Nghiên cứu và ứng dụng trồng dưa hấu, cà chua ghép gốc chống bệnh héo rũ do nấm fusarium sp và vi khuẩn ralstonia solanacearum tại hậu giang

Đánh giá khả năng chống chịu bệnh héo rũ của cây dưa hấu và héo tươi của càchua không ghép và ghép đối với mầm bệnh được phân lập từ tỉnh Hậu Giangtrong nhà lưới.. Bệnh có xu hướng giảm

MỞ ĐẦU

Dưa hấu cho hiệu quả kinh tế cao (10-20 triệu đồng/ha/vụ), rất phù hợp chế độluân canh trên nền đất lúa, có diện tích canh tác hàng năm lớn nhất trong nhóm rau(khoảng 20.000 ha) và trồng được quanh năm, sản phẩm được tiêu thụ mạnh ở cáctỉnh phía Bắc và xuất khẩu sang Trung Quốc Cà chua cũng là loại rau có giá trịdinh dưỡng và giá trị kinh tế cao Cả hai đều rất thích hợp canh tác trên nền đất lúa

ở vùng đồng bằng sông Cửu Long (ĐBSCL) và đều bị thiệt hại nặng nề do bệnh

phát sinh từ trong đất, tác nhân gây hại chính là nấm Fusarium oxysporum f sp niveum Snyder và Hansen và vi khuẩn Ralstonia solanacearum Smith Bệnh này

làm giảm năng suất trầm trọng vì làm chết cây hàng loạt vào giai đoạn ra nụ hoađến trái già thu hoạch, bệnh gây hại nghiêm trọng nhất ở hầu hết các vùng dưa hấu

và cà chua trên thế giới, riêng cà chua có khi tới 95% thậm chí gây mất trắng

(Nguyễn Văn Viên và ctv., 2003)

Bệnh héo rũ hiện nay chưa có thuốc đặc trị và giống kháng bệnh, chủ yếu ngănngừa bằng biện pháp canh tác luân canh với lúa hoặc nghĩ trồng dưa hấu và càchua trong khoảng thời gian dài 2-3 năm khi đã trồng cây cùng họ, biện pháp nàykém hiệu quả và khó thực hiện đối với các vùng trồng rau chuyên canh nên vấn đềnày được xem là nguyên nhân chính làm giảm hiệu quả kinh tế của sản xuất dưa

hấu, cà chua ở ĐBSCL (Trần Thị Ba và ctv., 2008) Ở các nước tiên tiến, để khắc

phục bệnh héo rũ, dưa hấu và cà chua được trồng trong điều kiện đất sạch và tướibằng hệ thống tưới nhỏ giọt, phương pháp này không khả thi trong điều kiện sảnxuất ở nước ta Trung tâm nghiên cứu rau châu Á (AVRDC) đã tìm ra biện phápghép ngọn cà chua với các gốc ghép khác nhau như cà tím và cà chua làm tăng khảnăng chống chịu tốt với bệnh héo vi khuẩn và cho năng suất cao, chất lượng tráiđạt yêu cầu với thị hiếu người tiêu dùng Việc sử dụng gốc ghép kháng bệnh đốivới cây rau cũng đã được thực hiện phổ biến trên thế giới như Tây Ban Nha, Ý,Đài Loan và Nhật Bản (Besri, 2002) Tại Nhật Bản năm 1990 có 31,5% cà chua và49,9% cà tím, 92% dưa hấu, 71,7% dưa leo, 43,8% các loại dưa khác được ứngdụng trồng bằng kỹ thuật ghép gốc kháng bệnh (Oda, 1993) Theo Benson và Peet(2006) ghi nhận Hàn Quốc đã sử dụng gốc cà tím ghép với ngọn cà chua lên đến

540 triệu cây/năm, và ở Nhật là 750 triệu cây/năm

Ở Việt Nam chỉ có vùng Phú Tâm (Sóc Trăng) áp dụng kỹ thuật ghép gốc trongsản xuất đại trà (Dương Văn Hưởng, 1990) và gốc ghép Bầu Sao được chọn làm

gốc ghép vì tăng trưởng mạnh, thích nghi rộng và dễ để giống (Trần Thị Ba và ctv.,

1999) Theo Phạm Văn Côn (2007) thì cây dưa hấu ghép sinh trưởng và phát triểntốt, ưu thế hơn so với cây không ghép khi trồng trong mùa nóng ẩm Việc ghép dưahấu vào gốc bầu ở Bà Rịa - Vũng Tàu đã được Viện Khoa học Kỹ thuật Nôngnghiệp Miền Nam thực hiện thành công ở huyện Đất Đỏ từ năm 2004

(http://www.baobariavungtau.com.vn) Cà chua ghép gốc được thực hiện từ năm

1999 tại Viện nghiên cứu Rau Quả Hà Nội (Lê Thị Thủy, 2000), Viện Khoa học Kỹthuật Nông nghiệp Miền Nam năm 2000- 2003 Theo báo cáo của Ngô QuangVinh và Ngô Xuân Chinh (2003) thì tỉnh Lâm Đồng là địa phương sản xuất càchua ghép tập trung lớn nhất cả nước hiện nay khoảng 4.500 ha/năm, trong đóhuyện Đơn Dương trên 3.000 ha

Mặc dù đã có một vài nghiên cứu về dưa hấu và cà chua ghép đã được thực hiện ởViệt Nam, nhưng chưa có công trình nghiên cứu được đưa vào ứng dụng ởĐBSCL, đặc biệt ở Hậu Giang, nơi có diện tích canh tác rau khá lớn, đang đươngđầu với nhiều khó khăn đối với bệnh héo rũ Xuất phát từ tình hình thực tế trên đềtài “Nghiên cứu và ứng dụng trồng dưa hấu, cà chua ghép gốc chống bệnh héo rũ

do nấm Fusarium sp và vi khuẩn Ralstonia solanacearum tại Hậu Giang” cần

thiết được thực hiện

Mục tiêu đề tài nhằm xác định:

- Điều tra tìm hiểu những khó khăn trong sản xuất dưa hấu, cà chua và thuthập nguồn bệnh tại vùng sản xuất

- Gốc ghép có khả năng cho tỉ lệ cây sống cao sau khi ghép

- Gốc ghép có khả năng chống chịu bệnh héo rũ và héo tươi

- Gốc ghép có khả năng gia tăng sinh trưởng, năng suất và chất lượng trái

- Hiệu quả kinh tế của sản xuất dưa hấu và cà chua ghép

Nội dung nghiên cứu:

Đề tài được thực hiện qua các nội dung sau:

1 Điều tra tìm hiểu những khó khăn trong sản xuất dưa hấu, cà chua và thu thậpnguồn bệnh tại vùng sản xuất

2 Đánh giá khả năng tương thích (tỉ lệ cây sống) của dưa hấu ghép trên các gốcbầu bí và cà chua ghép trên các loại gốc cà chua, cà tím

3 Đánh giá khả năng chống chịu bệnh héo rũ của cây dưa hấu và héo tươi của càchua không ghép và ghép đối với mầm bệnh được phân lập từ tỉnh Hậu Giangtrong nhà lưới

4 Đánh giá khả năng chống chịu bệnh héo rũ trên dưa hấu và héo tươi của cà chuacủa những dòng ghép tương thích trong điều kiện ngoài đồng

5 Tổ chức tham quan, hội thảo cho cán bộ và nông dân Hậu Giang về hiệu quả củasản xuất dưa hấu và cà chua ghép

CHƯƠNG 1 TỔNG QUAN TÀI LIỆU

1.1 NGUỒN GỐC VÀ ĐẶC ĐIỂM CỦA CÂY DƯA HẤU VÀ CÀ CHUA 1.1.1 Nguồn gốc của cây dưa hấu và cà chua

Dưa hấu tên tiếng Anh là Watermelon, họ Cucurbitacae Trong nhiều năm dưa hấu

vẫn được gọi là Citrullus vulgaris Schrad nhưng đến năm 1963, Thieret đã đổi thành Citrullus lanatus (Thumb.) Mandf (Tạ Thu Cúc, 2005) Dưa hấu xuất phát từ vùng nhiệt đới Trung Phi, một phần phía Bắc sa mạc Sahara (Trần Khắc Thi và ctv., 2005) Những đoàn khách lữ hành đã mang dưa hấu đến các vùng ấm áp của

Châu Âu Các thương gia châu Phi đã mang hạt dưa hấu đến bán ở nhiều vùng củachâu Mỹ, đến năm 1640 dưa hấu được trồng rộng rãi ở Mỹ Ở nước ta dưa hấuđược biết đến qua sự tích dưa hấu An Tiêm từ thời vua Hùng Vương thứ 18 (Tạ

Thu Cúc và ctv., 2005) Cho đến nay dưa hấu được trồng rộng rãi và được xem là

loại trái cây không thể thiếu trong ngày Tết cổ truyền của dân tộc ta Trong 100 gphần ăn được của dưa hấu chứa 90% nước; 9% carbohrydrate; 0,75 protein; 0,15lipid; 300 I.U vitamin A; 6 mg vitamin C; 8 mg Ca; 10 mg Mg; 14 mg P và 0,2 mg

Fe, giá trị năng lượng tương đương 150 kJ/100 g (Phạm Hồng Cúc, 2007)

Cà chua có tên khoa học là Lycopersicum esculentum Mill, thuộc họ cà Solanaceae

(Phạm Hồng Cúc, 1999) Theo Chu Jinping (1994) cà chua có nguồn gốc từ Peru

và Mexico và đã được chuyển sang châu Âu bởi người Tây Ban Nha vào thế kỷXVI, sau đó được chuyển sang Mỹ và Canada và được trồng phổ biến ở nhiều

quốc gia trên thế giới Theo Chu Thị Thơm và ctv (2005), cà chua đã được nhập

vào Việt Nam từ thời Pháp thuộc, hiện nay diện tích trồng cà chua ở nước ta hàng

năm khoảng 12-13 ngàn ha (Tạ Thu Cúc và ctv., 2002)

1.1.2 Tình hình sản xuất dưa hấu, cà chua trong và ngoài nước

Theo số liệu thống kê Faostat năm 2009, thì sản lượng dưa hấu trên thế giới năm

2000 đạt 76,21 triệu tấn, với diện tích 3,10 triệu ha và năng suất 24,60 tấn/ha, đếnnăm 2007 thì tăng sản lượng đạt đến 97,43 với diện tích 3,69 triệu ha và năng suất26,37tấn/ha Còn ở Việt Nam sản lượng dưa hấu năm 2000 đạt 0,20 triệu tấn, vớidiện tích 0,19 triệu ha và năng suất chỉ đạt 10,53 tấn/ha, đến năm 2007 thì tăng sảnlượng 0,42 với diện tích 0,28 triệu ha và năng suất 15 tấn/ha

Theo Fas (2007), Châu Á là khu vực đứng đầu về sản xuất cà chua, thứ hai là Châu

Âu Trung Quốc là nước có diện tích trồng và xuất khẩu cà chua lớn nhất thế giớivới sản lượng 36,5 triệu tấn vào năm 2006 với 85% sản lượng là dùng tươi và xuấtkhẩu sang các nước ở dạng nước ép là 675.000 tấn Trong năm 2007, Mỹ phảinhập trên 95% sản lượng cà tươi từ Mêhicô và 70% từ Canada, đạt 702.837 tấn và

đã xuất khẩu sang các nước 73.403 tấn cà tươi tăng 9% so với năm 2006 và 41,399tấn cà chua ở dạng nước ép Nhật Bản là thị trường lớn thứ 3 của Mỹ về xuất khẩu

cà chua tươi, gần đây sản lượng cà chua của Nhật giảm đi chỉ còn 667.000 tấn vàonăm 2005 và nhập khẩu cà tươi 5.450 tấn và 114.863 tấn cà nước ép vào năm

2006 Nhìn chung, Châu Á có diện tích trồng lớn nhất nhưng năng suất còn thấp.Nơi tiêu thụ cà chua lớn nhất là Châu Âu rồi đến Châu Á, Bắc Mỹ và Nam Mỹ

Cà chua mới được trồng ở Việt Nam khoảng 100 năm trước đây, diện tích trồng

hàng năm biến động từ 12-14 ngàn ha (Tạ Thu Cúc và ctv., 2003) Cà chua được

trồng chủ yếu ở vùng Đồng Bằng sông Hồng và trung du Bắc Bộ Riêng ở LâmĐồng có khoảng 4.500 ha gieo trồng mỗi năm, cung cấp cho thị trường khoảng150.000 tấn cà chua Ở nước ta, việc phát triển trồng cà chua còn có ý nghĩa quantrọng về mặt luân canh, tăng vụ và tăng năng suất trên đơn vị diện tích, do đó càchua là loại rau được khuyến khích phát triển Tuy nhiên, việc trồng cà chua chưađược phát triển mạnh theo mong muốn vì khí hậu Việt Nam là khí hậu nhiệt đới giómùa, có mùa đông lạnh thích hợp cho sinh trưởng của cà chua Đồng thời mùa mưa

từ 4-6 tháng, trong khi nhiệt độ vẫn ở mức cao tạo nên môi trường vừa nóng, vừa

ẩm Công nghiệp chế biến chưa phát triển mạnh khiến cho việc tiêu thụ cà vào lúcthu hoạch tập trung gặp nhiều khó khăn, ảnh hưởng đến lợi tức của người trồng

1.1.3 Đặc tính thực vật của cây dưa hấu và cà chua

* Rễ

Dưa hấu bộ rễ phát triển mạnh, rễ chính có khả năng ăn sâu 0,6-1 m nên có khả năngchịu hạn tốt Rễ phụ ăn lan trên mặt đất, phân bố ở chiều sâu cách mặt đất, ở giaiđoạn phát triển tối đa rễ phụ lan rộng khắp mặt liếp, bán kính trung bình 50-60 cm

(Trần Thị Ba và ctv., 1999; Nguyễn Mạnh Chinh và Nguyễn Đăng Nghĩa, 2006).

Cà chua có rễ chùm, cây phân nhánh và phát triển rễ phụ rất mạnh Trong điều kiệntối hảo những giống tăng trưởng mạnh có rễ ăn sâu 1-1,5 m và rộng 1,5-2,5 m nên

có thể chịu hạn rất tốt (Trần Thị Ba và ctv., 1999).

* Thân

Dưa hấu thân thảo hằng niên, dài từ 1,5-5 m, thân mềm có nhiều góc cạnh và mangnhiều lông trắng Thân có nhiều mắt mỗi mắt, một lá, một chồi nách và vòi bám,chồi nách có khả năng phát triển thành dây nhánh như thân chính Thường sự pháttriển của chồi nách chịu sự ức chế của ngọn thân chính nên chồi gần gốc phát triểnmạnh hơn chồi gần ngọn (Nguyễn Mạnh Chinh và Nguyễn Đăng Nghĩa, 2006;Phạm Hồng Cúc, 2007)

Cà chua dạng thân bụi, mềm, nhiều nước, giòn, dễ gãy, xung quanh thân có phủmột lớp lông dày có màu sắc khác nhau và có khả năng phân nhánh mạnh trongđiều kiện vườn ươm Khi cây lớn gốc thân dần dần hóa gỗ và các đốt trên thân cókhả năng ra rễ bất định Chiều cao thân từ 0,25-2 m, số lượng cành dao động từ 3-

19 cành (Mai Thị Phương Anh, 1996)

* Lá

Dưa hấu có lá mầm lớn, hình trứng có ý nghĩa trong quang hợp tạo vật chất nuôicây và lá thật đầu tiên, do đó cần bảo vệ lá mầm khỏi sự thiệt hại của côn trùng Láthật là lá đơn, mọc xen, hình chân vịt, xẻ thùy sâu Trong điều kiện tăng trưởng tốt

lá mầm vẫn còn giữ trên cây cho đến khi chín (Trần Thị Ba và ctv., 1999).

