩa, Đặng Thị Hoàng Oanh, Trương Quốc Phú, Phạm Anh Tuấn, 2015 Phân lập xác định khả gây hoại tử gan tụy vi khuẩn Vibrio parahaemolyticus phân lập từ tơm ni Bạc Liêu Tạp chí khoa học Trường Đại học Cần Thơ 39: 99-107 Nguyễn Trọng Nho, Tạ Khắc Thường, Lục Minh Diệp, Võ Thị Nề, Nguyễn Thị Liên Nguyễn Thị Minh Hậu, 2002 Hỏi đáp nuôi tôm sú Nhà xuất Nông nghiệp, TP Hồ Chí Minh, 34 trang Nguyễn Tuấn Huy, 2014 Phân lập tuyển chọn chủng Lactobacillus có tiềm probiotic từ tôm sú Luận văn cao học chuyên ngành Nuôi trồng Thủy sản Đại học Cần Thơ Nguyễn Văn Kiệm, Nguyễn Văn Kình Nguyễn Văn Mùi, 2005 Giáo trình Hóa Sinh Động Vật Trường Đại Học Nơng Nghiệp Hà Nội 345trang Nguyễn Văn Minh, Lê Anh Tuấn, Đào Văn Toàn, Võ Ngọc Yến Nhi, Dương Nhật Linh, Nguyễn Thị Ngọc Tĩnh, 2014 Khả kiểm soát sinh học Vibrio parahaemolyticus NT7 phân lập từ tôm thẻ bệnh hoại tử gan tụy (AHPND) chủng Bacillus polyfermenticus F27 phân lập từ giun quế Kỷ yếu Hội thảo Ứng dụng Công nghệ sinh học Nông nghiệp Phát triển nơng thơn TP Hồ Chí Minh, 30-31/1/2015 Nguyễn Văn Thành Nguyễn Ngọc Trai, 2012 Phân lập tuyển chọn vi khuẩn Lactobacillus sp có khả ức chế vi khuẩn gây bệnh gan thận mủ đốm đỏ cá tra Tạp chí khoa học Đại học Cần Thơ số 23a 224234 Nikoskelainen S.,A C Ouwehand, G Bylund, S Salminen, E M Lilius, 2003 Immune enhancement in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) by protential probiotic bacteria (Lactobacillus rhamnosus) Fish and Shellfish Immunology: 15, 443-452 109 Niku-Paavola M.L., A Laitila, T Mattila-Sandholm, A Haikara, 1999 New types of antimicrobial compounds produced by Lactobacillus plantarum Journal of Applied Microbiology, 86: 29–35 Nirunya, B., C Suphitchaya and H Tipparat, 2008 Screening of lactic acid bacteria from gastrointestinal tracts of marine fish for their potential use as probiotics Journal of Science Technology 30 141-148 Nogami K and M Maeda, 1992 Bacteria as Biocontrol agents for rearing larvae of the crab Portunus trituberculatus Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 1992, 49(11): 2373-2376 Nogami K., K Hamasaki, M Maeda, K Hirayama, 1997 Biocontrol method in aquaculture for rearing the swimming crab larvae Portunus trituberculatus Hydrobiologia, Volume 358, Issue 1–3, pp 291–295 Noordiana N., A B Fatimah and A S Mun, 2013 Antibacterial agents produced by lactic acid bacteria isolated from threadfin salmon and grass shrimp International Food Research Journal 20(1): 117-124 Oktari A., Y Supriatin, M Kamal and H Syafrullah, 2017 The Bacterial Endospore Stain on Schaeffer Fulton using Variation of Methylene Blue Solution Journal of Physics 812: 1-6 Osmanağaoğlu, Ö., Beyatli, Y and Gündüz, U (2001) Isolation and characterization of pediocin producing Pediococcus pentosaceus Pep1 from vacuum‐packed sausages Tr J Biol 25, 133–143 Panakorn S., 2012 Opinion article: more on early mortality syndrome in shrimp Aqua Culture Asia Pacific, Volume No 1: 8-10 Parvathy Seema Nair and Puthuvallil Kumaran Surendran, 2005 Biochemical characterization of lactic acid bacteria isolated from fish and prawn Jounal of culture collections Volume 4, 2004-2005 pp 48-52 Phạm Hùng Vân (2009) PCR real-time PCR – Các vấn đề áp dụng thường gặp Nhà xuất y học Ponce A G., M R