Nhân dòng, biểu hiện, tinh sạch và xác định hoạt tính của protein kod dna polymerase tái tổ hợp ở e coli​

ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƯỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - Nguyễn Thị Uyên NHÂN DÒNG, BIỂU HIỆN, TINH SẠCH VÀ XÁC ĐỊNH HOẠT TÍNH CỦA PROTEIN KOD DNA POLYMERASE TÁI TỔ HỢP Ở E COLI LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC Hà Nội – Năm 2019 ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƯỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - Nguyễn Thị Uyên NHÂN DÒNG, BIỂU HIỆN, TINH SẠCH VÀ XÁC ĐỊNH HOẠT TÍNH CỦA PROTEIN KOD DNA POLYMERASE TÁI TỔ HỢP Ở E COLI Chuyên ngành: Di truyền học Mã số: 8420101.21 LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: TS Nguyễn Văn Sáng Hà Nội – Năm 2019 LỜI CẢM ƠN Lời đầu tiên, xin gửi lời cảm ơn sâu sắc tới TS Nguyễn Văn Sáng, môn Di truyền học, khoa Sinh học, trường Khoa học tự nhiên, người hướng dẫn, giúp đỡ tận tình bảo tơi Tơi cảm ơn thầy cho tơi có hội làm việc nhóm thầy, giúp tơi học tập nhiều điều có niềm đam mê với khoa học Tôi muốn gửi lời cảm ơn chân thành đến chị Nguyễn Thị Thu Huyền anh Lê Tuấn Anh, học viên cao học, phòng thí nghiệm Sinh học phân tử tế bào, trung tâm khoa học sống giúp đỡ đồng hành tơi q trình học tập q trình làm việc phịng thí nghiệm Tơi xin cảm ơn tới thầy cô môn Di truyền học, PGS.TS Nguyễn Thị Hồng Vân, TS Đỗ Thị Phúc, TS Trần Đức Long, ThS Trần Thùy Anh truyền đạt cho kiến thức quý báu tạo điều kiện thuận lợi cho suốt thời gian học tập làm việc trường Nghiên cứu tài trợ Quỹ Phát triển khoa học công nghệ Quốc gia (NAFOSTED) đề tài mã số 106-NN 02-2016 58” Nghiên cứu có hợp tác hỗ trợ cung cấp gen mã hóa cơng ty TNHH MTV Sinh hóa Phù Sa Cuối cùng, tơi xin cảm ơn tới gia đình bạn bè bên cạnh, chia sẻ động viên tơi q trình học tập hồn thành luận văn Tôi xin chân thành cảm ơn! Hà Nội, tháng 12 năm 2019 Học viên Nguyễn Thị Uyên i MỤC LỤC LỜI CẢM ƠN i MỤC LỤC ii DANH MỤC HÌNH v BẢNG KÝ HIỆU CÁC CHỮ CÁI VIẾT TẮT vii MỞ ĐẦU Chương - TỔNG QUAN 1.1 Tổng quan PCR 1.1.1 Giới thiệu 1.1.2 Ứng dụng PCR 1.1.3 Nguyên lý 1.1.1 Thành phần phản ứng PCR 1.2 Giới thiệu DNA polymerase 1.2.1 Giới thiệu chung 1.2.2 Phân loại DNA polymerase dựa vào trình tự protein 1.2.3 Các loại DNA polymerase thương mại 1.2.4 Cấu trúc DNA polymerase 1.3 KOD DNA polymerase 10 1.3.1 Tình hình nghiên cứu 10 1.3.2 Giới thiệu KOD 10 1.3.3 Đặc điểm cấu trúc 11 1.4 Lựa chọn hệ thống biểu 12 1.4.1 Vật chủ biểu 12 1.4.2 Vector 14 1.5 Phương pháp tinh sử dụng sắc ký lực 16 1.5.1 Sắc ký lực Nickel 17 1.5.2 Sắc ký lực Glutathione 19 Chương – VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 21 2.1 Vật liệu hóa chất 21 2.1.1 Vật liệu 21 2.1.2 Hóa chất 21 ii 2.1.3 Dụng cụ thiết bị 22 2.2 Phương pháp nghiên cứu 23 2.2.1 Sơ đồ nghiên cứu 23 2.2.2 Tổng hợp nhân dòng gen KOD 23 2.2.3 Thiết kế vector biểu mang gen KOD 24 2.2.4 Biểu protein tái tổ hợp 27 2.2.5 Tinh protein sử dụng sắc ký lực 27 2.2.6 Thẩm tách protein 29 2.2.7 Thử hoạt tính enzyme 30 Chương – KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 31 3.1 Nhân dòng gen KOD 31 3.1.1 Tối ưu mã ba tổng hợp gen