Cà chua lá thuộc lá kép lông chim lẻ, mỗi lá có 3 - 4 đôi lá chét, ngọn lá có một đôi

lá riêng gọi là lá đỉnh Rìa lá chét đều có răng cưa cạn hay sâu tùy theo giống,phiến lá thường có phủ lông tơ Đặc tính của giống thường thể hiện đầy đủ sau khi

cây có chùm hoa đầu tiên (Trần Thị Ba và ctv., 1999).

* Hoa

Dưa hấu hoa đơn phái cùng cây, đôi khi có hoa lưỡng tính Hoa có kích thước nhỏ,mọc đơn ở nách lá với 5 lá đài xanh và 5 cánh dính màu vàng, hoa thụ phấn nhờcôn trùng Hoa đực thường xuất hiện sớm, sau đó cách vài hoa đực mới có một hoacái (Nguyễn Mạnh Chinh và Nguyễn Đăng Nghĩa, 2006) Hoa cái có vòi nhụyngắn, nướm nhụy phân 3 thùy, bầu noãn hạ với 3 tâm bì Hoa cái ở gần gốc thườngnhỏ do đó trái chín sớm, hoa cái ở xa gốc ra sau nên cho trái chín muộn, chỉ có hoa

cái ở vị trí 12-20 dễ đậu trái và cho trái tốt (Trần Thị Ba và ctv., 1999).

Cà chua có hoa mọc thành chùm, lưỡng tính, tự thụ phấn là chính Sự thụ phấnchéo ở cà chua rất khó xảy ra vì hoa cà chua tiết nhiều tiết tố chứa các alkaloid độc

nên không hấp dẫn côn trùng và hạt phấn nặng nên không bay xa (Trần Thị Ba và ctv., 1999).

* Trái

Dưa hấu trái to và chứa nhiều nước, trái có nhiều dạng hình thay đổi từ hình cầu,hình trứng đến hình bầu dục, nặng từ 1,5-30 kg Vỏ trái cứng, láng có nhiều gân vàhoa văn, màu sắc thay đổi từ đen, xanh đậm, xanh nhạt vàng hay có sọc Thịt trái

có màu đỏ hay vàng Mỗi trái chứa từ 200-900 hạt (Phạm Hồng Cúc, 2007)

Trái cà chua thuộc loại mọng nước, có hình dạng thay đổi từ tròn, bầu dục đến dài,màu sắc của trái thay đổi tùy giống và điều kiện thời tiết Quá trình chín của tráiđược chia làm 4 thời kỳ: thời kỳ trái xanh, thời kỳ chín xanh, thời kỳ chín vàng và

thời kỳ chín đỏ (Trần Thị Ba và ctv., 1999)

* Hạt

Hạt dưa hấu có màu nâu nhạt, nâu đậm đến đen, kích thước hạt thay đổi tùy theogiống, trọng lượng hạt trung bình từ 25-30 hột/g, hạt từ màu nâu nhạt đến đen vàchứa nhiều chất béo từ 20-40%, nên dùng làm nguyên liệu chế biến có giá trị dinh

dưỡng cao, hạt dễ mất sức nảy mầm (Trần Thị Ba và ctv., 1999)

Hạt cà chua nhỏ, dẹp, có nhiều lông và màu vàng sáng hoặc hơi tối, trọng lượngngàn hạt từ 2,5-3,5 g Theo Mai Thị Phương Anh (1996), trong điều kiện bảo quảntốt thì hạt có thể nảy mầm sau 3-4 năm tồn trữ

1.1.4 Điều kiện ngoại cảnh ảnh hưởng đến sự sinh trưởng của cà chua

Cà chua là cây ưa ẩm, nhiệt độ tối hảo cho sự tăng trưởng và phát triển khoảng

21-240C Nhiêt độ đất trên 390C làm giảm sự lan rộng của hệ thống rễ, trên 440C gâyhại đến sự sinh trưởng của rễ và giảm hấp thu nước và dinh dưỡng Ở giai đoạncây con, cây sinh trưởng tốt ở 25-260C, giai đoạn đậu trái tốt ở 18-200C, giai đoạntrái chín 29-300C, cây con ngừng tăng trưởng ở nhiệt độ tối đa 350C và tối thấp là

120C (Tạ Thu Cúc, 2005) Nhiệt độ rất ảnh hưởng đến sự ra hoa và đậu trái của cây

cà chua, nhiệt độ cao sẽ làm giảm số hoa trên chùm (Mai Thị Phương Anh, 1996)

* Ánh sáng

Dưa hấu là cây ưa sáng do đó cây cần nhiều ánh sáng để sinh trưởng và kết trái.Điều kiện ngày ngắn và cường độ ánh sáng mạnh thúc đẩy dưa tăng trưởng tốt tráichín sớm, trái to và năng suất cao Thiếu ánh sáng dưa bò dài, dễ nhiễm bệnh vàkhó đậu trái (Phạm Hồng Cúc, 2007)

Theo Tạ Thu Cúc (2005), thì cà chua là cây ưa ánh sáng mạnh, ánh sáng đầy đủcây con sinh trưởng tốt, ra hoa đậu quả thuận lợi, năng suất và chất lượng trái đạttiêu chuẩn tốt nhưng cây thiếu ánh sáng lá sẽ nhỏ, mỏng, ra hoa, đậu trái chậm,hương vị nhạt, năng suất và chất lượng giảm Ánh sáng thích hợp cho cây cà chuasinh trưởng là 4.000-10.000 lux Ánh sáng đỏ tăng có tác dụng làm tăng tốc độphát triển lá, hạn chế chồi xanh thúc đẩy hình thành Lycogen và Caroten, ánh sánglục làm tăng hàm lượng chất khô Khi thiếu ánh sáng trắng kỳ phân hóa đến hìnhthành mầm hoa thứ nhất sẽ bị tiêu hủy nên làm giảm số hoa/chùm

* Ẩm độ và mưa

Dưa hấu chịu úng kém nhất là giai đoạn cây con, cây yêu cầu nước nhiều và hútnước mạnh nhất vào thời kỳ phát triển trái nên cần giữ ẩm đất thường xuyên, thiếunước giai đoạn này trái nhỏ nhưng nếu mưa đột ngột thì dễ làm cho trái bị nứt Lúc

trái gần thu hoạch cần giảm bớt tưới để trái ngọt hơn (Trần Thị Ba và ctv., 1999).

Chế độ nước trong cây cà chua là yếu tố quan trọng ảnh huởng đến cường độ củacác quá trình sinh lý cơ bản, cà chua là cây ưa ẩm, chịu nhiệt nhưng không chịuúng Tùy theo từng giai đoạn phát triển mà cây cà có nhu cầu nước khác nhau vànhu cầu nước thì tăng dần lên đặc biệt là ở giai đoạn ra hoa đậu trái cần nhiều nướcnhất và phải đảm bảo đầy đủ nước giai đoạn nầy Để đạt năng suất 50 tấn/ha càchua cần 6.000 m3 nước, đất quá khô hoặc thừa ẩm đều gây bất lợi cho cà chua, độ

ẩm thích hợp cho cây cà chua phát triển khoảng 70-80% và ẩm độ không khí 60%, trên 60% cây dễ bị bệnh đặc biệt là giai đoạn cây con (Tạ Thu Cúc, 2005)

1.2.1 Bệnh héo rũ trên dưa hấu

Bệnh héo rũ do nấm Fusarium oxysporum f sp niveum là một trong những bệnh gây

hại quan trọng trong canh tác dưa hấu vào thế kỷ 19 tại Mỹ (Egel and Marty, 2007)

* Triệu chứng và thiệt hại

Theo Trần Văn Hai và ctv (2005), bệnh thường xảy ra ở giai đoạn cây có trái non

trở về sau Trong thực tế sản xuất, bệnh thường gây chế cây vào giai đoạn dưa đãđậu trái Ở vị trí gốc thân, vết bệnh màu nâu hoặc xám nhạt bao quanh gốc, gâyhiện tượng thối khô tóp lại Cắt ngang phần trên mô bị bệnh thấy bó mạch màu nâu

xám, thường trên vết bệnh có bao phủ lớp nấm trắng thưa Cây bị nhiễm nấm F oxysporum bộ rễ phát triển kém, rễ bị thối dần (Nguyễn Văn Viên và Đỗ Tấn

Dũng, 2003)

Theo Phạm Thị Nhất (2000), triệu chứng bệnh thường xuất hiện chậm và kéo dài.Nấm phá hại ở tất cả giai đoạn phát triển của cây, cây con bị bệnh, ban ngày lá bịhéo cụp xuống, mất màu, sau đó cây chết Ở cây phát triển lúc đầu lá bệnh hơi bịcụp xuống tạo thành một góc với thân lớn hơn cây khỏe mạnh Bệnh thường gâyhại khi cây đã trưởng thành hoặc khi cây bắt đầu mang trái đầu tiên các lá ngọn bị

héo vào buổi trưa và tươi lại vào chiều mát, sau vài ngày cây sẽ chết hẳn Nấm F oxysporum là nguyên nhân gây bệnh có tác hại lớn nhất đặc biệt trên cây trồng cạn Nấm F oxysporum là loài có phạm vi kí chủ rộng, xuất hiện và gây hại nhiều nơi,

nhất là vùng nhiệt đới và cận nhiệt đới Những loại hình và triệu chứng điển hình

do nấm gây hại trên cây như héo bó mạch, mốc hồng, lở cổ rễ, cành,

* Hình thái và kích thước

Theo Vũ Triệu Mân và Lê Lương Tề (1998), nấm F oxysporum có sợi đa bào, màu

sắc tản nấm trắng phớt hồng, sinh sản vô tính tạo tiểu và đại bào tử Bào tử lớncong nhẹ một đầu thon nhọn một đầu, gẩy khúc dạng bàn chân nhỏ, thường có 3ngăn ngang Bào tử nhỏ đơn bào hình trứng, hình bầu dục dài hoặc hình quả thậnđược hình thành trong bọc giả trên cành bào tử không phân nhánh trên sợi nấm,trong khi đó bào tử lớn hình thành từ cành bào tử phân nhánh xếp thành tần Nấmcòn sinh ra bào tử hậu hình cầu, màng dầy màu nâu nhạt

Bào tử lớn có 3-5 vách ngăn kích thước từ (27-46) x (3-5) μm, bào tử nhỏ có kíchthước (5-12) x (2,2-3,5) μm, không có vách ngăn (Nguyễn Văn Viên và Đỗ TấnDũng, 2003), cũng theo hai ông thì trên môi trường PDA, tản nấm xốp màu hồngnhạt, sau nuôi cấy 4-5 ngày hình thành sắc tố đỏ tím Trên môi trường CLA bào tửđược hình thành rất nhiều, bào tử lớn và bào tử nhỏ Trên môi trường PDA sau khinuôi cấy 3-5 tuần nấm hình thành bào tử áo Nguồn bệnh của nấm trong đất là các

dạng bào tử áo, sợi nấm và bào tử lớn phân bố tập chung ở tầng canh tác, bào tử áokích thước từ 9-10 µm (Vũ Triệu Mân và Lê Lương Tề, 1998).

* Sinh lý

Nấm F oxysporum có 3 dạng chủng sinh lý, chủng 1 phân bố rộng khắp trên thế

giới, chủng 2 tìm thấy ở châu Mỹ, Úc và Anh, chủng 3 có ở Brazin, Mỹ, Úc(Nguyễn Văn Viên và Đỗ Tấn Dũng, 2003) Theo Vũ Triệu Mân và Lê Lương Tề

(1978), nấm F oxysporum thuộc nấm bất toàn, sợi nấm có vách ngăn cách, lúc đầu

không màu sau biến thành màu vàng nâu, màu nâu Nấm hình thành bào tử trên sợinấm già, sinh sản vô tính Hiện tượng héo rũ là do tác động cơ giới của sợi nấm cảntrở lưu thông chất dinh dưỡng và nước, đồng thời do tác động của men Pectolitic(Pectin-Metin-Esteraza dipolimeraza poligalacturonaza) và các độc tố của nấm

(Licomaramin acid fusarinic, vazinfuoxari, enatin A) F oxysporum là vi sinh vật

hoại sinh hoạt động trong đất và những vật liệu hữu cơ, có hình dạng nhất địnhtương ứng với từng ký chủ (Argios, 1988) Phân bón ảnh hưởng đến tính độc củanấm Tính độc của nấm tăng khi bón phân vi lượng, đạm hữu cơ, natri, tính độc củanấm giảm khi bón kali và đạm nitrat (Vũ Triệu Mân và Lê Lương Tề, 1978)

* Chu trình bệnh

Lưu tồn: Mầm bệnh lưu tồn dưới dạng sợi nấm và các loại bào tử trong đất, trong

tàn dư, trong hạt giống, trong cây giống và ký chủ phụ, cỏ dại (Đỗ Tấn Dũng,2001) Theo CPC (2001), mầm bệnh có thể lưu tồn qua hạt, đất hay xác bã thựcvật Bệnh phát triển ở nơi có thời tiết ấm, trên đất cát và đất chua, nấm tồn tại trongđất vài năm, nhiệt độ thích hợp cho nấm phát triển là 280C (Nguyễn Văn Viên và

Đỗ Tấn Dũng, 2003) Nấm F oxysporum có thể sống sót trong đất qua nhiều năm,

giữa các chu kỳ canh tác, trong xát bã thực vật Nấm có thể tồn tại dưới dạng sợinấm hoặc một trong bất cứ 3 loại bào tử Cây khỏe mạnh có thể bị nhiễm bệnh nếutrong đất có nhiễm nấm (Agrios, 1988)

Lan truyền: Nấm F oxysporum lan truyền trên đồng ruộng nhờ gió, mưa, nước

tưới, dụng cụ lao động, giống nhiễm bệnh và khí hậu nhiệt đới… (Đỗ Tấn Dũng,

2001 và Burgess et al., 2008) Trong điều kiện thời tiết ấm áp, nhiệt độ trung bình

