ảnh hưởng của việc bổ sung các hàm lượng glucose khác nhau đến sinh trưởng và tỷ lệ sống của sò huyết giai đoạn giống (anadara granosa)

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ KHOA THỦY SẢN NGUYỄN DIỄM KIỀU ẢNH HƯỞNG CỦA VIỆC BỔ SUNG CÁC HÀM LƯỢNG GLUCOSE KHÁC NHAU ĐẾN SINH TRƯỞNG VÀ TỶ LỆ SỐNG CỦA SÒ HUYẾT GIAI ĐOẠN GIỐNG ANADARA GR

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ

KHOA THỦY SẢN

NGUYỄN DIỄM KIỀU

ẢNH HƯỞNG CỦA VIỆC BỔ SUNG CÁC HÀM LƯỢNG GLUCOSE KHÁC NHAU ĐẾN SINH TRƯỞNG VÀ

TỶ LỆ SỐNG CỦA SÒ HUYẾT GIAI ĐOẠN GIỐNG

(ANADARA GRANOSA)

LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP CHUYÊN NGÀNH SINH HỌC BIỂN

CẦN THƠ, 2013

TRƯỜNG ĐẠI HỌC CẦN THƠ

KHOA THỦY SẢN

NGUYỄN DIỄM KIỀU

ẢNH HƯỞNG CỦA VIỆC BỔ SUNG CÁC HÀM LƯỢNG GLUCOSE KHÁC NHAU ĐẾN SINH TRƯỞNG VÀ

TỶ LỆ SỐNG CỦA SÒ HUYẾT GIAI ĐOẠN GIỐNG

(ANADARA GRANOSA)

LUẬN VĂN TỐT NGHIỆP CHUYÊN NGÀNH SINH HỌC BIỂN

CÁN BỘ HƯỚNG DẪN PGS.TS NGÔ THỊ THU THẢO

CẦN THƠ, 07/2013

LỜI CẢM TẠ

Đầu tiên, tôi xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc đến cô Ngô Thị Thu Thảo

đã dành nhiều thời gian quan tâm giúp đỡ, hướng dẫn và cho tôi những lời khuyên quý báu trong suốt thời gian thực hiện đề tài và hoàn thành luận văn tốt nghiệp

Xin chân thành cảm ơn Ban Chủ nhiệm Khoa Thủy sản, Ban lãnh đạo

Bộ môn Kỹ Thuật Nuôi Hải Sản đã tạo điều kiện thuận lợi để tôi hoàn thành khóa học và thực hiện luận văn này

Xin gửi lời cảm ơn đến các bạn lớp Sinh Học Biển khóa 36, các bạn và các anh chị trong trại thực nghiệm Động vật thân mềm đã khích lệ, nhiệt tình

hỗ trợ và chia sẻ kinh nghiệm thật sự bổ ích để tôi hoàn thành luận văn

Xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc đến gia đình và những người thân đã luôn động viên và tạo điều kiện tốt nhất cho tôi trong suốt quá trình học tập tại trường

Cuối lời, xin kính chúc quý thầy cô và các bạn dồi dào sức khỏe, hạnh phúc và thành công

Xin chân thành cảm ơn!

Nguyễn Diễm Kiều

TÓM TẮT

Thí nghiệm được thực hiện nhằm đánh giá ảnh hưởng của việc bổ sung glucose với các hàm lượng khác nhau (0, 50, 75, 100 μg/L) đến sinh trưởng và

tỷ lệ sống của sò huyết giống (Anadara granosa)

Thí nghiệm gồm 4 nghiệm thức (NT) và mỗi NT được lặp lại 3 lần (NT1: 0 μg glucose/L (đối chứng), NT2: 50 μg glucose/L, NT3: 75 μg glucose/L và NT4: 100 μg glucose/L) Sò giống có chiều dài: 12,220,34 mm

và khối lượng: 0,490,01 gam, được bố trí 20 con/bể có thể tích nước 85 lít

và độ mặn được duy trì ở 20‰ Tất cả các NT được cho ăn bằng tảo Chlorella

sp từ hệ thống nước xanh-cá rô phi cùng với bổ sung chế phẩm sinh học chứa

vi khuẩn Bacillus hàng tuần với liều lượng 0,5mg/L Sau 75 ngày thí nghiệm,

kết quả cho thấy tốc độ tăng trưởng tương đối về chiều dài, khối lượng và tỷ lệ sống của sò có sự khác biệt nhưng không có ý nghĩa thống kê giữa các nghiệm thức (P>0,05) Chiều dài và khối lượng của sò ở NT bổ sung glucose 50 μg/L

là cao nhất (12,74 mm và 0,53 gam) và tốc độ tăng trưởng tương đối về chiều dài và khối lượng cũng cao nhất ở NT này lần lượt là 0,053 và 0,088 %/ngày

