Bài giảng môn thức ăn tự nhiên

Thức ăn tự nhiên hay thức ăn sống (natural food, live food ) là các phiêu sinh (plankton). Phiêu sinh chính là chuỗi thức ăn sơ cấp và thứ cấp cho hầu hết động vật nước. Phiêu sinh có hai nhóm, đó là phiêu sinh thực vật (phytoplankton) và phiêu sinh động vật (zooplankton). Phytoplankton được coi là sinh vật tự dưỡng, bởi vì chúng có thể sử dụng nguồn cacbon, nitơ đơn giản và ánh sáng mặt trời để sinh trưởng và phát triển; chúng là điểm xuất phát của chuỗi thức ăn. Zooplankton được coi là sinh vật dị dưỡng, chúng ăn những sinh vật tự dưỡng và các sinh vật dị dưỡng khác. Zooplankton là nguồn thức ăn quan trọng của ấu trùng tôm và cá trong tự nhiên hay nuôi trồng. Thức ăn tự nhiên đóng vai trò rất quan trọng, quyết định sự thành công trong ương nuôi nhiều loài động vật thủy sản, đặc biệt là ở giai đoạn ấu trùng. Nghiên cứu đặc điểm sinh học, kỹ thuật nuôi một số loại thức ăn tươi sống cho động vật thủy sản từ lâu đã được nhiều nhà nghiên cứu quan tâm. Các đối tượng chủ yếu đang được quan tâm nghiên cứu như: Vi tảo, luân trùng, giáp xác râu ngành, Artemia, trùng chỉ. Nghề nuôi giáp xác, cá biển và nhuyễn thể đang ngày càng phát triển mạnh, vì thế, nhu cầu con giống đang ngày gia tăng và cần được giải quyết. Trong sản xuất giống, thức ăn và kỹ thuật cho ăn khi ương ấu trùng là vấn đề rất quan trọng. Ngày nay, mặc dù có nhiều kỹ thuật tiên tiến trong sản xuất thức ăn nhân tạo cho ấu trùng, nhưng những thức ăn tươi sống như tảo, luân trùng, giáp xác râu ngành, Artemia.. . vẫn được xem là thức ăn vô cùng quan trọng và có tiềm năng rất lớn trong sản xuất giống. Việc nuôi và sử dụng các sinh vật làm thức ăn này đã có một lịch sử lâu đời ở nhiều nước và ngày nay đang được áp dụng rộng rãi tên toàn thế giới. Trong những năm 70, sản xuất của các trại cá và tôm hầu như dựa chủ yếu vào việc đánh bắt những cá giống (giai đoạn cá bột) sống trong tự nhiên. Tuy nhiên, từ sau khi kỹ thuật sản xuất ấu trùng từ đàn bố mẹ trở nên phổ biến thì hàng tỷ ấu trùng cá, ấu trùng thân mềm và giáp xác đã được sản xuất trong các trại giống trên toàn thế giới. Ấu trùng là những sinh vật còn rất nhỏ, yếu đuối và chưa phát triển đầy đủ về mặt sinh lý như kích thước miệng còn nhỏ, giác quan và hệ thống tiêu hoá chưa hoàn thiện. Những yếu tố này hạn chế việc lựa chọn và sử dụng thức ăn thích hợp trong những pha nuôi dưỡng đầu tiên của ấu trùng. Đối với tảo, hai loài Isochrisys galbana và Pyramimonas grossii đầu tiên được Bruce và ctv báo cáo đã phân lập và nuôi đơn chúng dùng làm thức ăn trong nuôi trồng thủy sản, đặc biệt là dùng cho nuôi ấu trùng trai, hầu. Tiếp theo đó, là kết quả nuôi thành công tảo khuê cho nhiều loài động vật không xương sống khác nhau của Allen và Nelson, 1910 (Ryther và Golman, 1975). Đến năm 1941, khi Matsue tìm ra phương pháp phân lập và nuôi cấy tảo thuần loài Skeletonema costatum thì loài tảo này đã được Hudinaga dùng làm thức ăn cho ấu trùng tôm Penaeus japonicus và đã tăng tỉ lệ sống của ấu trùng ở giai đoạn lên 30%, thay vì 1% so với các kết quả trước đây (Liao, 1983). Phương pháp nuôi tảo khuê cho ấu trùng tôm của Hudinaga được gọi là “phương pháp nuôi cùng bể” và sau đó phương pháp này được Loosanoff áp dụng trong ương nuôi ấu trùng hai mảnh vỏ. Từ những năm 1940, người ta rất quan tâm đến nuôi sinh khối tảo, không chỉ dùng cho nghề nuôi thủy sản mà còn vì nhiều mục đích khác, như: cải tạo đát, lọc nước thải, nguồn thực phẩm cho con người hay thức ăn tươi sống. Beijerinck đã nghiên cứu nuôi tảo Chlorella vulgaris lần đầu tiên trong ống nghiệm và đĩa petri. Nhiều nghiên cứu tiếp theo được tiến hành và cho đến năm 1948-1950, một công trình đầu tiên chuyển phương pháp nuôi cấy trong phòng thí nghiệm ra qui mô sản xuất lớn đã được thực hiện bởi nhà khoa học Litter, của Cambridge (Soeder, 1986). Tuy nhiên, về sau nuôi đại trà tảo Chlorella phát triển chủ yếu là ở Đông Nam Châu Á, đặc biệt là ở Nhật, Trung Quốc, Đài Loan (Richmon, 1986). Ví dụ: Ở Đài Loan, nuôi sản xuất tảo được hình thành vào năm 1964, đến năm 1977, đã có 30 trại sản xuất với công suất 200 tấn/tháng, sản xuất khoảng 1.000 tấn/năm. Các loài tảo khác như Dunadiella, Scenedesmus, Spirulina.. . cũng được nghiên cứu và phổ biến ra qui mô sản xuất. Số liệu thống kê cho thấy, tổng sản lượng hàng năm của tảo Spirulina trên thế giới là 850 tấn, trong đó, Mexicô đóng góp 300 tấn, Đài Loan: 300 tấn, Hoa Kỳ: 90 tấn, Thái Lan 60 tấn, Nhật Bản :40 tấn và Israel: 30 tấn (Richmon, 1986).

Bài giảng môn thức ăn tự nhiên

Mục Lục

3.2 Kỹ thuật nuôi luân trùng 19

Nhiệt độ 19

pH: Trong tự nhiên luân trùng có thể sống ở pH từ 5-10, thích hợp nhất ở 7,5-8,5 (Hoff và Snell, 2004) Hoạt động bơi lội và hô hấp của luân trùng hầu như không thay đổi khi pH trong khoảng 6,5-8,5 và suy giảm khi pH dưới 5,6 hoặc trên 8,7 (Nogrady 1993) Hoạt động bơi lội của luân trùng trong môi trường kiềm giảm nhanh hơn trong môi trường axit .19

Ánh sáng : Khi so sánh hệ thống nuôi ngoài trời với ánh sáng mặt trời đầy đủ và nuôi trong điều kiện tối, Fukusho (1989) nhận thấy luân trùng B plicatilis phát triển tốt trong điều kiện ánh sáng đầy đủ Theo Fulks và Main (1991), ánh sáng kích thích sự phát triển của luân trùng nhờ vào sự gia tăng phát triển của vi khuẩn quang hợp và tảo trong bể nuôi 20

N-NO2- : Theo Groeneweg and Schluter (1981), hàm lượng N-NO2- đạt từ 10-20ppm không gây độc đối với luân trùng Brachionus rubens Lubzens (1987) cho rằng ở nồng độ 90-140 ppm N-NO2- gây độc đối với luân trùng .20

