Nghiên cứu xây dựng thực phẩm nuôi qua ống xông mũi dạ dày và đánh giá bước đầu khả năng dung nạp in vitro và in vivo

ĐẠI HỌC QUỐC GIA TP HỒ CHÍ MINH TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA NGUYỄN THỊ QUỲNH HOA NGHIÊN CỨU XÂY DỰNG THỰC PHẨM NUÔI QUA ỐNG XÔNG MŨI – DẠ DÀY VÀ ĐÁNH GIÁ BƯỚC ĐẦU KHẢ NĂNG DUNG NẠP IN VITRO VÀ IN VIVO LUẬN ÁN TIẾN SĨ KỸ THUẬT TP HỒ CHÍ MINH - NĂM 2020 ĐẠI HỌC QUỐC GIA TP HCM TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA NGUYỄN THỊ QUỲNH HOA NGHIÊN CỨU XÂY DỰNG THỰC PHẨM NUÔI QUA ỐNG XÔNG MŨI – DẠ DÀY VÀ ĐÁNH GIÁ BƯỚC ĐẦU KHẢ NĂNG DUNG NẠP IN VITRO VÀ IN VIVO Chuyên ngành: Chế biến thực phẩm đồ uống Mã số chuyên ngành: 62540201 Phản biện độc lập: PGS TS Phạm Văn Hùng Phản biện độc lập: PGS TS Hoàng Kim Anh Phản biện: PGS TS Kha Chấn Tuyền Phản biện: TS BS Phạm Thị Lan Anh Phản biện: PGS TS Phan Ngọc Hòa NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC GS TS Đống Thị Anh Đào TS BS Lưu Ngân Tâm LỜI CAM ĐOAN Tác giả xin cam đoan cơng trình nghiên cứu thân tác giả Các kết nghiên cứu kết luận luận án trung thực, không chép từ nguồn hình thức Việc tham khảo nguồn tài liệu (nếu có) thực trích dẫn ghi nguồn tài liệu tham khảo theo yêu cầu Tác giả luận án Nguyễn Thị Quỳnh Hoa i TÓM TẮT LUẬN ÁN Thực phẩm dinh dưỡng y học phân ngành quan trọng ngành công nghệ thực phẩm, nhu cầu lớn bệnh viện Một thực phẩm dinh dưỡng y học quan tâm nhiều thực phẩm qua ống xông dùng cho bệnh nhân nội ngoại trú Chính vậy, việc nghiên cứu sản xuất thực phẩm qua ống xông sản phẩm từ nguồn thực phẩm tự nhiên nước có khả hấp thu cao vấn đề cấp thiết Để góp phần giải vấn đề trên, luận án nghiên cứu thực phẩm qua ống xông mũi dày từ nguồn nguyên liệu tự nhiên nước đánh giá khả tiêu hóa sản phẩm in vitro enzyme đánh giá khả hấp thu in vivo chuột khả dung nạp bệnh nhân ngoại thần kinh có định NAQOX Luận án đạt số kết sau: Thiết lập cơng thức ngun liệu cho q trình chế biến sản phẩm nuôi ăn qua xông công thức chuẩn (1kcal/mL) Thiết lập điều kiện xử lý tối ưu hóa điều kiện thủy phân protein thịt đậu nành đạt hiệu suất thu nhận peptide cao nhất, có kích thước phân tử trung bình < 8,5 kDa, khối lượng phân tử trung bình 1,53kDa dịch thủy phân protein có độ nhớt kích thước hạt phù hợp chảy qua ống xơng, với nhóm acid amin mạch nhánh đạt tỷ lệ BCAA 2:1:1, phù hợp cho khả tiêu hóa người bệnh sau phẫu thuật Xây dựng quy trình chế biến sản phẩm NAQOX Đánh giá độ tiêu hóa in vitro sản phẩm phương pháp pepsin, pH-stat pHdrop Đánh giá độ tiêu hóa protein sản phẩm in vivo chuột trắng giống Swiss albino Đánh giá khả dung nạp sản phẩm bệnh nhân hiệu việc dùng sản phẩm ni ăn qua xơng lên tình trạng dinh dưỡng bệnh nhân khoa Ngoại Thần Kinh Bệnh viện Chợ Rẫy Những kết bước đầu tạo tiền đề cho việc triển khai sản xuất thực phẩm qua xông cung cấp cho bệnh nhân miền Nam nói riêng phạm vi nước nói chung, đồng thời nguồn tham khảo đáng tin cậy cho nghiên cứu lĩnh vực nghiên cứu chế biến thực phẩm dinh dưỡng y học phục vụ người bệnh ii ABSTRACT OF THESIS Medical food has been a prominent trend in the food industry worldwide One of the most popular enteral feeding products is tube feeding food which can be widely used in inpatients and outpatients Therefore, the study of the production of enteral food from local natural food sources in Vietnam was an urgent and essential problem The subject developed and implemented the project with applying the novel technology in the processing and producing an enteral feeding food using Vietnamese natural sources In order to assure the quality of the product, the study to test the digestibility of the product has been carried out in both in vitro and in vivo Then, a clinical trial was conducted in various categories of neurologic patients to evaluate the effectiveness and safety of the product The thesis has achieved some significant results as follows: Developed formulate of raw materials for the process of processing standard formula (1 kcal/mL) Set up loin pork and soy processing technologies and optimized all factors that impact on the protein hydrolysis of raw meat and soybean in the processing to meet high-performance and make the hydrolysis of small molecular weight 1.53kDa and the peptides of molecular size under 8.5kDa and to get a suitable lowest viscosity and particle size product running through the feeding tube with the proper proportion of short chain peptide and ratio BCAA as 2:1:1 suitable for the digestibility of severe patients Developed a process for processing natural ingredients-based enteral feeding product Conducted an assessment of the digestibility in vitro (pepsin, pH-stat and pH-drop method) Evaluated the protein digestibility of the product in animal models Swiss albino Implemented a controlled clinical trial in the patients of the Department of Neurology, Cho Ray Hospital to test the effectiveness (nutritional status) and tolerance of the tube feeding food produced from natural ingredients Taking together, these results showed very promising that we had enough ability and technology to develop a process in production of tube feeding product from local natural ingredients in the South in particular and in the country of Vietnam in general The widely producing of this product should be considered and implemented in nationwide It was also a reliable source for the further research in the same field of research into the nutrition medicines for patients iii LỜI CÁM ƠN Trong trình thực luận án, nhận nhiều giúp đỡ, tạo điều kiện tập thể lãnh đạo, ban giám hiệu, nhà khoa học, cán bộ, chuyên viên, Phòng Đào tạo Sau Đại học, Bộ môn Công Nghệ Thực Phẩm, giảng viên phòng ban chức trường Đại học Bách Khoa TP.HCM, tập thể Ban lãnh đạo đồng nghiệp Bệnh viện Chợ Rẫy Tôi xin bày tỏ lòng cảm ơn chân thành giúp đỡ Tơi xin bày tỏ lịng biết ơn sâu sắc đến tập thể cán hướng dẫn GS.TS Đống Thị Anh Đào TS.BS Lưu Ngân Tâm, người trực tiếp hướng dẫn tơi hồn thành luận án Tôi xin tri ân tới GS.TS Đống Thị Anh Đào, người truyền cho nghị lực niềm tin hướng dẫn khoa học, chuyên môn cho tơi q trình làm nghiên cứu sinh Xin cảm ơn TS.BS Lưu Ngân Tâm hướng dẫn, ủng hộ đóng góp nhiều ý kiến quý báu cho luận án kể từ ngày đầu xây dựng đề cương nghiên cứu Con xin cảm ơn đến Ba Má đặc biệt gửi đến trai - điểm tựa vững suốt năm thực đề tài với tình cảm u thương vơ bờ Tơi xin chân thành cảm ơn tất anh chị em, bạn bè, đồng nghiệp tơi ln