Tỷ lệ sống của sò đạt cao nhất (28%) ở NT bổ sung glucose 75 μg/L Kết quả

phân tích vi sinh thu được, mật độ vi khuẩn Bacillus đạt cao nhất ở NT bổ

sung glucose 100 μg/L (13240 CFU/mL) đã góp phần hạn chế sự phát triển

của vi khuẩn Vibrio đến mức thấp nhất (270 CFU/mL) so với các nghiệm thức

còn lại

MỤC LỤC

Trang PHẦN 1 ĐẶT VẤN ĐỀ

1.1 Giới thiệu 1

1.2 Mục tiêu nghiên cứu 2

1.3 Nội dung nghiên cứu 2

1.4 Thời gian thực hiện đề tài 2

PHẦN 2 LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU 2.1 Đặc điểm sinh học Sò Huyết 3

2.1.1 Phân loại và hình thái cấu tạo của Sò Huyết (Anadara granosa Linnaeus, 1758) 3

2.1.2 Phân bố và môi trường sống 4

2.1.3 Sinh trưởng 4

2.1.4 Dinh dưỡng 5

2.1.5 Đặc điểm sinh sản 5

2.2 Tình hình nuôi và nghiên cứu sò huyết 6

2.3 Sử dụng chế phẩm sinh học (Probiotics) trong nuôi trồng thủy sản 7

2.4 Ứng dụng của glucose trong nuôi trồng thủy sản 8

PHẦN 3 VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 3.1 Thời gian và địa điểm 11

3.1.1 Thời gian 11

3.1.2 Địa điểm 11

3.2 Đối tượng nghiên cứu 11

3.3 Vật liệu nghiên cứu 11

3.3.1 Dụng cụ và trang thiết bị thí nghiệm 11

3.3.2 Hóa chất 11

3.3.3 Nguồn nước thí nghiệm 11

3.3.4 Nuôi tảo Chlorella trong hệ thống nước xanh – cá rô phi 12

3.4 Phương pháp nghiên cứu 12

3.4.1 Bố trí thí nghiệm 12

3.4.2 Các yếu tố môi trường và mật độ vi khuẩn 12

3.4.3 Tỷ lệ sống và tăng trưởng của Sò Huyết 14

3.5 Phương pháp xử lý số liệu 15

PHẦN 4 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN

4.1 Các yếu tố môi trường 16

4.2 Tăng trưởng và tỷ lệ sống của sò huyết 19

4.2.1 Tỷ lệ sống của sò huyết 19

4.2.3 Tăng trưởng của sò huyết 20

PHẦN 5 KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT 5.1 Kết luận 23

5.2 Đề xuất 23

TÀI LIỆU THAM KHẢO 24

DANH SÁCH HÌNH

Hình 2.1 Sò huyết (Anadara granosa) 3

Hình 3.1 Các bước pha loãng mẫu nước 14

Hình 4.1 Biến động nhiệt độ trong quá trình thí nghiệm 16

Hình 4.2 Biến động hàm lượng NO2 (mg/L) trong quá trình thí nghiệm 17

Hình 4.3 Biến động mật độ vi khuẩn tổng trong nước (CFU/mL) 17

Hình 4.4 Biến động mật độ vi khuẩn Bacillus (CFU/mL) 18

Hình 4.5 Biến động mật độ vi khuẩn Vibrio (CFU/mL) 19

Hình 4.6 Tỷ lệ sống của sò huyết 20

DANH SÁCH BẢNG

Bảng 3.1 Phương pháp và chu kỳ theo dõi các yếu tố môi trường 13 Bảng 4.1 Các yếu tố môi trường theo dõi 16 Bảng 4.2 Chiều dài và khối lượng của sò thí nghiệm 20 Bảng 4.3 Tốc độ tăng trưởng tương đối về chiều dài vỏ của sò huyết

(%/ngày) 21 Bảng 4.4 Tốc độ tăng trưởng tương đối về khối lượng của sò huyết (%/ngày) 22

PHẦN 1 ĐẶT VẤN ĐỀ

1.1 Giới thiệu

Từ đầu những năm 80, ngành thủy sản Việt Nam đã có những thay đổi đáng kể Đầu tiên là những chính sách về cải thiện tiếp cận thị trường, xúc tiến xuất khẩu và nâng cao giá trị sản phẩm Ngành thủy sản được nhìn nhận như

là một ngành kinh tế mũi nhọn và tạo ra hàng triệu việc làm cho lực lượng lao động cả nước (Bộ Thủy sản, 2001)

