1. Trang chủ
  2. » Kinh Tế - Quản Lý

Tiêu chuẩn Quốc gia TCVN 8400-12:2011

16 73 0

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

THÔNG TIN TÀI LIỆU

Nội dung

Tiêu chuẩn Quốc gia TCVN 8400-12:2011. Tiêu chuẩn về Bệnh động vật – quy trình chẩn đoán – phần 12: bệnh bạch lị và thương hàn ở gà. Tiêu chuẩn này quy định quy trình chẩn đoán bệnh thương hàn và bệnh bạch lị trên gà. Mời các bạn tham khảo.

TCVN TIÊU CHUẨN QUỐC GIA TCVN 8400-12:2011 Xuất lần BỆNH ĐỘNG VẬT – QUY TRÌNH CHẨN ĐỐN – PHẦN 12: BỆNH BẠCH LỊ VÀ THƯƠNG HÀN Ở GÀ Animal disease – Diagnostic procedure – Part 12: Fowl typhoid and pullorum disease HÀ NỘI – 2011 TCVN 8400-12:2011 Lời nói đầu TCVN 8400-12:2011 chuyển đổi từ 10 TCN 926:2006 thành tiêu chuẩn quốc gia theo quy ñịnh khoản Điều 69 Luật Tiêu chuẩn Quy chuẩn kỹ thuật ñiểm a khoản Điều Nghị định số 127/2007/NĐ-CP ngày 01/8/2007 Chính phủ quy ñịnh chi tiết thi hành số ñiều Luật Tiêu chuẩn Quy chuẩn kỹ thuật; TCVN 8400-12:2011 Cục Thú y biên soạn, Bộ Nông nghiệp Phát triển nơng thơn đề nghị, Tổng cục Tiêu chuẩn Đo lường Chất lượng thẩm định, Bộ Khoa học Cơng nghệ công bố TCVN 8400-12:2011 TCVN 8400-12:2011 TIÊU CHUẨN QUỐC GIA TCVN 8400-12:2011 Bệnh ñộng vật – Quy trình chẩn đốn – Phần 12: Bệnh bạch lị thương hàn gà Animal disease – Diagnostic procedure – Part 12: Fowl typhoid and pullorum disease CẢNH BÁO – Việc áp dụng tiêu chuẩn liên quan ñến vật liệu, thiết bị thao tác gây nguy hiểm Tiêu chuẩn khơng thể đưa ñược hết tất vấn ñề an toàn liên quan ñến việc sử dụng chúng Người sử dụng tiêu chuẩn phải tự thiết lập thao tác an tồn thích hợp xác định khả áp dụng giới hạn quy ñịnh trước sử dụng tiêu chuẩn Phạm vi áp dụng Tiêu chuẩn quy định quy trình chẩn đốn bệnh thương hàn bệnh bạch lị gà Thuật ngữ ñịnh nghĩa Trong tiêu chuẩn sử dụng thuật ngữ ñịnh nghĩa sau: 2.1 Bệnh bạch lị (fowl typhoid) Bệnh truyền nhiễm vi khuẩn Salmonella pullorum (S pullorum) gây gà 2.2 Bệnh thương hàn (pullorum disease) Bệnh truyền nhiễm vi khuẩn Samonella gallinarum (S gallinarum) gây gà CHÚ THÍCH: Bệnh bạch lị thương hàn gà có nhiều đặc điểm giống bệnh sử, triệu chứng lâm sàng, dịch tễ, bệnh tích biện pháp phòng chống bệnh Tuy nhiên, bệnh bạch lị thường xảy gà con, thể cấp tính, nhiễm trùng huyết gà lớn mang trùng bệnh thể cận lâm sàng Bệnh thương hàn gà thường xảy gà với ñặc ñiểm ñặc trưng: lây lan nhanh, tỉ lệ nhiễm cao gà mắc bệnh thể cấp tính Những năm gần đây, nhiều tài liệu xếp hai loại vi khuẩn vào chung loài Salmonella enterica nhánh enterica (subspecies enterica) typ huyết gallinarum – pullorum, chúng thuộc hay hai typ huyết khác vấn đề tranh luận TCVN 8400-12:2011 Môi trường nuôi cấy thuốc thử Trong tiêu chuẩn sử dụng thuốc thử tinh khiết phân tích sử dụng nước cất nước có chất lượng tương đương − Mơi trường thơng thường: thạch máu, canh thang BHI (brain heart infusion broth) − Môi trường chọn