khích lệ, tạo điều kiện ủng hộ giúp đỡ trình thực luận án Nguyễn Thị Quỳnh Hoa iv MỤC LỤC LỜI CAM ĐOAN i TÓM TẮT LUẬN ÁN ii ABSTRACT OF THESIS iii LỜI CẢM ƠN iv MỞ ĐẦU CHƯƠNG TỔNG QUAN 1.1 Khái niệm thực phẩm dinh dưỡng y học dinh dưỡng qua ống xông 1.2 Các loại sản phẩm NAQOX 1.3 Nhu cầu dinh dưỡng bệnh nhân sau phẫu thuật 1.3.1 Năng lượng 1.3.2 Protein 1.3.3 Chất béo 1.3.4 Khoáng chất 1.3.5 Vitamin 1.4 Tình hình nghiên cứu sản xuất sản phẩm NAQOX 1.4.1 Trên giới 1.4.2 Tại nước 10 1.5 Các tiêu chuẩn đánh giá sản phẩm NAQOX 10 1.5.1 Các tiêu dinh dưỡng 10 1.5.2 Các tiêu hóa lý 10 1.6 Các nguyên liệu enzyme dùng chế biến sản phẩm NAQOX 12 1.6.1 Nhóm protein 12 1.6.2 Ngũ cốc, rau củ 13 1.6.3 Nhóm chất béo 14 1.6.4 Công thức phối trộn 14 1.6.5 Các enzyme sử dụng nghiên cứu 15 1.7 Phương pháp chế biến sản phẩm NAQOX 18 1.7.1 Phương pháp gia nhiệt 18 1.7.2 Phương pháp thủy phân 19 1.8 Đánh giá mức độ tiêu hóa protein dung nạp sản phẩm NAQOX 19 1.8.1 Mức độ tiêu hóa protein in vitro in vivo 19 1.8.2 Đánh giá khả dung nạp hấp thu sản phẩm NAQOX bệnh nhân…… 22 1.8.3 1.9 Một số nghiên cứu sản xuất đánh giá khả hấp thu sản phẩm NAQOX 22 Nội dung nghiên cứu luận án 24 v CHƯƠNG NGUYÊN LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 26 2.1 Nguyên liệu, enzyme thiết bị 26 2.2 Nội dung nghiên cứu 27 2.3 Bố trí thí nghiệm 28 2.3.1 Khảo sát trình chế biến sản phẩm NAQOX 28 2.3.2 Đánh giá khả tiêu hóa protein in vitro 38 2.3.3 Đánh giá độ tiêu hóa protein in vivo chuột trắng giống Swiss albino đánh giá khả dung nạp bệnh nhân 39 2.4 Phương pháp phân tích cơng thức tính tốn 42 2.4.1 Phương pháp phân tích 42 2.4.2 Cơng thức tính tốn 43 2.5 Phương pháp xử lý số liệu 44 CHƯƠNG KẾT QUẢ NGHIÊN CỨU VÀ BÀN LUẬN 46 3.1 Kết xây dựng công thức sản phẩm NAQOX 46 3.1.1 Thành phần dinh dưỡng nguyên liệu 46 3.1.2 Xây dựng công thức chế biến thực phẩm nuôi ăn qua xông 46 3.2 Lựa chọn enzyme cho q trình thủy phân nhóm protein động vật 47 3.3 Giai đoạn gia nhiệt thịt heo nạc vai 49 3.3.1 Ảnh hưởng lượng nước bổ sung lên mức độ thủy phân thịt Alcalase 49 3.3.2 Ảnh hưởng nhiệt độ xử lý nhiệt thịt trình tiền xử lý trước thủy phân Alcalase 49 3.3.3 Ảnh hưởng thời gian xử lý nhiệt thịt trước trình thủy phân Alcalase 50 3.4 Các yếu tố ảnh hưởng đến trình thủy phân protein thịt heo Alcalase 51 3.4.1 Ảnh hưởng pH đến độ nhớt HSTHPHT 51 3.4.2 Ảnh hưởng nhiệt độ đến độ nhớt HSTHPHT dịch thủy phân 51 3.4.3 Ảnh hưởng hàm lượng enzyme đến độ nhớt HSTHPHT dịch thủy phân 52 3.4.4 Ảnh hưởng thời gian thủy phân đến độ nhớt HSTHPHT dịch thủy phân 53 3.4.5 Tối ưu hố q trình thủy phân protein thịt heo Alcalase với hàm mục tiêu độ nhớt 54 3.4.6 3.5 Đánh giá kết sản phẩm thủy phân thịt 60 Khảo sát q trình chế biến nhóm protein đậu nành 63 3.5.1 Chọn enzyme thủy phân protein đậu nành 63 3.5.2 Kết khảo sát yếu tố ảnh hưởng đến trình thủy phân protein đậu nành Flavourzyme trường hợp không xử lý nhiệt hạt đậu nành 63 3.5.3 Kết khảo sát trình xử lý nhiệt tiền thủy phân đến trình thủy phân protein đậu nành Flavourzyme 66 vi 3.5.4 Kết khảo sát yếu tố ảnh hưởng đến trình thủy phân protein đậu nành qua xử lý nhiệt enzyme Flavourzyme Alcalase 68 Tối ưu hố q trình thủy phân protein đậu nành hai loại enzyme 73 3.5.5 3.5.6 Tối ưu hóa quy hoạch thực nghiệm với hàm mục tiêu HSTHPHT trình thủy phân protein đậu nành Flavourzyme 73 3.6 Kết khảo sát trình chế biến nhóm tinh bột khoai tây gạo 81 Kết sơ chế khoai tây gạo 81 3.6.1 3.6.2 Kết khảo sát trình gia nhiệt khoai tây gạo đến hao hụt vitamin B1……… 81 3.6.3 Kết q trình thủy phân nhóm gạo, khoai tây chế phẩm enzyme Termamyl SC 83 3.6.4 Quy hoạch thực nghiệm tối ưu hóa yếu tố pH, nhiệt độ, thời gian hàm lượng enzyme q trình thủy phân nhóm tinh bột Termamyl SC với hàm mục tiêu độ nhớt 87 3.6.5 Ảnh hưởng đồng thời pH, nhiệt độ, thời gian nồng độ enzyme đến trình thủy phân nhóm tinh bột enzyme Termamyl SC với hàm mục tiêu DE 89 3.7 Kết khảo sát trình nấu thủy phân cà rốt bí đỏ 92 3.7.1 Khảo sát nhiệt độ nấu cà rốt nhiệt độ nấu bí đỏ 92 3.7.2 Khảo sát thời gian nấu cà rốt, bí đỏ 93 3.7.3 Kết thủy phân nhóm rau củ cà rốt, bí đỏ enzyme Pectinex Ultra SPL 93 3.7.4 Tối ưu hóa yếu tố nhiệt độ, pH, thời gian nồng độ enzyme trình thủy phân pectin cà rốt, bí đỏ Pectinex Ultra SP-L 96 3.8 Phối trộn/Lọc/Đồng hóa/Thanh trùng UHT/Đóng chai 99 3.9 Quy trình sản xuất sản phẩm ni qua ống xơng 100 3.9.1 Quy trình sản xuất sản phẩm ni qua ống xơng 100 3.9.2 Kết kiểm nghiệm sản phẩm NAQOX 101 3.9.3 Kết kiểm tra khối lượng phân tử sản phẩm 104 3.10 Xác định hạn sử dụng sản phẩm NAQOX 106 3.10.1 Sự phát triển VSV thời gian bảo quản 106 3.10.2 Sự thay đổi pH sản phẩm theo thời gian 107 3.10.3 Sự thay đổi giá trị PoV theo thời gian sản phẩm 107 3.10.4 Mức độ hao hụt vitamin E, vitamin B1 vitamin C thời gian tháng…… 109 3.11 Đánh giá mức độ tiêu hóa sản phẩm NAQOX in vitro 110 3.11.1 Mức độ tiêu hóa protein phương pháp Pepsin 110 3.11.2 Đánh giá mức độ tiêu hóa protein in vitro theo phương pháp pH-stat 110 3.11.3 Đánh giá mức độ tiêu hóa protein in vitro phương pháp pH-drop 110 3.12 Mức độ tiêu hóa protein in vivo chuột trắng giống Swiss albino 111 3.13 Mức độ dung nạp sản phẩm bệnh nhân sau phẫu thuật ngoại thần kinh 112 vii 3.13.1 Kết đánh giá mức độ dung nạp sản phẩm ảnh hưởng lên tình trạng dinh dưỡng bệnh nhân ngoại thần kinh 112 3.13.2 Thời gian nuôi ăn 113 3.13.3 Kết dung nạp thực phẩm biến chứng sau can thiệp 114 3.13.4 Sự thay đổi chung tình trạng dinh dưỡng sau can thiệp 114 3.14 Bàn luận đánh giá dung nạp bệnh nhân ngoại thần kinh 115 3.14.1 Đặc điểm ban đầu 115 3.14.2 Kết dung nạp biến chứng dinh dưỡng qua ống xông 116 3.14.3 Sự thay đổi tình trạng dinh dưỡng sau can thiệp 117 CHƯƠNG 4: KẾT LUẬN 119 DANH MỤC CÔNG TRÌNH CƠNG BỐ CỦA TÁC GIẢ 121 TÀI LIỆU THAM KHẢO 122 viii [32] E P McNamara, P Flood, and N P Kennedy, “Home tube feeding: An integrated multidisciplinary approach,” J Hum Nutr Diet., 2001 [33] R T Hurt et al., “Blenderized tube feeding use in adult home enteral nutrition patients,” Nutr Clin Pract., 2015 [34] H Korhonen and A Pihlanto, “Food-derived bioactive peptides opportunities for designing future foods,” Curr Pharm Des., vol 9, pp 1297–1308, 2003 [35] A Kilara and D Panyam, “Peptides from milk proteins and their properties,” Crit Rev Food Sci Nutr., vol 43, pp 607–633, 2003 [36] R Hartmann and H Meisel, “Food-derived peptides with biogogical activity: from research to food