Thành công từ sản xuất cá tra đã tạo ra cơ hội để Việt Nam giới thiệu những loài mới cho thị trường EU Theo Hiệp hội Chế biến và Xuất khẩu Thủy sản Việt Nam (VASEP), trong 2 tháng đầu năm 2011, Việt Nam đã xuất khẩu 4.250 tấn thủy sản có vỏ, trị giá 12,4 triệu USD sang EU, tăng 3% về lượng và 3,7% về giá trị EU là nhà nhập khẩu quan trọng nhất của Việt Nam trong đó giá trị chiếm 68,8% tổng xuất khẩu tương đương 7,5 triệu USD Xuất khẩu sang các nước thành viên EU như Tây Ban Nha, Bồ Đào Nha và Italia đạt giá trị cao, chiếm phần lớn xuất khẩu nhuyễn thể từ Việt Nam

Sò huyết Anadara granosa là loài có giá trị kinh tế cao được nhiều

nước trên thế giới khai thác tự nhiên và nuôi ở các bãi triều ven biển Sò huyết phân bố ở Thái Bình Dương và Ấn độ Dương Ở Việt Nam, chúng phân bố trên tất cả các vùng triều ven biển , từ sát bờ tới độ sâu 3-4 m nước, chất đáy bùn nhẹ hoặc bùn pha cát Sò Huyết là loài rộng muối, có khả năng thích nghi với độ mặn biến động lớn từ 10- 35‰, khoảng thích hợp là 20- 25‰ Trước đây, những người dân ven biển đã biết nuôi ngao sò ở các bãi triều hoặc kênh

rạch trong vùng rừng ngập mặn (Lê Xuân Tuấn và ctv, 2008) Khi sản phẩm

sò huyết được xuất khẩu sang thị trường thế giới như Trung Quốc, Nhật Bản

…thì ngư dân đã tận dụng các bãi triều ven biển để nuôi sò và chúng trở thành đối tượng kinh tế quan trọng của ngư dân vùng ven biển Nam Bộ Với biên độ nhiệt 25-33oC, ĐBSCL thích hợp cho việc nuôi sò huyết quanh năm (Dương

Thị Hoàng Oanh và ctv, 2013) Mặt khác, sự có mặt của 09 axit amin không

thay thế như methionine, threonine, lysine, isoleucine, leucine, valine, arginine, histidine và phenylalanine là ưu điểm của đối tượng này Trong thịt của sò huyết có chứa hàm lượng khá cao các nguyên tố vi lượng cần thiết cho quá trình trao đổi chất như Cu, Fe, Zn, Mn và Ca Vì vậy, sò huyết là đối tượng lý tưởng để sử dụng như một loại thực phẩm, dược phẩm cho con người

(Chế Thị Cẩm Hà và cs, 2012)

Trong ương dưỡng ấu trùng thủy sản glucose có tác dụng làm thay đổi hàm lượng axit hữu cơ tổng cộng trong mô và tạo ra năng lượng góp phần vào tăng trưởng của đối tượng nuôi Bên cạnh đó, việc bổ sung glucose vào hệ thống ương nuôi còn thúc đẩy sự phát triển của hệ vi sinh có lợi cho đối tượng nuôi, từ đó hạn chế được sự phát triển của những vi sinh gây hại Do đó, việc ứng dụng glucose trong nghề nuôi thân mềm là có hiệu quả, đặc biệt với đối tượng hai mảnh vỏ Cho nên đề tài: “Ảnh hưởng của những hàm lượng

glucose khác nhau đến tăng trưởng và tỷ lệ sống của sò huyết giống (Anadara

granosa)” được thực hiện

1.2 Mục tiêu nghiên cứu

Đánh giá ảnh hưởng của việc bổ sung các hàm lượng glucose khác nhau đến sinh trưởng và tỷ lệ sống của Sò Huyết

1.3 Nội dung nghiên cứu

Thí nghiệm ương nuôi Sò Huyết giống bằng tảo từ hệ thống nước

xanh-cá rô phi có bổ sung thêm xanh-các hàm lượng glucose là 0, 50, 75, 100 μg/L

1.4 Thời gian thực hiện đề tài

Đề tài được thực hiện từ tháng 10 năm 2012 đến tháng 01 năm 2013

PHẦN 2 LƯỢC KHẢO TÀI LIỆU

2.1 Đặc điểm sinh học Sò Huyết

2.1.1 Phân loại và hình thái cấu tạo của Sò Huyết (Anadara granosa

Linnaeus, 1758)

Phân loại sò huyết

Ngành: Mollusca

Lớp: Bivalvia Bộ: Arcoida

Giống: Anadara Loài: Anadara granosa (Linnaeus, 1758)

