Nghiên cứu thu nhận gellan từ Sphingomonas paucimobilis định hướng ứng dụng trong công nghiệp thực phẩm

Gellan là một polysaccharit ngoại bào, được sinh tổng hợp bởi nhóm vi khuẩn hiếu khí Sphingomonas sp. Gellan đã được Mỹ và Châu Âu cho phép sử dụng trong thực phẩm, dược phẩm và các ngành công nghiệp khác như một chất tạo độ đặc, chất ổn định, chất làm dày và chất tạo gel. So với các polysaccharit khác, gellan có nhiều lợi thế như có thể duy trì độ bền ở nhiệt độ cao (trên 90 o C), ổn định trong khoảng pH rộng (3 - 8) nên được ứng dụng nhiều trong sản xuất nước giải khát. Trong sản xuất bánh, kẹo dẻo, khi thêm gellan giúp tạo gel mềm, mọng nước và tăng được nhiệt độ nóng chảy, ngăn cản sự tan chảy và biến dạng sản phẩm. Gellan thường cho ra gel mềm, đàn hồi, trong và với tính chất tạo vi màng, có khả năng ngăn oxy nên cũng rất thích hợp cho sử dụng tạo màng bao bảo quản quả. Sản phẩm khử acyl của gellan là tác nhân làm đông vượt trội với sự trong suốt cao, tạo gel giòn ở nồng độ thấp (dưới 0,4 %), có khả năng hồi phục nhiệt khi đun nóng và làm lạnh, được ứng dụng nhiều trong sản xuất thạch. Sở hữu những đặc tính quí báu trên, nên hiện nay gellan được ứng dụng rộng rãi trong chế biến và bảo quản thực phẩm, nhu cầu về thị trường ngày một tăng. Các công bố về quá trình sinh tổng hợp, thu nhận gellan trên thế giới cũng luôn được cập nhật, bổ sung các thông tin về cải tạo chủng giống, điều kiện lên men, thu hồi nhằm nâng cao hiệu suất và chất lượng cho chế phẩm. Ở Việt Nam, hiện chưa có cơ sở nào sản xuất được gellan, gellan nhập ngoại đã được sử dụng để bổ sung vào nhiều sản phẩm thực phẩm khác nhau, tuy nhiên giá của chúng vẫn còn cao (khoảng 20-50 usd/kg tùy loại). Trong giai đoạn 2013-2015, nhóm nghiên cứu của đề tài chúng tôi đã phân lập được một số chủng có khả năng sinh tổng hợp gellan khá cao (18-20 g/lit dịch nuôi). Đề tài cũng đã bước đầu khảo sát được các điều kiện lên men, thu hồi gellan, tuy nhiên công nghệ chưa sẵn sàng cần phải có các nghiên cứu cải tiến hơn nữa nhằm nâng cao hiệu suất sinh tổng hợp gellan và hoàn thiện hơn các đánh giá về đặc tính, chất lượng cho các chế phẩm gellan, gellan khử acyl làm cơ sở cho các nghiên cứu ứng dụng chúng. Do vậy, đề tài “Nghiên cứu thu nhận gellan từ Sphingomonas paucimobilis định hướng ứng dụng trong công nghiệp thực phẩm” đã được lựa chọn trong khuôn khổ của luận án này.

MỤC LỤC LỜI CẢM ƠN i LỜI CAM ĐOAN ii MỤC LỤC iii DANH MỤC CHỮ VIẾT TẮT vii DANH MỤC CÁC BẢNG viii DANH MỤC CÁC HÌNH VẼ VÀ ĐỒ THỊ x CÁC PHỤ LỤC KÈM THEO xii MỞ ĐẦU CHƢƠNG TỔNG QUAN 1.1 THÔNG TIN CHUNG VỀ GELLAN VÀ GELLAN KHỬ ACYL 1.1.1 Cấu tạo 1.1.2 Tính chất 1.1.3 Cơ chế tạo gel yếu tố ảnh hưởng tới trình tạo gel 1.1.4 Sphingomonas paucimobilis - nguồn sinh tổng hợp gellan 1.1.4.1 Đặc điểm hình thái, sinh lý, sinh hóa 1.1.4.2 Cơ chế sinh tổng hợp gellan 1.1.4.2 Động học trình sinh trưởng tổng hợp gellan S paucimobilis 1.2 TÌNH HÌNH NGHIÊN CỨU THU NHẬN GELLAN VÀ GELLAN KHỬ ACYL 11 1.2.1 Các yếu tố ảnh hưởng đến trình sinh tổng hợp gellan 11 1.2.1.1 Ảnh hưởng tuổi giống tỷ lệ giống 11 1.2.1.2 Ảnh hưởng thành phần môi trường lên men 11 1.2.1.3 Ảnh hưởng nhiệt độ, pH điều kiện cấp khí 14 1.2.1.4 Cải tạo chủng giống cho tăng khả sinh tổng hợp gellan 15 1.2.2 Thu hồi làm gellan từ dịch lên men 18 1.2.3 Chuyển hóa gellan thành gellan khử acyl 20 1.3 TÌNH HÌNH NGHIÊN CỨU ỨNG DỤNG GELLAN VÀ GELLAN KHỬ ACYL 21 1.3.1 Ứng dụng tạo màng bảo quản trái 21 1.3.2 Ứng dụng chế biến thực phẩm 23 1.3.3 Ứng dụng lĩnh vực khác 25 1.4 VẤN ĐỀ CẦN NGHIÊN CỨU CỦA LUẬN ÁN 26 CHƢƠNG VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 29 2.1 ĐỐI TƢỢNG NGHIÊN CỨU VÀ TRANG THIẾT BỊ 29 2.1.1 Chủng giống, nguyên liệu chuối 29 2.1.2 Môi trường 29 2.1.3 Hóa chất 30 2.1.4 Thiết bị, dụng cụ 30 iii 2.2 PHƢƠNG PHÁP PHÂN TÍCH 31 2.2.1 Xác định hàm lượng gellan gellan khử acyl 31 2.2.2 Phân tích cấu trúc gellan gellan khử acyl (phổ MNR) 32 2.2.3 Xác định khối lượng phân tử gellan 33 2.2.4 Xác định mức độ deacyl hóa (ĐĐA) gellan khử acyl 34 2.2.5 Xác định độ bền gel gellan khử acyl 35 2.2.6 Xác định khả tạo gel với ion Ca+2 Na+ 35 2.2.7 Phân tích tiêu hóa lý vi sinh gellan 35 2.2.8 Xác định mật độ tế bào vi khuẩn 36 2.2.9 Xác định hàm lượng protein 36 2.2.10 Xác định hàm lượng màu carotenoid 36 2.2.11 Phương pháp xử lí số liệu 36 2.3 PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 36 2.3.1 Nhân giống điều kiện bảo quản giống 36 2.3.2 Đánh giá khả sinh tổng hợp gellan S paucimobilis GL4 36 2.3.3 Khảo sát yếu tố ảnh hưởng tới khả sinh tổng hợp gellan chủng S paucimobilis GL12 37 2.3.3.1 Ảnh hưởng nguồn nitơ 37 2.3.3.2 Ảnh hưởng việc bổ sung axit amin 37 2.3.3.3 Ảnh hưởng việc bổ sung H2O2 37 2.3.4 Tối ưu hóa mơi trường sinh tổng hợp gellan cho chủng S