applications,” Curr Opin Biotechnol., vol 18, pp 163–9, 2007 [37] A Siemensma, W Weijer, and H Bak, “The important of peptide lengths in hypoallergenic infant formulae,” Trends Food Sci Technol., vol 4, pp 16–21, 1993 [38] G Grimble, R Rees, P Keohane, T Cartwright, M Desreumaux, and D Silk, “Effects of peptide chain length on absorption of egg protein hydrolysates in the normal human jejunum,” Gastroenterology, vol 92, pp 136–142, 1987 [39] N Siparsky, “Postoperative parenteral nutrition,” 2018 [Online] Available: uptodate.com [Accessed: 04-Jun-2018] [40] Y Huckleberry, “Nutritional support and the surgical patient,” Am J Heal Syst Pharm, vol 61, pp 671–682, 2004 [41] W H Organization, Vitamin and mineral requirements in human nutrition World Health Organization, 2004 [42] L Harkness, “The history of enteral nutrition therapy: From raw eggs and nasal tubes to purified amino acids and early postoperative jejunal delivery,” Journal of the American Dietetic Association 2002 [43] R Chernoff, “An overview of tube feeding: from ancient times to the future,” Nutrition in Clinical Practice 2006 [44] D C Heimburger and R L Weinsier, “Guidelines for evaluating and categorizing enteral feeding formulas according to therapeutic equivalence,” J Parenter Enter Nutr., vol 9, no 1, pp 61–67, 2015 [45] B Brandtzaeg, N G Malleshi, U Svanberg, H S R Desikachar, and O Mellander, “Dietary bulk as a limiting factor for nutrient intake with special reference to the feeding of pre-school chil-dren.III Studies of malted flours from ragi, sorghum and green gram.,” J Trop Pediat, vol 27, pp 184–189, 1981 [46] P Howard, “Basics in clinical nutrition: Enteral nutrition,” e-SPEN 2009 [47] A Levine, T Labuza, and J Morley, “Food technology: A Primer for physicians,” New Engl JMed, vol 312, no 10, pp 628–634, 1985 124 [48] E Bertoft and H Henriksnas, “Starch hydrolysis in malting and mashing,” J Inst Brew, vol 9, pp 279–282, 1983 [49] V I Chakravarty, M Markandayalu, V Lakshmi, A Chacko, and N Malleshi, “Glutamine, fish oil and probiotic: Anabolic and immunomodulatory nutrients in enteral food for burn patients,” 26th Clin Congr Am Soc Parenter Enter Nutr., vol 75, no 2, p 374S–374S, 2002 [50] M Kaur, Medical foods from natural sources 2009 [51] M R Nilesh, P A Vilas, J S Ambadas, and Mirajkar Nilesh Sharadchandra, “Formulation development of enteral nutrition products,” Int Res J Pharm., vol 2, no 3, pp 19–28, 2011 [52] M C Bourne, Food Texture and Viscosity: Viscosity Measurement New York: Elsevier, 2002 [53] M Klang, V McLymont, and N Ng, “Osmolality, pH, and compatibility of selected oral liquid medications with an enteral nutrition product,” J Parenter Enter Nutr., vol 37, no 4, pp 689–694, 2013 [54] M Bourne, “Food texture and viscosity: Concept and Measurement,” Academic press 2002 [55] T Nakayama, S Hayashi, and K Okishio, “Prompt improvement of a pressure ulcer by the administration of high viscosity semi-solid nutrition via a nasogastric tube in a man with tuberculosis: a case report,” J Med Case Rep., vol 4, no 1, p 24, 2010 [56] I Tabei, H Kubo, F Yano, and H Inada, “The effect of viscosity regulating solution for enteral nutrition against gastro esophageal reflux,” Nihon Shokaki Geka Gakkai Zasshi, vol 36, no 2, pp 71–77, 2003 [57] T C Nguyễn, “Dinh dưỡng lâm sàng,” Viện Dinh Dưỡng, 2002, pp 322–342 [58] T T Trần, Điều dưỡng Hà Nội: Nhà xuất Y học, 2007 [59] B Y Tế, “Thông tư ban hành quy chuẩn kỹ thuật quốc gia giới hạn nhiễm hóa học thực phẩm,” 2011 [60] UNICEF, “Community-based Management of Severe Acute Malnutrition.” UNICEF, WHO, WFP, United Nations System Standing Committee on Nutrition, Geneva, 2007 [61] E K Kim et al., “Purification and characterisation of antioxidative peptides from enzymatic hydrolysates of venison protein,” Food Chem., 2009 [62] A Jang, C Jo, K.-S Kang, and M Lee, “Antimicrobial and human cancer cell cytotoxic effect of synthetic angiotensin-converting enzyme (ACE) inhibitory peptides,” Food Chem., vol 107, no 1, pp 327–336, 2008 [63] Matthias Besler, A Fiocchi, and P Restani, “Allergen Data Collection: Pork (Sus scrofa),” Internet Symp Food Allergens, vol 3, no 4, pp 188 – 189, 2001 125 [64] M N Zhang, G R Huang, and J X Jiang, “Iron binding capacity of dephytinised soy protein isolate hydrolysate as influenced by the degree of hydrolysis and enzyme type,” J Food Sci Technol., vol 51, no 5, pp 994–999, 2014 [65] A Dixit, J I Antony, N K Sharma, and R K Tiwari, “Soybean constituents and their functional benefits,” Res Signpost, 2011 [66] W Scheppach, W Burghardt, P Bartram, and H Kasper, “Addition of dietary fiber to liquid formula diets: The pros and cons,” J Parenter Enter Nutr, vol 14, pp 204–209, 1990 [67] S A Kapadia, A H Raimundo, G K Grimble, P Aimer, and D B A Silk, “Influence of three different fibre supplemented enteral diets on bowel function and short-chain fatty acid production,” J Perenter Enter Nutr, vol 19, pp 63–68, 1995 [68] K A Lien, M I McBurney, B I Beyde, A B R Thompson, and W C Sauer, “Ileal recovery of nutrients and mucinin humans fed total enteral formulas supplemented with soy fibren.,” Am J Clin Nutr, vol 63, pp 584–595, 1996 [69] N Rays et al., “Supply of pre-and probiotics reduces bacterial infection rates after liver transplantation a randomized, double-blindtrial.,” Am J Trans, vol 5, no 1, p 125, 2005 [70] D Frankenfield and P Beyer, “Soy polysaccharide effect on diarrhoea in tube-fed, head injured patients,” Am J Clin Nutr, vol 50, pp 553–558, 1989 [71] R C Chaudhary and V Đ Trần, Speciality rices of the world: a prologue Speciality Rices of the World: Breeding, production and Marketing, FAO Rome and Science Publisher, UK, 2001 [72] Nguyễn Thành Lâm, Vitamin khoáng chất Nhà xuất Đồng Nai, 2010 [73] S Karki, D Sharma, N Thakus, and S Attri, “Chemical composition, functional properties and processing of carrot - a review,” J Food Sci TEchnol, vol 48, pp 22–32, 2012 [74] M Bjarnadottir, “Carrot 101: benefits Nutrition facts and health,” 2015 [Online] Available: www.healthline.com/nutrition/foods/carrotts [Accessed: 23-Jan-2015] [75] C Alasalvar, J M Grigor, D Zhang, P C Quantick, and F Shahidi, “Comparison of volatiles, phenolics, sugars, antioxidant vitamins, and sensory quality of different colored carrot varieties,” J Agric Food Chem., vol 49, no 3, pp 1410–1416, 2001 [76] J Černiauskiene, J Kulaitiene, H Danilčenko, E