Tên tiếng Anh: Blood cockle

Hình 2.1 Sò huyết (Anadara granosa)

Màu sắc: Bên ngoài vỏ có màu trắng, phía dưới lớp sừng có màu vàng nâu nhạt Mặt trong vỏ có màu trắng sứ và thường nhuốm vàng ở khoang của mấu lồi

Sò huyết Anadara granosa có vỏ rắn chắc, gồ lên và có dạng hình

trứng Mặt ngoài có gờ phóng xạ phát triển, số lượng từ 18- 20 gờ, trên các đường gân có những hạt chấm nhỏ Mép vỏ có nhiều mương sâu tương ứng với số gờ phóng xạ của mặt ngoài vỏ Mặt khớp thẳng có nhiều răng nhỏ, vết

cơ khép vỏ sau lớn hình tứ giác, vết cơ khép vỏ trước nhỏ hơn và có hình tam giác (Nguyễn Chính, 1996)

Trong máu loài này có huyết sắc tố (màu đỏ), vì vậy gọi là sò huyết

2.1.2 Phân bố và môi trường sống

Sò huyết phân bố ở vùng Ấn Độ-Thái Bình Dương từ đông châu Phi đến Úc bao gồm: Trung Quốc, Thái Lan, Ấn Độ, Malaysia, Úc, Nhật Bản, Ở nước ta, Sò Huyết phân bố dọc ven biển nhưng tập trung ở Quảng Ninh, Hải Phòng, Trà Vinh, Sóc Trăng, Cà Mau, Bến Tre, Kiên Giang, Cà Mau, (Hoàng Thị Bích Đào, 2003) Trong đó Bến Tre, Kiên Giang là hai tỉnh có phong trào nuôi sò mạnh nhất cả nước Năng suất bình quân đạt 60-70 tấn/ha

Sò huyết phân bố tự nhiên ở các bãi triều nông đến độ sâu 4m với thời gian phơi bãi từ 6-10 giờ/ngày đêm, có nền đáy là bùn mịn hoặc bùn cát giàu chất hữu cơ, độ mặn thích hợp từ 20-25‰ Nơi thích hợp nhất cho sò là tuyến triều thấp Chúng sống theo kiểu vùi mình trong bùn cát, sò non sống ở mặt bùn, sò lớn sống sâu dưới bùn từ 1-3 cm

Sò huyết có thể tồn tại ở rừng ngập mặn, là đối tượng ăn lọc có giá trị kinh tế cao và giàu dinh dưỡng được chú trọng trong rừng ngập mặn (Nguyễn Chính, 1996)

Khi nồng độ muối giảm thấp dưới 10‰ nhất là trong mùa lũ, sò sẽ vùi sâu xuống bùn Nếu thời gian ngắn nồng độ muối trở lại thích hợp thì sò chui lên tiếp tục sống bình thường, nếu nồng độ muối thấp kéo dài có thể làm sò chết

Solomon et al (2007) đã nhận định tương tác của các yếu tố nhiệt độ,

độ mặn cao và thời gian phơi bãi kéo dài làm ảnh hưởng đến sự phân bố của sinh vật bãi triều

2.1.3 Sinh trưởng

Quá trình phát triển của sò huyết trải qua các giai đoạn ấu trùng tự do trong nước Chotrophore (ấu trùng bánh xe) và Verlige (ấu trùng chữ D) Khi chuyển sang ấu trùng Umbo (ấu trùng đỉnh vỏ) thì chúng bắt đầu sống bám Sò

ở vùng hạ triều vùi mình trong đáy lâu hơn, thời gian ăn dài hơn nên sinh trưởng nhanh hơn vùng trung triều Cơ thể nhỏ tỉ lệ tăng trưởng nhanh Sò 1 tuổi bình quân chiều dài là 2cm, 2 tuổi là 2,8 cm, 3 tuổi là 3,2 cm đạt kích cở thương phẩm Sò lớn nhanh vào 2 năm đầu, sang năm thứ 3 thì chậm dần (Ngô Trọng Lư, 2004)

Nghiên cứu của Gilbert (1973) cho thấy nhiệt độ ảnh hưởng đến hoạt động sinh lý và chi phối sinh trưởng đến nhóm Bivalvia, kích thước tối đa và sinh trưởng giảm, tuổi thọ tăng khi đi từ vĩ độ thấp đến vĩ độ cao Nhiệt độ càng thấp thì mùa sinh trưởng càng ngắn, vùng nhiệt độ càng thấp thì chúng càng tiêu tốn nhiều năng lượng cho quá trình hô hấp hơn là năng lượng cho sinh trưởng