Sử dụng tảo làm thức ăn cho luân trùng 20

Sử dụng men bánh mì làm thức ăn cho luân trùng 20

Thức ăn nhân tạo cho luân trùng 21

Cách cho luân trùng ăn 21

Nuôi theo mẻ 21

Nuôi theo phương pháp bán liên tục 21

Nuôi theo phương pháp liên tục 22

Nuôi luân trùng mật độ cao 22

Nuôi luân trùng trong hệ thống tuần hoàn kết hợp với tảo và cá rô phi 23

CHƯƠNG 1: TỔNG QUAN VỀ THỨC ĂN TỰ NHIÊN

1.1 VAI TRÒ CỦA THỨC ĂN TỰ NHIÊN ĐỐI VỚI NUÔI TRỒNG THỦY SẢN

Thức ăn tự nhiên hay thức ăn sống (natural food, live food ) là các phiêu sinh(plankton) Phiêu sinh chính là chuỗi thức ăn sơ cấp và thứ cấp cho hầu hết động vật nước.Phiêu sinh có hai nhóm, đó là phiêu sinh thực vật (phytoplankton) và phiêu sinh động vật(zooplankton) Phytoplankton được coi là sinh vật tự dưỡng, bởi vì chúng có thể sử dụngnguồn cacbon, nitơ đơn giản và ánh sáng mặt trời để sinh trưởng và phát triển; chúng làđiểm xuất phát của chuỗi thức ăn Zooplankton được coi là sinh vật dị dưỡng, chúng ănnhững sinh vật tự dưỡng và các sinh vật dị dưỡng khác Zooplankton là nguồn thức ăn quantrọng của ấu trùng tôm và cá trong tự nhiên hay nuôi trồng

Thức ăn tự nhiên đóng vai trò rất quan trọng, quyết định sự thành công trong ương nuôinhiều loài động vật thủy sản, đặc biệt là ở giai đoạn ấu trùng Nghiên cứu đặc điểm sinh học,

kỹ thuật nuôi một số loại thức ăn tươi sống cho động vật thủy sản từ lâu đã được nhiều nhànghiên cứu quan tâm Các đối tượng chủ yếu đang được quan tâm nghiên cứu như: Vi tảo,luân trùng, giáp xác râu ngành, Artemia, trùng chỉ

Nghề nuôi giáp xác, cá biển và nhuyễn thể đang ngày càng phát triển mạnh, vì thế, nhucầu con giống đang ngày gia tăng và cần được giải quyết Trong sản xuất giống, thức ăn và

kỹ thuật cho ăn khi ương ấu trùng là vấn đề rất quan trọng Ngày nay, mặc dù có nhiều kỹthuật tiên tiến trong sản xuất thức ăn nhân tạo cho ấu trùng, nhưng những thức ăn tươi sốngnhư tảo, luân trùng, giáp xác râu ngành, Artemia vẫn được xem là thức ăn vô cùng quantrọng và có tiềm năng rất lớn trong sản xuất giống Việc nuôi và sử dụng các sinh vật làmthức ăn này đã có một lịch sử lâu đời ở nhiều nước và ngày nay đang được áp dụng rộng rãitên toàn thế giới

Trong những năm 70, sản xuất của các trại cá và tôm hầu như dựa chủ yếu vào việcđánh bắt những cá giống (giai đoạn cá bột) sống trong tự nhiên Tuy nhiên, từ sau khi kỹthuật sản xuất ấu trùng từ đàn bố mẹ trở nên phổ biến thì hàng tỷ ấu trùng cá, ấu trùng thânmềm và giáp xác đã được sản xuất trong các trại giống trên toàn thế giới

Ấu trùng là những sinh vật còn rất nhỏ, yếu đuối và chưa phát triển đầy đủ về mặtsinh lý như kích thước miệng còn nhỏ, giác quan và hệ thống tiêu hoá chưa hoàn thiện Nhữngyếu tố này hạn chế việc lựa chọn và sử dụng thức ăn thích hợp trong những pha nuôi dưỡngđầu tiên của ấu trùng

Đối với tảo, hai loài Isochrisys galbana và Pyramimonas grossii đầu tiên được Bruce và

ctv báo cáo đã phân lập và nuôi đơn chúng dùng làm thức ăn trong nuôi trồng thủy sản, đặcbiệt là dùng cho nuôi ấu trùng trai, hầu Tiếp theo đó, là kết quả nuôi thành công tảo khuê chonhiều loài động vật không xương sống khác nhau của Allen và Nelson, 1910 (Ryther vàGolman, 1975) Đến năm 1941, khi Matsue tìm ra phương pháp phân lập và nuôi cấy tảo

thuần loài Skeletonema costatum thì loài tảo này đã được Hudinaga dùng làm thức ăn cho ấu trùng tôm Penaeus japonicus và đã tăng tỉ lệ sống của ấu trùng ở giai đoạn lên 30%, thay vì

1% so với các kết quả trước đây (Liao, 1983) Phương pháp nuôi tảo khuê cho ấu trùng tômcủa Hudinaga được gọi là “phương pháp nuôi cùng bể” và sau đó phương pháp này đượcLoosanoff áp dụng trong ương nuôi ấu trùng hai mảnh vỏ

Từ những năm 1940, người ta rất quan tâm đến nuôi sinh khối tảo, không chỉ dùng chonghề nuôi thủy sản mà còn vì nhiều mục đích khác, như: cải tạo đát, lọc nước thải, nguồn

thực phẩm cho con người hay thức ăn tươi sống Beijerinck đã nghiên cứu nuôi tảo Chlorella vulgaris lần đầu tiên trong ống nghiệm và đĩa petri Nhiều nghiên cứu tiếp theo được tiến

hành và cho đến năm 1948-1950, một công trình đầu tiên chuyển phương pháp nuôi cấy trongphòng thí nghiệm ra qui mô sản xuất lớn đã được thực hiện bởi nhà khoa học Litter, củaCambridge (Soeder, 1986) Tuy nhiên, về sau nuôi đại trà tảo Chlorella phát triển chủ yếu là ở

Đông Nam Châu Á, đặc biệt là ở Nhật, Trung Quốc, Đài Loan (Richmon, 1986) Ví dụ: ỞĐài Loan, nuôi sản xuất tảo được hình thành vào năm 1964, đến năm 1977, đã có 30 trại sảnxuất với công suất 200 tấn/tháng, sản xuất khoảng 1.000 tấn/năm Các loài tảo khác như

Dunadiella, Scenedesmus, Spirulina cũng được nghiên cứu và phổ biến ra qui mô sản xuất.

Số liệu thống kê cho thấy, tổng sản lượng hàng năm của tảo Spirulina trên thế giới là 850 tấn,

trong đó, Mexicô đóng góp 300 tấn, Đài Loan: 300 tấn, Hoa Kỳ: 90 tấn, Thái Lan 60 tấn,Nhật Bản :40 tấn và Israel: 30 tấn (Richmon, 1986)

Để phục vụ cho mục đích nuôi thủy sản, nhiều loài tảo khác cũng được nghiên cứu nuôitrong điều kiện phòng thí nghiệm hoặc ở qui mô sản xuất Wendy và Kevan, 1991, đã tổng

kết: ở Hoa kỳ, các loài Thalasiossira pseudomonas, Skeletonema, Chaetoceros calcitrans, Chaetoceros mulleri, Nannochloropsis ocula, Cchlorella minutissima được nuôi để làm

thức ăn cho luân trùng, ấu trùng hai mảnh vỏ, ấu trùng tôm và cá theo hương pháp từng đợthoặc bán liên tục trong những bể composite 2.000-25.000 lít Ở Washington, năng suất tảo

loài Thalasiossira pseudomonas có thể đạt 720 kg khô/24.000 tấn/8 tháng ; còn ở Hawaii,

năng suất loài Nanochlopsis đạt khoảng 2,2 triệu lít/năm

Trung Quốc bắt đầu nghiên cứu nuôi tảo từ những năm 1940 Nhưng mãi đến 1980, chỉ

có hai loài Phaeodactylum triconutum và Tetraselmis subcordiformis là đối tượng nuôi dùng

trong ương ấu trùng tôm Về sau, có nhiều loài đã được phân lập để nuôi cấy Song, những

loài nuôi chính bao gồm Isochrisys galbana, Pavlova viridi, Chaetoceros muelleri, Phaeodactylum triconutum, Tetraselmis dùng cho ấu trùng tôm Penaeus chinensis và Argopecten Chúng được nuôi bằng phương pháp thu từng đợt Năng suất nuôi của Isochrisys galbana có thể đạt 4,8 x 1015 tế bào/năm.