Jariene, and E Juknevičiene, “Pumpkin fruit flour as a source for food enrichment in dietary fiber,” Not Bot Horti Agrobot Cluj-Napoca, 2014 [77] B Marten, M Pfeuffer, and J Schrezenmeir, “Medium-chain triglycerides,” Int Dairy J., vol 16, no 11, pp 1374–1382, 2006 [78] E Łoś-Rycharska, Z Kieraszewicz, and M Czerwionka-Szaflarska, “Medium chain triglycerides (MCT) formulas in paediatric and allergological practice,” Prz Gastroenterol., vol 11, no 4, p 226, 2016 126 [79] J R Moran and U Diener, “Meeting lipid needs of infants with allergy and gastrointestinal diseases.,” Eur J Med Res., vol 2, no 2, pp 84–87, 1997 [80] B Karagol, A Zenciroglu, and S Gokce, “Therapeutic management of neonatal chylous ascites: report of a case and review of the literature,” Acta Paediatr, vol 99, pp 1307– 10, 2010 [81] M Chandrasekhara, M Swaminathan, A Sankaran, and V Subrahmanyan, “Studies on the nutritive values of balanced malt foods,” Indian J Physiol Allied Sci, vol 11, pp 27–41, 1957 [82] A Onilude, A Sanni, and M Ighalo, “Process upgrade and the microbiological, nutritional and consumer acceptability of infant weaning food from fermented composite blends of cere-als and soybean,” J Food Agric Env., vol 2, no 3, pp 64–68, 2004 [83] S Rao and G Muralikrishna, “Water soluble feruloyl arabinoxylans from rice and ragi: Changes upon malting and their consequences on antioxidant activity,” Phytochemistry, vol 67, pp 91–99, 2006 [84] A Kato and K Suzuki, “How to select BCAA preparations,” HepatolRes, vol 30S, pp 30–35, 2004 [85] A A Ferrando, B D Williams, C A Stuart, H W Lane, and R R Wolfe, “Oral branched-chain aminoacids decrease whole-body proteolysis.,” J Parenter Enter Nutr, vol 19, pp 47–54, 1995 [86] N Farreras, V Artigas, D Cardona, X Rius, M Trias, and J A Gonzalez, “Effect of early post-operative immuno nutrition on wound healing in patients undergoing surgery for gastric cancer,” Clin Nutr., vol 24, no 1, pp 55–65, 2005 [87] M Ledeboer, A A M Masclee, J B M J Jansen, and C B H W Lamers, “Effect of equimolar amounts of long chain triglycerides and medium chain triglycerides on small bowel transit time in humans,” J Parenter Enter Nutr, vol 19, pp 5–8, 1995 [88] T A Rushdi, C Pichard, and Y H Khater, “Control of diarrhoea by fibre-enriched diet in ICU patients on enteral nutrition: A prospective randomized controlled trial,” Clin Nutr., vol 23, no 6, pp 1344–52, 2004 [89] A Chabeaud, P Dutournié, F Guérard, L Vandanjon, and P Bourseau, “Application of response surface methodology to optimise the antioxidant activity of a saithe (pollachius virens) hydrolysate,” Mar Biotechnol., 2009 [90] Y Wu, L Li, Z Duan, X Yang, J Shang, and S Chen, “Application of response surface methodology to optimise preparation high antioxidant activity product from Pinctada fucata muscle,” Appl response surfa, vol 396, pp 1341–1348, 2012 [91] M Muzaifa, N Safriani, and F Zakaria, “Production of protein hydrolysates from fish by-product prepared by enzymatic hydrolysis,” AACL Bioflux, 2012 [92] J Adler-Nissel, “Some Fundamental Aspects of Food Protein Hydrolysis,” in Enzymic Hydrolysis of Food Proreins, New York: Elsevier Ltd, 1986, pp 9–24 127 [93] H G Kristinsson and B A Rasco, “Fish protein hydrolysates: Production, biochemical, and functional properties,” Crit Rev Food Sci Nutr., 2000 [94] A L Fg, “Alcalase® 2.4 L FG,” pp 1–7, 2011 [95] E S Kechaou et al., “Enzymatic hydrolysis of cuttlefish (Sepia officinalis) and sardine (Sardina pilchardus) viscera using commercial proteases: Effects on lipid distribution and amino acid composition,” J Biosci Bioeng., vol 107, no 2, pp 158–164, 2009 [96] H A Nchienzia, R O Morawicki, and V P Gadang, “Enzymatic hydrolysis of poultry meal with endo- and exopeptidases,” Poult Sci., 2010 [97] S Nilsang, S Lertsiri, M Suphantharika, and A Assavanig, “Optimization of enzymatic hydrolysis of fish soluble concentrate by commercial proteases,” J Food Eng., 2005 [98] J C M De Carvalho, Enzymes in food technology 2004 [99] D Spellman, G O’Cuinn, and R J FitzGerald, “Bitterness in Bacillus proteinase hydrolysates of whey proteins,” Food Chem., vol 114, no 2, pp 440–446, 2009 [100] Y Liu, X Li, Z Chen, J Yu, F Wang, and J Wang, “Characterization of structural and functional properties of fish protein hydrolysates from surimi processing by-products,” Food Chem., 2014 [101] Y J Choi, S Hur, B D Choi, K Konno, and J W Park, “Enzymatic hydrolysis of recovered protein from frozen small croaker and functional properties of its hydrolysates,” J Food Sci., vol 74, no 1, pp C17–C24, 2009 [102] M Yúfera, F J Moyano, A Astola, P Pousão-Ferreira, and G Martínez-Rodríguez, “Acidic digestion in a teleost: Postprandial and circadian pattern of gastric pH, pepsin activity, and pepsinogen and proton pump mRNAs expression,” PLoS One, 2012 [103] M Y Chang and R S Juang, “Activities, stabilities, and reaction kinetics of three free and chitosan-clay composite immobilized enzymes,” Enzyme Microb Technol., vol 36, no 1, pp 75–82, 2005 [104] O P Ward, W M Qin, J Dhanjoon, J Ye, and A Singh, “Physiology and biotechnology of Aspergillus,” Adv Appl Microbiol., vol 58, pp 1–75, 2005 [105] M Michelin et al., “Purification and characterization of a thermostable α-amylase produced by the fungus Paecilomyces variotii,” Carbohydr Res., 2010 [106] M Asgher, M J Asad, S U Rahman, and R L Legge, “A thermostable α-amylase from a moderately thermophilic Bacillus subtilis strain for starch processing,” J Food Eng., 2007 [107] P Butterwoth and F Warren, “Human alpha amylase and starch digestion: an interresting marriage,” Starch J., vol 63, pp 35–45, 2011 [108] A A E Okai and K Gierschner, “Size and charge properties of the pectic and cellulolytic enzymes in a commercial enzyme preparation,” Z Lebensm Unters Forsch., vol 192, no 3, pp 244–248, 1991 128 [109] Y H Hui, W K Nip, L M L Nollet, G Paliyath, and B K Simpson, Food Biochemistry and Food Processing John Wiley & Sons, 2007 [110] J G Brennan, Food Processing Handbook 2006 [111] J Lahl and D Grindstaff, “Spices and Seasonings: Hydrolyzed Proteins,” in Proceedings of the 6th SIFST Symposium on Food Ingredients - Application, Status and Safety, 1989, pp 51–65 [112] G Herrmann et al., “Scale-Up of Enzymatic Peptide-Synthesis in an Enzyme Membrane Reactor,” Biotechnol Appl Biochem., vol 13, pp 346–353, 1991 [113] A Clemente, J Vioque, R Sanchez-Vioque, J Pedroche, J Bautista, and F Millan, “Protein Quality of Chickpea (Cicer arietinum L.) Protein Hydrolysates,” Food Chem., vol 67, no 3, pp 269–274, 1999 [114] Z Berk, Food Process Engineering and Technology 2009 [115] A Clemente, “Enzymatic protein hydrolysates in human nutrition,” Trends in Food Science and Technology 2001 [116] A Clemente, J Vioque, and F Milan, “Vegetable protein hydrolysates,” Nutr y Obes., vol 2, pp 289–296, 1999 [117] J V Passonneau and O H Lowry, “A Collection of Enzyme Assays,” in Enzymatic Analysis: A Practical Guide, Humana Press, 1993, pp 229–305 [118] S Ilo and E Berghofer, “Kinetics of lysine and other amino acids loss during extrusion cooking of maize grits,” J Food Sci., 2003 [119] C.