Một nghiên cứu khác của MacDonald và Thomson (1988) cho thấy quần thể sống ở vùng nước sâu có kích cỡ nhỏ hơn vùng nước nông trong cùng thời gian sinh trưởng

Tốc độ sinh trưởng và tỷ lệ sống của sò huyết nuôi ở bãi triều (lớp bùn 35-45cm) cao hơn so với nuôi ở hình thức ao (lớp bùn 30-40cm) (Nguyễn Khắc Lâm, 2003)

Thời gian phơi bãi kéo dài và mật độ thức ăn thấp là những yếu tố ảnh hưởng xấu đên sinh trưởng của động vật thân mềm (Tomanek và Sanford,

2003 trích dẫn bởi Ngô Thị Thu Thảo, 2012)

2.1.4 Dinh dưỡng

Nhiều loại tảo được sử dụng trong sản xuất giống và ương ấu trùng

động vật hai mảnh vỏ như Chaetoceros gracilis, Tetraselmis suecica,

Thalassiosira pseudonana, Nannochloropsis sp (Coutteau và Sorgeloos, 1992

dẫn bởi Lý Bích Thủy, 2013)

Theo Purchon (1977) cho rằng thức ăn giai đoạn ấu trùng của nhóm Bivalvia là vi khuẩn, tảo khuê, mùn bã hữu cơ và nguyên sinh động vật có kích thước nhỏ khoảng 10μm hoặc nhỏ hơn

Ngô Thị Thu Thảo (2012) cho biết sò huyết bắt mồi thụ động bằng cách tạo dòng nước qua mang Thức ăn chủ yếu của sò là mùn bã hữu cơ chiếm 93% và tảo 7% (trong đó tảo khuê chiếm khoảng 92%) (Nguyễn Ngọc Lâm và Đoàn Như Hải, 1998 trích dẫn bởi Trương Quốc Phú, 1999)

Nghiên cứu của Lê Trung Kỳ và ctv (2005), xác định thức ăn thích hợp cho giai đoạn sống nổi của sò huyết là Nanochloropsis sp (mật độ cho ăn phù

hợp là 3.000 tb/ml) Còn đối với giai đoạn sống đáy hỗn hợp tảo đơn bào

Nanochloropsis oculata, Chaetoceros sp và Isochrysis sp (mật độ 10.000

tb/ml) là thức ăn thích hợp nhất của sò Theo Nguyễn Trọng Lư (2004) sò 2 tuổi thức ăn phần lớn là tảo khuê sống đáy

Ngô Thị Thu Thảo và Trương Trọng Nghĩa (2001), đã tiến hành thử nghiệm ảnh hưởng của các nồng độ muối khác nhau đến tốc độ lọc thức ăn, sự sinh trưởng, tỷ lệ sống và khả năng chịu đựng stress của sò huyết Kết quả cho thấy, tốc độ lọc thức ăn của sò huyết phụ thuộc vào nồng độ muối Sò huyết nuôi ở nồng độ muối 15‰ có tỷ lệ lọc tảo nhanh hơn so với 10‰ và 5‰ Tăng trưởng và tỷ lệ sống của sò nuôi ở 15‰ cũng cao hơn và khác biệt có ý nghĩa thống kê so với 2 nồng độ muối còn lại

Theo Khalil (1996) được trích dẫn bởi Lý Bích Thủy (2013) cho rằng

tốc độ lọc của sò Tapes decussates tăng khi mật độ tảo cho ăn tăng Dương Thị Hoàng Oanh và ctv (2013), kết luận tốc độ lọc và tỷ lệ cho ăn của sò

Anadara granosa phụ thuộc vào điều kiện môi trường, hàm lượng thức ăn và

loại thức ăn Tốc độ lọc của sò cao nhất khi sử dụng tảo Tetraselmis làm thức

ăn, đồng thời khi nhiệt độ tăng, mật độ tảo tăng thì tốc độ lọc của sò cũng tăng lên

2.1.5 Đặc điểm sinh sản

Tuyến sinh dục của Bivalvia thường phân tính, cũng có một số trường hợp lưỡng tính Khi thành thục sinh dục chúng đẻ trứng và tinh trùng vào môi trường nước, sự thụ tinh xảy ra trong nước Sự sinh sản có thể xảy ra một hoặc nhiều lần, thời gian có thể ngắn hoặc dài (một ngày hoặc nhiều tuần) tùy theo loài, độ chín của tuyến sinh dục và điều kiện môi trường (Quayle và Newkirk, 1989)

Sò huyết là loài phân tính, đẻ trứng, thụ tinh ngoài và khó phân biệt đực cái bằng mắt thường Khi thành thục con đực tuyến sinh dục có màu vàng nhạt, con cái có màu đỏ hồng (Broom, 1985) Sau 1-2 năm tuổi, sò có thể thành thục sinh dục và tham gia vào quá trình sinh sản đầu tiên.