27-300C, ẩm độ đất cao thì bệnh có thể phát triển mạnh, gây thiệt hại không nhỏ đếnnăng suất Ở nhiệt độ dưới 160C, bệnh rất nhẹ, nấm phát triển kém Nhưng nhiệt độ15-180C rất thích hợp để hình thành bào tử phân sinh Theo Phạm Hoàng Oanh(2002), bệnh xảy ra trên cây ở giai đoạn có trái non trở về sau Nấm xâm nhiễm vào

hệ rễ nhất là khi rễ bị tổn thương, do tuyến trùng hay nguyên nhân nào khác

1.2.2 Bệnh héo tươi trên cà chua

* Tác nhân

Bệnh héo tươi trên cà chua đã được xác định do vi khuẩn Ralstonia solanacearum

được mô tả lần đầu tiên năm 1896, có độc tính gây độc rất mạnh đối với rễ cây

trong điều kiện canh tác ngoài đồng (Nguyễn Thị Nghiêm, 2006) Vi khuẩn nàythuộc loại gram âm, phát triển trong đất, háo khí, không có dạng nội bào tử, kíchthước khoảng (0,5-0,7) x (1,5-2,0) µm Vi khuẩn phát triển mạnh trong khoảngnhiệt độ từ 26-300C, nhiệt độ tối đa 410C, tối thấp là 100C và vi khuẩn chết ở độ là

550C Vi khuẩn gây bệnh héo phát triển mạnh trong phạm vi pH từ 6-8, pH thíchhợp nhất là 6,8-7,2 (Vũ Triệu Mân và Lê Lương Tề, 1998)

* Triệu chứng bệnh héo tươi

Triệu chứng bệnh đầu tiên của cây nhiễm bệnh thể hiện trên lá non, lá có triệu chứngmềm nhũn, cây héo rũ xuống vào lúc trời nắng nóng trong ngày Những hệ thốngmạch trong thân sẽ đổi thành màu nâu và khi cắt xéo đoạn thân cây để vào ly nước thì

thấy những dòng vi khuẩn màu trắng hoặc màu vàng sáng tuôn ra Theo Kazuhiro et

al (2004) để có thể phân biệt được với các tác nhân khác như nấm thì có thể kiểm tra

nhanh cây có nhiễm vi khuẩn bằng cách dùng dao bén cắt ngang 1 đoạn thân cây bệnh

và đặt đoạn thân tựa nghiêng vào thành trong ống nghiệm, sau vài phút nếu có dòngdịch nhày màu trắng sữa tràn ra từ các mạch dẫn của vết cắt xuống thành ống nghiệmthì chính là dịch vi khuẩn Triệu chứng héo cả cây tiếp diễn nhanh sau 2-3 ngày thìcây chết hoàn toàn trong khi lá vẫn còn xanh, dấu hiệu bệnh ngoài đồng đầu tiên khinhìn thấy là những lá đều héo rũ xuống (McCarter, 1991)

Theo Vũ Triệu Mân và Lê Lương Tề (1998); Trần Kim Cương (2003a) đều chorằng tỉ lệ bệnh héo tươi phát triển mạnh trong giai đoạn cây con, sau đó tăng dần

và đạt cao nhất ở giai đoạn ra hoa và trái non (khoảng 45-50 ngày sau khi trồng),đây là giai đoạn mẫn cảm nhất của cà chua đối với bệnh héo tươi dẫn đến làmgiảm năng suất cà chua nghiêm trọng nhất Hiện nay bệnh chưa có thuốc hóa họcphòng trị đạt hiệu quả, chỉ có thể làm hạn chế tỉ lệ bệnh bằng nhiều biện pháp kếthợp Theo Nguyễn Văn Viên và Đỗ Tấn Dũng (2003), mức độ nhiễm bệnh nặnghay nhẹ còn phụ vào rất nhiều yếu tố như: chế độ luân canh cây trồng khác họ, kỹthuật canh tác, thời vụ trồng, đất đai, chế độ phân bón, tưới nước,…

* Khả năng gây hại

McCarter (1991); Nguyễn Văn Viên và Đỗ Tấn Dũng (2003) và Rivard and Lee

(2006) cho rằng bệnh héo tươi do vi khuẩn R solanacearum có thể xâm nhiễm dễ

dàng vào rễ, gốc thân, thân, cành, cuống lá… qua các vết thương xây xát khi nhổcây con, do vết chích của côn trùng và tuyến trùng và các biện pháp kỹ thuật chămsóc, làm giàn, bón phân, vun xới và qua các khí khẩu tự nhiên Theo Trần Văn Lài

và Lê Thị Hà (2002) vi khuẩn R solanacearum phát triển phổ biến đối với các

vùng nhiệt đới, chúng phát triển trong đất thường xuyên lây nhiễm qua rễ là chủyếu và phát triển mạnh trong môi trường ngập úng nước

Sau khi xâm nhập vào rễ, vi khuẩn lan rộng theo bó mạch dẫn, khi mật số cao dokết hợp với nhiều polysaccharid từ lớp vỏ nhày của vi khuẩn tích tụ làm cản trở

quá trình vận chuyển nước của hệ thống mạch dẫn của cây (Kelman et al., 1998) Theo Kazuhiro et al (2004) vi khuẩn có khả năng tiết các men catalase, oxidase và

khử nitrate Theo Kelman (1954), Wang and Lin (2005) vi khuẩn còn sản sinh racác độc tố, axít hữu cơ phá hủy mô tế bào của ký chủ dẫn đến hư hại mạch dẫntruyền, gây cản trở sự vẩn chuyển nước và chất dinh dưỡng của cây làm cây héo rũnhanh chóng và chết Theo Izrainxki (1998), thì ngay khi vi khuẩn xâm nhập vào

mô cây sẽ lan truyền và sinh sản nhanh chiếm đầy trong các mạch dẫn truyền làmcản trở đến quá trình vận chuyển nước trong cây nhanh chóng dẫn đến cây héotươi nhanh và chết ngay sau đó từ 1-3 ngày Ở Việt Nam, bệnh héo tươi được xem

là bệnh rất nguy hiểm do bệnh lây lan nhanh và gây chết cây hàng loạt

* Phân bố địa lý và sự lưu tồn mầm bệnh

Theo Kelman et al (1988) vi khuẩn R solanacearum phát triển phổ biến ở các vùng

cận nhiệt đới và nhiệt đới Qua ghi nhận của OEPP/EPPO (2003) thì vi khuẩn cónhững nòi phổ biến gây hại nặng như nòi 1, 2 và 3 Đối với nòi 1 phát triển mạnhtrên nhiều vùng nhiệt đới, có khả năng tấn công trên cây thuốc lá và nhiều ký chủkhác thuộc họ cà Nòi 2 phát triển mạnh ở vùng nhiệt đới Nam Mỹ và có khả năngtấn công trên chuối (gọi là bệnh “Moko”), cả hai nòi 1 và 2 có nhiệt độ tối hảokhoảng 350C Riêng nòi 3 phát triển ở các vùng có vĩ tuyến cao hơn so với vùngnhiệt đới và cận nhiệt đới, nhiệt độ tối hảo khoảng 270C Theo Ailton et al (2005)

thì hiện nay các nòi được phân chia thành hai nhóm: Nhóm 1 gồm các nòi 3, 4, 5 cónguồn gốc châu Á và nhóm 2 gồm nòi 1, 2A và 2T có nguồn gốc từ Nam Mỹ

Theo Izrainxki (1998) thì vi khuẩn có thời gian sống trong đất rất dài Granada and

Sequeira (1981) và Kelman et al (1998), Nguyễn Văn Viên và Đỗ Tấn Dũng

(2003) cho rằng vi khuẩn này có ký chủ rộng hơn 200 ký chủ của hơn 50 họ thựcvật khác nhau như khoai tây, đậu phộng, thuốc lá, cây cà, ớt, vừng, gừng, đậutương… nguồn bệnh có thể tồn tại ở nhiều dạng khác nhau lưu tồn lâu dài trongđất, trong tàn dư cây bệnh, trong vật liệu giống nhiễm bệnh (hạt giống, cây giống)

* Biện pháp phòng trị

Theo Granada and Sequeira (1981) và Kelman et al (1994) cho rằng việc luân

canh từ 1-2 năm có làm giảm mật số vi khuẩn gây hại trong đất nhưng không manglại hiệu quả do vi khuẩn có phổ ký chủ rộng Nhiều phương pháp đã được áp dụngnhằm chống lại bệnh héo tươi như luân canh với cây trồng khác họ, sử dụng thuốchóa học, sử dụng nấm đối kháng, vệ sinh đồng ruộng và kể cả sử dụng Methylbromide xử lý đất canh tác cũng không mang lại hiệu quả cao do vi khuẩn có thờigian sống rất lâu trong đất mà không cần sự hiện diện của ký chủ (Driver andLouws, 2002, Wang and Lin (2005), Benson and Peet, 2006) Kết quả nghiên cứu

của Vuruskan and Yanmaz (1990), Augustin et al (2002), Poffley (2003) đều có

kết luận trồng cà chua trong mùa nắng nóng và điều kiện ẩm ướt thì gặp rất nhiều

khó khăn như sự ngập úng, mầm bệnh trong đất và nhiệt độ cao làm giảm năngsuất Bệnh có xu hướng giảm ở những chân đất luân canh với cây lúa nước hoặccác cây trồng khác thuộc họ hòa thảo (Vũ Triệu Mân và Lê Lương Tề, 1998).Hiện nay chưa có giống cà chua kháng bệnh héo tươi, do đó việc sử dụng gốc ghép

có khả năng kháng bệnh, chịu được ngập úng trong mùa mưa và nhiệt độ cao trong

mùa khô đưa vào sản xuất có ý nghĩa rất lớn Theo Black et al (2003) thì hiện nay

giống cà tím EG 195 và EG 203 đã được đưa vào sản xuất dùng làm gốc ghép vớingọn ghép là giống cà chua, có khả năng chống chịu được sự ngập úng trong vài

ngày đồng thời chống chịu được bệnh héo tươi do vi khuẩn R solanacearum và bệnh héo vàng do nấm Fusarium gây hại và đồng thời cho năng suất và chất lượng

trái cao Trong quá trình canh tác nên tiến hành tiêu hủy ngay cây nhiễm bệnh và

có thể sử dụng một số loại thuốc hóa học để ngừa và trị trong giai đoạn sớm như:Kasuran 47 WP, Copper-Zinc 85 WP tưới vào gốc 20-30 g/8 lít nước hoặc phunngừa với Kasumin 2 L,…

1.3 SỰ TƯƠNG THÍCH CỦA GỐC GHÉP VÀ NGỌN GHÉP

Ghép là một kỹ thuật có từ rất lâu đời đối với cây ăn trái Theo một số tài liệu chothấy rằng phương pháp ghép đã được sử dụng ở Trung Quốc từ 1.000 năm TCN,còn ở Châu Âu cũng được ghi nhận từ những năm 384-237 TCN (Oda, 1995).Ngày nay ghép đã trở thành một biện pháp kỹ thuật quan trọng trong quy trìnhnhân giống cây ăn trái Nó đảm bảo cho người dân có được những cây giống tốt,sớm cho trái, đồng thời cây con đảm bảo được đặc tính di truyền của cây mẹ (LêThị Thủy, 2000)

Trong kỹ thuật ghép cà chua khi ghép các gốc ghép có khả năng kháng bệnh vớingọn ghép có năng suất cao thì việc tương thích để hàn gắn vết thương giữa ngọn

ghép và gốc ghép là rất quan trọng Theo Fernandez et al (2002) thì quá trình hàn

gắn vết ghép diễn ra giai đoạn 4 ngày sau khi ghép với đặc điểm lớp tế bào vùngtượng tầng ở hai mặt vết ghép tạo ra callus mới thích hợp chung cho cả ngọn vàgốc ghép, các tế bào này khi sống chúng phát triển nhanh chóng từ bề mặt vếtghép, gia tăng kích thước và phân bào nhanh Điều này giúp cho việc vận chuyểnvật chất qua vết ghép giữa ngọn và gốc ghép tốt nên đòi hỏi phải có sự tương đồngmạch dẫn Sự khác nhau của callus xảy ra ở vùng tế bào tượng tầng và sau đó ởvùng mô gỗ của các tế bào bó mạch ở cả gốc và ngọn ghép giai đoạn 4-8 ngày nên

sự tương thích hay không tương thích của quá trình ghép được thể hiện hoàn toàn

ở thời điểm 15 ngày sau khi ghép

Kết quả này cũng phù hợp với nhận định của Trần Văn Lài (2006) khi ghép ngọn

cà chua HW96 ghép với các gốc ghép khác nhau thì đối với gốc cà tím có thời gianhồi phục sau khi ghép khoảng 3 ngày, cà Pháo là 5 ngày và cà Bát 4 ngày Theo VũThanh Hải và Nguyễn Văn Đĩnh (2000) đối với hai tổ hợp ngọn ghép là cà chua

MV1 và HT7 ghép với gốc ghép EG 203 thì cặp ghép MV1/EG 203 và HT7/EG

203 có thời gian hồi phục 7 ngày sau khi ghép với tỉ lệ (%) sống sau khi ghép đạt

từ 84-89% Điều này cùng phù hợp với Chetelat et al (2006), Benson and Peet (2006) ghi nhận từ Fernandez et al (2002) cho rằng trong suốt quá trình hàn gắn

vết thương cần phải có sự phát triển thích hợp của mô mạch giữa gốc ghép và ngọnghép để kết nối vết ghép, đối với ngọn ghép cà chua giai đoạn này mất khoảng 6-8ngày để hoàn thiện cấu trúc vết ghép

Bên cạnh đó, để nâng cao tỉ lệ sống của cây ghép thì còn phải phụ thuộc vào điềukiện chăm sóc trong phòng hồi phục sau khi ghép, theo hướng dẫn Viện Rau quảChâu Á (AVRDC, 2003) thì điều kiện lý tưởng để cây hồi phục nhanh phải đảmbảo nhiệt độ ở 270C (máy điều hòa nhiệt độ) và ẩm độ 85-90% (máy phun sương)

và cường độ ánh sáng yếu 12,9 µmol/m2/s Phương pháp ghép của Nhật Bản thìcần điều kiện nhiệt độ 250C (ngày và đêm), ẩm độ 78%, ánh sáng 150 µmol/cm2/svới thời gian chiếu sáng 17 giờ (ngày)/7giờ (đêm) Như vậy, thời gian hồi phụckhông chỉ phụ thuộc vào sự tương thích các tổ hợp gốc và ngọn ghép khác nhau

mà còn lệ thuộc điều kiện chăm sóc sau ghép Ngoài các yếu tố trên thì việc tiếnhành lựa chọn thời điểm ghép thích hợp cũng không kém phần quan trọng, TrầnVăn Lài và Lê Thị Hà (2002) cho rằng việc chọn thời điểm ghép khi cây đạt 4-5 láthật thì không thích hợp do tuổi cây con quá dài ảnh hưởng đến tỉ lệ sống sau khighép Trần Kim Cương (2003b) thì cho rằng giống cà tím EG 203 và cà xanh EG