lọc: thạch MacConKey, thạch BG (briliant green agar) thạch XLD (xylose- lysine-deoxycholate agar) − Môi trường tăng sinh: nước selenit cystein, tetrathionat, RVS (Rappaport-Vassiliadis soya) − Máu bê, thỏ cừu − Canh thang peptone (peptone water) − Thạch Kligler thạch TSI (Triple Sugar Iron) − Thạch lysin-sắt (lysine iron agar) canh thang lysin decarboxylase − Thạch simon xitrat − Ure − Maltoza − Ornithine − Ducitol − Kháng huyết chuẩn Salmonella ñịnh typ O9 − Thuốc thử Kovac’s − Thạch nguyên chất (agar bacteriological) Thiết bị, dụng cụ Sử dụng thiết bị, dụng cụ phòng thử nghiệm thơng thường cụ thể sau: − Thiết bị ñiện di − Tủ ấm, trì nhiệt độ 37 oC − Tủ sấy − Buồng cấy TCVN 8400-12:2011 − Kính hiển vi quang học − Tủ lạnh − Que cấy − Đĩa Petri − Lọ thủy tinh, dung tích 100 ml, 200 ml, 500 ml 000 ml Cách tiến hành 5.1 Chẩn đốn lâm sàng 5.1.1 Đặc điểm dịch tễ − Bệnh lây truyền qua trứng − Sản lượng trứng giảm − Tỷ lệ ấp nở giảm: tăng tỉ lệ chết phôi chết non 5.1.2 Triệu chứng lâm sàng 5.1.2.1 Ở gà − Tỉ lệ chết cao chất lượng gà nở − Bỏ ăn, ỉa chảy phân trắng dính bết vào lỗ huyệt, suy kiệt, khó thở, gà còi cọc − Tỉ lệ chết cao khoảng tuần tuổi ñến tuần tuổi − Có thể sưng khớp mù mắt 5.1.2.2 Ở gà lớn − Thể cấp tính: vật ủ rũ, bỏ ăn, lông xù, ỉa cháy, nước, sốt cao Gia cầm chết sau từ ngày ñến 10 ngày xuất triệu chứng − Tỉ lệ ñẻ tỉ lệ ấp nở giảm − Thể mạn tính: gà mang trùng, không biểu triệu chứng rõ ràng 5.1.3 Bệnh tích đại thể 5.1.3.1 Ở gà TCVN 8400-12:2011 − Lòng đỏ lâu tiêu − Hoại tử đốm nhỏ phổi, tim − Xoang bao tim tích dịch nhầy vàng − Viêm khớp − Gan, lách sưng − Ruột viêm cata − Thành manh tràng dày, có bã ñậu 5.1.3.2 Ở gà lớn − Trứng non méo mó, dị hình, chất chứa bên màu vàng nâu hay xanh đen có có bã đậu − Trứng rơi vào xoang bụng − Viêm xoang bụng, viêm dính với quan xoang bụng − Viêm bao tim 5.1.4 Lấy mẫu Bệnh phẩm phủ tạng (gan, lách, phổi), phủ tạng phôi, tử cung, manh tràng, ruột lấy từ 10 g ñến 100 g Dịch ổ nhớp, phân trực tràng: dùng tăm pon vô trùng ngoáy ổ nhớp hay trực tràng Lấy phân 10 g ñến 50 g phân thải Lấy trứng, trứng có phơi (túi lòng đỏ), túi lòng đỏ trứng chưa tiêu (ở gà con), trứng non Bệnh phẩm phải ñược lấy vô trùng Mỗi loại bệnh phẩm cho vào lọ túi ni lon vô trùng riêng biệt Bảo quản ñiều kiện lạnh từ oC ñến oC gửi phòng thí nghiệm chậm 24 h sau lấy mẫu Gửi kèm theo bệnh phẩm giấy yêu cầu xét nghiệm có ghi rõ triệu chứng, bệnh tích đặc điểm dịch tễ 5.2 Chẩn đốn phòng thí nghiệm 5.2.1 Ni cấy, phân lập vi khuẩn Môi trường nuôi cấy, phân lập bao gồm: - Môi trường thông thường như: thạch máu, thạch thường, canh thang BHI TCVN 8400-12:2011 - Môi trường chọn lọc như: thạch BG, thạch MacConkey thạch XLD - Môi trường tăng sinh như: nước selenit cystein, tetrathionat, RVS Nuôi cấy, phân lập vi khuẩn S pullorum S gallinarum tuỳ thuộc vào loại bệnh phẩm mà áp dụng phương pháp khác