KOD 31 3.1.2 Khuếch đại đoạn chèn phản ứng PCR 31 3.1.3 Chèn đoạn gen mã hóa KOD vào vector biểu pET-M pGEX-4T-1.32 3.1.4 Kết tách chiết plasmid DNA 34 3.1.5 Giải trình tự plasmid 35 3.2 Biểu protein tái tổ hợp 36 3.3 Tinh protein sử dụng sắc ký lực 38 3.3.1 Tinh protein phương pháp sắc ký lực Nickel 38 3.3.2 Tinh protein phương pháp sắc ký lực GST 42 3.4 Thẩm tách protein 42 3.5 Thử hoạt tính enzyme 43 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 46 TÀI LIỆU THAM KHẢO 47 iii DANH MỤC BẢNG Bảng 1: So sánh đặc tính số loại DNA polymerase phổ biến [3] .11 Bảng 2: Trình tự mồi sử dụng phản ứng 21 Bảng 3: Thiết bị dụng cụ 22 Bảng 5: Thành phần phản ứng cắt enzyme giới hạn 25 Bảng 6: Thành phần phản ứng nối 25 Bảng 7: Kết phân tích tối ưu mã ba sử dụng GenScript .31 iv DANH MỤC HÌNH Hình 1: Ứng dụng kỹ thuật PCR [10] Hình 2: Nguyên lý nhân DNA qua chu kỳ nhiệt [15] Hình 3: Các thành phần phản ứng PCR [33] Hình 4: Cấu trúc chung DNA polymerase [36] Hình 5: Cấu trúc KOD DNA polymerase [14] 12 Hình 6: Cơ chế biểu gen hệ thống pET tế bào E coli BL21 (DE3) [8] .13 Hình 7: Cấu trúc vector biểu pET-32a 15 Hình 8: Cấu trúc vector biểu pGEX-4T-1 16 Hình 9: Các bước tinh phương pháp sắc ký lực 17 Hình 10: Cơ chế tinh phương pháp sắc ký lực với Nickel [25] 18 Hình 11: Cơ chế phương pháp sắc ký lực với GST [19] 20 Hình 12: Sơ đồ phương pháp nghiên cứu 23 Hình 13: Kết điện di sản phẩm PCR gen KOD từ vector pUC19-KOD 32 Hình 14: Kết biến nạp sản phẩm lai KOD-pET-M KOD-pGEX-4T-1 vào tế bào 33 Hình 15: Kết PCR khuẩn lạc 34 Hình 16: Kết điện di plasmid 35 Hình 17: Kết PCR kiểm tra plasmid 35 Hình 18: So sánh trình tự axit amin KOD với trình tự KOD gốc 36 Hình 19: Kết biểu KOD gắn đuôi 6xHis tế bào BL21 37 Hình 20: Kết biểu KOD gắn GST tế bào BL21 38 Hình 21: Kết tinh protein KOD-His 39 Hình 22: Kết tối tinh KOD-His kết hợp với biến tính nhiệt 40 Hình 23: Kết tinh protein KOD-His điều kiện biến tính 41 Hình 24: Kết tinh KOD-His điều kiện biến tính khơng biến tính 41 Hình 25: Kết tinh KOD-GST 42 Hình 26: Kết PCR xác định hoạt độ enzyme KOD-His 43 v Hình 27: Kết PCR xác định hoạt độ enzyme KOD-GST 44 Hình 28: Kết PCR thử hoạt tính enzyme KOD-His KOD-GST với kích thước gen đệm PCR khác 45 vi BẢNG KÝ HIỆU CÁC CHỮ CÁI VIẾT TẮT Kí hiệu APS Aa BSA Bp DNA DTT dNTPs EDTA E coli GST IMAC IPTG Kb LB PCR RNA SDS SDS-PAGE TAE TEMED vii Hình 16: Kết điện di plasmid A – Sản phẩm điện di plasmid pETM-KOD, B – Sản phẩm điện di plasmid pGEX-4T-1 KOD 3.1.5 Giải trình tự plasmid Plasmid tách chiết sử dụng làm khuôn cho phản ứng PCR để giải trình tự Sản phẩm PCR điện di kiểm tra gel agarose 1.5% cho kết có st băng sáng (Hình 17) đủ tiêu chuẩn để gửi đọc trình tự cơng ty BASE (Malaysia) theo phương pháp Sanger Trình tự KOD giải cặp mồi T7 promoter T7 terminator; Kod-F Kod-R để xác định đoạn gen chèn khung đọc xác định xác trình tự tồn đoạn gen mã hóa cho KOD DNA polymerase A B Hình 17: Kết PCR kiểm tra plasmid A: Kết PCR kiểm tra plasmid pETM-KOD từ hai vùng biên để giải trình tự, B: Kết PCR có khn plasmid pGEX4T1-KOD Trình tự gen thu tiếp tục dịch mã thành trình tự axit amin sử dụng công cụ SnapGene so sánh