Theo Hoàng Thị Bích Đào (2001), tỷ lệ đực cái phụ thuộc vào kích cỡ

sò Sò <36 mm thì tỷ lệ con đực nhỏ hơn con cái, sò >36 mm tỷ lệ con cái nhỏ hơn con đực Đối với sò >45mm thì tỉ lệ con cái chiếm ưu thế Kích thước sinh sản lần đầu là 15-20mm Sò có khả năng sinh sản quanh năm nhưng tập trung vào tháng 3-4 và tháng 8-9 Sức sinh sản tuyệt đối của mội cá thể là 800x103trứng/gam, sức sinh sản tương đối 35,9x103 trứng/gam (cả vỏ) hoặc 164x103(phần mềm) Trứng được thụ tinh trong môi trường nước (Dẫn bởi Lê Trung

Kỳ, 2005)

2.2 Tình hình nuôi và nghiên cứu sò huyết

Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn Ban hành Quyết định Phê duyệt Quy hoạch phát triển nghề nuôi đối tượng hai mảnh vỏ hàng hóa tập trung đến năm 2020 Trong đó, diện tích nuôi sò năm 2015 là 12.160 ha, sản lượng 63.320 tấn, kim ngạch xuất khẩu 73,95 triệu USD và đến năm 2020, diện tích nuôi sò 15.100 ha, sản lượng 102.688 tấn, kim ngạch xuất khẩu 154,02 triệu USD

Năm 1983, Broom nghiên cứu về sự phát triển tuyến sinh dục và sự sinh sản của sò huyết, đã kết luận rằng tuyến sinh dục của sò huyết không phát triển cho đến khi sò đạt chiều dài 17,5 mm và sự sinh sản đầu tiên xảy ra khi

sò đạt chiều dài 24-25mm

Nghiên cứu công nghệ sản xuất giống sò huyết đã thu được 2,7 triệu sò giống cỡ 4,47 mm (tương ứng tỷ lệ sống 1,88 %) với tổng lượng ấu trùng hình chữ D là 115,2 triệu Tỷ lệ sống và tốc độ tăng trưởng trung bình của ấu trùng chữ D – hậu ấu trùng đỉnh vỏ là 77,17 % và 3,12 %/ngày ở độ mặn 25‰ với

thức ăn là tảo Nanochloropsis sp Giai đoạn từ hậu ấu trùng đỉnh vỏ - sò

giống (90 ngày tuổi kể từ khi xuỗng đáy) khi ương ở độ mặn 20 ‰ và thức ăn

hỗn hợp gồm tảo Nanochloropsis sp., Chaetoceros sp., Isochrysis sp và

Platymonas sp cho tỷ lệ sống và tăng trưởng trung bình là 1,88 % và 3,78

%/ngày (Theo La Xuân Thảo và ctv, 2003 dẫn bởi Huỳnh Hàn Châu, 2009)

Nghiên cứu nuôi thử nghiệm sò huyết theo hai hình thức nuôi ao đất và bãi triều tại Đầm Nại (Ninh Thuận) cho thấy, hình thức nuôi ở bãi triều cho hiệu quả cao hơn so với nuôi ao (Nguyễn Khắc Lâm, 2003) Trọng lượng sò khi thu hoạch ở bãi triều 12,5 g/con, tỷ lệ sống 95% và năng suất đạt 3500 kg/ha Đối với nuôi ao, trọng lượng sò 10 g/con, tỷ lệ sống 75 % và năng suất

1300 kg/ha

Tạ Văn Phương và Trương Quốc Phú (2006) xác định khả năng thích ứng của Sò Huyết trong ao nước tĩnh (kết hợp với tôm quảng canh) so với điều kiện nước chảy (nuôi ở kênh) cho kết quả không có sự khác biệt về tăng trưởng và chiều dài của sò sau 6 tháng nuôi Tuy nhiên, mô hình nuôi kết hợp

sò – tôm góp phần làm tăng thu nhập hơn 22 triệu đồng/ha/năm và có khả năng làm sạch môi trường, hấp thu vật chất hữu cơ lớn 198 kg/ha/năm

Ngô Thị Thu Thảo và ctv (2011) đã thử nghiệm nuôi kết hợp các mật

độ ốc len khác nhau với sò huyết trong rừng ngập mặn huyện Ngọc Hiển, tỉnh

Cà Mau Kết quả nghiên cứu cho thấy mô hình nuôi kết hợp sò huyết (10 con/m2) và ốc len (20 con/m2) trong rừng ngập mặn cho năng suất và hiệu quả kinh tế cao hơn so với mô hình nuôi kết hợp ở các mật độ ốc len khác, lợi nhuận đạt cao nhất (21,79 triệu đồng/ha/vụ)