nhau: - Bệnh phẩm phân, ruột, chất chứa ruột, manh tràng Nghiền bệnh phẩm nước muối sinh lý vô trùng (phân chất chứa ruột hoà trực tiếp vào nước muối sinh lý) nghiền bệnh phẩm trực tiếp stomacher theo tỉ lệ 1/10 Lấy vòng que cấy huyễn dịch bệnh phẩm, cấy vào môi trường chọn lọc, nuôi cấy 37 oC vòng 24 h đến 48 h Cấy huyễn dịch bệnh phẩm vào môi trường tăng sinh theo tỉ lệ 1/10, nuôi cấy 37 oC (selenit cystein) sau 24 h đến 48 h cấy chuyển vào mơi trường chọn lọc - Bệnh phẩm phủ tạng: Nghiền bệnh phẩm nước muối sinh lý vô trùng theo tỉ lệ 1/10 Lấy vòng que cấy huyễn dịch bệnh phẩm vào môi trường thông thường môi trường chọn lọc Ni cấy 37 oC từ 24 h đến 48 h cấy chuyển sang môi trường chọn lọc - Bệnh phẩm dịch ổ nhớp phân trực tràng: Ria cấy (tăm pon ngoáy dịch ổ nhớp phân trực tràng) lên mơi trường chọn lọc, sau chuyển tăm pon vào môi trường tăng sinh (selenit cystein), nuôi cấy 37 oC sau 24 h ñến 48 h cấy chuyển sang môi trường chọn lọc - Cấy bệnh phẩm lòng đỏ (của trứng trứng non, túi lòng đỏ trứng có phơi gà con): Có thể dùng pipet hay syringe vơ trùng hút 100 µl lòng đỏ cấy vào 100 ml nước pepton hay canh thang BHI, trộn ñều, ủ 37 oC sau 24 h ñến 48 h, cấy chuyển vào môi trường thạch máu, môi trường chọn lọc môi trường tăng sinh Ủ 37 oC sau 24 h ñến 48 h, cấy chuyển vào mơi trường chọn lọc Có thể lấy tăm pon, nhúng vào lòng đỏ, dùng tăm pon ria cấy lên mơi trường thạch máu, mơi trường chọn lọc, sau chuyển tăm pon vào môi trường canh thang BHI Ủ 37 oC sau 24 h ñến 48 h, cấy chuyển vào môi trường chọn lọc - Bệnh phẩm phơi: Nghiền phủ tạng phơi, lấy vòng que cấy, ria cấy lên môi trường thạch máu, môi trường chọn lọc cấy vào môi trường tăng sinh Sau 24 h đến 48 h ni cấy 37 oC (môi trường selenit cystein), cấy chuyển vi khuẩn vào môi trường chọn lọc - Bệnh phẩm vỏ trứng: Nghiền nhỏ vỏ trứng vào cấy môi trường trường tăng sinh (selenit cystein) nhiệt ñộ 37 oC, sau 24 h ñến 48 h cấy chuyển vi khuẩn vào môi trường chọn lọc TCVN 8400-12:2011 Hình thái khuẩn lạc mơi trường phân lập sau 24 h đến 48 h nuôi cấy sau: - Trên môi trường thạch máu thạch thường khuẩn lạc vi khuẩn Salmonella có hình tròn, trơn, mặt vồng màu trắng đục, ñường kính khoảng mm ñến mm - Trên mơi trường thạch MacConkey khuẩn lạc có hình tròn, trơn, hình vòm, màu trắng đục - Trên mơi trường thạch BG: Khuẩn lạc có hình tròn, trơn, màu hồng đậm - Trên mơi trường thạch XLD: Khuẩn lạc có hình tròn, trơn, màu đỏ có nhân đen Chọn khuẩn lạc có hình thái đặc trưng cấy vào mơi trường thạch thường thạch máu hay canh thang BHI, nuôi cấy 37 oC vòng 18 h đến 24 h để tiến hành kiểm tra đặc tính sinh hố huyết học 5.2.2 Giám ñịnh vi khuẩn 5.2.2.1 Giám định sinh hóa Để kiểm tra đặc tính sinh hóa sử dụng kit sinh hóa thương mại thực theo hướng dẫn nhà sản xuất sử dụng loại môi trường như: thạch TSI, thạch lysin-sắt (hoặc canh thang lysin decarboxylase), ure, orthinine