paucimobilis GL12 38 2.3.5 Xác định điều kiện sinh tổng hợp gellan bình lên men 10 lít 40 2.3.5.1 Xác định tốc độ khuấy 40 2.3.5.2 Xác định thời gian thu gellan 40 2.3.6 Nghiên cứu thu hồi gellan từ dịch lên men 40 2.3.6.1 Nghiên cứu kết tủa gellan dung môi hữu 40 2.3.6.2 Loại màu khỏi kết tủa gellan 41 2.3.7 Xác định điều kiện sấy, bảo quản chế phẩm gellan dạng bột 41 2.3.7.1 Sấy đối lưu kết tủa gellan tạo chế phẩm dạng bột 41 2.3.7.2 Nghiên cứu lựa chọn bao bì 42 2.3.7.3 Xác định chế độ bảo quản 42 2.3.8 Nghiên cứu thu nhận gellan khử acyl 42 2.3.8.1 Xác định điều kiện phản ứng chuyển hóa gellan thành gellan khử acyl 42 2.3.8.2 Xác định tỷ lệ dịch/ethanol cho kết tủa gellan khử acyl 43 2.3.8.3 Xác định hiệu suất sấy chế phẩm gellan khử acyl 43 2.3.8.4 Bảo quản chế phẩm gellan khử acyl 43 2.3.9 Ứng dụng chế phẩm gellan tạo màng bao bảo quản chuối …………… 43 2.3.9.1 Xác định công thức dung dịch tạo màng gellan 44 iv 2.3.9.2 Xác định thông số công nghệ dung dịch tạo màng gellan 44 2.3.9.3 Đánh giá hiệu bảo quản màng 47 2.3.10 Ứng dụng chế phẩm gellan khử acyl sản xuất thạch dứa 48 2.3.10.1 Xác định hàm lượng gellan khử acyl thích hợp cho tạo gel thạch 48 2.3.10.2 Đánh giá hiệu bổ sung gellan khử acyl sản xuất thạch dứa 48 CHƢƠNG KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 50 3.1 LỰA CHỌN CHỦNG CHO KHẢ NĂNG SINH TỔNG HỢP GELLAN CAO 50 3.1.1 Đánh giá khả sinh tổng hợp gellan chủng S paucimobilis GL4 50 3.1.2 So sánh khả sinh tổng hợp gellan chủng S paucimobilis GL4 S paucimobilis GL12 53 3.2 NGHIÊN CỨU THU NHẬN GELLAN TỪ CHỦNG S PAUCIMOBILIS GL12 54 3.2.1 Khảo sát ảnh hưởng số yếu tố đến khả sinh tổng hợp gellan 54 3.2.1.1 Ảnh hưởng nitơ 54 3.2.1.2 Ảnh hưởng việc bổ sung axit amin 55 3.2.1.3 Ảnh hưởng việc bổ sung H2O2 56 3.2.1.4 Xác định thời gian lên men thích hợp cho thu nhận gellan 57 3.2.2 Tối ưu hóa điều kiện lên men sinh tổng hợp gellan từ S paucimobilis GL12 58 3.2.3 Xác định điều kiện sinh tổng hợp gellan bình lên men 10 lít 61 3.2.3.1 Xác định tốc độ khuấy 61 3.2.3.2 Xác định thời gian thu hồi gellan 62 3.2.4 Nghiên cứu thu hồi gellan từ dịch lên men 63 3.2.4.1 Tiền xử lý dịch lên men ly tâm loại sinh khối 63 3.2.4.2 Nghiên cứu kết tủa gellan dung môi hữu 65 3.2.4.3 Loại màu khỏi kết tủa gellan 66 3.2.5 Sấy kết tủa gellan tạo chế phẩm dạng bột 68 3.2.6 Nghiên cứu xác định điều kiện bảo quản chế phẩm gellan 70 3.2.6.1 Nghiên cứu lựa chọn bao bì thích hợp cho chế phẩm 70 3.2.6.2 Xác định điều kiện bảo quản 72 3.2.7 Đề xuất qui trình thu nhận gellan từ S paucimobilis GL12 74 3.3 CHUYỂN HÓA GELLAN THÀNH GELLAN KHỬ ACYL 76 3.3.1 Xác định điều kiện chuyển hóa gellan thành gellan khử acyl 76 3.3.1.1 Ảnh hưởng pH đến mức độ deacyl từ gellan 76 3.3.1.2 Ảnh hưởng thời gian phản ứng đến mức độ deacyl 78 3.3.2 Kết tủa gellan khử acyl ethanol 80 3.3.3 Sấy thu hồi chế phẩm gellan khử acyl 81 3.3.4 Bảo quản chế phẩm gellan khử acyl 82 3.3.5 Đề xuất quy trình thu nhận chế phẩm gellan khử acyl 83 3.4 ĐÁNH GIÁ CHẤT LƢỢNG CÁC CHẾ PHẨM 85 3.4.1 Đánh giá chất lượng chế phẩm gellan từ S paucimobilis GL12 85 v 3.4.1.1 Xác định cấu trúc gellan 85 3.4.1.2 Xác định khối lượng phân tử gellan 87 3.4.1.3 Đánh giá tiêu hóa lý, kim loại nặng vi sinh vật gellan 88 3.4.2 Đánh giá chất lượng gellan khử acyl 90 3.4.2.1 Xác định cấu trúc gellan khử acyl 90 3.4.2.2 Đánh giá tiêu hóa lý, kim loại nặng vi sinh vật gellan khử acyl90 3.5 THỬ NGHIỆM ỨNG DỤNG CHẾ PHẨM GELLAN VÀ GELLAN KHỬ ACYL 91 3.5.1 Ứng dụng chế phẩm gellan tạo màng bao bảo quản chuối 91 3.5.1.1 Xác định hàm lượng gellan thích hợp cơng thức dung dịch tạo màng 91 3.5.1.2 Xác định thông số kỹ thuật màng bao gellan lựa chọn 93 3.5.1.3 Đánh giá hiệu bảo quản chuối màng bao gellan 93 3.5.2 Ứng dụng chế phẩm gellan khử acyl sản xuất thạch dứa 97 3.5.2.1 Xác định hàm lượng gellan khử acyl thích hợp cho công thức thạch 97 3.5.2.2 Đánh giá tiêu cảm quan sản phẩm thạch 98 3.5.2.3 Đánh giá tiêu an toàn thực phẩm sản phẩm thạch 100 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 102 4.1 KẾT LUẬN 102 4.2 KIẾN NGHỊ 103 DANH MỤC CÁC CƠNG TRÌNH ĐÃ CÔNG BỐ CỦA LUẬN ÁN 104 vi DANH MỤC CHỮ VIẾT TẮT Ký tự Chú thích ADN Axit deoxyribonucleic ADP Adenosine diphosphate AL/PE Màng nhơm PE Al-Foil Lá nhôm mỏng BOPP/PE Màng Biaxial Oriented Polypropylene PE Cp Centipoazo đơn vị tính độ nhớt CT Cơng thức ĐC Đối chứng TN Thí nghiệm ĐĐA Mức độ deacyl ĐVTN Động vật thí nghiệm GFC Sắc ký lọc gel HDPE Polyethylene tỷ trọng cao MDPE Polyethylene tỷ trọng trung bình NMR Cộng hưởng từ hạt nhân Ny/PE Màng nylon PE PE Polyethylene PET Polyethylene terephthalate PVDC Polyvinylidende chloride TSS Chất rắn hòa tan tổng số vii DANH MỤC CÁC BẢNG Bảng 1.1 Đặc điểm khác gellan gellan khử acyl Bảng 1.2 Ảnh hưởng chủng giống, nguồn dinh