với trình tự axit amin KOD gốc Kết so sánh trình tự cơng cụ tin sinh CLUSTALW trình bày Hình 18 Kết so sánh trình tự rằng, trình tự gen mà chèn vào vector biểu pET-M hay pGEX-4T-1 giống với trình tự gốc, khác trình tự giải vector pET-M có chứa trình tự cắt thrombin 6xHis, cịn vector pGEX-4T-1 có chứa trình tự cắt thrombin Như kết chứng tỏ gen KOD chèn vào vector biểu đột biến khung đọc vector 35 Hình 18: So sánh trình tự axit amin KOD với trình tự KOD gốc Trình tự amino acid kí hiệu KOD (tương ứng cho KOD ngân hàng gen), pGEX4t1Kod: tương ứng với trình tự KOD vector pGEX-4T-1, pETMKod trình tự axit amin vector pETM Đi peptide chứa histidine trình tự cắt thrommbin (màu đỏ), trình tự cắt gồm acid amin thrombin (đỏ) Dấu “*” thể tương đồng acid amin hai trình tự 3.2 Biểu protein tái tổ hợp Gen mã hóa cho KOD DNA polymerase vector pET-M pGEX-4T-1 biến nạp biểu tế bào E coli BL21 (DE3) Chủng E coli BL21 chủng thiết kế mang gen khử tính độc promoter T7 sử dụng hệ thống vector biểu pET, ngồi dùng để biểu với hệ thống promoter tac vector biểu pGEX-4T-1 Tế bào chứa vector tái tổ hợp biểu môi trường LB lỏng có bổ sung ampicillin với nồng độ chất cảm ứng IPTG 0.3 mM 16 tiếng Kết biểu KOD DNA polymerase phân tích phương pháp điện di SDS-PAGE thể Hình 19 20 Kết biểu protein KOD gắn đuôi Histidine (KOD-His) thể Hình 19 Ở đường chạy thứ 3, mẫu tế bào có cảm ứng IPTG 0.3 mM (mẫu BL21-KOD-His + IPTG) xuất băng đậm có kích thước gần 92 kDa 36 Kích thước tương ứng với kích thước KOD DNA polymerase có gắn His Trong đó, mẫu đối chứng (mẫu BL21-KOD-His khơng IPTG), khơng có băng protein có kích thước tương ứng Kết chứng tỏ rằng, protein KOD-His biểu tế bào BL21 (DE3) Hình 19: Kết biểu KOD gắn 6xHis tế bào BL21 Mẫu BL21-KOD-His +IPTG mẫu cảm ứng biểu IPTG so sánh với mẫu đối chứng BL21-KOD-His khơng IPTG (mẫu khơng có chất cảm ứng IPTG Tương tự, Hình 20 thể kết biểu protein tái tổ hợp KOD gắn GST Ở giếng BL21-KOD-GST +IPTG, có băng đặc trưng kích thước protein KOD có gắn GST (KOD-GST) khoảng 116 kDa, kích thước bao gồm protein KOD (90 kDa) đuôi GST (26 kDa) Trong khi, giếng đối chứng khơng có băng Như vậy, protein KOD gắn đuôi GST biểu thành công nồng độ IPTG 0.3 mM 37°C 37 Hình 20: Kết biểu KOD gắn đuôi GST tế bào BL21 Mẫu BL21-KOD-GST +IPTG mẫu cảm ứng biểu IPTG 0.3 mM so sánh với mẫu đối chứng BL21-KOD-GST không IPTG (mẫu khơng có chất cảm ứng IPTG) 3.3 Tinh protein sử dụng sắc ký lực 3.3.1 Tinh protein phương pháp sắc ký lực Nickel − Kết tinh protein KOD-His phương pháp sắc ký lực nickel trạng thái tự nhiên Sau biểu thành cơng protein KOD có gắn Histidine, tiếp tục tiến hành tinh protein phương pháp sắc ký lực, sử dụng cột có gắn ion nickel Do biểu hệ thống vector biểu pET-M nên protein tạo có thêm trình tự gồm axit amin Histidin Trình tự His-tag giúp protein tái tổ hợp bám với hạt nikel cột, protein khác bị rửa trôi dung dịch đệm rửa Protein tinh phân tích gel SDS-PAGE 10% thể Hình 21 Trên đường chạy cuối cùng, KOD-His sản phẩm protein sau tinh sạch, có xuất băng KOD, nhiên cịn nhiều băng protein tạp Do đó, cần có quy trình tối ưu trình tinh protein KOD-His 38 Hình 21: Kết tinh protein