195 khi được ghép với ngọn ghép là giống cà chua F1 607 có thời điểm ghép thíchhợp khi cây đạt 2 lá thật và thời điểm gieo hạt đối với cà tím sớm hơn ngọn ghép

cà chua khoảng 5 ngày để có đường kính cây ghép đồng đều Nhưng theo nghiêncứu của Lê Thị Thủy (2000) thì thời điểm ghép thích hợp khi gốc ghép đạt 4 lá thật

sẽ cho tỉ lệ sống cao nhất và thời điểm gieo ngọn ghép cà chua muộn hơn gốc càtím từ 7-10 ngày để có đường kính của gốc thân và ngọn phải tương đương nhau Đối với cà chua ghép tỉ lệ đường kính giữa gốc thân của ngọn ghép trên đườngkính gốc ghép thể hiện sự tương hợp giữa giống chọn làm gốc ghép với ngọn ghép,khi tỉ lệ này bằng 1, nếu có sự chênh lệch có thể ảnh hưởng đến sự đỗ ngả, dễ gãytại vết ghép hoặc ảnh hưởng đến khả năng vận chuyển dinh dưỡng Theo Lee(1994) và Oda (1995) cho rằng gốc ghép và ngọn ghép có thể tác động với nhau

góp phần tăng năng suất trái cà chua Theo Matsuzoe et al (1993), Rivero and

Romero (2003) thì cây cà chua được ghép trên gốc cà tím có cường độ quang hợptăng cao hơn, có thể chính yếu tố này mà gốc ghép cà tím dù có tỉ lệ đường kínhnhỏ hơn nhưng được bù lại có thể hấp thu và vận chuyển nước tốt nên giúp câytăng năng suất và kéo dài được thời gian thu trái

1.4 ẢNH HƯỞNG CỦA GỐC GHÉP ĐẾN KHẢ NĂNG KHÁNG BỆNH

Nhiều kết quả thí nghiệm cho thấy việc ghép gốc có tác động qua lại lẫn nhau mộtcách ngẫu nhiên để tìm được gốc ghép có khả năng kháng vi khuẩn, việc xác định

gốc ghép kháng bệnh chỉ có thể giải quyết giới hạn mang tính lý học đối với vikhuẩn trong quá trình chúng di chuyển xuyên qua hệ thống mạch dẫn của cây Quakết quả quan sát mô học Nakaho, Hibino and Miyagawa (2000) thấy rằng vi khuẩnxâm nhiễm đối với giống kháng chỉ xuyên qua được mô gỗ sơ cấp mà khôngxuyên qua được mô gỗ thứ cấp của những giống kháng (Nguyễn Thị Nghiêm,1996) Ở Trung Quốc lục địa và vùng lãnh thổ Đài Loan, người ta thường ghép dưa

hấu lên gốc bí đỏ (Cucurbita pepo) để trồng trên ruộng sản xuất Bởi vì gốc bí đỏ

có bộ rễ khỏe, ăn sâu, chống chịu được một số bệnh nhiễm từ đất (chảy gôm, héo

do nấm Fusarium oxyporum…) Cây ghép sinh trưởng và phát triển khỏe hơn,

chống chịu bệnh tốt hơn (Phạm Văn Côn, 2007)

Khi quan sát trên nhiều giống khác nhau nhóm tác giả còn nhận thấy rằng giốngHW96 có giới hạn ở protoxylem thành phần cấu tạo của mô gỗ thứ cấp, một sốgiống kháng khác cũng đều có giới hạn ở mô gỗ thứ cấp đối với vi khuẩn và điềunày ngược lại đối với các giống mẫn cảm với bệnh, các tác giả đã thực hiện lâynhiễm bệnh trong đất với vết ghép cao 1 cm so với mặt đất thì ngọn ghép mẫn cảm

có tỉ lệ bệnh 38,7% đối với gốc ghép kháng bệnh và nhiễm bệnh 100% đối vớingọn ghép với chính nó sau 14 ngày chủng bệnh Như vậy, khi ngọn ghép mẫncảm với mầm bệnh được ghép trên các gốc ghép có khả năng kháng bệnh khácnhau thì vẫn có thể bị nhiễm bệnh phụ thuộc vào giới hạn kích thước của mô thứcấp đối với vi khuẩn của các gốc ghép

Đối với gốc ghép cà tím EG 203 hiện nay có khả năng kháng bệnh tương đối tốt

với chủng vi khuẩn Ralstonia solanacearum cũng như khả năng chịu ngập úng.

Theo kết quả nghiên cứu của Vũ Thanh Hải và Nguyễn Văn Đĩnh (2000) khi

chủng vi khuẩn Ralstonia solanacearum với mật số OD600 = 0,3 (108cfu/ml) trêngốc ghép EG 203 hoàn toàn không nhiễm bệnh so với cà chua MV1 và HT7 nhiễmbệnh từ 7,8-12,3% (mức độ đánh giá là kháng trung bình), nhóm tác giả còn đểngập nước ở độ sâu 5 cm sau 72 giờ, kết quả 100% đối chứng chết từ 53-80%,nhưng gốc ghép EG 203 tỉ lệ chết 0,0%

1.5 ẢNH HƯỞNG CỦA GỐC GHÉP ĐẾN PHẨM CHẤT TRÁI

Theo kết quả nghiên cứu của Trần Văn Lài (2006) thì cây cà chua hoàn toàn có thểsinh trưởng và cho năng suất khi ghép trên gốc cà tím, trong điều kiện ngập nướchay nhiễm bệnh héo tươi cây cà chua ghép trên gốc cà tím có thể cho năng suất caohơn cây cà chua không ghép, hàm lượng đường tổng số, hàm lượng chất khô của trái

và Vitamin C cà chua ghép đều cao hơn cà không ghép và chất lượng đánh giá quacảm quan của trái cà ghép không khác biệt ý nghĩa so với cà chua không ghép TrầnVăn Lài (2006) cũng ghi nhận khi sử dụng gốc ghép cà tím EG203 với cà chua thìngoài khả năng kháng bệnh héo tươi tốt còn có thể chịu được ngập úng nhẹ trongkhoảng 1 tuần nhưng kích thước trái nhỏ hơn và có thể làm giảm năng suất, theo tácgiả thì hiện nay ở Đài Loan thường sử dụng cà tím EG203 làm gốc ghép đối với

ngọn ghép cà chua sơri vì cho trái nhỏ và phẩm chất tốt hơn Theo Ngô Quang Vinh

Đến năm 1927, khi sản xuất rau bị thiệt hại nặng nề bởi các bệnh héo, người dân

Nhật Bản và Hàn Quốc đã sử dụng phương pháp ghép để tránh bệnh héo Fusarium

trên cây dưa hấu Phương pháp này mở ra một hướng mới để phòng trừ các bệnhsinh ra từ đất đối với cây rau, bởi 68% các trường hợp bị bệnh của rau là bắt nguồn

từ đất (Takahashi, 1984)

Nhờ việc sử dụng giống bầu (Cucurbita ficifolia) làm gốc ghép cho cây dưa hấu

mà diện tích dưa hấu ở Nhật Bản tăng 59% năm 1930 so với năm 1929 TheoNichols (2007) đến năm 2000 Nhật Bản thì diện tích trồng dưa hấu ghép chiếm92% diện tích trồng ngoài đồng, 98% diện tích trồng trong nhà lưới Còn ở HànQuốc thì tỷ lệ trồng dưa hấu ghép là 90% ngoài đồng và 98% diện tích trồng trongnhà lưới

Hơn nữa kỹ thuật ghép này còn được người dân ở tỉnh Phúc Kiến, Trung Quốc áp

dụng để cứu nguy cho 5.000 ha dưa hấu bị bệnh Fusarium sp (He and Fu, 1988).

Theo Phạm Văn Côn (2007) thì ở Trung Quốc và Đài Loan người ta thường ghépdưa hấu lên bí đỏ để trồng trên ruộng sản xuất Gốc cây bí đỏ chống chịu được một

số bệnh nhiễm từ đất như héo xanh vi khuẩn, héo do nấm Fusarium sp Ở Hy Lạp,

việc ghép rất phổ biến, đặc biệt là khu vực phía nam, vùng có tỷ lệ diện tích sảnxuất sử dụng biện pháp ghép trong tổng diện tích sản xuất dưa hấu khoảng 90-

100% mỗi vụ trồng dưa hấu (Maršić et al., 2004) Khi nghiên cứu các tổ hợp gốc

ghép khác nhau Oda (1996) còn nhận thấy rằng mùi vị, độ Brix của quả dưa hấutrở nên tốt hơn do ghép cây dưa hấu lên cây bầu so với cây bí

Theo Oda (1992) thì giải pháp trồng cà chua gốc ghép là rất phù hợp đối với cácnước Đông Nam Á trong việc hạn chế thiệt hại do vi khuẩn gây hại đối với cây họ

cà, qua ghi nhận số liệu thống kê tại Nhật Bản năm 1990 thì có 92% dưa hấu,71,7% dưa leo, 43,8% các loại dưa khác, 31,5% cà chua và 49,9% cà tím đã sửdụng cây ghép trong canh tác Trung tâm nghiên cứu Rau Châu Á (AVRDC, 2003)

đã bắt đầu nghiên cứu phương pháp ghép cà chua năm 1992 bằng phương phápghép nối ống cao su đã có kết luận gốc ghép cà tím EG203, EG190, EG197 và càchua HW96 có khả năng kháng bệnh héo tươi cao Diện tích canh tác cà chua ghéphiện nay đang được phát triển mạnh ở các quốc gia như Tây Ban Nha sử dụng trên

45 triệu cây cà ghép vào năm 2003-2004, ở Pháp, Ý trên 20 triệu cây vào năm

2004 đã làm giảm thiệt hại do bệnh hại có nguồn gốc từ đất và kéo dài thời gian

thu hoạch (Besri, 2002) Hiện nay, việc sử dụng cây ghép ghép đã đạt gần như100% diện tích trồng trong nhà kính Các nước tiên tiến đã sử dụng máy ghép tựđộng như máy ghép cà chua của hãng Takii, tốc độ ghép đạt 1,200 cây/giờ và riêng

ở Hàn Quốc đã sử dụng máy ghép dùng cho cây họ bầu bí (Oda, 1993)

1.6.2 Một số kết quả nghiên cứu dưa hấu và cà chua ghép trong nước

Ghép dưa là biện pháp hữu hiệu và kinh tế nhất để có thể trồng dưa liên tục mỗi

năm mà cây con không bị bệnh héo do nấm Fusarium sp., dưa ghép trên gốc bầu là

kỹ thuật trồng phổ biến ở các nước tiên tiến Ở nước ta chỉ có vùng Phú Tâm (SócTrăng) áp dụng kỹ thuật này trong sản xuất đại trà (Phạm Hồng Cúc, 2007) Ởnước ta Bầu Sao được chọn làm gốc ghép vì tăng trưởng mạnh, thích nghi rộng và

dễ để giống (Trần Thị Ba và ctv., 1999; Phạm Hồng Cúc, 2007) Theo Phạm Văn

Côn (2007) thì cây dưa hấu ghép sinh trưởng và phát triển tốt khi trồng khôngdùng đất, ưu thế rõ hơn so với cây không ghép khi trồng trong mùa nóng ẩm.Trung tâm Khuyến nông và Giống Nông nghiệp Bà Rịa-Vũng Tàu phối hợp vớiViện khoa học kỹ thuật nông nghiệp miền Nam thực hiện mô hình ghép dưa hấuvới gốc bầu tại thôn Phước An, xã Đá Bạc, huyện Châu Đức Việc ghép dưa hấuvào gốc bầu ở Bà Rịa-Vũng Tàu đã được Viện Khoa học Kỹ thuật nông nghiệpmiền Nam thực hiện thành công ở huyện Đất Đỏ từ năm 2004, với 240 cây dưahấu ghép với gốc bầu và thành công trong việc chống bệnh héo rũ trên cây dưa(http://www.baobariavungtau.com.vn) Trung tâm khuyến nông tỉnh Lạng Sơn đãtiến hành ghép dưa hấu trên gốc bầu giúp hạn chế sự gây hại của bệnh héo xanh,

héo rũ trên cây dưa hấu do nấm Fusarium sp gây nên, nhất là trên các ruộng dưa

được trồng đi, trồng lại nhiều vụ liên tục mà không được xử lý(http://www.thangbinh.gov.vn)

Ở Việt Nam việc nghiên cứu ghép cà chua bắt đầu năm 1998 tại Viện Nghiên CứuRau Quả Hà Nội với mục đích làm giảm bệnh héo tươi do vi khuẩn, nấm, tuyến

trùng Meloidogyme incognita hại rễ và tăng khả năng chịu ngập úng, sau đó đã mở

rộng ra các tỉnh ở Hải Phòng, Bắc Giang, Hà Nội, Thái Bình, Vĩnh Phúc…

Năm 1999, Viện nghiên cứu Rau quả Hà Nội đã có kết luận gốc cà tím EG 203 làtốt nhất (Trần Văn Lài, 2006) Ở Lâm Đồng có nhiều thí nghiệm nghiên cứu cũngcho kết quả tương tự như hai gốc ghép TI-ARC 128 và TI-ARC 130 mang tínhkháng bệnh cao khi ghép với ngọn ghép cà chua 386, đạt năng suất rất cao (56,0 và49,9 tấn/ha), do đã ứng dụng kỹ thuật ghép gốc kháng bệnh mang lại hiệu quả cao,đến tháng 9/2005 diện tích cà chua ghép ở Lâm Đồng đã tăng lên 1.500 ha và phát

triển được 30 trại sản xuất cà chua ghép (Ngô Quang Vinh và ctv., 2006).

1.7 MỘT SỐ ƯU VÀ KHUYẾT ĐIỂM CỦA DƯA HẤU, CÀ CHUA GHÉP 1.7.1 Ưu điểm

Cây ghép giữ được những đặc tính của giống muốn nhân, tăng sự hấp thu nước vàchất dinh dưỡng, rút ngắn thời gian chọn giống, chống lại những bất lợi của môitrường (Lê Thị Thủy, 2000 và Phạm Văn Côn, 2007) Cành ghép chịu ảnh hưởngcủa gốc ghép về một số mặt như: tuổi thọ dài hay ngắn, phân hóa mầm hoa sớmhay muộn, thế sinh trưởng mạnh hay yếu, tính chống chịu cao hay thấp, một phầnsản lượng và phẩm chất Do đó gốc ghép càng khoẻ, càng thích nghi với điều kiệnkhí hậu đất đai của địa phương thì cây ghép sinh trưởng càng tốt, sản lượng càngcao, tuổi thọ càng dài (Phạm Văn Côn, 2007)

Giảm được tác hại của vi khuẩn gây bệnh héo tươi (Rivard, 2006), hạn chế việc sửdụng thuốc hóa học Trồng cà chua ghép gốc cà tím trong mùa khô và ẩm ướt giúphạn chế những bệnh có nguồn gốc từ đất và có khả năng chịu úng khi ngập nước

trong vài ngày (Augustin et al., 2002; Besri, 2002; Poffley, 2003 và AVRDC,

2003) Gốc ghép còn có khả năng chống chịu mặn ở nồng độ NaCl trong đất (60mM), có khả năng tăng hàm lượng đường nhưng không làm tăng hàm lượng β-

Caroten và vitamin C (Fernandez et al., 2004) Gốc ghép còn có khả năng tăng

cường hấp thu nước và dinh dưỡng, đặc biệt là photpho, canxi và sắt (Lee, 1994;