Ở Đài Loan, các đối tượng nuôi chính là Nannochloropsis oculata, Tetraselmis, Chlorella sp., dùng cho ương nuôi ấu trùng họ tôm he (Penaeus), loài Isochrysis galbana trong ương nghêu Riêng loài Skeletonema costatum, sản lượng nuôi có thể đạt tới 9.000

tấn/năm

Nuôi tảo ở Nhật cũng rất quan trọng với nhiều đối tượng nuôi và bằng phương pháp thu

từng đợt hoặc bán liên tục: Chaetoceros sp., Penaeus japonicus và Metapenaues ensis, Isochrysis sp và Pavlova lutheri dùng cho hai mảnh vỏ, Tetraselmis sp., Nanochloropsis oculata, Chlammydomonas sp cho luân trùng Brachionus plicatilis.

Nuôi tảo khuê cũng rất phổ biến ở Thái Lan, nhất là loài Skeletonema costatum và Chaetoceros calcitrans dùng cho ấu trùng tôm Bể nuôi thường là bể composite có thể tích

1.000 lít hay bể ximăng 4.000 lít Ước đoán năng suất đạt được khoảng 3 x 1012 tế bào/tháng

Ở nước ta, hiện nay đã có nhiều cơ quan nghiên cứu đã nhập giống, phân lập, lưu giữa vànuôi sinh khối các loài tảo thuần cho mục đích nghiên cứu và sản xuất thực nghiệm Song,thực tế, các trại sản xuất vẫn còn sử dụng chủ yếu là các loại tảo tự nhiên do chưa có điềukiện phòng thí nghiệm lưu giống thuần tại trại và công việc này cũng khá phức tạo đối vớitrại sản xuất kinh doanh

Bên cạnh tảo phiêu sinh, luân trùng (hay còn gọi là trùng bánh xe), loài Brachinus plicatilis cũng đóng vai trò quan trọng trong nghề nuôi trồng thủy sản, đặc biệt chúng là thức

ăn cho ấu trùng của cá biển có vây Ở nhiều nước như Nhật Bản, Đài Loan, Thái Lan, nuôiluân trùng đã trở thành nghề nuôi thương phẩm Quá trình nuôi luân trùng của những nướcnày mang nết đặc trưng riêng của mỗi quốc gia

Ở Nhật, Brachionus plicatilis lần đầu tiên được Katashi (1995) nghiên cứu và phát hiện

như một loại thức ăn lý tưởng cho ấu trùng cá biển Ayu (Plecoglossus altivelia) Năm 1964, trại Yashima bắt đầu nuôi sinh khối Brachionus plicatilis, sau đó, năm 1965, chúng được dùng rộng rãi cho loài cá Pagrus major và là thức ăn có giá trị cao Hiện nay, nuôi sản xuất Brachionus plicatilis dòng S và L là mục tiêu của nghề nuôi cá Pagrus major, Japanese

flounder, Japanese sweet fish Với qui mô sản xuất lớn, nuôi luân trùng ở Trung Tâm Nuôi

Cá có thể 4-8 tỷ con/ngày

Ở Hoa Kỳ, Theilaccker và McMaster năm 1971, đã công bố lần đầu tiên kết quả nghiên

cứu về Brachionus plicatilis là một thức ăn tuyệt vời cho ấu trùng cá biển (Wendy và Kenvan,

1991) Tuy nhiên, nuôi luân trùng đến nay vẫn ở qui mô thí nghiệm, chủ yếu phục vụ choương nuôi các loài cá đối, cá măng Sản lượng nuôi mỗi ngày thường đạt 100-500 triệucon

Tại Trung Quốc, hầu hết các nghiên cứu về luân trùng Brachionus plicatilis làm thức ăn

cho ấu trùng cá biển được tiến hành từ năm 1980 Đến nay, nuôi luân trùng với qui mô lớncho nghề nuôi cá chẽm

Nuôi luân trùng ở Đài Loan đã trở thành nghề nuôi thương phẩm phục vụ cho việc sản xuất của 11 loài cá biển Sản lượng trung bình ước đoán khoảng 1 tỉ cá thể/ngày (Liao, 1991) Sản xuất luân trùng ở Thái Lan cũng được Kong Keo báo cáo năm 1991, với sản lượng

166 triệu con/ngày Luân trùng đực dùng làm thức ăn cho đối tượng nuôi thủy sản chính như:

mại rất có giá trị, và đặc biệt phát triển từ những năm 1960-1970 do sự phát triển của nghề

nuôi thủy sản Nghiên cứu cơ bản và ứng dụng Artemia đầu tiên được bắt đầu vào những năm

1968 ở Bỉ Hiện nay, nghề nuôi Artemia đang phát triển với nhiều nguồn ở nhiều quốc gia

như San Francisco Bay (Hoa Kỳ), Macau (Brazil), Shark Bay (Úc), Chaplin Lake (Canada),Buenos Aires (Argentina), Lavaldue (Pháp), Tientsin (Trung Quốc), Margherita di Savoi (Ý),Vĩnh Châu (Việt Nam) Sản lượng trứng cyst Artemia năm 1997 đạt trên 2000 tấn Tuy mỗi

nguồn Artemia có chất lượng khác nhau, song, Artemia là loại thức ăn không thể thiếu trong

sản xuất giống thủy sản, nhất là thủy sản nước lợ

1.2 Kích thước miệng ấu trùng ở pha nuôi dưỡng đầu

Kích thước miệng của ấu trùng pha đầu giới hạn kích thước của các tiểu phần thức ăn

mà ấu trùng có thể ăn Nói chung, kích thước miệng có liên quan với kích thước cơ thể vàkích thước cơ thể lại bị chi phối bởi đường kính của trứng và thời kỳ nuôi dưỡng nội sinh (tức

là thời kỳ tiêu thụ túi lòng đỏ) Ví dụ: trứng cá hồi Atlantic thường lớn hơn trứng Gilheadseabream ít nhất 4 lần (bảng 1) Kết quả là ở lúc nở, ấu trùng cá hồi khá lớn và túi lòng đỏcũng lớn đủ cung cấp thức ăn nội sinh trong 3 tuần phát triển đầu tiên, còn như ấu trùng cáGilhead seabream thì rất nhỏ, túi lòng đỏ cũng nhỏ và cung cấp thức ăn nội sinh chỉ đủtrong khoảng 3 ngày Ở pha đầu, ấu trùng cá hồi có thể ăn được những tiểu phần thức ăn cókích thước 1mm, còn như ấu trùng Gilthead seabream chỉ ăn được những tiểu phần có kíchthước 0,1mm

Bảng 1 Kích thước trứng và chiều dài ấu trùng lúc nở của một số loài cá*

Cá hồi Atlantic (Salmo salar)

Cá hồi vân (Onchorhyncus mykiss)

Cá chép (Cyprinus caprio)

Seabass châu Âu (Dicentrarchus labrax)

Gilthead seabream (Sparus aurata)

Turbo (Scophthalmus maximus)

Sole (Solea solea)

Milkfish (Chanos chanos)

Grey mullet (Mugil cephalus)

Greasy grouper (Epinephelus tauvina)

Bream (Acanthopagrus cuvieri)

5,0 - 6,04,00,9 - 1,61,2 - 1,40,9 - 1,20,9 - 1,21,0 - 1,41,1 - 1,250,9 - 1,00,77 - 0,900,78 - 0,84

15,0 - 25,012,0 - 20,04,8 - 6,27,0 - 8,03,5 - 4,02,7 - 3,03,2 - 3,73,2 - 3,41,4 - 2,41,4 - 2,41,8 - 2,0

1.3 Ống tiêu hoá

Tình trạng phát triển của hệ thống tiêu hoá của ấu trùng pha đầu cũng cho biết cungtiêu hoá được thức ăn ăn vào hay không Ví dụ: ấu trùng cá hồi pha đầu đã có ống tiêu hoáphát triển tốt với hệ thống enzyme cho phép tiêu hoá được thức ăn đập vụn (feed crumble).Ngược lại, ấu trùng cá Gilhead seabream (giống như ấu trùng nhiều loài cá khác) không có

dạ dày hoàn chỉnh, ống tiêu hoá thì ngắn, chỉ có một số enzyme hoạt động ở đầu pha nuôidưỡng

Từ đó, thấy rằng ấu trùng của những cá này chỉ có thể sử dụng được những nguồn thức