KOD-His M: thang chuẩn protein Đường chạy KOD-His +IPTG kết biểu protein có chất cảm ứng IPTG so sánh với mẫu khơng có IPTG đường chạy K IPTG Đường chạy cuối protein KOD-His sau tinh Do kết tinh điều kiện thường khơng cho kết tốt, đó, chúng tơi tối ưu quy trình tinh protein KOD-His với nhiều phương pháp khác dùng nhiệt độ để loại bỏ băng tạp, hay tinh điều kiện biến tính protein sử dụng Urea nồng độ khác − Kết tinh protein KOD-His phương pháp sắc ký lực Nickel kết hợp biến tinh nhiệt Dựa vào tính bền nhiệt DNA polymerase số nghiên cứu tinh loại DNA polymerase khác áp dụng phương pháp dùng nhiệt để biến tính protein khác [12, 18, 32] Chúng tiến hành ủ dịch tế bào sau phá vỡ nhiệt độ 75°C 15 phút để loại bỏ protein tổng số, nhiên kết hình 22 cho thấy, lượng protein tái tổ hợp tồn hầu hết pha cặn (mẫu Tủa sau ủ 75) so sánh với pha dịch sau ủ 75°C (Dịch pv sau ủ 75) băng protein KOD-His giảm đáng kể Mẫu tinh protein giếng cuối (Dịch tinh sạch) khơng có băng protein KOD-His Như nhiệt độ làm ảnh hưởng đến tính tan KOD DNA polymerase, protein bám vào polymerase bị phân hủy kéo theo KOD DNA polymerase tồn pha cặn 39 Hình 22: Kết tối tinh KOD-His kết hợp với biến tính nhiệt M: thang chuẩn protein Đường chạy KOD-His +IPTG kết biểu protein có chất cảm ứng IPTG so sánh với mẫu IPTG đường chạy K IPTG Đường chạy cuối protein KOD-His sau tinh −Kết tinh protein KOD-His phương pháp sắc ký lực Nickel điều kiện biến tính Urea Khi tinh protein KOD-His điều kiện biến tính Urea, lựa chọn nồng độ Urea khác 2M, 4M hay 6M Hình 21-A kết tinh điều kiện biến tính với hệ đệm có bổ sung Urea 2M, protein KOD-His (KOD-His + IPTG) biểu so sánh với giếng K IPTG, khơng thêm chất cảm ứng Tế bào có biểu sau phá vỡ sóng siêu âm, phần dịch phá vỡ (Dịch pv) xuất băng protein tái tổ hợp tinh cột nickel Kết tinh proteins KOD-His đường chạy cuối (Dịch tinh sạch) cho thấy nhiều băng phụ Do đó, chúng tơi tăng nồng độ Urea lên 4M, kết thể Hình 21- B cho thấy protein KOD tinh (mẫu Dịch tinh sạch) protein tạp 40 A B Hình 23: Kết tinh protein KOD-His điều kiện biến tính A – Kết tinh KOD-His điều kiện biến tính sử dụng Urea nồng độ 2M, protein KOD-His tinh thể giếng cuối (Dịch tinh sạch) B – Kết tinh KOD-His điều kiện biến tính với Urea nồng độ 4M, protein sau tinh điện di giếng cuối (Dịch tinh sạch) Kết điện di SDS-PAGE Hình 24 so sánh protein tinh điều kiện khơng biến tính biến tính cột Nickel Kết cho thấy protein KOD-His tinh điều kiện biến tính (Elute 2M, 4M, 6M) băng protein phụ có mờ băng protein tái tổ hợp giảm so với protein tinh điều kiện thường (Elute) Hình 24: Kết tinh KOD-His điều kiện biến tính khơng biến tính M: thang chuẩn protein, Elute: Dịch tinh protein KOD-His so sánh với dịch tinh KOD-His điều kiện biến tính với nồng độ Urea 2M, 4M 6M 41 3.3.2 Tinh protein phương pháp sắc ký lực GST Sau biểu thành công protein KOD gắn đuôi GST, tiến hành tinh phương pháp sắc ký lực với đuôi GST Được biểu hệ thống biểu vector pGEX nên protein biểu gắn GST có kích thước khoảng 26 kDa, protein tinh nhờ lực đuôi GST với cột glutathione Kết tinh protein phân tích phương pháp điện di gel SDS-PAGE Kết điện di thể Hình 20, chạy