Moreira, C E Valle and S I Roura, 2008 Preliminary characterization of bacteriocin like substances from lactic acid bacteria isolated from organic leafy vegetables LWT - Food Science and Technology (41)3: 432-441 Prachumwat A., S Thitamadee, S Sriurairatana, N Chuchird, C Limsuwan, W Jantratit, S Chaiyapechara, T.W Flegel, 2012 Shotgun sequencing of bacteria from AHPNS, a new shrimp disease threat for Thailand Poster, 110 National Institute for Aquaculture Biotechnology, Mahidol University, Bangkok, Thailand Qin H., Zhang Z., Hang X., 2009 L plantarum prevents enteroinvasive Escherichia coli-induced tight junction protein changes in intestinal epithelial cell BMC Microbio Journal; 9;63 Rattanachaikunsopon P and P Phumkhachorn, 2010 Lactic acid bacteria: their antimicrobial compounds and their uses in food production Annals of Biological Research (4) : 218-228 Reid G., 1999 The scientific basis for probiotic strains of Lactobacillus Appl Environ Microbiol 65: pp 3763 – 3766 Rengpipat S., S Rukpratanporn, S Piyatiratitivorakul, P Menasaveta, 2000 Immunity enhancement in black tiger shrimp (Penaeus monodon) by a probiont bacterium (Bacillus S11) Aquaculture 191, 271-288 Richter, K.S., Mustapha, A., Liewen, M.B and Hutkins, R.W (1989) Properties of a bacteriocin produced by a Pediococcus sp active against Listeria monocytogenes In Abstract Book, 89th Annual Meeting of the American Society for Microbiology p New Orleans Ringø E., E Strøm, J A Tabachek, 1995 Intestinal microflora of salmonids: a review Aquacult Res 26, 773-789 Rodríguez E., J.L Arqués, R R Rodríquez, M Nũnez, M Medin, 2003 Reuterin production by lactobacilli isolated from pig faeces and evaluation of probiotic traits Lett Appl Micro biol 37, 259-263 Roque A., A.Molina-Aja, C Bolán-Mejía, B Gomez-Gil, 2001 In vitro susceptibility to 15 antibiotics of vibrios isolated from Penaeid shrimps in Northwestern Mexico Int J Antimicrob Agents 17, 383–387 Ross R P.,S Morgan, C Hill, 2002 Preservation and fermentation: past, present and future International Journal of Food Microbiology, London, v 79, n 1-2, p 3-16 Saarela M.,Mogensen G., Fonde R., 2000 Probiotic bacteria: safety functional and technological properties Journal of Biotechnology, vol 84, pp 197215 Sabo S D., M Vitolo, J J González, R P Oliveira, 2014 Overview of Lactobacillus plantarum as a promising bacteriocin producer among lactic acid bacteria Food Research International, 64, pp.527 – 536 Sakata T., J Okabayashi, D Kakimoto, 1980 Variations in the intestinal 111 microflora of Tilapia reared in fresh and sea water Bull Jpn Soc Sci Fish 46, 313-317 Sakata T., 1990 Microflora in the digestive tract of fish and shellfish In: Lesel, R (Ed.), Microbiology in Poecilotherms Elsevier, Amsterdam, pp 171176 Sampo L A., C Owehand, S Salminen and A V Wright, 2011 Lactic Acid Bacteria: Microbiological and Functional Aspects, Fourth Edition CRC Press, p 124-125 Sandine W.E., P.C Radich, P.R Elliker, 1972 Ecology of the lactic streptococci A review J Milk Food Techn 35, 176-185 Savadogo A., A C Ouattara, H I Bassole, S A Traore, 2006 Bacteriocins and lactic acid bacteria African Journal of Biotechnology, (9), pp.678 683 Scharifuzzaman S.M., A Abbass, J W Tinsley, B Austin, 