dưỡng, điều kiện nuôi cấy đến khả sinh tổng hợp gellan 17 Bảng 1.3 Đặc điểm hiệu gellan 24 Bảng 2.1 Đặc tính gellan gellan khử acyl dùng làm mẫu chuẩn 30 Bảng 2.2 Thời gian liều lượng H2O2 khảo sát 38 Bảng 2.3 Các yếu tố mức yếu tố thí nghiệm tối ưu khả sinh tổng hợp gellan từ chủng S pausimobilis GL12 38 Bảng 2.4 Ma trận thực nghiệm tối ưu khả sinh tổng hợp gellan từ chủng S pausimobilis GL12 39 Bảng 2.5 Chỉ số màu chuẩn cho chuối 44 Bảng 2.6 Tỷ lệ thành phần công thức tạo dung dịch màng gellan 44 Bảng 2.7 Các tiêu đánh giá cảm quan chuối 46 Bảng 2.8 Phiếu cho điểm phép thử cảm quan 47 Bảng 2.9 Bảng điểm cảm quan sản phẩm thạch dứa 48 Bảng 2.10 Bảng mức chất lượng sản phẩm theo tổng số điểm trung bình thành viên hội đồng cảm quan 49 Bảng 3.1 So sánh khả sinh tổng hợp gellan hai chủng S paucimobilis GL4 S paucimobilis GL12 53 Bảng 3.2 Ảnh hưởng nguồn nit đến khả sinh tổng hợp gellan S paucimobilis GL12 54 Bảng 3.3 Ảnh hưởng củ xit đến khả sinh tổng hợp gellan 56 Bảng 3.4 Ảnh hưởng việc bổ sung H2O2 tới khả tích lũy sinh khối gellan 57 Bảng 3.5 Kết ma trận thực nghiệm tối ưu khả sinh tổng hợp gellan từ chủng S pausimobilis GL12 59 Bảng 3.6 Kết phân tích phư ng s i Anov mơ hình 60 Bảng 3.7 Ảnh hưởng nhiệt độ xử lý dịch lên men đến hiệu tách gellan khỏi tế bào vi khuẩn 64 Bảng 3.8 Ảnh hưởng nhiệt độ xử lý dịch tới khả loại protein khỏi dịch lên men 65 Bảng 3.9 Ảnh hưởng số lần kết tủa lặp lại đến hiệu suất thu hồi gellan khả loại màu 67 Bảng 3.10 Ảnh hưởng nhiệt độ sấy đến hiệu suất chất lượng gellan thành phẩm 68 Bảng 3.11 Ảnh hưởng thời gian sấy đến hiệu suất thu hồi gellan 69 Bảng 3.12 Ảnh hưởng củ độ dày lớp vật liệu sấy đến hiệu suất thu hồi gellan 70 Bảng 3.13 Đánh giá hiệu suất thu hồi gellan từ dịch lên men chủng S paucimobilis GL12 70 viii Bảng 3.14 Sự th y đổi độ ẩm độ nhớt gellan sau 06 tháng bảo quản 72 Bảng 3.15 Ảnh hưởng nhiệt độ bảo quản đến chất lượng sản phẩm gellan 73 Bảng 3.16 Các tiêu cảm quan, hóa lý vi sinh chế phẩm gell n trước sau bảo quản 06 tháng 73 Bảng 3.17 Ảnh hưởng pH xử lý tới mức độ deacyl gellan 78 Bảng 3.18 Xác định hiệu xuất sấy thu hồi gellan khử acyl 81 Bảng 3.19 Đánh giá hiệu suất thu hồi gellan khử acyl từ dịch lên men chủng S paucimobilis GL12 82 Bảng 3.20 Các tiêu cảm quan, hóa lý vi sinh chế phẩm gellan khử cyl trước sau bảo quản 06 tháng 82 Bảng 3.21 Kết phân tích chất lượng ATTP chế phẩm gellan 89 Bảng 3.22 Kết phân tích chất lượng sản phẩm gellan khử acyl 91 Bảng 3.23 Ảnh hưởng củ hàm lượng gellan công thức tạo màng đến hiệu bảo quản chuối 92 Bảng 3.24 Một số tiêu đặc tính hóa lý dung dịch tạo màng gellan 93 Bảng 3.25 Ảnh hưởng củ màng b o đến tiêu sinh lý chuối trình bảo quản 94 Bảng 3.26 Kết đánh giá chất lượng cảm quan chuối sau 18 ngày bảo quản 96 Bảng 3.27 Xác định tỉ lệ gellan khử acyl bổ sung thích hợp thành phần thạch 98 Bảng 3.28 Đánh giá tiêu cảm quan thạch dứa có bổ sung gellan 99 Bảng 3.29 Chỉ tiêu ATTP tính chất cảm quan thạch 101 ix DANH MỤC CÁC HÌNH VẼ VÀ ĐỒ THỊ Hình 1.1 Cấu trúc hóa học gellan (A) gellan khử acyl (B) Hình 1.2 C chế tạo gel gellan Hình 1.3 C chế tạo gel gellan có mặt cation Hình 1.4 C chế sinh tổng hợp gellan Hình 1.5 Động học trình STH gellan từ chủng S paucimobilis ATCC 31.461 10 Hình 1.6 S đồ chung thu nhận gellan từ dịch lên men 19 Hình 1.7 S đồ chung thu nhận gellan khử acyl từ gellan 20 Hình 2.1 Khuẩn lạc S paucimobilis GL12 (A) S paucimobilis GL4 (B) 29 Hình 2.2 Đường chuẩn gellan 32 Hình 2.3 Đường chuẩn gellan khử acyl 32 Hình 2.4 Phư ng pháp xác định độ nhớt thực 34 Hình 3.1 Ảnh hưởng nguồn nit tới khả sinh tổng hợp gellan S paucimobilis GL4 50 Hình 3.2 Ảnh hưởng nồng độ trypton tới khả sinh tổng hợp gellan S paucimobilis GL4 51 Hình 3.3 Ảnh hưởng nguồn cacbon tới khả sinh tổng hợp gellan từ S paucimobilis GL4 52 Hình 3.4 Ảnh hưởng nồng độ glucose tới khả sinh tổng hợp gellan từ S paucimobilis GL4 52 Hình 3.5 Động học trình sinh tổng hợp gellan chủng S paucimobilis GL4 53 Hình 3.6 Ảnh hưởng nồng độ bột đậu tư ng đến khả sinh tổng hợp gellan S paucimobilis GL12 55 Hình 3.7 Ảnh hưởng tỷ lệ -threonine đến khả sinh tổng hợp gellan 56 Hình 3.8 Động học q trình sinh trưởng tích lũy gell n chủng S paucimobilis GL12 58 Hình 3.9 Bề mặt đáp ứng thể ảnh hưởng yếu tố đến hàm lượng gellan 60 Hình 3.10 Ảnh hưởng tốc độ khuấy tới khả tạo gellan 62 Hình 3.11 Động học trình sinh tổng hợp gellan chủng S paucimobilis GL12 hệ thống bình lên men sục khí 63 Hình 3.12 Ảnh hưởng loại dung môi tới hiệu suất thu hồi gellan 65 Hình 3.13 Ảnh hưởng tỷ lệ dịch lên men/eth nol đến hiệu suất thu hồi gellan 66 Hình 3.14 Sự cải thiện màu sắc kết tủa gellan qua lần kết tủa lặp lại 67 x Hình 3.15 Qui trình cơng nghệ thu nhận gellan dạng bột từ chủng S paucimobilis GL12 hệ thống bình lên men 10 