dịch tinh KOD-GST elute có băng đậm kích thước tương đương với protein KOD-GST Tuy nhiên xuất số băng protein tạp So sánh với phương pháp tinh protein KOD có gắn Histidine KOD có gắn GST có độ tinh cao hơn, độ đặc hiệu đuôi GST tốt với đuôi Histidine Hình 25: Kết tinh KOD-GST Protein KOD-GST biểu tế bào E coli BL21 cảm ứng IPTG (đường chạy KOD-GST có IPTG), so sánh với tế bào không bổ sung IPTG (đường chạy K IPTG), KOD-GST tinh đường chạy KOD-GST elute 3.4 Thẩm tách protein Protein sau tinh thẩm tách lít dung dịch đệm A (50mM Tris-HCl pH 8.0, 0.3M NaCl) tiếng Sau đó, protein thẩm tách tiếp lít dung dịch đệm B (20 mM Tris-HCl pH 8.0, 50 mM NaCl) qua đêm Cuối protein thẩm tách chuyển sang dung dịch đệm bảo quản (20 mM Tris-HCl pH 8.0, 50 mM NaCl, 0.1 mM EDTA, mM DTT, 0.5% Nonidet P40, 0.5% Tween 20, 50% glycerol) Enzyme dung dịch bảo quản để 20°C sử dụng cho phản ứng kiểm tra hoạt tính enzyme 42 3.5 Thử hoạt tính enzyme Xác định hoạt độ enzyme Để xác định hoạt độ enzyme KOD-His KOD-GST, tiến hành phản ứng PCR để xác định lượng enzyme tối ưu cho phản ứng PCR, so sánh với enzyme Phusion DNA polymerase Thermo scientific 2U/µl Thực phản ứng PCR với lượng enzyme bổ sung cho phản ứng 0.3; 0.5; 1; enzyme Kết enzyme KOD-His Hình 26 cho thấy sản phẩm phản ứng PCR có bổ sung 0.5 µl µl KOD-His đóng vai trị xúc tác có băng sáng nồng độ Bằng mắt thường, so sánh tương đối độ đậm độ sáng nét sản phẩm PCR dùng 0.5 µl enzyme KOD-His với băng tạo thành 0.2 µl enzyme thương mại Phusion 2U/µl (Thermo scientific), ước lượng hoạt độ KOD-His sau tinh khoảng 0.8U /µl, tương đương với khoảng 800-1000 đơn vị ml enzyme tinh Hình 26: Kết PCR xác định hoạt độ enzyme KOD-His Phản ứng PCR với khn có kích thước 400 bp sử dụng enzyme KOD-His với thể tích 0.3; 0.5; 1; µl, so sánh với 0.2 µl enzyme Phusion hãng Thermo scientific Tương tự với protein KOD-GST tiến hành PCR xác định hoạt độ, so sánh với KOD-His Phusion Thermo scientific Kết Hình 22 cho thấy, với lượng tế bào ban đầu sử dụng để tinh sạch, hoạt tính enzyme thu lại thấp so với KOD-His Khi sử dụng 0.5 – µl enzyme KOD-GST khơng có băng xuất hiện, thể tích – µl enzyme có băng sản phẩm mong muốn, nhiên độ sáng mờ so với enzyme KODHis Phusion DNA polymerase Khi so sánh tương đối độ đậm sắc nét băng sản phẩm PCR bổ sung µl enzyme KOD-GST xúc tác với µl KOD-His 43 0.2 µl Phusion, ước lượng hoạt độ enzyme KOD-GST tinh khoảng 0.1U/µl, tương đương 100 đơn vị enzyme ml enzyme tinh Hình 27: Kết PCR xác định hoạt độ enzyme KOD-GST Phản ứng PCR với khn có kích thước 260 bp sử dụng enzyme KOD-GST với thể tích 0; 1; 2; 3; µl, so sánh với µl KOD-His 0.2 µl enzyme Phusion hãng Thermo scientific Thử hoạt tính enzyme với loại đệm chạy PCR kích thước gen khác Sau xác định lượng enzyme tương đương với đơn vị enzyme thương mại, tiến hành pha chế dung dịch đệm cho phản ứng PCR dành riêng cho enzyme KOD tinh Thành phần pha chế dung dịch đệm pha dựa nghiên cứu công bố bao gồm 10 mM Tris HCl, mM (NH4)2SO4, 10 mM KCl, mM MgSO4, 0.01% Triton X100 0.1 mg/ml BSA, giá trị pH thử nghiệm khác 7.5, 8.0 8.8, so sánh với 5X HF buffer hãng Thermo scientific Cả enzyme thử hoạt tính