-Y Yeung, H.-C Lee, S.-P Lin, Y.-C Yang, F.-Y Huang, and C.-K Chuang, “Negative effect of heat sterilization on the free amino acid concentrations in infant formula,” Eur J Clin Nutr., 2006 [120] H W Hsu, D L Vavak, L D Satterlee, and G A Miller, “A multienzyme technique for estimating protein digesttibility,” J Food Sci., vol 42, no 5, pp 1269–1273, 1977 [121] S Boisen and B O Eggum, “Critical Evaluation of in Vitro Methods for Estimating Digestibility in Simple-Stomach Animals,” Nutr Res Rev., vol 4, no 1, p 141, 1991 [122] S J Hur, B O Lim, E A Decker, and D J McClements, “In vitro human digestion models for food applications,” Food Chemistry 2011 [123] L D Satterlee, H F Marshall, and J M Tennyson, “Measuring protein quality,” J Am Oil Chem Soc., vol 56, no Part 1, p 103, 1979 [124] D Lemos, J M Ezquerra, and F L Garcia-Carreño, “Protein digestion in penaeid shrimp: Digestive proteinases, proteinase inhibitors and feed digestibility,” Aquaculture, vol 186, no 1–2, pp 89–105, 2000 [125] M Bassompierre, A Kjaer, and E McLean, “Simulating Protein Digestion on Trout - a rapid and inexpensive method for documenting fissh meal qualtiy and screening novel 129 protein sources for use in aquafeeds,” Ribarstvo, 1997 [126] D M Smith and S J Tabrett, “Accurate measurement of in vivo digestibility of shrimp feeds,” Aquaculture, vol 232, no 1–4, pp 563–580, 2004 [127] J H Córdova-Murueta and F L García-Carro, “Nutritive value of squid and hydrolyzed protein supplement in shrimp feed,” Aquaculture, 2002 [128] M Bassompierre, “In vitro protein digestion,” Ribarstvo, vol 55, pp 137–145, 1997 [129] J A Maga, K Lorenz, and O Ionayemi, “Digestive acceptability of proteins as measured by the initial rate of in vitro proteolysis,” J Food Sci., vol 38, no 1, pp 173– 174, 1973 [130] H D.K., D R., D J.W., and G L., “Canadian clinical practice guidelines for nutrition support in mechanically ventilated, critically ill adult patients,” J Parenter Enter Nutr., vol 27, no 5, pp 355–373, 2003 [131] C Ortolani and E A Pastorello, “Food allergies and food intolerances,” Best Pract Res Clin Gastroenterol., vol 20, no 3, pp 467–483, 2006 [132] L Hodge, A Swain, and K Faulkner-Hogg, “Food allergy and intolerance,” Aust Fam Physician, vol 38, no 9, p 705, 2009 [133] Y Zopf, H.-W Baenkler, A Silbermann, E G Hahn, and M Raithel, “The differential diagnosis of food intolerance,” Dtsch Arztebl Int., vol 106, no 21, p 359, 2009 [134] J A Boyce et al., “Guidelines for the Diagnosis and Management of Food Allergy in the United States: Summary of the NIAID-Sponsored Expert Panel Report,” J Allergy Clin Immunol., vol 126, no 6, p S1–S58., 2010 [135] A C Bernard et al., “Nutrition in Clinical Practice Defining and Assessing Tolerance in Enteral Nutrition Clinical Dilemma Defining and Assessing Tolerance in Enteral Nutrition,” Nutr Clin Pr., vol 19, no 5, pp 481–486, 2004 [136] D Heyland, D J Cook, B Winder, L Brylowski, H Van Demark, and G Guyart, “Enteral nutrition in the critically ill patient: A prospective survey,” Crit Care Med., vol 23, no 6, pp 1055–1060, 1995 [137] Delegge MH, “Enteral nutrition and gastrointestinal intolerance,” Clin Nutr Hightlights, vol 2, pp 2–7, 2006 [138] E G Ford, M Jennings, and R J Andrassy, “Serum albumin (oncotic pressure) correlates, with enteral feeding tolerance in the pediatric surgical patient,” J Pediatr Surg., vol 22, no 7, pp 597–599, 1987 [139] Bastow M D, J Rawlings, and S P Allison, “Benefits of supplementary tube feeding after fractured neck of femur: a randomised controlled trial,” Br Med J (Clin Res Ed), vol 287, pp 1589–1592, 1983 [140] E Cabre et al., “Effect of total enteral nutrition on the short-term outcome of severely malnourished cirrhotics,” Gastroenterology, vol 98, no 3, pp 715–720, 1990 130 [141] F A Moore, D V Feliciano, R J Andrassy, A H McArdle, F V Booth, and E E Morgenstein-Wagner T B., & Moore, “Early enteral feeding, compared with parenteral, reduces postoperative septic complications The results of a meta-analysis,” Ann Surg., vol 216, no 2, p 172, 1992 [142] C Chuntrasakul, S Siltharm, V Chinswangwatanakul, T Pongprasobchai, C S, and B A, “Early nutritional support in severe traumatic patients,” J Med Assoc Thail., vol 79, no 1, pp 21–26, 1996 [143] H Hartgrink, J Wille, P König, J Hermans, and P Breslau, “Pressure sores and tube feeding in patients with a fracture of the hip: a randomized clinical trial,” Clin Nutr., vol 17, no 6, pp 287–292, 1998 [144] A G Feller, N Caindec, and I W Rudman, “Effects of Three Liquid Diets on Nutrition‐ Sensitive Plasma Proteins of Tube‐Fed Elderly Men,” J Am Geriatr Soc., vol 38, no 6, pp 663–668, 1990 [145] L Day, N A Stotts, A Frankfurt, A Stralovich-Romani, M Volz, and M Muwaswes, “Gastric Versus Duodenal Feeding in Patients With Neurological Disease: A Pilot Study,” J Neurosci Nurs., vol 33, no 3, pp 148–9, 2001 [146] D A Neumann and M H DeLegge, “Gastric versus small-bowel tube feeding in the intensive care unit: A prospective comparison of efficacy,” Crit Care Med., vol 30, no 7, pp 1436–1438, 2002 [147] C M Juan et al., “Multicenter, prospective, randomized, single-blind study comparing the efficacy and gastrointestinal complications of early jejunal feeding with early gastric feeding in critically ill patients,” Crit Care Med., vol 30, no 4, pp 796–800, 2002 [148] A Malhotra, A Mathur, and S Gupta, “Early enteral nutrition after surgical treatment of gut perforations: A prospective randomised study,” vol 50, no 2, pp 102–106, 2004 [149] V N Tran, “Nghiên cứu đánh giá kết mở thông hỗng tràng để nuôi dưỡng sớm phẫu thuật ống tiêu hóa nặng,” 2003 [150] T H Pham, “Đánh giá hiệu nuôi