decarbocylation; mơi trường thử lên men đường maltoza, dulcitol; mơi trường kiểm tra di ñộng (xem Phụ lục A) Bảng – Một số đặc tính sinh hố đặc trưng vi khuẩn S pullorum S gallinarum Tính chất S pullorum S gallinarum - - AG A Lên men saccaroza - - Sinh H2S (TSI) ± ± Sinh indol - - Phân hủy lysin + + - (+)chậm + Ure - - Di ñộng - - Ornithine + - Dulcitol - + Lên men lactose Lên men glucose (A), sinh (G) (TSI) Lên men maltoza CHÚ THÍCH: Dương tính: (+); Âm tính: (-); Phản ứng thay ñổi: (±) 10 TCVN 8400-12:2011 5.2.2.2 Giám ñịnh huyết Xác ñịnh kháng nguyên O: Định typ kháng nguyên O (nhóm O9 hay nhóm D) phản ứng ngưng kết nhanh phiến kính với kháng huyết chuẩn O9 hay kháng huyết nhóm D Các bước tiến hành phản ứng ñọc kết theo dẫn nhà sản xuất kháng huyết Tính kháng nguyên S pullorum S gallinarum ñược nêu Bảng Bảng – Tính kháng nguyên S pullorum S gallinarum Nhóm O (somatic) antigens Flagella (H) antigens S pullorum D 1,9,12 - S gallinarum D 9,12 - Typ huyết Salmonella 5.2.3 Chẩn đốn huyết học Phản ứng huyết ứng dụng để chẩn đốn nhiễm bệnh tồn đàn Để xác định nhiễm bệnh tổng ñàn phải lấy lượng mẫu ñủ lớn theo ước lượng tỉ lệ lưu hành ñộ tin cậy Sử dụng phần mềm chuyên dụng (ví dụ Win Episcope 2.0) ñể xác ñịnh lượng mẫu cần lấy (xem Phụ lục B) Các phản ứng hay dùng ñể phát kháng thể phản ứng ngưng kết nhanh kháng nguyên với máu (toàn máu) hay huyết phiến kính, ngưng kết ống nghiệm, ngưng kết ñĩa 96 giếng Phản ứng thường sử dụng kháng nguyên thương phẩm tiến hành phản ứng theo hướng dẫn nhà sản xuất Kết luận Gà ñược xác ñịnh mắc bệnh thương hàn hay bạch lị khi: − Có đặc điểm dịch tễ, triệu chứng lâm sàng, bệnh tích điển hình bệnh; − Phân lập ñược vi khuẩn S pullorum hay S gallinarum phòng thí nghiệm 11 TCVN 8400-12:2011 Phụ lục A (Quy định) Một số phản ứng sinh hóa A.1 Phản ứng sinh Indol A.1.1 Thuốc thử Kovac’s Thành phần Paradimetylaminobenzaldehyt 5g Cồn amyla 75 ml HCl đặc 25 ml Chuẩn bị Hồ dung dịch paradimetylaminobenzaldehyde vào cồn amyla cho tan hết ñể tủ lạnh oC Thêm từ từ ml đến 10 ml HCl hồ để tủ lạnh, sau lại tiếp tục bổ sung HCl Bảo quản thuốc thử lọ màu, oC A.1.2 Cách tiến hành Cấy vi khuẩn vào môi trường nước peptone mơi trường nước peptone có bổ sung tryptophan, nuôi cấy 37 oC Sau 24 h nuôi cấy, nhỏ từ 0,2 ml ñến 0,3 ml dung dịch thuốc thử Kovac’s vào môi trường, lắc nhẹ A.1.3 Kết Phản ứng dương tính có vòng màu đỏ xuất nơi tiếp giáp thuốc thử môi trường (sinh Indol) Phản ứng âm tính khơng có vòng màu đỏ xuất nơi tiếp giáp thuốc thử môi trường A.2 Môi trường kiểm tra khả phân huỷ ornithine Môi trường: Canh thang peptone (v) 12 TCVN 8400-12:2011 Ornithine (khối lượng/thể tích) 0,5 % Glucose (khối lượng/thể tích) 0,1 % Chỉ thị màu đỏ tía bromocresol (phần thể tích) 0,1 % Chỉnh pH = 6,0 Chuẩn bị thị màu đỏ tía bromocresol: Đỏ tía bromocresol 1,5 g Cồn 90 % 100 ml Cấy vi khuẩn cần kiểm