gen có kích thước khác từ 0.5 kp, 1.1 kp 2.4 kp Kết thể Hình 28 hàng kết enzyme KOD-His hàng thứ enzyme KOD-GST Đối với enzyme KOD-His, cách kích thước khác buffer khau băng sản phẩm PCR lên sáng có băng đặc hiệu, buffer pH 7.5 8.8 sản phẩm có băng phụ mờ mật độ băng mờ so với buffer pH 8.0 HF buffer Trái ngược lại hoạt tính enzyme KOD-GST chưa ổn định 44 Hình 28: Kết PCR thử hoạt tính enzyme KOD-His KOD-GST với kích thước gen đệm PCR khác Hàng – Kod-His: Phản ứng PCR sử dụng enzyme KOD-His với đệm PCR có pH 7.5, 8.0, 8.8 tự pha 5x buffer HF hãng, loại đệm dung để nhân khn có kích thước 0.5; 1.1; 2.4 kb Hàng – Kod-GST: Phản ứng PCR sử dụng enzyme KOD-GST với đệm PCR có pH 7.5, 8.0, 8.8 tự pha 5x buffer HF hãng, loại đệm dung để nhân khn có kích thước 0.5; 1.1; 2.4 kb 45 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ Kết luận Từ kết đạt được, chúng tơi có kết luận sau: Chúng tơi tối ưu trình tự gen, nhân dịng gen mã hóa cho KOD DNA polymerase chèn thành công vào vector biểu pET-M pGEX-4T-1 Biểu protein KOD tái tổ hợp tế bào vi khuẩn E coli BL21 Protein tái tổ hợp KOD-His tinh phương pháp sắc ký lực Nicken chưa có độ tinh cao, protein KOD-GST tinh phương pháp sắc ký lực với đuôi GST với độ tinh cao Hoạt tính enzyme KOD gắn His có hoạt tính tốt, cịn enzyme KOD gắn đuôi GST so với protein gắn đuôi His Kiến nghị Trong phạm vi nghiên cứu luận văn thạc sỹ này, đạt kết định song hạn chế độ tinh protein tái tổ hợp, gây ảnh hưởng đến hoạt tính enzyme Vì vậy, tơi có số kiến nghị sau: Loại bỏ protein dung hợp GST khỏi protein KOD-GST protease thrombin Sử dụng sắc ký lọc gel sau để loại bỏ protein tạp khỏi protein KOD-His, đuôi GST khỏi hỗn hợp KOD-GST Thiết kế thí nghiệm thử độ bền hoạt tính DNA polymerase tái tổ hợp thu 46 TÀI LIỆU THAM KHẢO Tiếng Việt Dương Thị Kim Chi T V L., Lê Mậu Long (2016), "Xác định tham số quan trọng cho việc thiết kế gen dùng tái tổ hợp", Hội nghị Khoa học Quốc gia lần thứ IX “Nghiên cứu ứng dụng Công nghệ thông tin (FAIR'9), pp Tiếng Anh Barnes W M (1994), "PCR amplification of up to 35-kb DNA with high fidelity and high yield from lambda bacteriophage templates", Proc Natl Acad Sci U S A, 91, pp 2216-20 Benson L M., A P Null and D C Muddiman (2003), "Advantages of Thermococcus kodakaraenis (KOD) DNA Polymerase for PCR-mass spectrometry based analyses", J Am Soc Mass Spectrom, 14, pp 601-4 Block H., B Maertens, A Spriestersbach, N Brinker, J Kubicek, R Fabis, J Labahn and F Schafer (2009), "Immobilized-metal affinity chromatography (IMAC): a review", Methods Enzymol, 463, pp 439-73 Carson M., D H Johnson, H McDonald, C Brouillette and L J Delucas (2007), "His-tag impact on structure", Acta Crystallogr D Biol Crystallogr, 63, pp 295-301 Chou Q., M Russell, D E Birch, J Raymond and W Bloch (1992), "Prevention of pre-PCR mis-priming and primer dimerization improves low-copynumber amplifications", Nucleic Acids Research, 20, pp 1717-1723 Dąbrowski S and J Kur (1998), "Cloning and Expression inEscherichia coliof the Recombinant His-Tagged DNA Polymerases fromPyrococcus furiosusandPyrococcus woesei", Protein expression and purification, 14, pp 131-138 