ăn (i) dễ tiêu hoá (như thức ăn chứa một số lớn axit amin tự do và oligopeptide thay chonhững phân tử protein phức hợp), (ii) chứa enzyme cho phép thức ăn tự phân giải, và (iii)cung cấp đầy đủ các chất dinh dưỡng quan trọng mà ấu trùng yêu cầu

Nói chung, thức ăn phối chế không đáp ứng được tất cả các yêu cầu cho ấu trùng cácloài cá nhỏ như Gilhead seabream và kết quả là ấu trùng nghèo sinh trưởng và có tỷ lệ chếtcao Trái lại, thức ăn sống thì có thể đáp ứng được tất cả các tiêu chuẩn cần thiết của ấu trùngcác loài cá nhỏ Ngoài ra, thức ăn sống còn có tác dụng kích thích sự phát triển các giác quancủa ấu trùng Các giác quan của ấu trùng như thị giác, khứu giác, vị giác và đường bên rấtquan trọng đối với việc phát hiện thức ăn Tuy vậy, các cơ quan này lại phát triển chưa hoànthiện khi ấu trùng còn non.VD: võng mạc mắt của ấu trùng cá chỉ chứa tế bào hình nón, khiếncho năng lực thị giác kém, nhưng võng mạc mắt của cá giai đoạn lớn hơn (giai đoạn cáhương), ngoaì tế bào hình nón còn có tế bào hình gậy với nhiều sắc chất thị giác trên võngmạc, nhờ vậy năng lực thị giác tốt hơn.Thức ăn sống thường có độ tương phản tốt hơn thức

ăn nhân tạo và nhờ vận động liên tục mà có hiệu quả kích thích, giúp cho giác quan ấu trùngphát triển Ngoài ra, nhờ khả năng bơi của thức ăn sống mà thức ăn được phân bố đều trongcột nước, giúp cho ấu trùng có nhiều cơ hội gặp được thức ăn

Khẩu phần tự nhiên của hầu hết các loài cá nuôi gồm những loài phytoplankton(diatoms, flagellates vv ) và zooplankton khác nhau (copepods, cladocerans, ấu trùngdecapod, rotifers, cilliates vv ) Sự phong phú và đa dạng của thức ăn sống với nhữngkích thước và thành phần dinh dưỡng khác nhau đã cho ấu trùng cá những cơ may tuyệt vời

để tăng trưởng và phát triển

Ngày nay, ba nhóm thức ăn sống dùng phổ biến để nuôi ấu trùng ở quy mô công nghiệp(industrial larviculture) là:

+ Những loài vi tảo có kích thước 2 đến 20μm sử dụng cho hai mảnh vỏ (bivalves), tôm

he (penaeid shrimp), rotifer, copepods , cá

+ Brachionus plicatilis sử dụng cho giáp xác (crustaceans), cá biển

+ Artemia spp (meta-) nauplii cho giáp xác, cá

Ngoài các nhóm trên, một số loại thức ăn sống khác cũng được dùng với mức độ hạn

chế hơn, bao gồm Brachionus rubens, Moina spp., daphnids, trứng Artemia khử vỏ cho cá nước ngọt và ấu trùng tôm và sinh khối Artemia cho ấu trùng tôm hùm,

postlarrvae tôm và tôm bố mẹ, cá biển giai đoạn cá hương Trong vài năm gần đây người tađạt được kết quả rất tốt trong việc nuôi tôm bằng một số sản phẩm bổ sung và thay thế thức

ăn sống Tuy nhiên, đối với việc nuôi cá biển giai đoạn đầu bằng loại thức ăn này thì kết quảcòn rất hạn chế

CHƯƠNG 2: VI TẢO

2.1 GIỚI THIỆU

Vi tảo là nguồn thức ăn cho tất

cả các giai đoạn sinh trưởng của động

vật hai mảnh vỏ, thức ăn cho ấu

trùng của một số loài giáp xác và

thức ăn cho một số loài cá ở giai

đoạn sinh trưởng đầu Mặt khác tảo

lại là nguồn thức ăn của

zooplankton và chính zooplankton

lại là nguồn thức ăn cho ấu trùng của

cá và giáp xác giai đoạn ấu trùng và

giai đoạn cá hương Bên cạnh đó,

việc nuôi ấu trùng cá biển theo kỹ

thuật nước xanh (green water

technique), tảo được dùng trực tiếp

trong các tank ấu trùng và chúng đóng

vai trò làm ổn định chất lượng nước,

cung cấp dinh dưỡng cho ấu trùng và

khống chế vi khuẩn (hình 10.1)

2.1.1 Các loài tảo nuôi trồng chủ yếu

Ngày nay 40 loài vi tảo khác nhau được phân lập từ khắp nơi trên thế giới đượcnuôi trồng theo phương thức thâm canh

Bảng 2 Các lớp và giống vi tảo chủ yếu được nuôi trồng (De Pauw và Persoone, 1988)

Bacillariophyceae

Skeletonema Thalassiosira Phaeodactylum Chaetoceros Cylindrotheca Bellerochea Actinocyclus Nitzchia Cyclotella

PL, BL, BP

PL, BL, BP

PL, BL, BP, ML, BS

PL, BL, BP, BSPL

BPBPBSBSHaptophyceae Isochrysis

Pseudoisochrysis

PL, BL, BP, ML, BS

BL, BP, ML

Chrysophyceae Monochrysis (Pavlova) BL, BP, BS, MR

Prasinophyceae Tetraselmis (Platymonas)

Pyramimonas

PL, BL, BP, AL, BS, MR

BL, BPCryptophyceae Micromonas

Chroomonas Cryptomonas Rhodomonas

BPBPBP

BL, BPCryptophyceae Chlamydomonas

BL: ấu trùng nhuyễn thể hai mảnh vỏ

ML: ấu trùng tôm nước ngọt

BP: hậu ấu trùng nhuyễn thể hai mảnh vỏ

AL: ấu trùng bào ngư

MR: rotifers nước mặn (Brachionus)

BS: Tôm nước mặn (Artemia)

SC: copepods nước mặn

FZ: zooplankton nước ngọt

2.1.2 Giá trị dinh dưỡng của vi tảo

Giá trị dinh dưỡng của vi tảo phụ thuộc vào kích thước tế bào, tỷ lệ tiêu hoá, chất độc

và thành phần sinh hoá (bảng 3) Điều kiện nuôi trồng cũng ảnh hưởng nhiều đến giá trịdinh dưỡng của vi tảo Tuy biến động khá rộng tuỳ theo các lớp và các loài, nhưng hàmlượng protein, lipid và carbohydrate biểu thị bằng % chất khô nằm trong phạm vi 12-

35, 7,2-23 và 4,6-23, lần lượt

Các acid béo chưa no HUFA, đặc biệt Eicosapentaenoic acid (EPA, 20:5n-3),arachidonic acid (ARA, 20:4n-6) và Docosahexaenoic acid (DHA, 22:6n-3) giữ vai tròquan trọng trong việc đánh giá giá trị dinh dưỡng đối với với một loài tảo dùng để nuôi động

vật biển EPA có nhiều trong các loài diatom (Chaetoceros calcitrans, C gracilis, S costatum, T pseudomonas) và prymnesiophyte Platymonas lutheri, còn DHA thì

có nhiều trong prymnesiophytes (P lutheri, Isochrysis sp.) và Chroomonas salina.