tra vào mơi trường có chứa Ornithine thị màu, nuôi cấy 37 oC từ 18 h ñến 24 h Nếu vi khuẩn phân huỷ Ornithine mơi trường chuyển sang kiềm làm đổi màu mơi trường A.3 Đặc tính lên men ñường glucose, lactose, sinh H2S Chuẩn bị môi trường TSI hay Kligler (theo hướng dẫn nhà sản xuất) Lấy khuẩn vi khuẩn ngờ cấy thẳng (chính phần thạch ñứng) xuống ñáy ống nghiệm, rút dần que lên tiếp tục cấy bề mặt nghiêng vào môi trường TSI hay Kligler nuôi 37 oC, sau 24 h kiểm tra Lên men đường lactoza: - Dương tính: Mặt nghiêng màu vàng - Âm tính: Mặt nghiêng màu hồng Lên men đường glucose: - Dương tính: Phần thạch đứng màu vàng - Âm tính: Phần thạch đứng màu hồng Khả sinh H2S: - Dương tính: Ống nghiệm có màu đen - Âm tính: Ống nghiệm khơng có màu ñen Khả sinh hơi: - Dương tính: Thạch ống nghiệm bị nứt hay đẩy lên - Âm tính: Thạch ống nghiệm khơng bị nứt hay đẩy lên 13 TCVN 8400-12:2011 A.4 Đặc tính phân huỷ lysin Sử dụng mơi trường có lysin canh thang lysin decarboxylase thạch lysin-sắt Pha chế thạch nghiêng chế từ thạch lysin-sắt theo hướng dẫn nhà sản xuất Thạch màu tím nhạt có phần: phần thạch đứng (chân) phần thạch nghiêng ñể kiểm tra khả lên men ñường lactoza Lấy khuẩn vi khuẩn ngờ cấy thẳng (chính phần thạch đứng) xuống đáy ống nghiệm, rút dần que lên tiếp tục cấy bề mặt nghiêng, ni cấy 37 oC điều kiện hiếu khí, sau 24 h kiểm tra lại - Phản ứng dương tính: Đáy ống nghiệm (phần thạch đứng) có màu tím đậm - Phản ứng âm tính: Đáy ống nghiệm chuyển màu vàng A.5 Tính di động Kiểm tra đặc tính di động vi khuẩn mơi trường thạch lỏng Thành phần môi trường Canh thang peotone 100 ml Thạch nguyên chất 0,25 g Chuẩn bị Hòa tan thạch vào nước peptone, chia ống nghiệm ml hấp vơ trùng 121 oC 15 Cấy chích sâu vi khuẩn nghi ngờ khiết vào môi trường (cấy vào ống nghiệm, theo chiều thẳng ñứng ñến ñáy ống nghiệm), ủ 37 oC sau 18 h ñến 24 h kiểm tra kết - Phản ứng dương tính: Thạch ống nghiệm trở nên đục vi khuẩn mọc lan toàn phần thạch ống nghiệm - Phản ứng âm tính: Dọc theo đường cấy mơi trường đục (do vi khuẩn mọc xung quanh ñường cấy), môi trường xung quanh suốt A.6 Lên men đường maltoza dulcitol A.6.1 Chuẩn bị mơi trường Pha nước peptone theo dẫn nhà sản xuất Chuẩn bị thị màu 14 TCVN 8400-12:2011 Thành phần Fuchsin axit 0, g Nước 100 ml Dung dịch NaOH N Chuẩn bị Nghiền fuchsin, hoà vào nước cho tan hết Cho từ từ lượng NaOH N, vừa cho vừa lắc ñến chuyển màu từ ñỏ tươi sang đỏ nâu, đến vàng úa, vàng thẫm dừng (thường từ 12 ml ñến 17 ml) Để lắng từ h ñến h, lọc qua giấy lọc Hấp 120 oC 15 Cho ml thị màu Andrade vào 100 ml môi trường nước peptone, chia ống (4 ml ống) Hấp 120 oC 30 Chuẩn bị dung dịch ñường: dung dịch ñường 10 % (pha nước) hấp 110 oC 15 ñến 20 hấp cách quãng lần 100 oC 30 lọc qua màng lọc 0,45 µm Cho đường vào ống mơi trường: ống (4 ml) loại ñường riêng rẽ theo tỷ lệ 0,3 ml dung dịch ñường 10 % A.6.2 Phương pháp kiểm tra