Donahue Jr R A and R L Bebee (1999), "BL21-SI™ competent cells for protein expression in E coli", Protein Expr Purif, 7, pp 289 Drouin R., W Dridi and O Samassekou (2007), DNA Polymerases for PCR Applications, 10 Edwards M C and R A Gibbs (1994), "Multiplex PCR: advantages, development, and applications", Genome Research, 3, pp S65-S75 11 Elshawadfy A M., B J Keith, E Ooi, T Kinsman, P Heslop and B A Connolly (2014), "DNA polymerase hybrids derived from the family-B enzymes of Pyrococcus furiosus and Thermococcus kodakarensis: improving performance in the polymerase chain reaction", Frontiers in microbiology, 5, pp 224 12 Ghasemi A., A H Salmanian, N Sadeghifard, A A Salarian and M K Gholi (2011), "Cloning, expression and purification of Pwo polymerase from Pyrococcus woesei", Iranian journal of microbiology, 3, pp 118 13 Hashimoto H., T Matsumoto, M Nishioka, T Yuasa, S Takeuchi, T Inoue, S Fujiwara, M Takagi, T Imanaka and Y Kai (1999), "Crystallographic studies on a family B DNA polymerase from hyperthermophilic archaeon Pyrococcus kodakaraensis strain KOD1", J Biochem, 125, pp 983-6 47 14 Hashimoto H., M Nishioka, S Fujiwara, M Takagi, T Imanaka, T Inoue and Y Kai (2001), "Crystal structure of DNA polymerase from 15 16 17 18 19 20 21 23 24 25 26 27 28 29 30 hyperthermophilic archaeon Pyrococcus kodakaraensis KOD1", J Mol Biol, 306, pp 469-77 Innis M A., D H Gelfand, J J Sninsky and T J White (2012), PCR protocols: a guide to methods and applications, Place, Published Kaltenboeck B and C Wang (2005), "Advances in real-time PCR: application to clinical laboratory diagnostics", Advances in clinical chemistry, 40, pp 219-259 Li Y., S Korolev and G Waksman (1998), "Crystal structures of open and closed forms of binary and ternary complexes of the large fragment of Thermus aquaticus DNA polymerase I: structural basis for nucleotide incorporation", The EMBO journal, 17, pp 7514-7525 Lu C and H P Erickson (1997), "Expression inEscherichia coliof the Thermostable DNA Polymerase fromPyrococcus furiosus", Protein expression and purification, 11, pp 179-184 Magdeldin S (2012), Affinity chromatography, Place, Published Mizuguchi H., M Nakatsuji, S Fujiwara, M Takagi and T Imanaka (1999), "Characterization and application to hot start PCR of neutralizing monoclonal antibodies against KOD DNA polymerase", J Biochem, 126, pp 762-8 Morikawa M., Y Izawa, N Rashid, T Hoaki and T Imanaka (1994), "Purification and characterization of a thermostable thiol protease from a newly isolated hyperthermophilic Pyrococcus sp", Appl Environ Microbiol, 60, pp 4559-66 22 Mroczkowski B S., A Huvar, W Lernhardt, K Misono, K Nielson and B Scott (1994), "Secretion of thermostable DNA polymerase using a novel baculovirus vector", Journal of Biological Chemistry, 269, pp 13522-13528 Papas T S and G Vande Woude (1986), "Gene amplification and analysis", pp Pelley J W (2007), Elsevier's Integrated Biochemistry, Place, Published Pina A S., I L Batalha and A C Roque (2014), "Affinity tags in protein purification and peptide enrichment: an overview", Methods Mol Biol, 1129, pp 147-68 Rosano G L and E A Ceccarelli (2014), "Recombinant protein expression in Escherichia coli: advances and challenges", Frontiers in microbiology, 5, pp 172-177 Saiki R K., D H Gelfand, S Stoffel, S J Scharf, R Higuchi, G T Horn, K B Mullis and H A Erlich (1988), "Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase", Science, 239, pp 487-91 Saiki R K., S Scharf, F Faloona, K B Mullis, G T Horn, H A Erlich and N Arnheim (1985), "Enzymatic amplification of beta-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia", Science, 230, pp 1350-4 Spriestersbach A., J Kubicek, F Schafer, H Block and B Maertens (2015), "Purification of His-Tagged Proteins", Methods Enzymol, 559, pp 1-15 Steitz T A (1999), "DNA polymerases: structural diversity and common mechanisms", Journal of Biological Chemistry, 274, pp 17395-17398 48 31 Takagi M., M Nishioka, H Kakihara, M Kitabayashi, H Inoue, B Kawakami, M Oka and T Imanaka (1997), "Characterization of DNA polymerase from 32 33 34 35 36 37 38 39 Pyrococcus sp strain KOD1 and its application to PCR", Appl Environ Microbiol, 63, pp 4504-10 Takagi M., M Nishioka, H Kakihara, M Kitabayashi, H Inoue, B Kawakami, M Oka and T Imanaka (1997), "Characterization of DNA polymerase from Pyrococcus sp strain KOD1 and its application to PCR", Appl Environ Microbiol., 63, pp 4504-4510 van Pelt-Verkuil E., A Van Belkum and J P Hays (2008), Principles and technical aspects of PCR amplification, Place, Published Vikis H G and K.-L Guan (2004), Glutathione-S-transferase-fusion based assays for studying protein-protein interactions, Waugh D S (2005), "Making the most of affinity tags", Trends in biotechnology, 23, pp 316-320 Wu S., W A Beard, L G Pedersen and S H Wilson (2013), "Structural comparison of DNA polymerase architecture suggests a nucleotide gateway to the polymerase active site", Chemical reviews, 114, pp 2759-2774 Yamashita M., J Xu, D Morokuma, K Hirata, M Hino, H Mon, M Takahashi, S M Hamdan, K Sakashita, K Iiyama, Y Banno, T Kusakabe and J M Lee (2017), "Characterization of Recombinant Thermococcus kodakaraensis (KOD) DNA Polymerases Produced Using SilkwormBaculovirus Expression Vector System", Mol Biotechnol, 59, pp 221-233 Zheng W., Q Wang and Q Bi (2016), "Construction, Expression, and Characterization of Recombinant Pfu DNA Polymerase in Escherichia coli", The protein journal, 35, pp 145-153 Wang F., S Li, H Zhao, L Bian, L Chen, Z Zhang, X Zhong, L Ma and X Yu (2015), "Expression and Characterization of the RKOD DNA Polymerase in Pichia pastoris", PLoS One, 10, pp 731-757 49 ... gen KOD DNA polymerase công cụ tin sinh Tổng hợp nhân dịng gen mã hóa cho KOD DNA polymerase Chèn đoạn gen mã hóa cho KOD DNA polymerase vào vector biểu pET-M pGEX-4T-1 Biểu protein KOD tái tổ. .. Aa BSA Bp DNA DTT dNTPs EDTA E coli GST IMAC IPTG Kb LB PCR RNA SDS SDS-PAGE TAE TEMED vii MỞ ĐẦU KOD DNA polymerase enzyme có hoạt tính tốt số DNA polymerase sử dụng KOD DNA polymerase có vai... Mẫu tinh protein giếng cuối (Dịch tinh sạch) khơng có băng protein KOD- His Như nhiệt độ làm ảnh hưởng đến tính tan KOD DNA polymerase, protein bám vào polymerase bị phân hủy kéo theo KOD DNA polymerase