2011 Subcellular components of probiotics Kocuria SM1 and rhodococcus SM2 induce protective immmunity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) against Vibrio anguillarum Fish and shellfish Immunology: 30, 347-353 Schat K A., and T J Myers, 1991 Avian Intestinal Immunity Crit Rev Poult Biol 3:19–34 Schillinger U and F K Lucke, 1989 Antibacterial activity of Lactobacillus sake isolated from meat Applied and Environmental Microbilogy, Vol 55, 1901-1906 Schryver, D P., Defoirdt, T., and Sorgeloos, P (2014) Early mortality syndrome outbreaks: a microbial management issue in shrimp farming PLoS pathogens, 10(4): e1003919 Schved, F., Lalazar, Y., Henis, Y and Juven, B.J (1993) Purification, partial characterization and plasmid‐linkage of pediocin SJ‐1, a bacteriocin produced by Pediococcus acidilactici J Appl Bacteriol 74, 67–77 Shaun M Moss, Brad R LeaMaster, James N Sweeney., 2000 Relative Abundance and Species Composition of Gram‐Negative, Aerobic Bacteria Associated with the Gut of Juvenile White Shrimp Litopenaeus vannamei Reared in Oligotrophic Well Water and Eutrophic Pond Water Journal of the world aquaculture society 255-263 Sirikharin, R., Taengchaiyaphum, S., Sritunyalucksana, K., Thitamadee, S., T.W Flegel, R Mavichak, 2014 A new and improved PCR method for 112 detection of AHPND bacteria in NACA http://www.enaca.org/modules/news/article.php?article_id=2030&title=ne w-pcr-detection-method-for-ahpnd Sivakumar, N., Sundararaman, M and Selvakumar, G., 2012 Probiotic effect of Lactobacillus acidophilus against vibriosis in juvenile shrimp (Penaeus monodon) African Journal of Biotechnology Vol 11(91), pp 1581115818 Skytta E., A Haikara, T Mattila-Sandholm, 1993 Production and characterization of antibacterial compounds produced by Pediococcus damnosus and Pediococcus pentosaceus Journal of Applied Bacteriology, 74: 134–142 Sở NN&PTNT Khánh Hòa, 2017 Tình hình dịch bệnh tơm ni biện pháp phòng trị Hội thảo khoa học “Tình hình dịch bệnh tơm ni biện pháp phòng trị”, Nha Trang 5/7/2017 http://snnptntkh.gov.vn/news/us/news_detail.aspx?id=2017071282148368 947257.3 (truy cập ngày 10/10/2017) Somsiri, T., D T H Oanh, S Chinabut, N T Phuong, M Shariff, F Yusoff, K Bartie, M Giacomini, M Robba, S Bertone, G Huys and A Teale 2006 A simple device for sampling soft pond bottom sediment Aquaculture, 258: 650-654 Song J.,Lee S –C, Kang J –W.,Beak H-J, Suh J –W (2004), “Phylogenetic analysis of Streptomyces spp Isolated from potato scab lesions in Korea on basis of 16S rDNA gen and 16S-23S rDNA internally transceibed spacer seuqnces”, International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, vol.54, pp 203-209 Sonomoto K and A Yokota, 2011 Lactic acid bacteria and Bifidobacteria: Current progress in advanced research Caister academic press ISBN 9781-904455-82 Soto-Rodriguez S.A., N Simoes., A Roque and B Gomez-Gil, 2006 Pathogenicity andcolonization of Litopenaeus vannamei larvae by luminescent vibrios Aquaculture 258: 109-115 Stevens K A., N A Klapes, B W Sheldon, and T R Klaenhammer, 1992 Antimicrobial action of nisin against Salmonella typhimurium lipopolysaccharide mutants Appl Environ Microbiol; 58(5): 1786–1788 Strasser de Saad, A.M and Manca de Nadra, M.C (1993) Characterization of bacteriocin produced by Pediococcus pentosaceus from wine J Appl 113 Bacteriol 74, 406–410 Sung H H., S F Hsu, C K Chen, Y Y Ting, W L Chao, 2001 Relationship between disease outbreaks in cultured tiger shrimp (Penaeus monodon) and the composition of Vibrio communities in pond water and shrimp hepatopancreas druring cultivation Aquaculture 192, 101-110 Tạ Văn Phương, 2016 Phát triển quy trình cơng nghệ Biofloc khả ứng dụng nuôi tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei) Luận án tiến sĩ chuyên ngành Nuôi trồng Thủy sản, Trường Đại học Cần Thơ, 216 trang Talpur A D., A J Memon, M I Khan, M Ikhwanuddin, M M Danish, Daniel and A.B Abol-Munafi, 2012 Inhibition of pathogens by lactic acid bacteria and application as water additive multi isolates in early stages larviculture of P pelagicus (Linnaeus, 1758) The Journal of Animal & Plant Sciences, 22(1): 2012, Page: 54-64 Tambekar, D H., S A Bhutada, S D Choudhary and M D Khond, 2009 Assessment of potential probiotic bacteria isolated from milk of domestic animals J Appl Biosci 15: 815–819 Taniguchi H., H Hirano, S Kubomura, K Higashi, Y Mizuguchi, 1986 Comparison of the nucleotide sequences of the genes for the thermostable direct hemolysin and the thermolabile hemolysin from Vibrio parahaemolyticus Microbial Pathogenesis, 1, 425 432 Tendencia E.A and A.D Lourdes, 1997 Isolation of Vibrio spp from Penaeus monodon (Fabricius) with reddisease syndrome Aquaculture Volume 154, Issue 2, 30 July 1997: 107-114 Thakur A.B., B.B Vaidya & S.A Suryawanshi, 2002 Pathogenicity and antibiotic susceptibility of Vibrio species isolated from moribund shrimp Indian Journal of Marine Sciences, Vol 32(1) pp 71-75 Tinwongger, S., Thawonsuwan, J., Kongkumnerd, J., Nozaki, R., Kondo, H., and Hirono, I., 2014 Characterization of vỉulence factor of AHPND Vibrio parahaemolyticus which is the causative agent of shrimp disease Paper presented at the 9th Symposium on Diseases in Asian aquaculture (DAA9), Ho Chi Minh city, Viet Nam 24-28 November, 2014 Book of abstract, p 73 Tổng cục Thủy sản, 2012 Tình hình thực kế hoạch năm 2012, Phương hướng nhiện vụ, Giải pháp chủ yếu thực kế hoạch năm 2013 Tổng cục Thủy sản, 2013 Tình hình dịch bệnh tơm ni năm 2013, 20 114 trang Tổng cục Thủy sản, 2017 Tổng sản lượng thủy sản 10 tháng năm 2016.https://tongcucthuysan.gov.vn/vi-vn/tin-t%E1%BB%A9c/-tinv%E1%BA%AFn/doc-tin/006296/2016-11-08/tong-san-luong-thuy-san10-thang-nam-2016-uoc-dat-55-trieu-tan (truy cập ngày 10/10/2017) Trần Thị Ái Liên, 2011 Nghiên cứu đặc điểm vai trò Lactobacillus acidophilus chế phẩm probiotic Luận văn thạc sĩ chuyên ngành vi sinh vật Trường Đại học sư phạm Thành phố Hồ Chí Minh Trần Thị Linh Giang, Dương Viết Phương Tuấn, 2015 Nghiên cứu đặc điểm gây bệnh dịch tể bệnh tơm chết sớm (EMS) tỉnh Quảng Bình nhằm đề xuất quy trình chẩn đốn phòng trị Tạp chí khoa học Đại học Huế 104 (125-130) Trần Thị Tuyết Hoa, 2011 Quy trình Nested-PCR phát vi rút gây bệnh đốm trắng (WSSV) nội chuẩn giáp xác mười chân nhiều đối tượng cảm nhiễm Tạp chí Khoa học 2011:17a 1-8 Tran Thi Tuyet Hoa, Mark P Zwart, Nguyen T Phuong, Dang T H Oanh, Mart C M de Jong and Just M Vlak, 2011 Mixed-genotype white spot syndrome virus infections