lít 75 Hình 3.16 Phổ IR mẫu gellan gellan khử acyl 77 Hình 3.17 Ảnh hưởng thời gi n de cyl đến độ deacyl gellan 79 Hình 3.18 Phổ IR gellan khử acyl ( phản ứng pH = 10 / 10 phút) 80 Hình 3.19 Ảnh hưởng tỷ lệ dịch gellan khử cyl/eth nol đến hiệu suất thu hồi 80 Hình 3.20 Kết tủa gellan khử acyl sau lần kết tủa cồn 81 Hình 3.21 Qui trình thu nhận chế phẩm gellan khử acyl 84 Hình 3.22 Phổ cộng hưởng từ hạt nhân - NMR hai chiều mẫu gellan chuẩn 86 Hình 3.23 So sánh phổ proton gellan chuẩn gellan từ S paucimobilis GL12 Error! Bookmark not defined Hình 3.24 Đồ thị biểu diễn mối tư ng qu n giữ độ nhớt rút gọn nồng độ gellan 88 Hình 3.25 So sánh phổ proton gellan khử acyl chuẩn gellan khử acyl từ S paucimobilis GL12 90 Hình 3.26 Sự biến đổi hàm lượng chất khô tổng số chuối theo thời gian bảo quản 96 Hình 3.27 Một số hình ảnh bảo quản chuối từ màng bao gellan 97 Hình 3.28 Ứng dụng gellan khử acyl sản xuất thạch dứa 99 xi CÁC PHỤ LỤC KÈM THEO Phụ lục Hồ sơ chủng S paucimobilis GL2 kết Đánh giá độc tính cấp chuột Phụ lục Các bảng số liệu kết chạy tối ưu hóa điều kiện sinh tổng hợp gellan từ chủng S paucimobilis GL12 xii Bước đầu ứng dụng chế phẩm gellan khử acyl sản xuất thạch dứa với tỷ lệ phối chế 0,6%, cải thiện độ giòn cho sản phẩm so với đối chứng dùng agar 4.2 Kiến nghị - Nghiên cứu nâng cấp quy trình cơng nghệ sản xuất gellan từ chủng S.paucimobillis GL12 hệ thống bình lên men 100 lít, 1500 lít để sớm đưa sản xuất gellan qui mô công nghiệp - Mở rộng khả ứng dụng chế phẩm gellan bảo quản cắt lát gellan khử acyl chế biến thực phẩm (các dạng nước giải khát có độ pH thấp, kẹo dẻo, thạch nước ) 103 DANH MỤC CÁC CƠNG TRÌNH ĐÃ CƠNG BỐ CỦA LUẬN ÁN Nguyễn Thị Hồng Hà, Nguyễn Thị Thu Huyền, Vũ Thu Diễm, Nguyễn Thị Xuân Sâm., (2017), “Tối ưu hó điều kiện lên men gellan từ chủng S paucimobilis GL12”, Tạp chí Nông nghiệp phát triển Nông thôn, Số 22/2017, tr 48 - 54 Ha Thi Hong Nguyen, Huyen Ngoc Nguyen, Linh Le Khanh and Sam Thi Xuan Nguyen., (2017); “Proceduce for obtaining gellan from fermentation broth with S paucimobilis GL12”, AFC Vol 2/2017, pp: 52 - 57 Nguyễn Thị Hồng Hà, Trần Thị Mai, Nguyễn Thị Xuân Sâm (2018), “Nghiên cứu tạo màng gellan ứng dụng bảo quản chuối”, Tạp chí Nơng nghiệp phát triển Nơng thôn, Số 2/2018, tr.95-101 Nguyễn Thị Hồng Hà, Trần Thị Mai, Lê Khánh Linh, Nguyễn Thị Xuân Sâm (2018), “Nghiên cứu chuyển hóa gellan thành gellan khử acyl”, Tạp chí khoa học cơng nghệ Việt Nam, Số 6/2018, tr 64 - 69 104 TÀI LIỆU THAM KHẢO Tài liệu tiếng việt Đặng Xuân Dự (2015), “Nghiên cứu cắt mạch chitosan hiệu ứng ống vận H2O2/ xạ coban – 60 để chế tạo oligochitosan”, Luận án tiến sỹ Lương Đức Phẩm (2009), “C sở khoa học công nghệ bảo vệ môi trường, nhà xuất Giáo dục” Nguyễn Duy Lâm., Phạm Cao Thăng (2011), “Nghiên cứu ứng dụng công nghệ thiết bị sản xuất chế phẩm bảo quản (chế phẩm tạo màng) dùng bảo quản số rau tư i”, Báo cáo tổng kết đề tài cấp Nhà nước mã số KC 07.04/06 -10 Nguyễn Lân Dũng (dịch từ tiếng Nga) (1983), “Thực tập vi sinh vật học”, Nhà xuất Đại học Trung học chuyên nghiệp Hà nội Nguyễn Thị Minh Nguyệt., Nguyễn Duy Lâm., Trần Thị Mai (2017), “Nghiên cứu ứng dụng vật liệu n no để cải tiến chế phẩm tạo màng Hydroxy-propyl-methyl-cellulose (HPMC) dùng bảo quản chuối”, Luận án tiến sỹ Nguyễn Thị Hồng Hà., Nguyễn Ngọc Huyền., Nguyễn Thị Thu Huyền., Vũ Thu Diễm., Lê Thị Trang (2015), “Nghiên cứu ảnh hưởng củ điều kiện lên men đến q trình sinh tổng hợp gơm gellan từ chủng S paucimobilis GL12”, Tạp chí Nơng nghiệp PTNT, số 2/2015, pp: 62- 67 Nguyễn Thị Hồng Hà., Nguyễn Ngọc Huyền., Nguyễn Thị Thu Huyền., Vũ Thu Diễm., Lê Thị Trang (2015), “Nghiên cứu công nghệ sản xuất gôm gellan từ vi sinh vật ứng dụng chế biến bảo quản thực phẩm”, Báo cáo tổng kết đề tài cấp Nhà nước mã số ĐT.04 13/CNSHCB Quy định giới hạn tối đa ô nhiễm sinh học hóa học thực phẩm (Ban hành kèm Quyết định số 46 /2007/QĐ-BYT ngày 19 tháng 12 năm 2007 QCVN 8-3-2012/BYT Bộ trưởng Bộ Y tế) Tài liệu tiếng anh Abid Hussain., Khalid Mahmood Zia., Shazia Tabasum., Aqdas Noreen., Muhammad Ali., Rehana Iqbal., Mohammad Zuber (2017), “Blends and composites of exopolysaccharides; properties and Applications: A review”, International Journal of Biological Macromolecules, 94, pp: 10- 27 105 10 Atares L., & Chiralt A., (2016), “Essential oils as additives in biodegradable films andcoatings for active food packaging”, Trends in Food Science &Technology, 48, pp: 51- 62 11 Amos Nussinovitch (2009), “Biopolymer Films and Composite Coatings”, Modern Biopolymer Science, pp: 295- 326 12 Attallah A, G., Abd-El-Aal S K., Ibrahim S A., and El-Sayd M A (2014), “Improvement the efficiency of Sphingomonas paucimobilis to produce gellan gum by genetically approach”, Journal of Sugar Beet Research, 13 