Leonardi and Giuffrida, 2006) Theo Matsuzoe et al (1993) gốc ghép là cà tím còn

có thể làm tăng khả năng quang hợp so với cây không ghép

1.7.2 Hạn chế

Giá thành cây ghép cao hơn so với cây không ghép và thời gian sinh trưởng củacây ghép lâu hơn cây trồng trực tiếp từ 1-2 tuần Dụng cụ ghép phải sạch và thaotác ghép phải nhanh gọn (Nguyễn Mạnh Chinh và Nguyễn Đăng., 2006) Gốc bầuhút phân và nước mạnh nên lớn nhanh hơn thân dưa, làm vết ghép mở rộng, thândưa rớt khỏi gốc bầu Trồng cây ghép gốc bầu phải tổ chức công nghệ sản xuất câycon (Phạm Hồng Cúc, 2007) Cà chua ghép có giá thành đắt hơn không ghép do

chi phí ghép, hạt giống làm gốc ghép và công tỉa chồi dại (Trần Thị Ba và ctv.,

2008)

CHƯƠNG 2 PHƯƠNG TIỆN VÀ PHƯƠNG PHÁP

2.1 PHƯƠNG TIỆN 2.1.1 Thời gian và địa điểm

* Điều tra: Công tác điều tra và thu thập nguồn bệnh đã được thực hiện vào vụ

Đông Xuân 2006-2007 tại 2 xã thuộc huyện Phụng Hiệp (Hòa Mỹ và Thạnh Hòa),

1 xã thuộc huyện Châu Thành A (Tân Phú Thạnh) và 4 xã thuộc huyện Vị Thủy(Vị Thắng, Vĩnh Thuận Tây, Vĩnh Thuận Đông và Vĩnh Tường)

* Thí nghiệm: từ tháng 11/2006 - 11/2008

Phòng thí nghiệm: Bộ môn Khoa học cây trồng, Bộ môn Bảo vệ Thực vật, KhoaNông nghiệp, Đại học Cần Thơ

Nhà lưới: Trại Nghiên cứu và Thực nghiệm Nông nghiệp, Đại học Cần Thơ

Ngoài đồng: Thực hiện tại xã Long Trị, huyện Long Mỹ, tỉnh Hậu Giang và Hợptác xã rau an toàn ấp Nhất, xã Thạnh Hòa, huyện Phụng Hiệp, tỉnh Hậu Giang

2.1.2 Vật liệu

* Hạt giống:

Dưa hấu làm ngọn ghép: dưa hấu F1 Thành Long (Công ty giống cây trồngTrang Nông phân phối), vỏ mỏng màu xanh có sọc lem, dạng trái hình oval, trungbình 2-3 kg, ruột đỏ đậm chắc thịt, năng suất trung bình 25-30 tấn/ha, thời giansinh trưởng từ 55-58 ngày, độ Brix từ 12-14%

Bầu bí làm gốc ghép: bầu Nhật 1, bầu Nhật 2, bầu Nhật 3, bí đỏ Nhật(nguồn gốc từ công ty giống Kurume, Nhật Bản), bầu thước địa phương và bí đỏđịa phương

Cà Chua làm ngọn ghép: Giống cà chua F1 Red crown 250 (RC 250), đượcnhập nội từ Đài Loan, sinh trưởng vô hạn, năng suất cao, dạng trái tròn được thịtrường ưa chuộng, dễ đậu trái, khi chín có màu đỏ đẹp, thịt dày, cứng dễ chuyênchở đi xa được công ty Giống cây trồng Miền Nam phân phối

Cà làm gốc ghép:

1 Cà tím Hà Nội: Do công ty giống cây trồng Hà Nội cung cấp.

2 Cà tím EG 203: Nguồn gốc từ TT Nghiên cứu và Phát triển rau Á Châu

3 Cà tím Mustang: Giống F1 của công ty liên doanh hạt giống Đông Tây

4 Cà nâu TN 78A: Giống F1 của công ty giống cây trồng Trang Nông

5 Cà xanh EG 195: Nguồn gốc từ TT Nghiên cứu và Phát triển rau Á Châu

6 Cà xanh địa phương: Thuộc nhóm cà phổi, do nông dân thành phố Cần Thơ

tự để giống

7 Cà chua HW 96: Nguồn gốc từ TT Nghiên cứu và Phát triển rau Á Châu

8 Cà chua Đà Lạt: Giống được cơ sở sản xuất cây giống Thảo Nhi sử dụnglàm gốc ghép và cung cấp cây ghép phục vụ sản xuất cho nông dân ở ĐàLạt, tỉnh Lâm Đồng.

* Tình hình khí tượng thủy văn ở Hậu Giang

Nhiệt độ trung bình từ tháng 05/2007 đến tháng 10/2007 là 27,30C, cao nhất là vàotháng năm 28,00C Ẩm độ cao nhất là tháng sáu 86% Lượng mưa cao nhất tháng

10 và thấp nhất vào tháng bảy (Hình 2.1)

Bảng 2.1 Tình hình khí tượng tại tỉnh Hậu Giang (tháng 5-10/2007).

Tháng bình/tháng (Nhiệt độ trung0C) bình/tháng (%)Ẩm độ trung Lượng mưa trungbình/tháng (mm)

* Một số chỉ tiêu lý, hóa và dinh dưỡng trong đất trước và sau vụ canh tác

Một số chỉ tiêu vật lý, hóa học và dinh dưỡng quan trọng trong đất trước và sau vụcanh tác được phân tích tại Phòng phân tích lý hóa đất, Bộ môn Khoa học Đất vàQuản lý Đất đai, Khoa Nông nghiệp & Sinh học Ứng dụng, trường Đại học CầnThơ (Bảng 2.2)

Bảng 2.2 Một số chỉ tiêu dinh dưỡng và hóa học đất trước và sau vụ canh tác của thí nghiệm trồng ngoài đồng

Kali trao đổi (meq/100g)

Canxi trao đổi (meq/100g)

Chất hữu cơ (%)

pH (KCl)

EC (1:2,5) (µS/cm)

vụ, nhưng đối với đạm dễ tiêu dạng NH4+ và NO3- đất cuối vụ giảm thấp cho thấy

có sự đáp ứng đối với cây trồng (trích trong Ngô Ngọc Hưng và ctv., 2004) Đối

với Lân dễ tiêu đất đầu vụ đạt mức khá (theo Lê Văn Căn, 1978), trong đất cuối vụgiảm so với đầu vụ cho thấy có sự đáp ứng tốt cho cây do bón lót từ đầu vụ Hàmlượng Kali, Canxi trao đối của đất đầu vụ, cuối vụ thay đổi không đáng kể và đều

ở mức thấp (theo Kyuma, 1976) Đối với phần trăm chất hữu cơ trong đất biếnđộng từ 3,92- 4,10%, theo thang đánh giá của Chiurin (1951, 1972) thì được đánhgiá đạt mức trung bình Độ chua tiềm tàng (pHKCl) của đất đầu vụ và cuối vụ đềuthấp (3,92- 4,1) đánh giá ở mức chua nhiều (thang đánh giá của USDA, 1983) ECđất đầu vụ thấp hơn cuối vụ, có thể do ảnh hưởng của lượng phân bón thúc lần 4giai đoạn 80 ngày sau khi trồng (NST) lưu tồn đến cuối vụ Theo kết quả phân loạicủa USDA (1983) các giá trị EC của đất đầu cụ và cuối vụ đánh giá ở mức không

mặn (trích trong Ngô Ngọc Hưng và ctv., 2004) Sa cấu đất ở các điểm thí nghiệm

thuộc loại đất thịt pha sét (cát 0,35%, thịt 39,39%, sét 30,72%)

* Vật liệu khác

- Khay ươm cây con bằng mốp xốp kích thước 50 x 30 x 5 cm, 28 lỗ dùng gieo hạt

bầu bí và 66 lỗ dùng gieo hạt cà

- Giá thể đất sạch là mụn xơ dừa (công ty DASA Bến Tre).

- Dụng cụ ghép: dao ghép (trên dưa hấu), ống nhựa ghép (trên cà chua), cồn 960,găng tay, bình phun…

- Mầm bệnh: được phân lập từ vùng trồng rau tập trung của tỉnh Hậu Giang gồm

các chủng nấm Fusarium oxysporum từ mẫu cây dưa hấu trồng ngoài đồng bị nhiễm bệnh héo rũ và các chủng vi khuẩn Ralstonia solanacearum từ mẫu cây cà

chua trồng ngoài đồng bị nhiễm bệnh héo tươi

- Phân bón (hữu cơ và vô cơ), thuốc bảo vệ thực vật (hóa học và sinh học)…

- Dụng cụ khác: Nhiệt độ, ẩm độ kế, hệ thống phun sương tạo ẩm độ, Brix kế,

máy đo màu sắc vỏ trái Colorimeter hiệu CR-200, máy đo độ cứng trái SATO(FRUIT PRESSURE TEASTER - FT 327)

2.2 PHƯƠNG PHÁP 2.2.1 Trên cây dưa hấu

2.2.1.1 Điều tra và thu thập nguồn bệnh tại vùng sản xuất dưa hấu

- Chọn điểm điều tra và thu thập nguồn bệnh héo rũ: tại mỗi huyện, thị, chọn các

xã có trồng dưa hấu tập trung

- Phương pháp điều tra: theo phương pháp điều tra sâu bệnh hại cây trồng của Bộmôn Bảo vệ Thực vật, Khoa Nông nghiệp & SHƯD, trường Đại học Cần Thơ Sửdụng phiếu điều tra, phỏng vấn trực tiếp nông dân và quan sát thực tế, kết hợp thuthập mẫu sâu bệnh để phục vụ cho công tác giám định, phân lập nguồn bệnh héo rũhại cây dưa hấu

- Phiếu điều tra: có nội dung liên quan đến các kỹ thuật canh tác, tình hình sâubệnh hại, kinh nghiệm phòng trừ sâu bệnh hại dưa hấu, các thuận lợi và khó khăntrong canh tác dưa hấu (Phụ chương 1)

- Cách đánh giá sâu hại trên ruộng, theo 3 mức độ: nhẹ (+), trung bình (++), vànặng (+++)

- Cách đánh giá bệnh hại trên ruộng, theo 5 mức độ (Bảng 2.3):

Bảng 2.3 Bảng đánh giá mức độ bệnh trong điều tra phát hiện bệnh hại cây trồng Bộ

môn Bảo vệ Thực vật-ĐHCT (1979)

Không bệnh  Không có bệnh xuất hiện

Nhẹ  Bệnh xuất hiện lẻ tẻ, người đi điều tra phải chú ý tìm tòi mới

thấy được bệnh

Trung bình  Số lượng cây hoặc diện tích bị bệnh thấp Nhìn từ xa vài chục

mét, đám ruộng hoặc khu vườn vẫn xanh tốt bình thường.Nặng   Số lượng cây hoặc diện tích bị bệnh bằng 1/3 số cây hoặc

diện tích điều tra Nhìn từ xa vài chục mét thấy biểu hiện không bình thường

Rất nặng    Bệnh gây thành dịch, từ xa đã thấy ruộng hoặc khu vườn bị

tàn lụi vì bệnh

- Phương pháp thu thập nguồn bệnh: Tại mỗi ruộng dưa hấu bị nhiễm bệnh héo rũ,thu thập 12 mẫu cây bệnh theo 5 điểm chéo góc (thu 2-3 cây/điểm) Khi thu mẫucây bệnh, thu cả cây

2.2.2.2 Đánh giá khả năng tương thích của dưa hấu Thành Long ghép trên

các gốc ghép bầu bí

* Mục đích: Xác định tỉ lệ sống của dưa hấu Thành Long ghép trên gốc ghép bầu

bí đạt tỉ lệ sống sau khi ghép trên 80%

* Bố trí thí nghiệm: Thí nghiệm được bố trí theo thể thức hoàn toàn ngẫu nhiên

gồm 6 nghiệm thức (là 5 loại gốc ghép và 1 đối chứng), với 5 lần lặp lại:

1/ Bầu Nhật 1

2.2.2.3 Đánh giá khả năng chống chịu bệnh héo rũ của cây dưa hấu không

ghép và các giống làm gốc ghép bầu và bí đối với chủng nấm Fusarium

oxysporum được phân lập từ tỉnh Hậu Giang và trồng trong môi trường

đất sạch

* Mục đích:

- Đánh giá khả năng chống chịu bệnh của các loại giống gốc ghép khác nhau vàđối chứng không ghép với các chủng nấm gây bệnh héo rũ được phân lập từ câydưa hấu bệnh ngoài đồng

- Tuyển chọn các gốc ghép có khả năng chống chịu bệnh tốt

* Bố trí thí nghiệm: thí nghiệm được bố trí theo thể thức khối hoàn toàn ngẫu

nhiên thừa số 2 nhân tố với 3 lần lặp lại, gồm:

Nhân tố thứ nhất là gốc ghép (5 loại gốc ghép khác nhau ở thí nghiệm 1hoặc 6 loại gốc ghép khác nhau ở thí nghiệm 2 và 1 đối chứng không ghép) tương

tự như thí nghiệm đánh giá khả năng tương thích của các gốc ghép

Nhân tố thứ hai là chủng nấm Fusarium oxysporum gây bệnh héo rũ được

phân lập từ tỉnh Hậu Giang, gồm 2 chủng nấm (F1 và F2) và 1 đối chứng khôngchủng bệnh (F0)

- Tổng số gồm 18 nghiệm thức với 54 lô, trồng 4 cây/lô, mỗi lô thí nghiệm là 1chậu bằng mốp xốp kích thước 50 cm x 30 cm x 20 cm, với giá thể đất sạch mầmbệnh (đã được thanh trùng), sau đó chủng bệnh nhân tạo với hai chủng nấm pháttriển mạnh và phổ biến nhất được phân lập từ mẫu cây bệnh héo rũ ngoài đồng tạitỉnh Hậu Giang vào giai đoạn 15 NST

2.2.2.4 Đánh giá khả năng chống chịu bệnh héo rũ trên dưa hấu của những

dòng ghép tương thích ngoài đồng

* Mục đích:

- Xác định tỉ lệ (%) nhiễm bệnh của gốc ghép trong điều kiện ngoài đồng

- Đánh giá sự sinh trưởng, năng suất và một số chỉ tiêu phẩm chất trái

- Xác định gốc ghép đạt hiệu quả kinh tế

7,5 m

* Bố trí thí nghiệm: Theo thể thức khối hoàn toàn ngẫu nhiên, 6 nghiệm thức (5

loại gốc ghép bầu, bí và 1 đối chứng không ghép, tương tự thí nghiệm đánh giá khảnăng tương thích của các gốc ghép và khả năng chống chịu bệnh héo rũ của câydưa hấu ghép trong nhà lưới) với 4 lần lặp lại (Hình 2.1)

- Diện tích lô: 26,25 m2/lô

- Diện tích thí nghiệm: 1.000 m2 (bao gồm cả hàng bảo vệ)

Hình 2.1 Sơ đồ bố trí thí nghiệm dưa hấu trên các loại gốc ghép bầu, bí tại Hậu Giang,

Thu Đông 2007

2.2.3 Trên cây cà chua

2.2.3.1 Điều tra và thu thập nguồn bệnh tại vùng sản xuất cà chua

Phương pháp tương tự như trên cây dưa hấu

2.2.3.2 Đánh giá khả năng sống của cà chua F1 Red crown 250 ghép trên các

loại gốc ghép khác nhau

* Mục đích: Xác định tỉ lệ sống của cà chua F1 Red crown 250 ghép trên các loạigốc ghép khác nhau đạt tỉ lệ sống sau khi ghép trên 80%