of shrimp are inversely correlated with disease outbreaks in ponds Journal of General Virology 92, 675–680 Trịnh Hùng Cường, 2011 Phân lập vi khuẩn Lactobacillus sp tơm sú ni cơng nghiệp có khả kháng vi khuẩn gây bệnh Vibrio sp Luận văn Cao học chuyên ngành Công nghệ sinh học Đại học Cần Thơ Twedt R M., P L Spaulding, and H E Hall, 1969 Morphological, culture, biochemical, and serological comparison of Japanese strains of Vibrio parahaemolyticus with related cultures isolated in the United States J Bacteriol 98:511-518 Van Reenen C.A., L.M.T Dicks, and M.L Chikindas, 1998 Isolation, purification and partical characterization of plantaricin 423, a bacteriocin produced by L plantarum Journal of Applied Microbiology pp 1131-1137 Vanderzant C and R Nickelson 1972 Survival of Vibrio parahaemolyticus in shrimp tissue under various environmental conditions Appl Microbiol 23:34-37 VASEP 2017 Tổng quan ngành thủy sản Việt Nam http://vasep.com.vn/1192/OneContent/tong-quan-nganh.htm (truy cập ngày 4/10/2017) 115 Vázquez J A., M P González and M A Murado, 2005 Effects of lactic acid bacteria cultures on pathogenic microbiota from fish Aquaculture, 245: pp 149 – 161 Venema K., G Venema, J Kok, 1997 Lactococcal bacteriocins: mode of action and immunity Trends Microbiol., 3, pp.299–304 Véron M M., 1965 La position taxonomique des Vibrio et de certaines bacteries comparables C R Acad Sci 2615243- 5246 Verschuere L., G Rombaut, P Sorgeloos, and W Verstraete, 2000 Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture Microbiol Mol Biol Rev, 64: 665-671 Vieira F N.,C C Buglione, J P Mourino, A Jatobá, M L Martins, D D Schleder, E R Andreatta, M A Barracoand L A Vinatea, 2010 Effect of probiotic supplementeddietonmarineshrimpsurvival after challenge with Vibrio harveyi Arquivo Brasileiro deMedicina Veterinária e Zootecnia 62:631-638 Viện Kinh tế Quy hoạch thủy sản, 2015a Quy hoạch vùng nuôi tôm nước lợ vùng Đồng sông Cửu Long đến năm 2020, tầm nhìn 2030 139 trang Viện Kinh tế Quy hoạch thủy sản, 2015b Báo cáo tổng hợp Quy hoạch phát triểnnuôi trồng thủy sản tỉnh Miền Trung đến năm 2020 định hướng đến 2030 136 trang Vine N.G., W.D.Leukes, H.Kaiser 2004 In-vitro growth characteristics of five candidate aquaculture probiotics and two fish pathogens grown in fish intestinal mucus FEMS Microbiol Lett 231, 145–152 Vũ Ngọc Út, 1999 Ứng dụng thành tựu sinh học tế bào vi sinh học vào lĩnh vực nuôi trồng thủy sản Thông tin Atemia-Tôm Đại Học Cần Thơ, số 37, 38 Trang 34-58 Wang CY, Shie HS, Chen SC, Huang JP, Hsieh IC, Wen MS, 2007 Lactococcus garvieae in humans: possible association with aquaculture outbreaks Int J Clin Prac; 61:68–73 Weisburg, W G., S M Barns, D A Pelletier, and D J Lane 1991 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study J Bacteriol 173:697-703 West P A., P R Brayton, T N Bryant and R R Colwell, 1986 Numerical taxonomy of Vibriosis isolated from aquatic environments International Journal of Systematic Bacteriology, 36,(4): 531-543 116 Whetstone J.M., G D Treece, C L Browdy and A D Stokes, 2002 Opporrunities and Contrains in Marine Shrimp Farming Southern Regional Aquaculture Center (SRAC) publication No 2600USDA p William L.A and P.A LaRock, 1985 Temporal Occurrence