Thành phần acid béo của 10 loài vi tảo phát triển dưới những điều kiện xác định vàthu hoạch ở pha log được trình bày ở đồ thị 10.3

Vi tảo cũng là một nguồn giầu vitamin C (0,11 - 1,62 %/chất khô)

Bảng 3 Hàm lượng chlorophyl a (Chl a), protein, carbohydrtae (CHO) và lipid của 16 giống

vi tảo dùng phổ biến trong nuôi thuỷ sản (% theo chất khô)

Lớp và giống vi tảo Chất khô

3.89.0-23.013.19.7

0.682.0-6.42.42.5

1.85.2-10.75.05.5Chlorophyceae

Dunaliella tertiolecta

Nannochloris atomus 99.921.4 0.0801.73 20.06.4 12.25.0 15.04.5Cryptophyceae

3.011.04-0.531.210.95

341226302534

6.04.79.88.44.68.8

167.213141019

Chlorophyceae

Dunaliella tertiolecta

Nannochloris atomus 99.921.4 1.730.37 2030 12.223.0 1521Cryptophyceae

Chlorella là một loại rong đặc biệt, còn được gọi tên khoa học là Pyrenoidosa (tên cấu

trúc pyrenoid trong Chloroplast) thường sống ở vùng nước ngọt và có hàm lượng chlorophyllcao nhất (đạt 28,9 g/kg) so với bất kỳ thực vật quang hợp nào được biết đến trên trái đất

Mỗi tế bào Chlorella pyrenoidosa có cấu trúc gồm nhân thật, hạt tinh bột, lục lạp và ti

thể với vách tế bào chủ yếu là Xellulose Kích thước của rong chỉ bằng tế bào hồng cầu

người Dưới những tế bào bình thường, một tế bào Chlorella sẽ phân chia thành 4 tế bào con

trong thời gian chưa đến 24 giờ Tuổi thọ của một vòng đời tế bào Chlorella phụ thuộc vàocường độ ánh sáng mặt trời, nhiệt độ và nguồn dinh dưỡng Quá trình sinh sản nói chungđược chia thành nhiều bước: Sinh trưởng - trưởng thành - thành thục - phân chia

Chlorella rất giàu protein, vitamin và các khoáng chất Các protein của loài rong này có

chứa tất cả các amino acid cần thiết cho nhu cầu dinh dưỡng của người và động vật Rất nhiềuvitamin có trong thành của Chlorella pyrenoidosa như: Vitamin C, tiền vitamin A (β caroten),riboflavin (B2), pyridoxine (B6), niacin (vitamin PP), axit panthothenic (vitamin B3), axitfolic (vitamin B9), vitamin B12, biotin (vitamin H), choline, vitamin K, axit lipoic và inositol.Các nguyên tố khoáng ở Chlorella pyrenoidosa gồm có: Photpho, canxi, Kẽm, iod, Magie, sắt

và đồng

Hình 2: Tế bào tảo chlorella

Vai trò của tảo chlorella

Chlorella được biết đến nhiều

bởi vai trò quan trọng của nó về dinh

dưỡng cũng như là nhân tố môi trường

trong nuôi trồng thủy sản Việc dùng

Chlorella vào trong sản xuất đó là

phương pháp nước xanh được áp dụng

rộng rãi trong sản xuất giống tôm càng,

một số loài cá và hai mảnh vỏ

Trong vùng nhiệt đới, Chlorella

nước ngọt đã được sử dụng thành công

trong việc nuôi luân trùng bằng cách

thuần hoá trước khi cho ăn Một trong

những thuận lợi trong việc sử dụng Chlorella làm thức ăn cho luân trùng là do tảo này phát triển và phân cắt nhanh (chỉ sinh sản vô tính) Chlorella chứa hàm lượng protein 50%, lipid

20%, Carbohydrate 20%, Vitamin B1, B12, chất khoáng… Hơn nữa Chlorella còn sản sinh rachất kháng sinh Chlorellin kháng lại một số vi khuẩn do đó hạn chế một số mầm bệnh

Khi ương ấu trùng tôm càng xanh, Cohen (1976) thấy rằng: sự hiện diện của thực vậtphiêu sinh có thể thúc đẩy sự tăng trưởng của ấu trùng tôm thông qua việc loại bỏ NH3 và một

số chất độc khác Hơn nữa, Joshep (1977) cũng ghi nhận: sự bổ sung tảo sẽ làm cho môitrường nước trở nên giàu dinh dưỡng, cung cấp những hợp chất vi lượng mà thức ăn ban đầu

và thức ăn bổ sung không có

Chlorella cũng được chú ý nhiều trong sản xuất giống cua (Scylla serrata) Mặc dù một

số công trình nghiên cứu thu được tỉ lệ sống của cua chỉ ở mức giới hạn (như thí nghiệm củaOng Kah Sin (1976) và Heasmen (1983), ương ấu trùng cua chỉ dùng Artemia; hoặc thínghiệm của Chen và Jeng (1980) có bổ sung Chlorella nhưng không có tác dụng), song,Chlorella vẫn được dùng rộng rãi trong ương ấu trùng cua Brick (1974) đạt được tỉ lệ sống

của cua cao nhất bằng cách thêm Chlorella vào môi trường ương Hơn nữa, ở Đài Loan, NhậtBản, ấu trùng cua cũng được ương trong môi trường có bổ sung Chlorella (Cowan, 1983;Chen, 1991).

Liao (1991) báo cáo rằng: Ở Đài Loan khi ương ấu trùng cá măng, người ta bổ sung

Chlorella vào bể với mật độ: 50-350 x 104 tế bào/lít để duy trì chất lượng nước và quần thểluân trùng-thức ăn chính của ấu trùng tôm, mặc dù tôm có ăn trực tiếp tảo hay không chưa

được chứng minh Trong ương ấu trùng cá Grey mullet, Chlorella cũng được thêm vào bể ấu

trùng trong những ngày đầu tiên với mật độ 500-700 x 103 tế bào/ml

Ngoài ra, Chlorella còn là thức ăn rất quan trọng trong ương nuôi luân trùng và động vật phiêu sinh khác Bên cạnh những loài Chlorella biển, loài Chlorella nước ngọt, Chlorella vulgairs, cũng được thử nghiệm thành công làm thức ăn cho luân trùng (Hirayama và ctv.,

1988) Yamasaki và ctv (1989) cũng chỉ ra rằng: hai dạng đông lạnh của tảo

Nannochloropsis sp (loài tảo Chlorella biển) đều cho kết quả tương tự nhau về tốc độ tăng

trưởng của quần thể luân trùng khi cho ăn hai dạng tảo trên Theo báo cáo, tốc độ tăng trưởng

và sức sinh sản trung bình của luân trùng cao nhất khi cho ăn Chlorella, tiếp theo là loài

Isochrysis galbana (Nagata và Whyte, 1992) Mật độ quần thể, sản lượng và tốc độ sinh

trưởng của luân trùng cũng tăng lên theo sự gia tăng mật độ tảo ban đầu, đạt đến 40 x 106 tế

bào /ml (James và ctv., 1986) Với hàm lượng HUFA cao, Chlorella không chỉ là thức ăn

quan trọng của luân trùng mà còn được dùng để làm giàu acid béo cho luân trùng và một sốđộng vật phù du khác trước khi dùng chúng làm thức ăn cho cá và các loài nuôi thủy sảnkhác

2.2.2 Tảo Dunaliella

Tảo Dunaliella có chứa hàm lượng glycerol và β-caroten cao nên được xem là

đối tượng nuôi đầy triển vọng, dùng làm thức ăn không chỉ trong nghề nuôi thủy sản mà

còn nhiều lĩnh vực khác Trong các loài thuộc giống Dunaliella, loài D salina có hàm lượng

β-caroten cao nhất (Borowithzka, 1990), chiếm 20% trọng lượng khô (Kranzfelder, 1991)

Trong nuôi thủy sản, Dunaliella đóng vai trò trong chế độ dinh dưỡng của nhuyễn thể

nhưng với mức độ khác nhau tùy theo loài nhuyễn thể

Quan sát quá trình tiêu hóa của ấu trùng Strombus gigas với 8 loại tảo khác

nhau (Isochrysis galbana, Tetraselmis chuii, T seucica, Dunaliella tertiolecta, Chlamidomonas cocoides, Thalassiosira fluviatilis, Chlorella sp., và Chaetoceros sp.), Aranda (1994) thấy rằng quá trình tiêu hóa tảo Tetraselmis chuii, Chaetoceros sp và Chlorella sp nhanh hơn so với 5 loài tảo còn lại Sự tiêu hóa tảo Chaetoceros sp và Chlorella sp nhanh hơn so với tảo D tertiolecta Khi ương ấu trùng Mytilus galloprovincialis với các loài tảo Dunaliella tertiolecta, T seucica, I Galbana, P tricornutum, dạng đơn lẻ hay hỗn hợp, kết quả cho thấy tỉ lệ sống và sức tăng trưởng của

ấu trùng thấp nhất ở nghiệm thức cho ăn hỗn hợp T seucica và I Galbana (Moskera và ctv., 1989) Dunaliella không chỉ có vai trò quan trọng trong ương nuôi nhuyễn thể mà

chúng còn dùng làm thức ăn cho một số loài cá biển, cho Artemia và động vật phiêu sinhkhác

Đồ thị 10.3 Thành phần acid béo của 10 loài vi tảo (Volkman et al., 1989).