Baxter A., Dillon M., Taylor K.D.A., Roberts G.A.F (1992), “Improved method for determination of the degree of N-acetylatin of chitosan”, International Journal of Biological Marcomolecules 14, pp: 166-169 14 Bajaj B.I., Parag S., Rekha S S,, and Ashok Pandey (2006), “Statistical Approach to Optimization of Fermentative Production of Gellan Gum from ATCC 31461”, Vol 102, No 3, pp: 150-156 15 Bajaj B.I., Shrikant A., Survase Parag S., and Rekha S Singhal (2007), “Gellan Gum: Fermentative Production, Downstream Processing and Applications”, Food Technol Biotechnol, 45 (4), pp: 341- 354 16 Banik R M., And Santhiagu A (2006), “Improvement in production and quality of gellan gum by Sphingomonas paucimobilis under high dissolved oxygen tension levels”, Biotechnol Lett 28, pp:1347-1350 17 Banik R M., Santhiagu A., and Upadhyay S.N (2007), “Optimization of nutrients for gellan gum production by Sphingomonas paucimobilis ATCC-31461 in molasses based medium using response surface methodology”, Bioresource Technology 98, pp:792-797 18 Banks N H (1985), “Response of banana to Pro-long coating at different times relative to the initiation of ripening”, Scientia Horticulturae, 26, pp: 149-157 19 Batham, P., Engel, D., Osborne B.E (1987), “A dietary carcinogenicity study of gellan gum in the albino mouse”, Bio-Research Laboratories Ltd., Montreal, Canada 20 Basundhara K., Ratindra R., Upadhyay S.N (2002), “Effect of environmental factors and carbohydrate on gellan gum production”, Applied Biochemistry and Biotechnology, Vol 102, Iss, pp: 1- 106 21 Bradford M.M (1976), “A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding”, Analytical Biochemistry 72, pp: 248 - 254 22 Correia I.S., Fialho A.M., Videira P., Marques A.R and Albano H (2002), “Extracellular polysaccharides review gellan gum biosynthesis in Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461: Genes, enzymes and exopolysaccharide production engineering”, Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology 29, pp: 170-176 23 Dlamini AM., Peiris PS (1997), “Production of exopolysaccharide by Pseudomonas sp ATCC 31461 (P elodea) using whey as fermentation substrate”, Appl Microbiol Biotechnol, pp: 47- 52 24 Dionisio G A., Takao K., Keiko T., Natsuaki S T (2004), “Inhibitory influence of inorganic salts on banana postharvest pathogens and preliminary application to control crown rot”, J Gen Plant Pathol 70, pp: 61- 65 25 Duan X., Chi Z., Wang L., and Wang X (2008), “Influence of different sugars on pullulan production and activities of a-phosphoglucose mutase, UDPG- pyrophosphorylase and glucosyltransferase involved in pullulan synthesis in Aureobasidium pullulans Y68”, Carbohydrate Polymers 73, pp: 587- 593 26 Dreveton E., Monot F., Lecourtier J., Ballerini D., and Choplin L (1996), “Influence of Fermentation Hydrodynamics on Gellan Gum Physico-Chemical Characteristics”, Journal of fermentation and bioengineerin Vol 82, No 3, pp: 272216 27 Edwin R., Morris K N., Marguerite R., (2012), “Gelation of gellan - A review”, Food Hydrocolloids, 28, pp: 373 - 411 28 Fialho A M., Maitins L O., Donval M L., Leitato J H., Ridout M.J., Jay A.J., Morris VJ., Correia I Sa (1999), “Structures and properties of gellan polymers produced by Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461 from lactose compared with those produced from glucose and from cheese whey”, Appl EnvironMicrobiol, 65: 2485/91 29 Fialho A M., Moreira L M., Granja A T., Popescu A O., Hoffmann K., & Sá-Correia I (2008), “Occurrence, production, and applications of gellan: current state and perspectives”, Applied microbiology and biotechnology, 79(6), pp: 889- 900 107 30 Giavasis I., Harvey L.M., McNeil B (2006), “The effect of agitation and aeration on the synthesis and molecular weight of gellan in batch cultures of Sphingomonas paucimobilis”, Enzyme and Microbial Technology, 38, pp: 101-108 31 Granja A T., Alma P., Ana R., M., Isabel S C., and Arsenio M.F (2007)., “Biochemical characterization and phylogenetic analysis of UDP-glucose dehydrogenase from the gellan gum producer Sphingomonas elodea ATCC 31461” Applied microbiology and biotechnology, 76, 1319 - 27 32 Grau M.A., Tapia M.S., Rodriguez F.J., Carmon A.J., Martin B.O (2007), “Alginate and gellan-based edible coatings as carriers of antibrowning agents applied on freshcut Fuji apples”, Food Hydrocolloids 21, pp: 118-127 33 Ha Thi Hong Nguyen, Huyen Ngoc Nguyen, Huyen Thu Thi Nguyen, Diem Thu Vu, Tuan Nguyen (2013), “Screening of Sphingomonas paucimobilis strains for gellan production”, International workshop on agricultural engineering and post-harvest technology for Asia sustainability, pp: 496- 505 34 Hayashi M., Takei R., Umene S., Narita K., Kato K., Kobayashi Y (2016), “Tribological analysis of the surface of food gels”, Food Hydrocolloids, 58, 343- 346 35 Horace Graham (1993), “Mg2+selectively isolates gellan gum from dairy products”, Journal of food science 58 (3), pp: 539- 543 36 Huang Y., Singh P., Tang J., Swanson B (2004), “Gelling temperatures of high acyl gellan as affected by monovalent and divalent cations with dynamic heological analysis”, Carbohydrate Polymers, 56, pp: 27- 33 37 Hyuck J., Nam-Kyu L., Myung-Kyo S., Sung-Koo K., David L K., Jin-Woo L (2003), “Production of gellan gum by Sphingomonas paucimobilis NK2000 with soybean pomace”, Biochemical Engineering Journal 16, pp: 357- 360 38 Iurciuc S A., Lungu C., Martin P., and Popa M (2015), “Gellan food applications”, Cellulose Chem Technol, 50, pp: 1-13 39 Jansson P., Lingberg B (1983), “Structural studies of gellan gum, an extracellular polysaccharide elaborated by Pseudomonas elodea”, Carbohydrate Research 124, pp: 135-139 40 Jin Huang, Jiang, S., Xu, X., Wu, H., Zhu, X., Ke, Z., Cai, J., Huang, L., Xu Z (2012), “Effects of carbon/nitrogen ratio, dissolved oxygen and impeller type on gellan gum production in Sphingomonas paucimobilis”, Ann Microbiol 62, pp: 299- 305 108 41 José Carlos, Andrade, and Rodrigues Célia Fortuna (2015), “Gellan Gum” Encyclopedia of Biomedical Polymers and Polymeric Biomaterials 42 Kang K.S., Veeder G.T (1982), “Polysaccharide S-60 and bacterial fermentation process for its preparation”, US patent 43377636 43 Kang KS., Colegrave GT., Veeder GT (1982), “Deacetylated polysaccharide S-60” US Patent, 4326052 44 Kang D., Cai Z., Wei Y., Zhang H (2017), “Structure and chain conformation characteristics of high acyl gellan gum polysaccharide in DMSO with sodium nitrate” Polymers 128, pp: 147- 158 45 Khalid M Z., Shazia T., Muhammad F.K (2017), “Recent trends on gellan gum blends with natural and syntheticpolymers: A review”, International Journal of Biological Macromolecules 46 Krochta J M., Catherine D.M.J (1997), “Edible film solve problems”, Food technology, 51, pp: 61-74 47 Kumagai C., Nunokawa Y., Akiyama H., (1981), “The structure of cell wall manans from sake yeast”, Nippon Nogeik Kaishi 55, pp: 209- 216 48 Kuo S M., Chang S J., Wang H Y., Tang S C., & Yang SW (2014), “Evaluation of the ability of xanthan gum/gellan gum/hyaluronan hydrogel membranes to prevent the adhesion of postrepaired tendons”, Carbohydrate Polymers, 114, pp 230- 237 49 Lavertu M., Xia Z., Serreqi A N., Berrada M., Rodrigues A., Wang D., Buschman M D., Gupta A (2003), “A validated 1H-NMR method for the determination of the degree of deacetylation of chitosan”, Journal ofPharmaceutical and Biomedical Analysis 32; pp: 1149-1158 50 Lee M.W., Chen H.J., Tsao S W (2010), “Preparation, characterization and biological properties of gellan gum films with 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide crosslinker”, Carbohyd Polym, 82(3), pp: 920- 926 51 Liang Zhu., Xuechang Wu.,Yamin Chen., Chaodong Qian., Yi Teng., Xianglin Tao (2011), “Cloning and knockout of phytoene desaturase gene in Sphingomonas elodea ATCC 31461 for economic recovery of gellan gum”, Microbiol Biotechnol 38, pp: 1507-1513 109 52 Li X Y., Huang F H., Murphy J B., Gbur E E (1998), “Polyethylene glycol and maltose enhance somatic embryo maturation in loblolly pine (Pinus taeda)”, In Vitro Cell Dev Biol Plant 34, pp: 22-26 53 Lobas D., Schumpe S., Deckwer W D (1992), “The production of gellan exopolysaccharide with Sphingomonas paucimobilis E2 (DSM6314)”, Appl Microbiol Biotechnol 37, pp: 411- 415 54 Manna B., A Gambhir and Ghosh P (1996), “Production and rheological characteristics of the microbial polysaccharide gellan”, Lett Appl Microbiol 23, pp:141-145 55 Martin Alberto Masuelli (2014), “Mark-Houwink Parameters for Aqueous-Soluble Polymers and Biopolymers at Various Temperatures”, Journal of Polymer and Biopolymer Physics Chemistry, Vol 2, No 2, pp: 37-43 56 Mao R., Tang J., Swanson B.G (2000), “Texture properties of high and low acyl mixed gellan gels”, Carbohydrate Polymers 41, pp: 331- 338 57 Maria A., Bonifacio., Piergiorgio Gentile., Ana M Ferreira., Stefania Cometa., Elvira De Giglio (2017), “Insight into halloysite nanotubes-loaded gellan gum hydrogels forsoft tissue engineering applications Maria” Carbohydrate Polymers 163, pp: 280291 58 Marques A R., Ferreira P B., Sá-Correia I., and Fialho A M., (2003), “Characterization of the ugpG gene encoding a UDP-glucose pyrophosphorylase from the gellan gum producer Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461”, Molecular Genetics and Genomics, 268: 816-24 59 Martin Alberto Masuelli., (2014), “Mark-Houwink Parameters for Aqueous-Soluble Polymers and Biopolymers at Various Temperratures”, Journal of polymer