of Vibrio Species and Aeromonas hydrophila in Estuarine Sediments Applied and environmental microbiology 50 (6): 1490-1495 Wiss, A., H P Lettner, W Kramer, H K Mayer and W Kneifel 2005 Molecular method used for the identification of Potentially probiotic Lactobacillus reuteri strains Food Technol Biotechnol, 43: pp 295 – 300 Wong H.C., S.H Liu., T.K Wang., C.L Lee., C.S Chiou and D.P Liu, 2000 Characteristics of Vibrio parahaemolyticus O3: K6 from Asia Appl Environ Microbiol 66: 3981-3986 Wongteerasupaya, C., Pungchai, P., Withyachumnarnkul, B., Boonsaeng, V., Panyim, S., Flegel, T W & Walker, P J (2003) High variation in repetitive DNA fragment length for white spot syndrome virus (WSSV) isolates in Thailand Dis Aquat Organ 54, 253–257 Woo DK, T.L Phang, D.J Trawick, R.O Poyton, 2009 Multiple pathways of mitochondrial-nuclear communication in yeast: Intergenomic signaling involves ABF1 and affects a different set of genes than retrograde regulation Biochim Biophys Acta1789(2):135-45 Wood B J and W H N Holzapfel, 1995 The Genera of Lactic Acid Bacteria Springer Science & Business Media: 7-8 Wu, C.‐W., Yin, L.‐J and Jiang, S.‐T (2004) Purification and characterization of bacteriocin from Pediococcus pentosaceus ACCEL J Agric Food Chem 52, 1146–1151 Xie M W., F Jin, H HWang, S Hwang, V Anand, M C Duncan, J Huang, 2005 Insights into TOR function and rapamycin response: chemical genomic profiling by using a high-density cell array method Proc Natl Acad Sci U S A 102(20):7215-20 Yasuda K and N Taga, 1980 A mass culture method for Artemia salina using bacteria as food Bull Soc Franco-Jap Oceanogr, 18: 53-62 Yew-Hu Chien 2013, Aquaculture environment remedies for disease prevention and control APA conference Ho Chi Minh City ,10-13 December 2013 Yiu KH, Siu CW, To KK, Jim MH, Lee KL, Lau CP, 2007 A rare cause of 117 infective endocarditis: Lactococcus garvieae Int J Cardiol; 114:286–7 Zapata A A., 2013.Antimicrobial Activities of Lactic Acid Bacteria Strains Isolated from Nile Tilapia Intestine (Oreochromis niloticus) Journal of Biology and Life Science.Vol 4, No 1, 164-171 Zorriehzahra M.J and R Banaederakhshan, 2015 Early Mortality Syndrome (EMS) as new Emerging Threat in Shrimp Industry Advances in Animal and Veterinary Sciences (3): 64 – 72 Zulkifii, Yudhanto, Soetharyo and Adinono, 2009 Reduced stall MIPS architechture using pre-fetching accelerator, international conference on electrical engineering and informatics, IEEE, ISBN: 978-1-4244-4913-2, pp.611-616 Zuridah Merican, 2015 Marine shrimp in Asia in 2014: Production trends January/February 2015 AQUA Culture Asia Pacific Magazine, 18-24 118 ... tỷ lệ sống khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính tôm thẻ chân trắng (Penaeus vannamei) 64 4.4 Thử nghiệm khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính chủng vi khuẩn lactic có bổ... tụy cấp tính nước 2.2.1 Tình hình bệnh hoại tử gan tụy cấp tính giới 2.2.2 Tình hình nghiên cứu bệnh hoại tử gan tụy cấp ở Vi t Nam 10 2.3 Tổng quan vi khuẩn gây bệnh hoại. .. kiện in vitro 41 3.3.3 Thử nghiệm khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp bổ sung chủng LAB vào thức ăn 43 3.3.4 Định danh chủng LAB có khả kháng bệnh hoại tử gan tụy cấp tính