2.2.3 Tảo Spirulina

Cùng với Chlorella và Dunaliella, Spirulina cũng là loài tảo rất giàu protein, acid

amin thiết yếu, acid béo, khoáng, vitamin và các hợp chất carotenoid nên chúng

được xem là nguồn dinh dưỡng rất tốt trong nuôi thủy sản Mustafa và ctv (1994) thông báo Spirulina được thêm vào làm thức ăn bổ sung cho Pagrus major với tỉ lệ 5% đã

làm tăng tốc độ tăng trưởng của cá, hiệu quả chuyển đổi thức ăn và hiệu suất sử dụngprotein; thành phần protein có trong thịt cá không bị ảnh hưởng xấu So với những loại tảo

có kích thước lớn được thí nghiệm trước đó thì loài Spirulina ảnh hưởng tốt nhất đến sự

tăng trưởng và sử dụng thức ăn của cá Red sea beam El (1994) cũng cho biết tốc độtăng trưởng và hiệu quả sử dụng thức ăn của cá Silver sea beam khác nhau không có ý

nghĩa giữa nghiệm thức có bổ sung 50% Spirulina trong khẩu phần ăn với nghiệm thức đối

chứng 100% bột cá

Tuy nhiên, thay 75% Spirulina thì có ảnh hưởng bất lợi Spirulina cũng được đề nghị thay thế một phần bột cá trong chế độ ăn của cá rô phi O mossambicus.

Boonyarapalin và ctv (1989) nghiên cứu về sự thay đổi màu sắc của cá rô phi

đỏ Oreoromic niloticus với các nguồn bổ sung sắc tố khác nhau, gồm: Spirulina marigold,

Pepal meal, bột đầu tôm, bột nghệ và thức ăn đối chứng Ông thấy rằng tương ứng với các

loại thức ăn trên, màu sắc của cá rô phi thay đổi theo thứ tự nâu đỏ, vàng lam, lam, cam

và hơi cam

Một nghiên cứu khác cũng cho biết sắc tố của cá chép trở nên đậm hơn khi cho cá ăn

khẩu phần có bổ sung 10% Spirulina Nguồn cung cấp sắc tố khác là Marigold petal chỉ

cho sự biến đổi màu nhẹ (Wutiporn-Phromkunthong, 1984) Sự biến đổi màu sắc của tôm

sú nuôi cũng được Okada và ctv nghiên cứu Các tác giả nghiên cứu sử dụng các nguồn

bổ sung carotenoid khác nhau trong khẩu phần ăn của tôm từ β-caroten, Spirulina, Phaffia

và krill oil họ nhận thấy Spirulina cho kết quả tốt nhất về sự gia tăng hàm lượng caroten trong vỏ của tôm Nên cho tôm ăn với khẩu phần chứa 3% Spirulina trong 1 tháng trước

khi thu hoạch

Nghiên cứu về ảnh hưởng của các nguồn protein khác nhau trong khẩu phần ăn của tôm

thẻ (Penaeus indicus), Ali (1992) phát hiện Spirulina và đậu phụng cho sức tăng trưởng của

tôm tốt hơn so với bánh dầu dừa; hiệu quả sử dụng protein thô và giá trị sinh học của

Spirulina cao hơn so với đậu phụng Khi ương ấu trùng tôm he (Penaeus) từ gia đoạn Zoea 1 đến Mysis 2, Gu và ctv (1989) thấy rằng ấu trùng được cho ăn Spirulina apletensis và S platensis cộng với bột đậu nành, đạt kích cỡ 663-757 dài hơn có ý nghĩa so với thức ăn đối

chứng chỉ dùng bột đậu nành Tỉ lệ tôm sống của nghiệm thức trên đạt 48-53%, cao hơn rấtnhiều so với đối chứng (11%)

2.2.4 Tảo khuê

2.2.4.1 Các giống nuôi trồng chủ yếu:

Skeletonema Thalassiosira Phaeodactylum Chaetoceros Cyclindrotheca Bellerochea Actinocysclus Nitzchia Cyclotella.

BS

BL: Ấu trùng nhuyễn thể

BP: Hậu ấu trùng nhuyễn thể

BS: Artemia

ML: Ấu trùng tôm nước ngọt

PL: Ấu trùng tôm biển

Tảo khuê là một trong những loài tảo phù hợp về kích thước và chất lượng dinh dưỡngcho ấu trùng tôm sú Tảo có tốc độ tăng trưởng nhanh, có thể nuôi trong điều kiện nhân tạo,trong các trại sản xuất giống Qua thực tế sản xuất và nghiên cứu người ta đã tìm ra được hai

loại tảo Silic (Baciliariophyta) để nuôi sinh khối và làm thức ăn cho ấu trùng tôm: Chaetoceros sp và Skeletonema costatum.

2.2.4.2 Đặc điểm tảo khuê

Dạng chuỗi, kích thước tế bào 4-6 μm, Chaetoceros sp: 10-20 tb/chuỗi, Skeletonema costatum : 20-50 tb/chuỗi

- Phát triển qua 3 pha:

• “Lag” : pha thích nghi

• “Exponential”: Pha tăng sinh

• “Stationary”: Pha bão hòa

2.2.4.3 Kĩ thuật nuôi tảo Chaetoceros sp và Skeletonema costatum :

Môi trường nuôi cấy

Dùng môi trường Walne để cấy giữ và nuôi sinh khối tảo khuê

Các dung dịch theo thứ tự sau:

Dung dịch 1 (tăng trưởng)

- Hòa tan trong 100 ml nước ngọt

Dung dịch 3 (dung dịch tăng thêm)

- Hòa tan trong 1 lít nước ngọt t

Dung dịch 4 (môi trường silicat)

- Na2SiO3.5H2O 20gr (hoặc 67ml)

- Hòa tan trong 1 lít nước ngọt

Các môi trường trên khi dùng trong nuôi cấy thì dùng mỗi loại dung dịch (1,3,4,5) theo

tỷ lệ 1/1000 (1ml dung dịch mỗi loại cho 1 lít nước) Khi dùng để nuôi sinh khối thì bón cácdung dịch trên theo tỷ lệ 1/10.000

Nguồn nước:

Nguồn nước nuôi giữ và nuôi sinh khối tảo cần phải được xử lý (xem phần kỹ thuật xử

lý nước)

Kỹ thuật thu giống:

Giống được vớt ở những vùng ven bờ biển vào lúc triều cao, dùng lưới phiêu sinh cókích thước mắt lưới 15-18μm, vớt theo hình số 8 Để có loài cần nuôi ta phải thu mẫu nhiều

lần Dưới kính hiển vi ta kiểm tra được tảo Chaetoceros sp và Skeletonema có dạng chuỗi.

Thuần giống:

Tảo vớt tự nhiên thường lẫn nhiều tạp mùn bả hữu cơ và động vật phù du Do vậy taphải phân lập tảo bằng lưới có kích thước mắt lưới lớn hơn lượt qua nhiều lần và cuối cùngchỉ giữ lại phần nước có tảo trong đó

Có thể thực hiện việc thuần giống tảo theo 2 phương pháp sau:

Dùng ưu thế môi trường để thuần giống một cách tương đối Nghĩa là trong điều kiệnmôi trường dinh dưỡng đưa vào phù hợp với sinh học phát triển của 2 giống tảo này sẽ giúpcho chúng ưu tiên phát triển hơn Nên trải qua một thời gian 2 giống tảo này sẽ chiếm ưu thế

để phát triển quần thể, chúng sẽ trở nên thuần chủng

- Dùng phương pháp phân lập để tách 2 giống tảo này ra để nuôi riêng với môi trườngdinh dưỡng thích hợp Sau nhiều lần phần lập chúng sẽ trở nên thuần chủng