and Biopolymer Physics Chemistry, Vol 2, No 2, pp: 37 - 43 60 Mattia Cassanelli., Ian Norton., Tom Mills (2018), “Role of gellan gum microstructure in freeze drying and rehydration mechanisms”, Food Hydrocolloids 75, pp: 51- 61 61 Maziya-Dixon B., Dixon A G O., & Ssemakula G (2008), “Changes in total carotenoid content at different stages of traditional processing of yellow-fleshed cassava genotypes”, International Journal of Food Science &Technology, 44(12), pp: 2350- 2357 110 62 McHugh T H., Aujard J F., & Krochta J M (1994); “Plasticized whey protein edible films: w ter v por perme bility properties”, Journal of Food Science, 59; pp: 416-419 63 Moreira L.M., Hoffmann K., Albano H., Becker A., Niehaus K., Sá-Correia I (2004), “The gellan gum biosynthetic genes gelC and gelE encode two separate polypeptides homologous to the activator and the kinase domains of tyrosine autokinases”, J Mol Microbiol Biotechnol, 8, pp: 43- 57 64 Moreira M R., Tomadoni B., Martín-Belloso O., & Soliva-Fortuny R (2015), “Preservation of fresh-cut apple quality attributes by pulsed light in combination with gellan gum-based prebiotic edible coatings”, LWT- Food Science and Technology, 64 (2); pp: 1130-1137 65 Nampoothiri M K., Reeta Rani Singhania C (2003), “Fermentative production of gellan using Sphingomonas paucimobilis”, Process Biochemistry 38; pp:1513-1519 66 Nickerson M.T., Paulson A.T., Speer R.A (2003), “Rheological properties of gellan solutions: effect of calcium ions and temperature on pre-gel formation”, Food Hydrocolloids,17, pp: 577- 83 67 Osmałek T., Froelich , A Tasarek S (2014), “Application of gellan gum in pharmacy and medicine”, Int J Pharm 15, 466 68 O’Neil M.A., Selvendran R.R., and Morris V.J., (1983), “Structureof the acidic extracellular gelling polysaccharide produced byPseudomonas elodea”, Carbohydr Res, 124, pp: 123-133 69 Plackett R L., Burman J P (1946), “The design of optimum multifactorial experiments” Biometrika”, 33; pp: 305-325 70 Qin C.G., Huang K.X., Xu H.B (2002), “Isolation and characterization of a novel polysaccarit from the mucus of the loach, Misgurnus anguillicaudatus”, Carbohyd Polym 49, pp: 367- 371 71 Ronnie Yuan C., San Diego CA., Neil ArgO Morrison., San Diego., Ross Clark., San Diego (2015), “Calcium stable high acyl gellan gum for enhanced colloidal stability in beverages”, United States, Pub No 0044353 72 Rojas-Graua M.A., Tapiab M.S., Rodrıguez F.J., Carmonac A.J., Martin-Belloso O (2007), “Alginate and gellan-based edible coatings as carriers of antibrowning agents applied on fresh-cut Fuji apples”, Food Hydrocolloids 21, pp:118-127 111 73 Silva Elisabete., Ana Rita Marques., Arsénio Mendes Fialho., Ana Teresa Granja, and Isabel Sá-Correia., 2005), “Proteins encoded by Sphingomonas elodea ATCC 31461 rmlA and ugpG genes, involved in gellan gum biosynthesis, exhibit both dTDP-and UDP-glucose pyrophosphorylase activities”, Applied and environmental microbiology, 71, pp: 4703-12 74 Stevens L R., Gilmore K J., Wallace G G., & Panhuis M I H (2016)., “Tissue engineering with gellan gum”, Biomaterials Science, 4(9), pp: 1276-1290 75 Stewart I C (2006), “Tissue culture gel firmness: measurement and effects on growth”, Plant Tissue Culture Engineering, pp: 329- 337 76 Tabata Y., Ikada Y (1998), “Protein release from gelatin matrices”, Drug Delivery Rev 31; pp: 287–301 77 Takeuchi M Hamana K., Hiraishi A., (2001), “Proposal of the genus Sphingomonas sensu stricto and three new genera, Sphingobium, Novosphingobium and Sphingopyxis,on the basis of phylogenetic and chemotaxonomic analyses” Int J Syst Evol Microbiol 51; pp:1405-1417 78 Takeuchi M., Kawai F., Shimada Y., Yokota A (1993), “Taxonomic study of polyethylene glycol-utilizing bacteria: emended description of the genus Sphingomonas and new descriptions of Sphingomonas macrogoltabidus sp nov., Sphingomonas sanguis sp nov and Sphingomonas terrae sp Nov”, Syst Appl Microbiol 16, pp 227- 238 79 Tappia M.S., Rojas-Grau M.A., Carmona A., Rodriguez F.J., Fortuny R.S., Bellose O.M (2008), “Use of alginate- and gellan-based coatings for improving barrier, texture and nutritional properties of fresh-cut papaya”, Food Hydrocolloids 22, pp: 1493-1503 80 Tay lor D L., Ferris C J., Maniego A R., Castignolles P., Panhuis M., & Gaborieau M(2012), “Characterization of gellan gum by capillary electrophoresis”, Australian Journal of Chemistry: an international journal for chemical science, 65 (8), pp: 11561164 81 Trezza T A., & Krochta J M (2000), “Color stability of edible coatings during prolonged storage”, Journal of Food Science, 65(1), pp: 1166- 1169 112 82 Xia Wang., Yong Yuan., Kainai Wang., Dezhong Zhang., Zhengting Yang., Ping Xu (2007), “Deproteinization of gellan gum