ñọc kết Cấy vi khuẩn ni cấy khiết vào ống mơi trường peptone có đường, để tủ ấm 37 oC, sau 24 h đọc kết Phản ứng âm tính: Mơi trường khơng thay đổi màu Phản ứng dương tính: Mơi trường chuyển màu đỏ A.7 Phân giải urê Có thể sử dụng môi trường urê (Urea agar base – Christensen) chế môi trường bổ sung urê theo dẫn nhà sản xuất Cấy vi khuẩn vào mơi trường có ure, ni cấy 37 oC sau 24 h ñọc kết - Phản ứng dương tính: Mơi trường chuyển màu tím - Phản ứng âm tính: Mơi trường khơng thay đổi màu 15 TCVN 8400-12:2011 Phụ lục B (Tham khảo) Phương pháp tính số mẫu máu cần lấy ñể kiểm tra kháng thể S pullorum S gallinarum phần mềm Win Episcope 2.0 Các thơng tin cần biết để tính số lượng mẫu (input of DATA) gồm: − Tổng ñàn (Population size) − Tỉ lệ lưu hành ước đốn (Expected prevalence %) − Sai số cho phép (Accepted error %) − Độ tin cậy (Level of confidence %) − Tính số mẫu cần lấy (Calculate) Điền tồn thơng tin vào phần “input of DATA” bảng VÍ DỤ: Ở bảng trên: Tổng đàn (Population size) là: 1000 Tỉ lệ lưu hành ước ñoán (Expected prevalence %) là: 10 % Sai số cho phép (Accepted error %): % Độ tin cậy (Level of confidence): 95 % Số mẫu cần lấy (Use value of n (a)) 122 16 TCVN 8400-12:2011 Thư mục tài liệu tham khảo [1] Standard Diagnostic Manual for livestock diseases in Thailand, JICA, Third edition, 2003 Page 185-186 [2] Sổ tay bệnh dịch ñộng vật Copyright text Archie Hunter, 1994, 1996 Text Archie Hunter and SVSV project, 2000 [3] Shivaprasad H L Pullorum Disease and Fowl Typhoid Disease of poulttry, the 11th edition, distributed by Iowa state press, 2004 Page 568-582 [4] Australian Standard Diagnostic Technique for animal diseases Standing committee agriculture and resource management Editors: Leigh A.Corner, Trevor J Bagust- 1993 [5] Manual Diagnosis and Vaccines for Terrestrial Animal, Fowl typhoid and Pullorum disease, chapter 2.7.5 OIE [6] Clinical Veterinary Microbiology Copyright 1994 P.J Quinn, M.E Carter, B.K Markey and G.R Carter [7] Giáo trình bệnh truyền nhiễm gia súc 1978 Nhà xuất nông nghiệp [8] ISO 6579:1981 Hướng dẫn chung phương pháp phát Salmonella.1) _ 1) Hiện ñã có TCVN 4829:2005 (ISO 6579:2002, Cor 1:2004), Vi sinh vật thực phẩm thức ăn chăn nuôi – Phương pháp phát Salmonella ñĩa thạch 17 .. .TCVN 8400-12:2011 Lời nói đầu TCVN 8400-12:2011 chuyển đổi từ 10 TCN 926:2006 thành tiêu chuẩn quốc gia theo quy ñịnh khoản Điều 69 Luật Tiêu chuẩn Quy chuẩn kỹ thuật ñiểm... chuẩn Đo lường Chất lượng thẩm ñịnh, Bộ Khoa học Công nghệ công bố TCVN 8400-12:2011 TCVN 8400-12:2011 TIÊU CHUẨN QUỐC GIA TCVN 8400-12:2011 Bệnh ñộng vật – Quy trình chẩn đốn – Phần 12: Bệnh bạch... chi tiết thi hành số ñiều Luật Tiêu chuẩn Quy chuẩn kỹ thuật; TCVN 8400-12:2011 Cục Thú y biên soạn, Bộ Nông nghiệp Phát triển nơng thơn đề nghị, Tổng cục Tiêu chuẩn Đo lường Chất lượng thẩm

Ngày đăng: 07/02/2020, 02:52

TỪ KHÓA LIÊN QUAN