- Khi tảo giống đã thuần chủng thì được nuôi giữ và đưa ra nuôi sinh khối

Giữ giống

Để chủ động cung cấp tảo cho sản xuất, chúng ta cần phải có phương pháp lưu giữ tảo.Việc lưu giữ tảo được thực hiện trong phòng nuôi cấy tảo hoặc ở khu phân bố riêng cho vùngnuôi tảo hoặc trong trại sản xuất tôm giống Giống được giữ trong bình thủy tinh hay bìnhtam giác và được nuôi trong môi trường Walne ở nồng độ muối từ 25-30 ‰ Thời gian nuôitùy thuộc vào mật độ tảo đưa ra ban đầu và sự tăng trưởng của tảo nuôi Thông thường thờigian nuôi giữ tảo từ 16-24h Cách lưu giữ này có thể đảm bảo chất lượng tảo giống trước khiđưa vào nuôi sinh khối

Kỹ thuật nuôi sinh khối:

Trong các trại sản xuất tôm giống, người ta thường bắt đầu nuôi sinh khối tảo khi ấutrùng Nauplius (N) ở giai đoạn N3 hoặc N4 Việc nuôi sinh khối được tiến hành theo các bướcsau:

- Vệ sinh kỹ bể nuôi bằng xà phòng sau đó rửa lại bằng nước biển đã xử lý

- Bơm nước biển đã xử lý vào bể

- Khi tảo trong bể nuôi sinh khối đạt đến mật độ khoảng 500.000 - 600.000tb/ml hoặcbằng mắt thường ta thấy tảo có màu nâu đậm là có thể tiến hành thu sinh khối

* Cách thu: Dùng dây nhựa # 21 hoặc lớn hơn tùy theo dòng chảy, một đầu được buộc

chảy liên tục trong khoảng thời gian 15-30 phút, các tế bào tảo được giữ lại, sau đó tháo túi ra

và chuyển sinh khối tảo này vào xô, cứ thế lại tiếp tục thu cho đến khi nước trong bể nuôi tảocòn khoảng 1/4-1/5 thì có thể kết thúc

2.2.4.4 Vai trò của tảo khuê trong nuôi trồng thủy sản:

Làm thức ăn trong nuôi trồng thủy sản

Trong lớp tảo khuê, loài Skeletonema costatum được phân lập lần đầu tiên bởi Masue

(1941) đã được dùng rộng rãi và là thức ăn rất quan trọng của âu trùng tôm biển Hudinaga

đã đạt được thành công đầu tiên trong việc sử dụng tảo này làm thức ăn cho ấu trùng tôm, tỉ lệsống ở giai đoạn Mysis đạt 30%, cao hơn rất nhiều so với các kết quả trước đây, chỉ đạt 1%

(Liao, 1983) Từ kết quả đó, nhiều loài tảo khuê khác như Chaetoceros sp., Thlasiosira, Isochrysis, cũng được nghiên cứu làm nguồn thức ăn cho ấu trùng tôm Tùy theo từng loài

tảo và đặc điểm của chúng mà mỗi loài đều có những ưu điểm và nhược điểm riêng đối với ấutrùng tôm

Trong quá trình phát triển của lĩnh vực sản xuất tôm giống, người ta đã chế biến ranhiều loại thức ăn nhân tạo để thay thế một phần hoặc toàn bộ tảo khuê Tuy nhiên, đếnnay tảo khuê vẫn được xem là thức ăn tươi sống rất quan trọng của ấu trùng tôm Trong thínghiệm so sánh về sự ảnh hưởng của 9 loại thức ăn nhân tạo dùng thay cho tảo khuê

(Chaetoceros) làm thức ăn cho ấu trùng tôm, Utama và ctv (1992) nhận thấy giảm mật độ

tảo từ 50.000 xuống còn 5.000 tế bào/ml do việc thay thế tảo bằng thức ăn nhân tạo vẫncho kết quả tốt, tỉ lệ sống của ấu trùng tôm giữa các nghiệm thức vẫn không khác nhau,nhưng mật độ tảo không thể thấp hơn 5.000 tế bào/ml Hơn nữa, Chu (1991) cũng nhận

thấy ấu trùng tôm Metapenaeus ensis và Penaeus chinese cho ăn thức ăn nhân tạo bị chậm lớn và tỉ lệ sống luôn thấp hơn so với tôm cho ăn Chaetoceros garcilis và Artemia Kết quả thí nghiệm của Chu (1989) cho thấy chỉ dùng một loài tảo Chaetoceros gracilis có thể cung cấp chế độ ăn đầy đủ dinh dưỡng cho ấu trùng tôm Metapenaeus ensis từ

giai đoạn Zoea đến PL6 với tỉ lệ sống đạt 35-63% Việc bổ sung Artemia không làm cảithiện được tỉ lệ sống của ấu trùng tôm

Bên cạnh đó, tảo khuê còn đóng vai trò quan trọng trong nuôi nhuyễn thể

Okauchi (1990) thí nghiệm tìm hiểu về vai trò của tảo đối với spat của trai (Pintctada fucata) và thấy sức tăng trưởng của spat cho ăn chỉ có tảo Isochrysis aff galbana thấp hơn

so với spat cho ăn kết hợp Isochrysis galbana và Chaetoceros garcilis Laing và ctv (1990) nghiên cứu về giá trị dinh dưỡng của tảo khô loài Nannochloris sp và Tetraselmis seucica

so với lô đối chứng gồm hỗn hợp tảo Chaetoceros calcitral và T-ISO dùng làm thức ăn cho ấu trùng nghêu Manila (Tapes philipinarum), thấy rằng ấu trùng nghêu cho ăn tảo khô

có sức tăng trưởng bằng hoặc cao hơn so với cho ăn dạng tươi sống, nhưng thấp hơn so với

lô đối chứng

Gây màu nước

Trong nuôi trồng thủy sản nói chung, nuôi tôm - cá nói riêng, màu nước có vai trò rấtquan trọng trong việc tham gia hình thành chuỗi thức ăn tự nhiên, hệ lọc sinh học, ổn định cácthông số môi trường… Nói cách khác, nuôi thủy sản muốn thành công, trước tiên cần phảinuôi và giữ màu nước ổn định, bền vững

Thực chất, màu nước trong ao - hồ nuôi thủy sản được hình thành chủ yếu do các hệphiêu sinh thực vật (Phytoplankton), phiêu sinh động vật (Zooplankton), các loài tảo, ấu trùngcác loài giáp xác… Đối với ngành thủy sản, màu nước được xem là lý tưởng để nuôi tôm - cátốt nhất đó là màu xanh lá chuối non và màu vàng vỏ đậu xanh Trong đó, màu xanh lá chuốinon thể hiện sự hiện diện mật độ cao của loài tảo lục (Chlorella), màu vàng vỏ đậu xanh, thểhiện sự hiện diện mật độ cao của tảo khuê (Chaetoceros), tảo Silic (Skeletonema) Sự hiệndiện 3 loài tảo này trong các ao - hồ nuôi thủy sản, thể hiện môi trường rất nhiều thức ăn tự

nhiên, phong phú về chủng loại thức ăn tự nhiên, cân bằng các yếu tố môi trường và cácphương trình sinh hóa - sinh lý, ít các loài tảo độc - rong độc, giàu dưỡng chất.

CHƯƠNG 3: LUÂN TRÙNG (ROTIFERS) 3.1 Đặc điểm sinh học của luân trùng

Cơ thể luân trùng được phân biệt thành 3 phần khác nhau: đầu, thân và chân

- Phần đầu: mang bộ máy tiêm mao, là cơ quan giúp cho sự vận động và tạo dòng nước đưathức ăn vào miệng Phần trên cùng của đầu là cơ quan cảm giác

- Phần thân: có lớp vỏ cuticul không thấm nước, chỉ bị phân huỷ khi luân trùng chết

- Phần chân có dạng vòng, có khả năng co rút, phần tận cùng không phân đốt với hai mấuchân tiết chất dính giúp cơ thể dính vào giá thể (Fukúho, 1981 trích bởi Cái Ngọc Bảo Anh,1999)

Luân trùng có kích thước cơ thể nhỏ dao

động từ 100-360 μm, cơ thể có dạng hình trứng dài

và hơi dẹp Bờ bụng trước của vỏ có 4 gai và có

dạng u lồi, giữa có khe hình chữ V Bờ lưng trước

có 6 gai hình tam giác và đỉnh nhọn Cơ quan đặc

trưng của luân trùng là mề nghiền, có tác dụng trong

việc nghiền các hạt được ăn

Luân trùng thuộc về lớp động vật đa bào

nhỏ nhất Trong số hơn 1000 loài đã được nhận

biết, có tới 90% loài sống ở môi trường nước

ngọt Chiều dài cơ thể của rotifer khoảng 2mm,

con đực nhỏ hơn và kém phát triển hơn con cái

Cơ thể của tất cả các loài gồm một số tế bào cố

định (ví dụ các loài Brachionus chứa khoảng

1000 tế bào (xem hình 10.6 mô tả sơ lược một số

loài rotifer nước mặn và nước ngọt)