produced by Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461”, Journal of Biotechnology 128, pp: 403- 407 83 Vanessa Walter (2010), “Biosurfactants Institute of Engineering in life sciences”, Department of Technical Biology, University of Karlsruhe, Germany 84 Videira Paula A., Luísa L Cortes., Arsénio M Fialho., and Isabel Sá-Correia (2000), “Identification of the pgmG gene, encoding a bifunctional protein with phosphoglucomutase and phosphomannomutase activities, in the gellan gumproducing strain Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461”, Applied and environmental microbiology, 66: 2252 - 2258 85 Wang X., Wu R., Zhang Z., Wang, J., Xu H., Shen Y., & Yang L (2014), “U.S Patent No 8,864,994”, Washington, DC: U.S Patent and Trademark Office 86 Wang C., Gong Y., Lin Y., Shen J., Wang D (2008), “A novel gellan gel-based microcarrier for anchorage-dependent cell delivery”, Acta Biomaterialia 4, pp: 12261234 87 Wang X., Xu P., Yuan Y (2006), “Modeling for gellan gum production by Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461 in a simplified medium” Appl Environ Microbiol; pp: 3367-3374 88 Wang S Y., Ho Y F., Chen Y P., & Chen M J (2015), “Effects of a novel encapsulating technique on the temperature tolerance and anti-colitis activity of the probioticbacterium Lactobacilluskefiranofaciens M1”, Food Microbiology, 46, pp: 494- 500 89 West T.P., Strohfus B (1998), “Effect of carbon source on exopolysaccharide production by Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461”, Microbiol Res:153; pp: 322-327 90 Wang X., Yuan Y., Wang K (2007), “De-proteinization of gellan gum produced by Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461”, J Biotechnol 128, pp: 403–407 91 West T P (2002), “Isolation of a mutant strain of Pseudomonas sp ATCC 31461 exhibiting elevated polysaccharide production”, Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology, 29(4), pp: 185-188 92 West T P (2003), “Effect of temper ture on b cteri l gell n production”, World Journal of Microbiology α Biotechnology19; pp: 649 - 652 113 93 West T P (2005), “Improved polysaccharide production using strain improvement”, In J.-L Barredo (Ed.), Microbial processes and products; pp: 301-311 94 West T.P., Strohfus B (1998), “Short Communication Effect of carbon source on exopolysaccharide productionby Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461” Microbiol Res 153, pp: 327- 329 95 Xuechang Wu, Ou Li, Yamin Chen, Liang Zhu, Chaodong Qian, Yi Teng, Xianglin Tao (2011), “A carotenoid-free mutant strain of Sphingomonas paucimobilis ATCC 31461 for the commercial production of gellan”, Carbohydrate Polymers 84; pp: 1201-1207 96 Vasiliki Evageliou., Dimitra Saliari (2017), “Limonene encapsulation in freeze dried gellan systems”, Food Chemistry 223, pp: 72- 75 97 Yihong G., Chunming W., Ruenn C L., Kai S F., Feng Z., and Dong-an W (2009), “ An improved injectable polysaccharide hydrogel: modified gellan gum for long -term cartilage regeberationin vitro”, J.Mater Chem, 19, pp: 1968-1977 98 Yang Z., Pang X., Xu L., Fang R., Huang X., Guan P., Lu W and Zhang Z (2009), “Accumulation of soluble sugars in peel at high temperature leads to stay-green ripe banana fruit”, Journal of Experimental Botany 61 (10), pp: 4051- 4062 99 Yu C W., Chia H C., Yi C H., Min L T., Fwu L M (2017), “Active gellan gum/purple sweet potato composite films capable of monitoring pH variations”, Food Hydrocolloids 69, pp: 491-502 100 Zhang Jun, Ya-chen Dong, Lin-lin Fan, Zhi-hua Jiao, and Qi-he Chen., (2015), “Optimization of culture medium compositions for gellan gum production by a halobacterium Sphingomonas paucimobilis”, Carbohydrate polymers, 115; pp: 694-700 101 Zhu, Guilan, Long Sheng, and Qunyi Tong (2014), “Enhanced gellan gum production by hydrogen peroxide (H2O2) induced oxidative stresses in Sphingomonas paucimobilis”, Bioprocess and biosystems engineering, 37, pp: 743- 748 114 PHỤ LỤC Hồ sơ chủng S paucimobilis GL2 kết đánh giá độc tính cấp chủng S paucimobilis GL2 chuột PHỤ LỤC Các bảng số liệu kết chạy tối ƣu hóa điều kiện sinh tổng hợp gellan từ chủng S paucimobilis GL12 ... tài Nghiên cứu thu nhận gellan từ Sphingomonas paucimobilis định hướng ứng dụng công nghiệp thực phẩm lựa chọn khuôn khổ luận án Mục tiêu nghiên cứu - Xây dựng qui trình thu nhận gellan từ chủng... tách chiết thu hồi chế phẩm gellan dạng bột - Nghiên cứu điều kiện bảo quản thích hợp cho chế phẩm - Đề xuất quy trình thu nhận gellan từ chủng S paucimobilis lựa chọn Nghiên cứu thu nhận gellan. .. chủng S paucimobilis lựa chọn - Xây dựng qui trình thu nhận gellan khử acyl từ dịch lên men gellan chủng S paucimobilis lựa chọn - Nghiên cứu ứng dụng chế phẩm gellan bảo quản, chế biến thực phẩm