dưỡng qua ống thông mũi dày thực phẩm địa phương người bệnh khoa điều trị tích cực,” Tạp chí Dinh Dưỡng Thực Phẩm, vol 4, no 3, pp 185–192, 2008 [151] T B H Vu, “Nghiên cứu hiệu dinh dưỡng dung dịch cao lượng tự chế nuôi qua ống thông dày cho bệnh nhân nặng bệnh viện Trung ương Huế,” 2010 [152] T L H Nguyen, “Đánh giá kết ni dưỡng chăm sóc người bệnh hôn mê ăn ống thông dày thức ăn tự nấu chế biến sẵn,” 2010 [153] T M Tran, “Đánh giá kết nuôi dưỡng cho bệnh nhân cắt tồn dày có mở thơng hỗng tràng khoa phẫu thuật tiêu hóa-BV Việt Đức,” 2011 [154] T T M Ta, “Hiệu sữa đậu nành bổ sung sữa bột nguyên kem probiotic ni dưỡng BN nặng có dung nạp lactose,” Hochiminhcity, 2017 [155] K T et al Tran, “Đánh giá hiệu nuôi dưỡng sản phẩm súp xay dinh dưỡng 131 chăm sóc người bệnh thở máy BVĐK Thái Bình,” J Food Nutr Sci., vol 13, no 4, pp 16–21, 2017 [156] Q A Nguyen, T K L Đinh, and T T T Nguyễn, “Bước đầu đánh giá hiệu nuôi dưỡng BN nặng qua ống thông nuôi dày BV Bạch Mai sản phẩm Nutrison,” J Food Nutr Sci., vol 13, no 4, pp 30–36, 2017 [157] B Y Tế, Cẩm nang dinh dưỡng lâm sàng Hà Nội: Nhà Xuất Bản Y Học, 2006 [158] V D D V Nam and B Y Tế, Bảng thành phần thực phẩm Việt Nam Hà Nội: Nhà xuất Y học, 2007 [159] S Wangtueai and A Noomhorm, “Processing optimization and characterization of gelatin from lizardfish (Saurida spp.) scales,” LWT - Food Sci Technol., vol 42, no 4, pp 825–834, 2009 [160] Abdi H and Nguyễn Hồng Dzũng, Phân tích liệu thực nghiệm, TPHCM Thành Phố Hồ Chí Minh: NXB Đại Học Quốc Gia TpHCM, 2012 [161] A Furukawa and H Tsukahara, “Daily digestible protein and energy requirements for growth and maintenance of sub-adult Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei),” Bull thr Japanese Soc Sci Fish., vol 32, pp 502–506, 1966 [162] K G Kreymann et al., “ESPEN Guidelines on Enteral Nutrition: Intensive care,” Clin Nutr., 2006 [163] T Neto, L Jacobsohn, A I Carita, and R Oliveira, “Reliability of the Active-KneeExtension and Straight-Leg-Raise Tests in Subjects With Flexibility Deficits,” J Sport Rehabil., vol 24, no 4, 2015 [164] D M Cameron and R W Bohannon, “Relationship between active knee extension and active straight leg raise test measurements,” J Orthop Sports Phys Ther., vol 17, no 5, pp 257–260, 1993 [165] N Stobäus, M Pirlich, L Valentini, J D Schulzke, and K Norman, “Determinants of bioelectrical phase angle in disease.,” Br J Nutr., 2012 [166] D Z Bliss, P A Guenter, and R G Settle, “Defining and reporting diarrhea in tube-fed patients - What a mess!,” Am J Clin Nutr., vol 55, no 3, pp 753–759, 1992 [167] K J Lebak, D Z Bliss, K Savik, and K M Patten-Marsh, “What’s new on defining diarrhea in tube-feeding studies?,” Clinical Nursing Research 2003 [168] A R Blaser, J Starkopf, Ü Kirsimägi, and A M Deane, “Definition, prevalence, and outcome of feeding intolerance in intensive care: A systematic review and metaanalysis,” Acta Anaesthesiol Scand., vol 58, no 8, pp 914–922, 2014 [169] O Lowry, N Rosebrough, A Farr, and R Randall, “Protein measurement with the folin phenol reagent,” J Biol Chem, vol 193, pp 265–275, 1951 [170] S Nielsen, “Phenol sulfuric acid method for total carbohydrates,” in Food Analysis Laboratory Manual, Springer, 2010, pp 47–53 132 [171] G Miller, “Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar,” Anal Chem, vol 31, pp 426–428, 1959 [172] L Rezig, F Chibani, M Chouaibi, M Dalgalarrondo, K Hessini, and J Guehuen, “Pumkin (cucurbita maxima) seed proteins: Sequential extraction processing and fraction characterization,” J Agric Food Chem., vol 61, pp 7715–21, 2013 [173] K L Yam and D S Lee, Emerging food packaging technologies: Principles and practice, 1st ed Woodhead Publishing, 2012 [174] M N.Riaz, Soy applications in food CRC Press Taylor & Francis Group, 2006 [175] M A Amiza, J Mohamad, and R Hasan, “Optimization of enzymatic protein hydrolysis from cobia (Rachycentron canadum) frame using alcalase®,” J Aquat Food Prod Technol., vol 23, no 3, pp 303–312, 2014 [176] M A Amiza, Y L Kong, and A L Faazaz, “Effects of degree of hydrolysis on physicochemical properties of cobia (rachycentron canadum) frame hydrolysate,” Int Food Res J., vol 19, no 1, 2012 [177] S C Cheison, M Schmitt, E Leeb, T Letzel, and U Kulozik, “Influence of temperature and degree of hydrolysis on the peptide composition of trypsin hydrolysates of βlactoglobulin: Analysis by LC-ESI-TOF/MS,” Food Chem., vol 121, no 2, pp 457– 467, 2010 [178] X Li, H Xiong, K Yang, D Peng, H Peng, and Q Zhao, “Optimization of the biological processing of rice dregs into nutritional peptides with the aid of trypsin,” J Food Sci Technol., vol 49, no 5, pp 537–546, 2012 [179] R Ravallec-Plé et al., “The presence of bioactive peptides in hydrolysates prepared from processing waste of sardine (Sardina pilchardus),” J Sci Food Agric., vol 81, no 11, pp 1120–1125, 2001 [180] J I A JIAN and L ZHANG, “Optimization of Technological Condition on Pepsin Hydrolysis of Whey Protein,” J Heilongjiang August First L Reclam Univ., vol 6, 2007 [181] Emília Lešková, J Kubíková, E Kováčiková, M Košická, J Porubská, and K Holčíková, “Vitamin losses: Retention during heat treatment and continual changes expressed by mathematical models,” J Food Compos Anal., vol 19, no 4, pp 252–276, 2006 [182] S F See, L L Hoo, and A S Babji, “Optimization of enzymatic hydrolysis of Salmon (Salmo Salar) skin by Alcalase,” Int Food Res J., 2017 [183] T N Trần and N T O Trần, “Tối ưu hóa quy trình xử lý máu cá ba sa enzyme,” Nghiên Cứu Y Học Tp Hồ Chí Minh, vol 13, no 2, p 5, 2009 [184] M A Amiza, S Nurul Ashikin, and A L Faazaz, “Optimization of enzymatic protein hydrolysis from silver catfish (Pangasius sp.) frame,” Int Food Res J., 2011 [185] M Amiza and M Masitah, “Optimization of enzymatic hydrolysis of blood cockle 133 (Anadara granosa) using Alcalase®,” Borneo Sci., vol 31, no September, pp 1–8, 2012 [186] N Souissi, A Bougatef, Y Triki-ellouz, and M Nasri, “Biochemical and functional properties of sardinella (Sardinella aurita) by-product hydrolysates,” Food Technol Biotecnol., vol 20, no 5, pp 330–339, 2007 [187] N Bhaskar, T Benila, C Radha, and R G Lalitha, “Optimization of enzymatic hydrolysis of visceral waste proteins of Catla (Catla catla) for preparing protein hydrolysate using a commercial protease,” Bioresour Technol., 2008 [188] L E Kurozawa, K J Park, and M D Hubinger, “Optimization