* Bố trí thí nghiệm: Theo thể thức hoàn toàn ngẫu nhiên với 9 nghiệm thức (8

loại gốc ghép và đối chứng cà chua RC 250 không ghép) với 3 lần lặp lại:

2.2.3.3 Đánh giá khả năng chống chịu bệnh héo tươi của các giống làm gốc

ghép cà chua, cà tím, cà xanh và cà nâu với chủng vi khuẩn Ralstonia

solanacearum được phân lập tại tỉnh Hậu Giang trồng trong môi

trường đất sạch

* Mục đích:

- Đánh giá khả năng chống chịu bệnh của các loại giống gốc ghép khác nhau vàđối chứng không ghép với các chủng vi khuẩn gây bệnh héo tươi được phân lập từcây cà chua bệnh ngoài đồng

- Tuyển chọn các gốc ghép có khả năng chống chịu bệnh tốt

* Bố trí thí nghiệm: Các gốc ghép có tỉ lệ sống sau khi ghép đạt trên 80% (từ thí

nghiệm đánh giá khả năng tương thích của các gốc ghép khác nhau với ngọn ghép

cà chua RC 250) được chọn trồng trong chậu với giá thể đất sạch mầm bệnh, sau

đó chủng bệnh nhân tạo vào giai đoạn 15 NST, với hai chủng vi khuẩn phát triểnmạnh và phổ biến nhất được phân lập từ mẫu cây bệnh héo tươi ngoài đồng tại tỉnhHậu Giang

- Thí nghiệm được bố trí theo thể thức khối hoàn toàn ngẫu nhiên thừa số 2 nhân tốvới 3 lần lặp lại, gồm:

Nhân tố thứ nhất là gốc ghép (8 loại gốc ghép khác nhau và 1 đối chứngkhông ghép) tương tự như thí nghiệm đánh giá khả năng tương thích của các gốcghép

Nhân tố thứ hai là các chủng vi khuẩn Ralstonia solanacearum gây bệnh

héo tươi được phân lập từ tỉnh Hậu Giang (chủng V1, chủng V2 và 1 đối chứng V0không chủng bệnh

- Tổng số gồm 27 nghiệm thức với 81 lô, trồng 5 cây/lô, mỗi lô thí nghiệm là 1chậu bằng mốp xốp kích thước 50 cm x 30 cm x 20 cm, với giá thể đất sạch mầmbệnh (đã được thanh trùng), sau đó chủng bệnh nhân tạo vào giai đoạn 15 NST, vớihai chủng vi khuẩn phát triển mạnh và phổ biến nhất được phân lập từ mẫu câybệnh héo tươi ngoài đồng tại tỉnh Hậu Giang

2.2.3.4 Đánh giá khả năng chống chịu bệnh héo tươi của các giống làm gốc

ghép cà chua, cà tím, cà xanh và cà nâu trong môi trường nền đất tự nhiên đã nhiễm bệnh héo tươi

* Mục đích:

- Đánh giá khả năng chống chịu bệnh của 8 giống gốc ghép và đối chứng (khôngghép) trong môi trường nền đất tự nhiên đã nhiễm bệnh héo tươi qua 2 vụ trồng càchua, trong điều kiện trồng trong nhà lưới

- Đánh giá sự sinh trưởng, năng suất và một số chỉ tiêu phẩm chất trái cà chua ghép

* Bố trí thí nghiệm: Theo thể thức khối hoàn toàn ngẫu nhiên một nhân tố với 9

nghiệm thức (8 giống gốc ghép và một gốc đối chứng không ghép, tương tự nhưthí nghiệm đánh giá khả năng tương thích của các gốc ghép) với 6 lần lặp lại Quansát 4 cây/lô, diện tích lô 1,26 m2 và tổng diện tích thí nghiệm: 120 m2

2.2.3.5 Đánh gía khả năng chống chịu bệnh héo tươi trên cà chua của những

dòng ghép tương thích ngoài đồng

* Mục đích:

- Xác định tỉ lệ (%) nhiễm bệnh của gốc ghép trong điều kiện ngoài đồng

- Đánh giá sự sinh trưởng, năng suất và một số chỉ tiêu phẩm chất trái

- Xác định gốc ghép đạt hiệu quả kinh tế

* Bố trí thí nghiệm: Theo thể thức khối hoàn toàn ngẫu nhiên gồm 4 nghiệm thức

(3 loại gốc ghép được chọn ra từ những thí nghiệm trước và 1 đối chứng), với 4 lầnlặp lại (Hình 2.2)

2.3.1 Trên cây dưa hấu

2.3.1.1 Cây con trong giai đoạn vườn ươm

- Chuẩn bị cây ghép (bên trong nhà lưới): Giá thể gieo là mụn xơ dừa loại dành

riêng cho cây con (bổ sung nhiều vi sinh có lợi cho cây), trộn đều, vô đầy khay và

nén nhẹ Hạt bầu, bí được ngâm trong nước ấm (nhiệt độ 45-500 trong 90 phút),chà cho sạch nhớt, gói vào khăn bàn lông cho vào bọc ni lông trắng và đem phơinắng Khi hạt bầu, bí nảy mầm thì gieo vào khay xốp đã được chuẩn bị sẵn, đặtkhay nơi có nhiều ánh nắng để cây con lên đều, khoẻ mạnh Khi cây bầu, bí mọcđều có hai lá mầm vừa mở ra (khoảng 6-7 ngày sau khi gieo) là chuẩn bị ủ hạt dưa.Hạt dưa được ngâm trong nước ấm (nhiệt độ 45-500 trong 90 phút), chà sạch nhớt,chọn trấu mới ngâm ướt, nhồi cho hơi mềm rãi lên trên rổ nhựa một lớp dày khoảng 2-3

cm, rãi hạt dưa đều lên mặt trấu, phủ lên trên lớp trấu dày khoảng 2 cm Khi dưa vừa mọckhỏi mặt trấu, để rổ dưa nơi có ánh sáng nhẹ cho thân mầm mọc dài và chậm mở lá Bắtđầu ghép khi cây bầu, bí có lá thật đầu tiên (khoảng 10-12 ngày sau khi gieo) và cây dưachưa mở 2 lá mầm (khoảng 4-6 ngày sau khi ủ hạt dưa) Tưới đẫm gốc ghép trong bầu đấttrước khi ghép vì sẽ ngưng tưới 2- 3 ngày sau khi ghép

Hình 2.3 Cây con bầu bí dưa chuẩn bị ghép: (a) cây bầu ở giai đoạn 13 ngày tuổi, chuẩn

bị ghép, (b) cây bí ở giai đoạn 12 ngày tuổi, chuẩn bị ghép, (c) cây dưa hấu ởgiai đoạn 4-5 ngày tuổi, vừa bung vỏ hột, chuẩn bị ghép

- Phương pháp ghép: sử dụng phương pháp ghép ngọn (Hình 2.4).

c

+ Ngắt bỏ lá thật (lá nhám) đầu tiên của bầu, bí chỉ chừa lại 2 lá mầm.

+ Dùng que lược sừng ghim vào ngọn bầu, bí xéo 1 góc 30-400, xuyên quathân, giữ que ghim tại ngọn

+ Dùng lưỡi lam cắt bỏ phần gốc thân cây dưa hấu 1 góc 30-400, dưới lá mầm1,5-2 cm

+ Rút bỏ que ghim trên ngọn bầu, bí đặt ngay ngọn dưa lên gốc ghép sao chomặt cắt áp vào thân Và 2 tử diệp của ngọn ghép vuông góc với 2 lá mầm của gốcghép (để khi ngọn dưa phát triển sẽ không bị cản trở bởi lá mầm của gốc ghép),thao tác phải nhanh, chính xác để tránh gió làm lành vết que ghim trên gốc ghép vàmặt cắt ngọn ghép Tiến hành ghép vào buổi chiều mát từ 16-20 giờ là tốt nhất

Hình 2.4 Kỹ thuật ghép dưa hấu: (a) ngắt bỏ lá thật của gốc ghép bầu bí, (b) ghim que

lược sừng vào gốc ghép bầu bí, (c) cắt bỏ phần gốc thân của ngọn ghép dưahấu và (d) ấn ngọn ghép dưa hấu vào vị trí đặt dao ghép trên thân bầu bí

- Chăm sóc sau ghép: Đặt cây ghép vào phòng phục hồi sau ghép, trong ngày đầu

tiên máy phun sương mịn được phun 15 phút/lần từ 8 giờ sáng đến 16 giờ chiều đểngọn dưa luôn được tươi (chỉ phun mù tránh nước đọng thành giọt trên lá bầu, bí),

từ ngày thứ 2-3 trở đi có thể phun nước cho cây bằng bình bơm có vòi phun nướcmịn Ngày thứ 4 đưa cây ghép vào nhà thuần dưỡng sau khi ghép Ngày thứ 5 đưacây ghép ra tập nắng, nơi có ánh nắng nhẹ Ngày thứ 6 trở đi đưa cây ghép ra ngoàinắng bình thường Khi cây dưa ghép bầu, bí có lá thật đầu tiên là trồng được(khoảng 10-12 ngày sau khi ghép) (Hình 2.5)

Hình 2.5 Cây dưa hấu ở giai đoạn 10 ngày sau khi ghép: (a) trên gốc bầu, (b) trên gốc bí,

chuẩn bị trồng ra đồng

2.3.1.2 Phương pháp chủng bệnh nhân tạo

Chủng bệnh khi cây được 15 NST bằng phương pháp tưới huyền phù nấm bệnhvào vùng rễ non đã bị cắt đứt, với mật số chủng là 50.000 bào tử/cc Trước khichủng bệnh, tưới nước vào vùng rễ cho ẩm, sau đó tạo vết thương ở rễ bằng cáchcắt đứt 25% số rễ (cách gốc 3-5 cm) Sau khi chủng bệnh xong, dùng cỏ tươi cắtkhúc phủ mặt đất để giữ ẩm Các bước thực hiện cụ thể như sau:

- Các chủng nấm gây bệnh héo rũ được phân lập từ mẫu cây dưa hấu nhiễm bệnhngoài đồng từ hai điểm trồng rau chuyên canh của tỉnh Hậu Giang, tại Phòng thínghiệm Bộ môn Bảo vệ Thực vật, Khoa Nông nghiệp & SHƯD, ĐHCT

- Nhân mật số mầm bệnh trong môi trường nuôi cấy: Các mẫu cây bệnh được đemcấy và tách ròng trong môi trường PDA, quan sát tốc độ phát triển của nấm bệnh

và chọn ra được 2 chủng nấm phát triển nhanh, mạnh và xuất hiện phổ biến nhấttrong môi trường nuôi cấy, đồng thời kết hợp tính phổ biến rộng và khả năng gâybệnh nặng trên đồng ruộng của 2 chủng nấm này trong quá trình điều tra Sau đó,nhân nuôi 2 chủng nấm này để làm nguồn chủng bệnh nhân tạo

- Nguồn nấm dùng để chủng bệnh được đếm và pha loãng huyền phù để đạt đượcmật số cần thiết là 50.000 bào tử/cc huyền phù

- Tạo vết thương nhân tạo ở vùng rễ: Dùng dao bén cắt đứt đầu rễ non của khoảng25% số rễ hiện có, cắt cách gốc khoảng 3-5 cm

- Chủng bệnh ở giai đoạn 15 NST, tương ứng 38 ngày sau khi ghép: Bằng cáchtưới 100 ml dung dịch huyền phù nấm bệnh vào vùng rễ ngay sau khi tạo vếtthương với mật số chủng là 50.000 bào tử/cc huyền phù (Hình 2.6 và Hình 2.7)

- Các điều kiện cần được lưu ý: (1) không sử dụng thuốc diệt nấm sau khi chủngbệnh và trong thời gian ít nhất là 15 ngày trước khi chủng bệnh; (2) chủng bệnhkhi trời mát; (3) ngưng tưới nước 48 giờ sau khi chủng bệnh; và (4) tưới vừa đủ ẩmliên tục trong các ngày sau đó

Ngọn dưa hấu

Gốc bí

Vị trí ghép Ngọn dưa hấu

Gốc bầu

Vị trí ghép

Hình 2.6 Tạo vết thương 25% vùng rễ

trước khi chủng bệnh

Hình 2.7 Tưới huyền phù nấm bệnh vào

phần rễ đã được tạo vết thương

2.3.1.3 Kỹ thuật canh tác dưa hấu ghép gốc

- Chuẩn bị đất trồng: Đất lúa đã lên liếp trồng dưa chỉ tiến hành bồi đất, bón lót

từ 50 kg vôi/1.000 m2, 30 kg NPK 16-16-8 và 280 kg phân hữu cơ/1.000 m2 Sau

đó đậy màng phủ lại khổ rộng 1,6 m Liếp đôi rộng 4,5 m, mương rộng 0,4 m,chiều cao so với mặt ruộng là 25 cm

- Khoảng cách và mật độ trồng: Cây con được đem ra trồng lúc trời mát khoảng

cách trồng là 0,4 m, mật độ từ 1.050 cây/1.000 m2 tưới đẫm nuớc trước khi trồngđục lỗ màng phủ sâu 5 cm và đường kính 10 cm theo khoảng cách cây, bón lótphân xong rồi rải một lớp đất mịn, rồi rải một lớp tro trấu lên Rải Basudin 10 Hngừa sâu ăn tạp, kiến cắn phá

- Bón phân: Công thức phân sử dụng cho dưa hấu là 160 N-160 P2O5-100 K2Okg/ha Loại (Bảng 2.4)

Bảng 2.4 Lịch bón phân và lượng phân bón cho dưa hấu trên các gốc ghép tại Hậu

Giang, Thu Đông 2007

Loại phân Lượng phân

- Tưới nước: Trước khi đậy màng phủ (sau khi bón phân lót) cho nước vào vừa

ngập mặt ruộng cũ, nước sẽ thấm lên đỉnh liếp giúp bộ rễ cây con mới trồng đầy đủ

ẩm độ nên không cần thiết tưới trên mặt lá, cây sẽ phục hồi nhanh chóng Trờinắng gắt tưới bằng thùng vòi sen tưới 1 lần vào buổi trưa trong 2 ngày đầu Sau đó

5 ngày mới tưới thấm 1 lần, giai đoạn phát triển nhanh 3 ngày tưới 1 lần Khi dưamang trái cung cấp nước điều hòa để trái tăng trưởng thuận lợi, không bị nứt Khidưa bắt đầu chín giảm lượng nước từ từ và ngừng hẳn vài ngày trước thu hoạch

- Ngắt đọt: Khi cây có 4 lá thật tiến hành ngắt bỏ đọt thân chính, sau đó cây đâm

nhiều nhánh tỉa chừa lại 2 nhánh tốt, sau khi để trái tiến hành ngắt bỏ đọt, vị tríngắt đọt cách trái 6 lá Cách làm này giúp tăng độ đồng đều của trái, tăng năng suấttrái mà không làm thay đổi kích thước trái và phẩm chất trái

- Sửa dây: Khi dưa hấu có 2 dây chèo (20 NST) thì tiến hành sửa và cố định vị trí

bò của dây (dùng que kẽm khoảng 12 cm, một đầu bẻ cong có luồn 2 cm ống hútbên ngoài) giúp các dây bò song song khắp mặt liếp theo thứ tự, không quấn chồnglên nhau làm ảnh hưởng đến khả năng quang hợp của cây và giảm nơi trú ngụ củanhiều loại sâu bệnh