3.1.3 Phân bố và dinh dưỡng của luân trùng

Luân trùng phân bố rộng nhiều nơi trên thế

giới, ở nước ta phân bố ở ao, đầm… với mật độ

cao Brachionus plicatilis là động vật ăn lọc nên

thức ăn chủ yếu là vi tảo, vi khuẩn, mùn xác hữu

cơ, vật thể lơ lửng trong nước

3.1.4 Sinh trưởng và dinh dưỡng

Dựa vào các đặc điểm hình thái khác nhau, người ta phân loại ra 2 dòng Brachionus là

dòng nhỏ (dòng S) và dòng lớn (dòng L)

- Luân trùng dòng S là Brachionus rotundiformis, có

chiều dài vỏ giáp từ 100-210 μm (trung bình là 160 μm)

- Luân trùng dòng L là Brachionus plicatilis, có

chiều dài vỏ giáp từ 130-340 μm (trung bình là 239 μm)

khô của luân trùng dòng S là 0,22μg và luân trùng dòng L

là 0,33μg

khác nhau, có khả năng chịu đựng nhiệt độ khác nhau và cónhiệt độ sinh trưởng tối ưu khác nhau (Fushuko, 1989).Dòng S sinh trưởng tối ưu ở nhiệt độ từ 28-35oC Dòng Lđạt sinh trưởng tối ưu ở nhiệt độ từ 18-25oC

Luân trùng B plicatilis là loài ăn lọc không chọn lọc, thức ăn có kích thước 20-25 μm

mang đến miệng nhờ sự chuyển động của vòng tiêm mao (Dhert, 1996) thông qua hoạt độngbơi lội Trong tự nhiên, các loại thức ăn thường được luân trùng sử dụng là tảo, vi khuẩn, nấmmen, chất hữu cơ lơ lững trong nước

Brachionus plicatilis with resting egg Brachionus rotundiformis with parthenogenesis egg

(photograph by Jung Min-Min) (photograph by Jung Min-Min)

3.1.5 Đặc điểm sinh sản và vòng đời của luân

trùng

Luân trùng có tuổi thọ ngắn, trung bình 3.4

-4.4 ngày ở điều kiện nhiệt độ 25°C Chúng có thể

đạt đến giai đoạn trưởng thành chỉ 0.5 - 1.5 ngày

sau khi nở hay đẻ Sau đó, con cái có thể đẻ liên

tục, mỗi lần cách nhau khoảng 4 giờ Suốt đời

sống, con cái có thể tham gia đẻ 10 lứa Tuy

nhiên, khả năng sinh sản của con cái còn tùy

thuộc rất nhiều vào điều kiện môi trường, đặc biệt

là nhiệt độ

Vòng đời của luân trùng có sự luân phiên

giữa 2 hình thức sinh sản (hình 10.5):

Sinh sản vô tính: con cái vô tính sẽ sinh ra

trứng lưỡng bội (2n) và sẽ phát triển thành con cái

vô tính Con cái này sinh sản với tốc độ nhanh,

nhịp sinh sản khoảng 4 giờ dưới điều kiện thuận lợi Tốc độ sinh sản phụ thuộc vào điều kiệnnuôi và tuổi của luân trùng Đây là hình thức sinh sản nhanh nhất để tăng quần thể luân trùng

và là hình thức quan trọng trong hệ thống nuôi luân trùng

Sinh sản hữu tính: Trong vòng đời của luân trùng, khi có sự biến động đột ngột của điềukiện môi trường như nhiệt độ nồng độ muối… luân trùng sẽ chuyển sang hình thức sinh sảnhữu tính Trong quá trình này xuất hiện cả con cái vô tính và con cái hữu tính, chúng đều cóhình thái giống nhau, khó phân biệt tuy nhiên con cái hữu tính sẽ sinh ra trứng đơn bội (1n).Con cái hữu tính có 3 kiểu sinh sản:

- Con non sinh ra từ những trứng đơn bội không thụ tinh sẽ phát triển thành con đực.Con đực có kích thước bằng 1/3 kích thước con cái Chúng không có ống tiêu hoá và bàngquang nhưng có tinh hoàn đơn với nhiều tinh trùng thành thục

- Trứng nghỉ: là trứng đơn bội đã thụ tinh Trứng nghỉ có vách tế bào dày giúp nó chịu đựngqua điều kiện khắt nghiệt và khi gặp điều kiện thuận lợi sẽ nở thành con cái vô tính

3.2 Kỹ thuật nuôi luân trùng

3.2.1 Điều kiện nuôi

Nhiệt độ

Nhiệt độ thích hợp cho luân trùng phụ thuộc vào hình thái của chúng Luân trùng dònglớn (dòng L) sẽ phát triển tốt ở nhiệt độ 18-25°C trong khi luân trùng dòng nhỏ (dòng S) thíchhợp với nhiệt độ là 28-35°C, nhưng nhìn chung dao động nhiệt độ thích hợp cho luân trùng là20-30°C (Fulks và Main, 1991) Nhiệt độ ảnh hưởng đến thành phần sinh hoá và khả năngtiêu thụ thức ăn của luân trùng Ở nhiệt độ cao sẽ tăng khả năng tiêu thụ thức ăn đồng thờităng chi phí thức ăn Ở nhiệt độ cao, luân trùng sẽ tiêu thụ rất nhanh nguồn carbohydrate vầchất béo dự trữ (Dhert, 1996)

Bảng 3 Ảnh hưởng của nhiệt độ đến hoạt động sinh sản của Brachionus plicatlis (Theo

Ruttner-Kolisko, 1972)

Nhiệt độ (0C) 15 20 25

Thời gian để phát triển phôi (ngày) 1,3 1,3 0,6

Thởi gian đẻ các con cái non đẻ lần đầu (ngày) 3,0 1,9 1,3

Khoảng thời gian giữa hai lần đẻ (giờ) 7,0 5,3 4,0

Tuổi thọ (ngày) 15 10 7

Số trứng do 1 con cái đẻ trong cuộc đời của nó 23 23 20

pH: Trong tự nhiên luân trùng có thể sống ở pH từ 5-10, thích hợp nhất ở 7,5-8,5 (Hoff

và Snell, 2004) Hoạt động bơi lội và hô hấp của luân trùng hầu như không thay đổi khi pHtrong khoảng 6,5-8,5 và suy giảm khi pH dưới 5,6 hoặc trên 8,7 (Nogrady 1993) Hoạt độngbơi lội của luân trùng trong môi trường kiềm giảm nhanh hơn trong môi trường axit

Độ mặn: Độ mặn thích hợp nuôi luân trùng được xác định nằm trong khoảng 4 – 35 ppt

(Lubzens, 1987), tốt nhất là 25 ppt ( Spektorova, 1998 trích Như Văn Cẩn, 1999) Mặc dù,luân trùng có thể tồn tại ở độ mặn 1-97 ppt, nhưng nó chỉ phát triển tốt ở độ mặn tối ưu, sựbiến đổi đột ngột về độ mặn có thể làm luân trùng ngừng hoạt động, gây chết hoặc làm giảmchất lượng luân trùng, điều này có ý nghĩa khi ta sử dụng luân trùng để làm thức ăn cho ấutrùng động vật biển trước khi cho ấu trùng ăn ta cần phải làm thuần đến độ mặn thích hợp

Oxy hòa tan: Ngoài hai yếu tố chính là nhiệt độ và độ mặn thì các yếu tố như oxy hoà

tan, NH3 … cũng có những ảnh hưởng theo các mức độ khác nhau Trong nuôi sinh khối vớimật độ cao cần quan tâm tới việc bổ sung ôxy, nhưng cũng không nên sục khí quá mạnh bởi

có thể làm tổn thương tới luân trùng Luân trùng có thể tồn tại trong nước với hàm lượng ôxythấp tới 2 mg/l