2.3 Sử dụng chế phẩm sinh học (Probiotics) trong nuôi trồng thủy sản

Từ chế phẩm sinh học (probiotics) có nguồn gốc từ tiếng Hy Lạp bao gồm hai từ “pro” có nghĩa là thân thiện và “biosis” có nghĩa là sự sống Thay cho việc tiêu diệt các bào tử vi khuẩn, chế phẩm sinh học được sản xuất với mục đích kích thích sự gia tăng các loài vi khuẩn có lợi trong ao Chế phẩm sinh học lần đầu tiên được Fuller (1989) định nghĩa như sau: thành phần thức

ăn có cấu tạo từ những vi khuẩn sống và có tác động hữu ích lên vật chủ qua việc làm cải thiện sự cân bằng vi khuẩn đường ruột của nó Sự nuôi dưỡng các

vi sinh vật hoàn toàn tự nhiên và có tác động tích cực khi được đưa vào điều kiện ao nuôi

Trên thế giới đã có khá nhiều các nghiên cứu về việc sử dụng Probiotics trong nuôi thủy sản Như Maeda và Liao (1992) đã kết luận hiệu

quả của giống vi khuẩn tách từ bùn trong bể nuôi ấu trùng tôm sú P monodon

Tỉ lệ lột xác và sống sót của ấu trùng cao hơn trong các lô thí nghiệm so với đối chứng Tại khu vực Châu Á, đã có những báo cáo cho thấy người nuôi tôm

sú ở Philippines sử dụng vi khuẩn và men sản xuất như là các hợp chất hữu cơ

(Primavera và ctv, 1993) Các chủng vi khuẩn sống và các sản phẩm lên men

giàu các men ngoại bào đã được sử dụng trong nuôi trồng thủy sản (Boyd & Massaut, 1999) Các lý do để sử dụng chế phẩm sinh học bao gồm sự ngăn ngừa mùi vị lạ, giảm thành phần tảo lục, tảo lam, giảm nitrate, nitrite, ammonia, và phosphate; tăng oxygen hoà tan và nâng cao khả năng phân huỷ chất hữu cơ (Boyd, 1995)

Moriarty (1998) và Rengpipat và ctv (1998) chỉ ra rằng chế phẩm sinh học có thể có hiệu quả ngăn chặn các loài vi khuẩn phát sáng Vibrio Cơ chế

can thiệp có thể là sự kết hợp của sự canh tranh giữa các vi khuẩn và các hợp

chất kháng sinh khác nhau do Bacillus spp tạo ra Nghiên cứu của Graslund et

al., (2003) cho thấy 86% người nuôi tôm ở Thái Lan sử dụng vi sinh vật hữu

ích để cải thiện chất lượng nước và bùn đáy ao nuôi Trong các trại nuôi tôm

thịt, Ziaei-Nejad et al (2006) cũng kết luận rằng hệ số chuyển hóa thức ăn, tốc

độ tăng trưởng tuyệt đối và năng suất nuôi trong ao có sử dụng hỗn hợp chế

phẩm vi sinh gồm 5 loại Bacillus (B subtillis, B licheniformis, B polymyxa,

B laterosporus và B circulans) cao hơn đối chứng

Theo một số công trình nghiên cứu gần đây, trong nuôi trồng thủy sản thì cơ chế hoạt động của Probiotics có thể chia theo các khía cạnh: (1) sản sinh

ra các hợp chất ức chế, (2) cạnh tranh về chất dinh dưỡng, năng lượng, chỗ cư trú với những vi khuẩn có hại, (3) tăng cường các phản ứng miễn dịch, (4) cải thiện chất lượng nước (Phạm Thị Tuyết Ngân, 2010)

Năm 2010, Lê Văn Nhiều đã nghiên cứu về hiệu quả của các loại chế

phẩm sinh học dùng trong nuôi tôm sú (Penaeus monodon) thâm canh Qua thí

nghiệm cho thấy, những nghiệm thức có bổ sung chế phẩm sinh học thì hàm lượng hữu cơ thấp hơn nghiệm thức không bổ sung chế phẩm sinh học và tỉ lệ sống của tôm sú ở nghiệm thức có bổ sung chế phẩm sinh học cao hơn nghiệm

thức đối chứng, nghiệm thức bổ sung vi khuẩn Bacillus là cao nhất

Nghiên cứu của Bùi Thị Thanh Tuyền (2010) về ảnh hưởng của chế

phẩm sinh học trong ương giống Ốc Hương (Balylonia areolata) Kết quả cho

thấy nghiệm thức có bổ sung chế phẩm sinh học thì tỉ lệ sống và tăng trưởng trọng lượng cao hơn nghiệm thức đối chứng