- Tỉa nhánh: tỉa nhánh sớm khi mới vừa lú ra 5-7 cm, chỉ chừa 2 nhánh/cây cho

đến khi thu hoạch giúp cây tập trung dinh dưỡng nuôi trái Việc tỉa nhánh đượcthực hiện thường xuyên cho đến khi thu hoạch

- Thụ phấn bổ sung: Thời gian thụ phấn tiến hành từ 6-9 giờ trong thời kỳ trổ hoa

rộ (30-37 NST), công việc này làm liên tục trong 7 ngày

- Tuyển trái: Khi trái bằng trái chanh tiến hành tuyển trái (trái thứ 2-3) Chọn trái

đầy đặn, cuống to, dài, có nhiều lông tơ thẳng, không sâu bệnh, đồng thời tỉa bỏ tất

cả các trái khác và sửa cho trái đứng để trái phát triển đồng đều

2.3.2 Trên cây cà chua

2.3.2.1 Vườn ươm cây con

Vườn ươm cây con được đặt trong nhà lưới có mái che để tránh mưa, có lưới đengiảm bớt cường độ ánh sáng, cây con được đặt trên kệ cao cách mặt đất 70 cm

2.3.2.2 Kỹ thuật gieo cây con đối với gốc ghép và ngọn ghép

Các gốc ghép là giống cà chua thì hạt được gieo cùng một thời điểm với ngọnghép, các gốc ghép là các giống cà tím, cà nâu, cà xanh gieo hạt trước 5-7 ngày sovới ngọn ghép

Trước khi gieo, hạt được ngâm trong nước nóng ở nhiệt độ 45-500C trong 30 phútsau đó vớt hạt và gói vào khăn bàn lông để ủ Khi hạt vừa nứt mầm thì đem gieovào khay ươm, gieo cạn khoảng 0,5 cm, không lấp kín hạt, phun nước vừa đủ ẩm,sau đó xếp khay thành một khối và dùng bạt phủ kín Sau 2-3 ngày kiểm tra, thấy

có mầm trắng nhô lên thì đem ra vườn ươm để chăm sóc

* Phương pháp ghép nối ống cao su

Sử dụng phương pháp ghép nối ống cao su theo quy trình của Trung tâm nghiêncứu và phát triển Rau Á châu (AVRDC, 2003) Thời điểm tiến hành ghép khi cácgốc ghép khác nhau và ngọn ghép (cà chua RC 250) có đường kính tương đươngnhau khoảng 2 mm, cây đạt 3-4 lá thật Trước khi đưa cây vào phòng ghép cầnphải phun thuốc trừ sâu và bệnh khoảng 2-3 ngày, tưới nước trước từ 1-2 giờ giúpcây đủ ẩm trong thời gian lưu giữ trong phòng ghép và đảm bảo khô ráo thân látrước khi ghép

Tiến hành ghép: Đối với gốc ghép cắt trên lá mầm khoảng 1-1,5 cm, ngọn ghép cắtdưới lá thật đầu tiên khoảng 1-1,5 cm với thao tác cắt và ghép được thực hiện nhưsau (Hình 2.8):

- Trước tiên cắt bỏ ngọn của gốc ghép: Tay trái cầm ngọn của cây làm gốc ghép,tay phải cầm dao cắt, cắt vát một góc khoảng 300 và bỏ phần ngọn, gốc giữ cố địnhtrong khay ươm

- Tiếp theo tay trái cầm ngọn của cây cần lấy ngọn ghép, tay phải cắt ngọn ghépcũng cắt vát một góc khoảng 300, sau đó lấy ống cao su ấn nhẹ vào ngọn ghép vừacắt

- Kế đến tay trái cầm ngọn ghép đã có ống cao su, ấn nhẹ phần còn lại của ống cao

su vào gốc ghép sao cho 2 mặt vát cắt của ngọn và gốc ghép áp sát vào nhau theophương song song tạo cho thân ngọn cây ghép một phương thẳng đứng

Sau khi ghép xong chuyển nhanh đến phòng phục hồi sau khi ghép

* Chăm sóc cây con sau khi ghép

- Thời gian từ 0-3 ngày sau khi ghép: Cây ghép được đặt trong phòng phục hồi sau khighép và đảm bảo nhiệt độ thấp từ 27-300C, ẩm độ cao 85-95%, kín ánh nắng và gió

- Ngày thứ 4-7 ngày sau khi ghép: Chuyển cây ra khu thuần dưỡng có che lưới đengiảm 50% ánh sáng trực xạ và trong điều kiện nhiệt độ không khí khoảng 300C, ẩm

độ không khí khoảng 60-70% Từ ngày thứ 3 sau khi ghép trở đi tưới nước cho câybằng bình phun nước với vòi phun mịn

- Ngày thứ 8-12: Cây ghép được chuyển cây sang khu vườn ươm, nhiệt độ trên 300C,

ẩm độ không khí trên 60%, khoảng 12-15 ngày sau khi ghép có thể trồng ra đồng

Hình 2.8 Kỹ thuật ghép nối ống cao su: (a) cắt bỏ ngọn của cây sử dụng gốc ghép, (b) cắt

ngọn ghép của cây cà chua RC 250, (c) ấn ống cao su vào ngọn ghép, (d) ấn ống cao su đã mang ngọn ghép vào gốc ghép

Hình 2.9 Cây cà chua sau khi ghép: (a) Cây ghép trên gốc cà tím, (b) Cây ghép trên gốc

cà chua

* Phương pháp chủng bệnh nhân tạo

Chủng bệnh nhân tạo được tiến hành khi cây ghép ở thời điểm 15 NST với các

chủng vi khuẩn Ralstonia solanacearum được phân lập từ mẫu cây cà chua nhiễm

bệnh ngoài đồng tại các vùng trồng rau chuyên canh của tỉnh Hậu Giang Lâynhiễm bệnh nhân tạo theo phương pháp của Kelman và Winstead (1952) bằng cáchtưới dung dịch huyền phù có chứa chủng vi khuẩn gây bệnh héo tươi với mật số

106 cfu/ml huyền phù vào vùng rễ vừa bị gây tổn thương đầu rễ non (cắt 25% số rễ

non của cây con vào 15 NST), các bước thực hiện như sau:

- Các chủng vi khuẩn gây bệnh héo tươi được phân lập từ mẫu cây cà chua nhiễmbệnh ngoài đồng tại hai điểm trồng rau chuyên canh của tỉnh Hậu Giang, tại Phòngthí nghiệm Bộ môn Bảo vệ Thực vật, Khoa Nông nghiệp & SHƯD, ĐHCT.

- Nhân mật số mầm bệnh trong môi trường nuôi cấy: Các mẫu cây bệnh được đemcấy và tách ròng trong môi trường King B, quan sát tốc độ phát triển của vi khuẩn

và chọn ra được 2 chủng vi khuẩn phát triển nhanh, mạnh và xuất hiện phổ biếnnhất trong môi trường nuôi cấy, đồng thời kết hợp tính phổ biến rộng và khả nănggây bệnh nặng trên đồng ruộng của 2 chủng vi khuẩn này trong quá trình điều tra.Sau đó, nhân nuôi 2 chủng vi khuẩn này để làm nguồn chủng bệnh nhân tạo

- Nguồn vi khuẩn dùng để chủng bệnh được đếm và pha loãng huyền phù để đạtđược mật số cần thiết là 106 cfu/ml huyền phù

- Tạo vết thương nhân tạo ở vùng rễ: Dùng dao bén cắt đứt đầu rễ non của khoảng

¼ số rễ hiện có, cắt cách gốc khoảng 5-7 cm

- Chủng bệnh ở giai đoạn 15 NST, tương ứng 30 ngày sau khi ghép: Bằng cáchtưới 100 ml dung dịch huyền phù vi khuẩn vào vùng rễ ngay sau khi tạo vếtthương với mật số chủng là 106 cfu/ml huyền phù (Hình 2.10 và Hình 2.11)

- Các điều kiện cần được lưu ý: (1) không sử dụng thuốc diệt vi khuẩn sau khichủng bệnh và trong thời gian ít nhất là 15 ngày trước khi chủng bệnh; (2) chủngbệnh khi trời mát; (3) ngưng tưới nước 48 giờ sau khi chủng bệnh; và (4) tưới vừa

đủ ẩm liên tục trong các ngày sau đó

Hình 2.10 Tạo vết thương ¼ vùng rễ

trước khi chủng bệnh

Hình 2.11 Tưới huyền phù vi khuẩn vào

phần rễ đã được tạo vết thương

2.3.3 Trồng và chăm sóc cây ghép giai đoạn cây lớn

* Thí nghiệm trồng trong chậu với giá thể sạch bệnh trong nhà lưới

Sử dụng đất thịt pha sét vô trùng 8 kg + 2 kg mụn xơ dừa sạch bệnh, trộn đều vàcho vào chậu thí nghiệm

Tưới nước: Tưới từ 1- 2 ngày/lần đảm bảo đủ ẩm cho cây

Tỉa chồi: Chỉ chừa 1 thân chính và 2 thân phụ trên cây, loại bỏ các chồi dại của gốcghép và chồi nách trên thân chính và hai thân phụ cây ghép

* Thí nghiệm trồng trên nền đất đã nhiễm bệnh trong nhà lưới

Thí nghiệm được thực hiện trên nền đất đã trồng cà chua liên tục qua 2 vụ trước đóvới tỉ lệ bệnh héo tươi 30%

Liếp trồng hàng đôi, kích thước 0,9 m x 1,4 m, chiều cao liếp 0,2 m Khoảng cáchcây cách cây 0,35 m, hàng cách hàng 0,45, lối đi giữa 2 liếp là 0,85 m Có kết hợp

sử dụng màng phủ nông nghiệp và sử dụng phương pháp tưới nhỏ giọt

Tỉa chồi: Chỉ chừa 1 thân chính và 2 thân phụ, loại bỏ các chồi dại của gốc ghép vàchồi nách trên thân chính và hai thân phụ và các lá già để cây nuôi trái tốt Làmgiàn treo để cố định thân và trái tránh tiếp xúc đất ở giai đoạn 20 NST

Công thức phân bón thí nghiệm: 182 N-180 P2O5-150 K2O (Bảng 2.5)

Bảng 2.5 Loại phân, liều lượng bón và các thời kỳ bón phân cà chua ghép gốc trồng

trong nhà lưới và ngoài đồng.

(kg/ha)

Bón lót(kg/ha)

* Trồng ngoài đồng trên nền đất nhiễm bệnh héo tươi và có chủng bệnh nhân tạo

- Thí nghiệm trồng hàng đơn, kích thước liếp trồng 7,5 m x 1,4 m, hàng cách hàng1,3 m, cây cách cây 0,4 m lối đi lại 0,5 m, liếp cao 0,2 m, mật độ trồng khoảng20.000 cây/ha Khu thực hiện thí nghiệm không có bờ bao xung quanh, nền đất liếptrồng tương đối thấp, hệ thống mương thoát nước kém khi có mưa lớn và kéo dài.

- Kết hợp sử dụng màng phủ nông nghiệp, trồng cây lúc chiều mát, tưới nước 1-2lần/ngày giai đoạn cây con, tiến hành trồng dậm 3-5 NST

- Cố định cây con khi trồng bằng cọc tre được cắm thẳng đứng giúp cây không đổngã và hạn chế phần vết ghép tiếp xúc với đất ẩm

- Phương pháp chủng bệnh nhân tạo được tiến hành vào15 NST tương tự như thínghiệm đánh giá khả năng chống chịu bệnh của các gốc ghép khác nhau với ngọn

cà chua trồng trong chậu với giá thể sạch bệnh tại nhà lưới

- Tỉa chồi, làm giàn hình chữ nhân, bón phân và phun phân bổ sung tương tự nhưthí nghiệm trồng trong nhà lưới

2.4 PHƯƠNG PHÁP THU THẬP SỐ LIỆU 2.4.1 Đánh giá khả năng sống của các loại gốc ghép trên dưa hấu và cà chua

* Ghi nhận: thời gian nẩy mầm và tỉ lệ (%) nẩy mầm của các giống làm gốc ghép,

ngọn ghép, ngày tiến hành ghép Thời gian hồi phục của cây ghép (khi có 50% số

lá của ngọn ghép tươi trở lại bình thường), tỉ lệ (%) cây sống sau khi ghép và thờigian từ khi ghép đến khi đưa cây ra đồng (ngày)

* Các chỉ tiêu sinh trưởng: cây con trước và sau khi ghép, định kỳ 5 ngày/lần

- Chiều cao cây ghép (cm): dùng thước cây đo từ mặt đất đến đỉnh sinh trưởng.

- Số lá (lá): đếm tổng số lá thật giai đoạn trong vườn ươm.

- Đo đường kính cây ghép (cm): đặt 2 cạnh thước thước kẹp vuông góc với thân

cây, phần trên lá thật đầu tiên khoảng 1 cm ở giai đoạn trước khi ghép Giai đoạnsau khi ghép, đo đường kính thân gốc của ngọn ghép ở phía vị trí phía trên mắt lágần vết ghép nhất khoảng 1 cm (do nơi vết ghép bị phù) và đo đường kính gốcghép (phía dưới vết ghép) cách vết ghép 1 cm Đo vị trí tương đương khoảng 3-4

cm đối với gốc đối chứng (không ghép) Cách đo được thực hiện hai lần với gócquay thước 900, tính trung bình

- Tỉ lệ đường kính gốc thân của ngọn ghép/đường kính gốc ghép

Kết quả sau khi thí nghiệm sẽ chọn ra các gốc ghép có tỉ lệ sống sau khi ghép ở giaiđoạn trước khi trồng ra đồng, đạt trên 80% được chọn trồng để chủng bệnh nhân tạonhằm đánh giá khả năng chống chịu bệnh của các gốc ghép với ngọn ghép

2.4.2 Đánh giá khả năng chống chịu bệnh héo rũ dưa hấu và héo tươi cà chua

- Tỉ lệ (%) bệnh héo: Cách quan sát bệnh tuỳ loại héo như sau:

+ Đối với bệnh héo rũ trên dưa hấu: Quan sát cây có triệu chứng lá vàng vàhéo rũ từ gốc lan dần lên, sau đó, cả cây chết héo dần

+ Đối với bệnh héo tươi trên cà chua: Quan sát cây có triệu chứng héo xanh

ở các lá non và đọt non, lá héo rũ xuống khi trời nắng nóng (khoảng 10 giờ sángtrong ngày) và tươi trở lại khi trời mát, hiện tượng này xảy ra trong vòng 2-3 ngàythì cây héo chết hoàn toàn

Đếm số cây bị nhiễm bệnh trên từng lô định kỳ 10 ngày/lần và quy ra tỉ lệ(%) bệnh của từng nghiệm thức theo công thức sau:

Tỉ lệ bệnh (%) * 100

P

T



Trong đó: T: Số cây bị bệnh; P: Tổng số cây quan sát.