of the enzymatic hydrolysis of chicken meat using response surface methodology,” J Food Sci., vol 73, no 5, pp C405–C412, 2008 [189] A Taheri, A Abedian Kenari, A Motamedzadegan, and M Habibi-Rezaei, “Poultry byproducts and enzymatic hydrolysis: Optimization by response surface methodology using Alcalase® 2.4L,” Int J Food Eng., vol 7, no 5, 2011 [190] G M O’Meara and P A Munro, “Effects of reaction variables on the hydrolysis of lean beef tissue by alcalase,” Meat Sci., 1984 [191] O R Fennema, Food Chemistry 1996- ed, 3rd ed New York: Marcel Dekker, 1996 [192] D Frankenfield, “Energy Expenditure and Protein Requirements After Traumatic Injury,” Nutr Clin Pract., vol 21, no 5, pp 430–437, 2006 [193] J Larsson, C Lennmarken, J Märtensson, S Sandstedt, and E Vinnars, “Nitrogen requirements in severely injured patients,” Br J Surg., vol 77, no 4, pp 413–416, 1990 [194] Y Iwasawa, T Kishi, M Morita, K Ikeda, H Shima, and T Sato, “Optimal ratio of individual branched-chain amino acids in total parenteral nutrition of injured rats,” J Parenter Enter Nutr., vol 15, no 6, pp 612–618, 1991 [195] R A Bonau, S D Ang, M Jeevanandam, and J M Daly, “High-Branched Chain Amino Acid Solutions: Relationship of Composition to Efficacy,” J Parenter Enter Nutr., vol 8, no 6, pp 622–627, 1984 [196] W H Seo, H G Lee, and H H Baek, “Evaluation of bitterness in enzymatic hydrolysates of soy protein isolate by taste dilution analysis,” J Food Sci., vol 73, no 1, pp S41–S46, 2008 [197] P Meinlschmidt, U Schweiggert-Weisz, and P Eisner, “Soy protein hydrolysates fermentation: Effect of debittering and degradation of major soy allergens,” LWT - Food Sci Technol., vol 71, pp 202–212, 2016 [198] Y Ma, L Wang, X Sun, J Zhang, J Wang, and Y Li, “Study on hydrolysis conditions of flavourzyme in soybean polypeptide alcalase hydrolysate and soybean polypeptide refining process,” Adv J Food Sci Technol., vol 6, no 9, p 1027–1032., 2014 [199] J Y Lee, H D Lee, and C H Lee, “Characterization of hydrolysates produced by mildacid treatment and enzymatic hydrolysis of defatted soybean flour,” Food Res Int., vol 34, no 2–3, pp 217–222, 2001 134 [200] J O Clemmesen, J Kondrup, and P Ott, “Splanchnic and leg exchange of amino acids and ammonia in acute liver failure,” Gastroenterology, 2000 [201] M Plauth et al., “ESPEN Guidelines on Enteral Nutrition: Liver disease,” Clin Nutr., vol 25, no 2, pp 258–294, 2006 [202] M Plauth, M Merli, J Kondrup, A Weimann, P Ferenci, and M J Muller, “ESPEN guidelines for nutrition in liver disease and transplantation,” Clin Nutr., vol 16, no 2, pp 43–55, 1997 [203] V N Ivanova, E P Dobreva, and E I Emanuilova, “Purification and characterization of a thermostable α-amylase from Bacillus licheniformis,” J Biotechnol., 1993 [204] M Y Chang and R S Juang, “Adsorption of tannic acid, humic acid, and dyes from water using the composite of chitosan and activated clay,” J Colloid Interface Sci., vol 278, no 1, pp 18–25, 2004 [205] H D Belitz, W Grosch, and P Schieberle, Food chemistry 2009 [206] N P Nguyễn, “Tác động enzyme pectinase đến khả trích ly dịch điều kiện lên men đến chất lượng rược vang xoài sau thời gian lên men chính,” Tạp Chí Khoa Học, vol 20a, pp 127–136, 2011 [207] M R Nilesh, P A Vilas, and J S Ambadas, “Formulation development of enteral feeding,” Int Res J Pharm., vol 2, pp 19–28, 2011 [208] P Verma, Principles and practice of Critical care, 1st ed Kent, UK: CBS, Units I/K Paddock Wood Distribution Centre, Paddock Wood, Anshan Ltd, 2006 [209] I Joshi and N K Sharma, “Formulation of standard and high protein ready to reconstitute enteral formula feeds,” Int jJurnal Sci Technol Res., vol 3, no 5, pp 28– 35, 2014 [210] O Selberg, J Böttcher, G Tusch, R Pichlmayr, E Henkel, and M J Müller, “Identification of high- and low-risk patients before liver transplantation: a prospective cohort study of nutritional and metabolic parameters in 150 patients.,” Hepatology, vol 25, no 3, pp 652–657, 1997 [211] T Tomiya et al., “Leucine stimulates the secretion of hepatocyte growth factor by hepatic stellate cells,” Biochem Biophys Res Commun., vol 297, no 5, pp 1108–1111, 2002 [212] M.-S Yoon and Mee-Sup, “The Emerging Role of Branched-Chain Amino Acids in Insulin Resistance and Metabolism,” Nutrients, vol 8, no 7, p 405, 2016 [213] G Marchesini et al., “Nutritional supplementation with branched-chain amino acids in advanced cirrhosis: a double-blind, randomized trial,” Gastroenterology, vol 124, no 7, pp 1792–1801, 2003 [214] G D’Antona et al., “Branched-chain amino acid supplementation promotes survival and supports cardiac and skeletal muscle mitochondrial biogenesis in middle-aged mice,” Cell Metab., vol 12, no 4, pp 362–372, 2010 135 [215] H Uojima, S Sakurai, H Hidaka, T Kinbara, J H Sung, and C Ichita, “Effect of branched-chain amino acid supplements on muscle strength and muscle mass in patients with liver cirrhosis,” Eur J Gastroenterol Hepatol., vol 29, no 12, pp 1402–1407, 2017 [216] N Malleshi and H Desikachar, “Influence of malting conditions on quality of fingermillet malt,” J Inst Brew, vol 92, pp 81–83, 1986 [217] J H Cummings and A M Stephen, “The role of dietary fibre in the human colon,” CMAJ, vol 23, pp 1109–1114, 1980 [218] D A Mark and L Stalker, “Low caloric density enteral formulation designed to reduce diarrhoea in tube-fed patients,” 5229136, 1993 [219] C C Roy, L Bouthillier, E Seidman, and E Levy, “New lipids in enteral feeding,” Curr Opin Clin Nutr Metab Care, vol 7, no 2, pp 117–22, 2004 [220] D Topping, “Cereal complex carbohydrates and their contribution to human health,” J Cereal Sci, vol 46, no 3, pp 220–229, 2007 [221] M R Harshman and W Aldoori, “New dietary reference intakes for macronutrients and fibre,” Can Fam Phys, vol 52, no 2, pp 177–179, 2006 [222] R Chanamai and D McClements, “Comparison of Gum Arabic, Modified Starch, and Whey Protein Isolate as Emulsifiers: Influence of pH, CaCl2 and Temperature,” J Food Sci., vol 67, no 1, pp 120–125, 2002 [223] G.-H Li, G.-W Le, Y.-H Shi, and S Shrestha, “Angiotensin I–converting enzyme inhibitory peptides derived from food proteins and their physiological and pharmacological effects,” Nutr Res., vol 24, no 7, pp 469–486, 2004 [224] J W Meredith, J A Ditesheim, and G P Zaloga, “Visceral protein levels in trauma patients are greater with peptide diet than with intact protein diet,” J Trauma - Inj Infect Crit Care, vol 30, no 7, pp 825–8, 1990 [225] C G Candela, A D C Blanco, and C I Rosado, “Fibre and enteral nutrition,” Nutr Hosp., vol 17, no 2, pp 30–40, 2002 [226] P M Davidson, J N Sofos, and A L Branen, Antimicrobials in food CRC press, 2005 [227] R L Levine, J Moskovitz, and E R Stadtman, “Oxidation of methionine in proteins: roles in antioxidant defense and cellular regulation,” IUBMB Life, vol 50, pp 301–307, 2000 [228] I Ashie, J Smith, B Simpson, and N Haard, “Spoilage and shelflife extension of fresh fish and shellfish,” Crit Rev Food Sci Nutr., vol 36, pp 87–121, 1996 [229] E Choe and D Min, “Mechanisms and factors for edible oil oxidation,” Compr Rev Food Sci Food Saf., vol 5, pp 169–186, 2006 [230] G Aragao, M Corradini, and M Peleg, “A phenomelogical model of the peroxide value’s rise and fall during lipid oxidation,” J Am Oil Chem Soc., vol 85, p 1143, 136 2008 [231] A Assiry, S Sastry, and C Samaranayake, “Influence of temperature, electrical conductivity, power and pH on ascorbic acid degradation kinetics during ohmic heating using stainless steel electrodes,” Bioelectrochemistry, vol 68, no 1, pp 7–13, 2006 [232] J M Ezquerra, “In vitro digestibility of dietary protein sources for white shrimp (Penaeus vannamei),” Aquaculture, vol 163, no 1–2, pp 123–136, 1998 [233] J P Lazo, R P Romaire, and R C Reigh, “Evaluation of Three In Vitro Enzyme Assays for Estimating Protein Digestibility in the Pacific White Shrimp Penaeus vannamei 1,” J World Aquac Soc., vol 29, no 4, pp 441–450, 1998 [234] D Makola, “Elemental and semi-elemental Formulas: are they superior to polymeric formulas?,” Pract Gastroenterol, vol 29, no 12, pp 59–73, 2005 [235] H Ali, M Haque, M Chowdhury, and M Shariful, “In vitro protein digestibility of different feed ingredients in Thai koi (Anabas testudineus),” J Bangladesh Agric., vol 7, pp 205–210, 2009 [236] M K Mirzakhani, A A Kenari, and A Motamedzadegan, “Prediction of apparent protein digestibility by in vitro pH-stat degree of protein hydrolysis with species-specific enzymes for Siberian sturgeon (Acipenser baeri, Brandt 1869),” Aquaculture, vol 496, pp 73–78, 2018 [237] T D H Nguyễn, N T Lưu, and Q V Trần, “Một số đặc điểm dinh dưỡng bệnh nhân chấn thương sọ não nặng Bậnh viện Chợ Rẫy,” Tạp chí Y Học TPHCM, vol 18, no 2, pp 426–434, 2014 [238] P Bauer, C Charpentier, C Bouchet, L Nace, F Raffy, and N Gaconnet, “Parenteral with enteral nutrition in the critically ill,” Intensive Care Med., vol 26, no 7, p 893– 900., 2000 [239] D C Heimburger, D G Sockwell, and W J Geels, “Diarrhea with enteral feeding: Prospective reappraisal of putative causes,” Nutrition, vol 10, no 5, pp 392–396, 1994 [240] G V Bochicchio, K Bochicchio, S Nehman, C Casey, P Andrews, and T M Scalea, “Tolerance and efficacy of enteral nutrition in traumatic brain-injured patients induced into barbiturate coma,” J Parenter Enter Nutr., vol 30, no 6, pp 503–506, 2006 [241] T F Pinto, R Rocha, C A Paula, and R P De Jesus, “Tolerance to enteral nutrition therapy in traumatic brain injury patients,” Brain Inj., vol 26, no 9, pp 1113–1117, 2012 [242] D C Heimburger, W J Geels, J Bilbrey, D T Redden, and C Keeney, “Effects of small-peptide and whole-protein enteral feedings on serum proteins and diarrhea in critically ill patients: A randomized trial,” J Parenter Enter Nutr., 1997 [243] M C G Barbosa-Silva, A J D Barros, J Wang, S B Heymsfield, and R N Pierson, “Bioelectrical impedance analysis: population reference values for phase angle by age and sex.,” Am J Clin Nutr., vol 82, no 1, pp 49–52, 2005 137 [244] A Bosy-Westphal, S Danielzik, R.-P Dörhöfer, W Later, S Wiese, and M J Müller, “Phase angle from bioelectrical impedance analysis: population reference values by age, sex, and body mass index.,” JPEN J Parenter Enteral Nutr., 2006 [245] H C Lukaski, U G Kyle, and J Kondrup, “Assessment of adult malnutrition and prognosis with bioelectrical impedance analysis,” Curr Opin Clin Nutr Metab Care, vol 20, no 5, pp 330–339, 2017 [246] V Jha, A Jairam, M C Sharma, V Sakhuja, A Piccoli, and S Parthasarathy, “Body composition analysis with bioelectric impedance in adult Indians with ESRD: Comparison with healthy population,” Kidney Int., vol 69, no 9, pp 1649–1653, 2006 [247] D Gupta et al., “Bioelectrical impedance phase angle in clinical practice: implications for prognosis in advanced colorectal cancer,” Am J Clin Nutr., 2004 [248] J Boldt, “Use of albumin: An update,” Br J Anaesth., vol 104, no 3, pp 276–284, 2010 [249] T Peters, All About Albumin New York: Elsevier, 1995 [250] D D Yeh et al., “Serum Levels of Albumin and Prealbumin Do Not Correlate With Nutrient Delivery in Surgical Intensive Care Unit Patients,” Nutr Clin Pract., 2018 [251] J a Norton et al., “Intolerance to enteral feeding in the brain-injured patient.,” J Neurosurg., 1988 [252] A M Cook, A Peppard, and B Magnuson, “Nutrition considerations in traumatic brain injury,” Nutr Clin Pract., vol 23, no 6, pp 608–620, 2008 [253] T Tsuzuki, S Mita, S Maeda, S Araki, and K Shimada, “Structure of the human prealbumin gene,” J Biol Chem., vol 260, no 22, pp 12224–12227, 1985 [254] F K Beck and T C Rosenthal, “Prealbumin: A marker for nutritional evaluation,” Am Fam Physician, vol 65, no 8, pp 1575–1580, 2002 [255] S Benoist and A Brouquet, “Nutritional assessment and screening for malnutrition,” Journal of visceral surgery 2015 [256] J L Gaudiani, A L Sabel, and P S Mehler, “Low prealbumin is a significant predictor of medical complications in severe anorexia nervosa,” Int J Eat Disord., 2014 [257] G M Chertow, K Ackert, N L Lew, J M Lazarus, and E G Lowrie, “Prealbumin is as important as albumin in the nutritional assessment of hemodialysis patients,” Kidney Int., vol 58, no 6, pp 2512–2517, 2000 138 ... NGUYỄN THỊ QUỲNH HOA NGHIÊN CỨU XÂY DỰNG THỰC PHẨM NUÔI QUA ỐNG XÔNG MŨI – DẠ DÀY VÀ ĐÁNH GIÁ BƯỚC ĐẦU KHẢ NĂNG DUNG NẠP IN VITRO VÀ IN VIVO Chuyên ngành: Chế biến thực phẩm đồ uống Mã số chuyên... học áp dụng thực tiễn cao Nhưng đến Việt Nam chưa có sản phẩm việt Do đề tài ? ?Nghiên cứu xây dựng thực phẩm nuôi qua ống xông mũi – dày đánh giá bước đầu khả dung nạp in vitro in vivo? ?? thực Mục... sản phẩm NAQOX Đánh giá độ tiêu hóa in vitro sản phẩm phương pháp pepsin, pH-stat pHdrop Đánh giá độ tiêu hóa protein sản phẩm in vivo chuột trắng giống Swiss albino Đánh giá khả dung nạp sản phẩm