- Đánh giá phản ứng của cây đối với bệnh (Bảng 2.6):

Bảng 2.6 Bảng phân cấp bệnh và phản ứng của cây đối với bệnh theo tỉ lệ cây nhiễm bệnh, trong điều tra qui luật phát sinh phát triển của bệnh hại cây

2.4.3.1 Sự sinh trưởng của cây ghép

* Ghi nhận: Thời điểm 50% số cây/lô ra hoa đầu tiên, thời gian từ khi trồng đến

khi thu hoạch trái (riêng cà chua: tổng thời gian thu trái và thời gian kết thúc thínghiệm)

* Các chỉ tiêu nông học: Theo dõi ngẫu nhiên 10 cây/lô, định kỳ 10 ngày/lần

- Chiều cao cây, số lá trân thân chính, đường kính gốc thân ngọn ghép, đường kínhgốc ghép và tỉ lệ đường kính gốc thân của ngọn ghép trên đường kính gốc ghép:Được thực hiện tương tự như thí nghiệm trong nhà lưới

- Kích thước trái (cm): Dùng thước kẹp đo chiều cao trái (từ chóp đuôi đến đỉnhtrái) và đường kính: đo hai lần với góc quay thước 900, tính trung bình (riêng càchua ở lần thu trái 3, 4)

- Xác định dạng hình trái: Dựa vào chỉ số (I) được tính bởi tỉ lệ chiều caotrái/đường kính trái để xác định dạng trái ghép

I = H / D

Trong đó: I: Chỉ số dạng trái, H: Chiều cao trái, D: Đường kính trái

- Khi I = 0,6 - 0,8 hình dạng trái thuộc dạng trái dẹt

- Khi I = 0,80 - 1,25 hình dạng trái thuộc dạng trái tròn

- Khi I > 1,25 hình dạng trái thuộc dạng trái oval

2.4.3.2 Năng suất và thành phần năng suất

* Trọng lượng trái (g/trái): Cân 10 trái ngẫu nhiên/lô ở các lần thu hoạch, tính

trọng lượng trung bình trái của từng nghiệm thức

* Trọng lượng trái/cây (kg/cây): Cân tổng trọng lượng trái lúc thu hoạch (đối với

cà chua thì qua các lần thu hoạch), ghi nhận ngẫu nhiên 10 cây/lô

- Số trái/cây (cà chua): Đếm tất cả số trái/cây qua các lần thu hoạch, chọn ngẫu

nhiên 10 cây/lô và tính trung bình

* Năng suất thương phẩm (tấn/ha): Tổng khối lượng trái thương phẩm/lô lúc thu

hoạch (đối với cà chua thì qua các lần thu hoạch) là những trái không sâu bệnh,không nứt, vết thương, thối…

* Năng suất thực tế (tấn/ha): Cân trọng lượng trái/lô ở tất cả các lần thu hoạch.

* Tính năng suất lý thuyết (tấn/ha): Trọng lượng trái/cây x Mật độ cây/ha.

* Tỉ lệ năng suất giảm do bệnh (%): Là phần năng suất mất đi do bệnh héo rũ

dưa hấu hoặc héo tươi cà chua so với năng suất lý thuyết:

Năng suất lý thuyết - Năng suất thực tế

Tỉ lệ giảm năng suất (%) = - x 100

Năng suất lý thuyết

* Tỉ lệ gia tăng năng suất so với đối chứng (%): Là phần năng suất gia tăng của

các gốc ghép khác nhau so với năng suất gốc đối chứng:

Năng suất gốc ghép - Năng suất đối chứng

Tỉ lệ gia tăng năng suất (%) = - x 100

Năng suất đối chứng

2.4.3.3 Một số chỉ tiêu phẩm chất trái

* Độ Brix: Đo bằng Brix kế ngẫu nhiên 3-5 trái/ lô.

* Màu sắc vỏ trái: Được xác định bằng máy đo màu Colorimeter hiệu CR-200 ở

vị trí đầu, giữa và cuối trái, mỗi lô chọn đo ngẫu nhiên 5 trái Màu sắc vỏ trái đượcđánh giá qua sự thay đổi của trị số màu sắc (∆E) theo bằng công thức:

E * ab = [(L*)2 + (a*)2 + (b*)2]1/2

L, a, b: màu của vỏ trái ở thời điểm đo (đọc trên máy).

L*t, a*t, b*t: màu mục tiêu ban đầu

* Độ cứng trái (kgf/cm2): Được xác định bằng máy đo độ cứng SATO (FRUITPRESSURE TASTAR-FT 327), đo ở vị trí đầu trái, giữa trái và cuối trái, sau đó

tính trung bình Mỗi lô đo ngẫu nhiên 3-5 trái và tính trung bình, kết quả tính theocông thức:

H = F / S

F: giá trị của lực được đọc trên đồng hồ đo (kgf)

S: Diện tích của đầu thiết bị (cm 2 )

- Hàm lượng Vitamin C của trái: Được xác định bằng phương pháp MURI, trong

đó hàm lượng vitamin C trong 100 gam mẫu tươi được tính theo công thức:

X = ((a-b) x 0,088 x V1 x 100)/ V2 x m (mg/100g)

Trong đó: a: Số ml của 2,6-dichlorophenol indolphenol khi chuẩn độ mẫu ly trích

B: Số ml của 2,6-dichlorophenol indolphenol khi chuẩn độ mẫu đối chứng

m: Trọng lượng mẫu ban đầu (g)

0,088: Số mg của acid ascorbic tương ứng với 1 ml dung dịch chuẩn độ

* Độ dày thịt trái (mm): Cắt trái theo chiều ngang, dùng thước kẹp đo độ dày

phần thịt trái tại 3 vị trí khác nhau, đo ngẫu nhiên 3-5 trái/lô

* Ghi nhận thời gian tồn trữ (ngày): Lấy ngẫu nhiên 3-10 trái/lô để trong điều

kiện nhiệt độ phòng và theo dõi hàng ngày, ghi nhận thời gian từ thu hoạch đến khibắt đầu xuất hiện triệu chứng tổn hại

2.4.4 Hiệu quả kinh tế của các gốc ghép

* Tổng chi phí: bao gồm tiền giống, màng phủ, phân bón, thuốc bảo vệ thực vật,

công làm cỏ, công làm đất, công chăm sóc…

* Tổng thu nhập: Năng suất (kg/ha) x giá bán (đồng/kg) = (đồng/ha)

* Lợi nhuận: Giá trị tổng thu nhập - Tổng chi phí sản xuất

* Tỉ suất lợi nhuận: Việc đánh giá hiệu quả kinh tế của từng loại gốc ghép khác

nhau khi đầu tư một đồng chi phí vào sản xuất có khả năng thu lại được bao nhiêulợi nhuận tương ứng, được đánh giá dựa trên tỉ suất lợi nhuận của mỗi loại gốcghép như sau:

Lợi nhuận

Tỉ suất lợi nhuận =

Tổng chi phí đầu tư

2.5 PHƯƠNG PHÁP XỬ LÝ SỐ LIỆU

Sử dụng phần mềm Excel, SPSS để phân tích thống kê số liệu thí nghiệm

CHƯƠNG 3 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN

PHẦN 1 CÂY DƯA HẤU

1.1 3.1 ĐIỀU TRA HIỆN TRẠNG CANH TÁC DƯA HẤU VÀ THU THẬP NGUỒN BỆNH HÉO RŨ

3.1.1 Tình hình chung

Hai huyện Phụng Hiệp và Vị Thủy đều có khả năng phát triển cây dưa hấu Tuynhiên, nông dân ở huyện Phụng Hiệp còn hạn chế về kỹ thuật, nên thường chỉtrồng theo kinh nghiệm, còn nông dân ở huyện Vị Thủy do có sự kết hợp giữa haiyếu tố là kinh nghiệm và được tập huấn nên trồng với kỹ thuật cao hơn Về biệnpháp phòng trị sâu bệnh, nông dân ở cả hai nơi đều sử dụng thuốc hóa học màkhông áp dụng các biện pháp phòng trị khác, làm cho khả năng kháng thuốc củasâu tăng cao, bệnh trên cây cũng không ngừng phát triển và đặc biệt nghiêm trọng

là bệnh héo rũ do nấm Fusarium oxysporum, nông dân chỉ phun ngừa là chính chứ

không biết cách trị Đây là một trong những nguyên nhân làm gia tăng tần suất vàliều lượng sử dụng nông dược Phân bón được sử dụng đều là phân hóa học, và sửdụng với liều lượng cao hơn mức khuyến cáo

3.1.2 Các thông tin điều tra

a) Một số thông tin về nông hộ ở các vùng điều tra

- Tỉ lệ hộ được điều tra: Công tác điều tra đã được thực hiện trên 60 hộ đã và/hoặc

đang trồng dưa hấu, trong đó có 20 hộ (hơn 33%) của xã Hoà Mỹ và Thạnh Hoàthuộc huyện Phụng Hiệp, và 40 hộ (gần 67%) ở các xã Vị Thắng, Vĩnh Tường,Vĩnh Thuận Tây và Vĩnh Thuận Đông thuộc huyện Vị Thủy

Bảng 3.1 Một số thông tin về nông dân trồng dưa hấu tại vùng điều tra thuộc tỉnh Hậu

30-4020

>4070

20-3010

30-4048

>4042Trình độ học vấn

(Cấp học)

cấp 150

cấp 245

cấp 35

cấp 150

cấp 248

cấp 32

- Người trực tiếp canh tác: Hầu hết là nam giới trực tiếp canh tác (95% hộ ở PhụngHiệp và 100% hộ ở Vị Thủy) (Bảng 3.1) Đây là tình trạng chung ở ĐBSCL: Côngviệc chủ yếu của phụ nữ thường là nội trợ, chăm sóc các thành viên trong gia đình

Ngoài ra, do ít có điều kiện nâng cao kiến thức về kỹ thuật như nam giới nên phụ

nữ thường chỉ là lao động phụ trong sản xuất nông nghiệp

- Độ tuổi và trình độ học vấn của nông dân: Đa số nông dân trên 40 tuổi (70%người ở Phụng Hiệp và 42% người ở Vị Thủy), đây là lớp nông dân nhiều kinhnghiệm, tuy nhiên, do trình độ học vấn còn thấp, đa số chỉ đạt đến cấp 1 (50%người) và cấp 2 (42-45% người) (Bảng 3.1) Đó có thể là nguyên nhân hạn chế vềnhận thức trong việc nhận diện sâu bệnh gây hại và sử dụng thuốc bảo vệ thực vậttrong phòng trừ dịch hại

- Thuận lợi và khó khăn trong canh tác:

+ Thuận lợi: Kết quả ở Bảng 3.2 cho thấy đa số hộ cho rằng đất canh tác trongvùng điều tra được tốt (65% hộ ở Phụng Hiệp và 60% hộ ở Vị Thuỷ), điều nàychứng tỏ hai vùng đất này thích hợp cho việc canh tác dưa hấu Đặc biệt ở VịThủy, tuy gặp khó khăn đáng kể về giá cả thị trường không ổn định, gây ảnhhưởng lớn đến việc canh tác dưa hấu, nhưng bù lại ở đây nông dân tích lũy nhiềukinh nghiệm qua từng mùa vụ canh tác và được tập huấn kỹ thuật thường xuyênnên có kỹ thuật canh tác tốt và thu được lợi nhuận cao (có 55% hộ đạt được lợinhuận cao)

Bảng 3.2 Những thuận lợi và khó khăn trong việc canh tác dưa hấu

Qua kết quả trên ta thấy rằng khó khăn lớn nhất mà nông dân gặp phải trong sảnxuất dưa hấu là vấn đề sâu bệnh Đây có thể xem là yếu tố quyết định đến việc mởrộng sản xuất của nông hộ cũng như của vùng Có thể nói sự hạn chế về trình độ

văn hoá như đã trình bày ở trên, cũng đã hạn chế sự tiếp thu và khả năng nắm bắtcác tiến bộ khoa học kỹ thuật của bà con Ngoài ra, một số hộ đã không sử dụngmàng phủ và chưa thực hiện tốt khâu vệ sinh đồng ruộng (sẽ được trình bày trongphần kỹ thuật canh tác dưới đây) cũng là các nguyên nhân dẫn đến nhiều sâu bệnh.

b) Một số thông tin về điều kiện và kỹ thuật canh tác của nông dân trồng dưa hấu tại vùng điều tra

- Diện tích canh tác: Đa số nông hộ trồng dưa hấu hơn 2000 m2 (Phụng Hiệp có40% hộ, Vị Thủy có 70% hộ)

- Đất canh tác: Có 95% hộ ở Phụng Hiệp trồng dưa trên đất ruộng, còn ở Vị Thủy

là 91% hộ

- Nguồn nước tưới và cách tưới: Nguồn nước tưới hoàn toàn từ sông, kênh, rạch(100% hộ), tưới chủ yếu bằng thùng vòi, chỉ có 1 hộ áp dụng phương pháp tướithấm ở mỗi huyện

- Vị trí ruộng dưa: Đa số các ruộng dưa (55% ở Phụng Hiệp, 63% ở Vị Thủy) cách

xa nguồn nước tưới (bờ sông, kênh, rạch) khoảng >100 – 500 m Có 10% ở PhụngHiệp và 5% ở Vị Thủy cách xa nguồn nước tưới hơn 500 m

- Rẫy bị ngập trong mùa lũ: 60% ruộng dưa ở Phụng Hiệp và 78% ở Vị Thủy bịngập nước trong mùa lũ, đây là lý do làm hạn chế việc tăng vụ trong năm

- Bờ bao: Có 85% ruộng dưa ở PH và 82% ở VT có bờ bao Tuy nhiên, đa số bờbao không cao (10-50 cm) nên có 30 - 32% ruộng bị nước tràn bờ

- Mô hình canh tác: Chủ yếu là luân canh với lúa (55% hộ ở Phụng Hiệp, 60% hộ ở

Vị Thuỷ) và chuyên canh màu (45% hộ ở Phụng Hiệp, 40% hộ ở Vị Thủy)

- Số vụ canh tác trong năm: Nông dân ở Phụng Hiệp canh tác 1 vụ trong nămchiếm đa số (60% hộ), trong khi ở Vị Thủy thì chủ yếu canh tác 2 vụ trong năm(50% hộ)

- Giống: Tất cả các hộ không tự để giống mà mua giống từ các công ty giống vàtrồng bằng cây con Có 10% hộ ở Phụng Hiệp và 20% hộ ở Vị Thủy không xử lýgiống trước khi gieo trồng

- Phủ liếp: Tất cả các hộ trồng dưa đều phủ liếp Vật liệu phủ liếp là rơm, lục bìnhhoặc màng phủ plastic

Như đã nêu trên, nông dân ở Phụng Hiệp do ít được tập huấn kỹ thuật nên có đến60% hộ không sử dụng màng phủ nông nghiệp Do không thấy ai sử dụng nên 10%nông dân không dám mạnh dạn đầu tư và 15% hộ cho rằng sử dụng màng phủ rấtđắt tiền, không mang lại lợi ích so với trồng mô và sợ rằng nếu năng suất khôngcao thì sẽ bị thua lỗ, và 20% hộ không biết hoặc không hiểu lợi ích của màng phủ.Trong khi nông dân ở huyện Vị Thủy thì thường xuyên được cán bộ nông nghiệpđịa phương hoặc cán bộ khoa Nông nghiệp và SHƯD (Đại học Cần Thơ) đến tập