Ngoài ra các tác giả như Phạm Thị Tuyết Ngân và Nguyễn Hữu Hiệp (2011), khoa Thủy sản, trường Đại học Cần Thơ, đã phân lập và chọn lọc được

9 chủng vi khuẩn Bacillus từ ao nuôi tôm sú thâm canh ở tỉnh Sóc Trăng

Trong đó, một số chủng đã được thử nghiệm và đánh giá hiệu quả xử lý nước đạt kết quả cao trong qui mô phòng thí nghiệm (Phạm Thị Tuyết Ngân và Trương Quốc Phú, 2011)

Từ những nghiên cứu trên, việc sử dụng chế phẩm sinh học đã mang lại hiệu quả trong việc ương giống cũng như nuôi trồng thủy sản Trong những năm gần đây Bộ Thủy sản đã cho phép lưu hành sử dụng nhiều chế phẩm vi sinh, nhiều nơi đã làm quen với với việc sử dụng các chế phẩm vi sinh này và

có kết quả khá tốt Tuy nhiên cần có một sự đánh giá toàn diện về hiệu quả kinh tế và phương pháp sử dụng chế phẩm sinh học

2.4 Ứng dụng của glucose trong nuôi trồng thủy sản

Glucose là loại đường đơn 6 cacbon thường được hòa tan rồi truyền vào

cơ thể Glucose được hấp thu rất nhanh ở ruột, chuyển hóa thành carbon dioxide và nước đồng thời giải phóng năng lượng vì vậy nó được sử dụng như một nguồn năng lượng trong hầu hết các sinh vật, từ vi khuẩn đến con người nhằm duy trì sự sống và góp phần đáng kể vào tăng trưởng

Động vật hai mảnh vỏ là loài ăn lọc, cho nên chúng dễ dàng hấp thụ

glucose hòa tan Uchida và ctv (2010) đã nghiên cứu ảnh hưởng của việc bổ sung đường vào hệ thống ương nghêu Philippine (Ruditapes philippinarum)

Với việc bổ sung 3 loại đường khác nhau là Glucose, Maltopentaose và Pullalan vào hệ thống ương với hàm lượng 10 mg/L và 100 mg/L Kết quả cho thấy chỉ có glucose mới được hấp thụ và góp phần vào tăng trưởng của Nghêu Bước thứ 2 của thí nghiệm là Nghêu trưởng thành được ngâm trong hai môi trường nước khác nhau, một môi trường có bổ sung glucose với hàm lượng 100mg/L và môi trường còn lại không bổ sung glucose Sau 24 giờ ngâm cho thấy, nghêu được ngâm trong môi trường có bổ sung glucose có hàm lượng axit hữu cơ tổng cộng tăng gấp 1,5 lần so với đối chứng (Dẫn bởi Nguyễn Thị Ly Pha, 2010)

Racher et al., (1989) nhận định rằng glucose khi được hấp thụ vào cơ

thể của động vật thân mềm sẽ chuyển hóa thành pyruvate thông qua con đường glycolysis, sau đó chuyển thành axit hữu cơ như citrate, succinate, malate thông qua chu trình acid citric (dẫn bởi Nguyễn Kiều Diễm, 2011)

Năm 2011, Nguyễn Thị Ly Pha đã thử nghiệm nuôi nghêu Meretrix

lyrata giai đoạn giống với các hàm lượng glucose khác nhau: 0, 35, 70 mg/L

Tỷ lệ sống và sinh trưởng của nghêu đạt cao nhất ở nghiệm thức bổ sung chế phẩm sinh học và kết hợp với glucose 70 mg/L Các nghiệm thức có bổ sung glucose và chế phẩm sinh học cho kết quả tốt hơn Việc sử dụng chế phẩm sinh học và glucose đã góp phần tích cực trong cải thiện môi trường bể ương cũng như hiệu quả trong ương nghêu giống

Bên cạnh đó, Nguyễn Kiều Diễm (2011) cũng đã thử nghiệm nghiên

cứu trên hàu (Crassostrea iredalei) giai đoạn ấu trùng và giai đoạn giống Kết

quả chứng minh rằng việc bổ sung glucose và chế phẩm sinh học với liều lượng 50μg/L và 0,5 mg/L giúp ấu trùng hàu biến thái nhanh hơn, tỷ lệ sống cao hơn Ở giai đoạn giống, thì việc kết hợp DHA và glucose trong khẩu phần thức ăn của hàu có chỉ số độ béo cao hơn và tăng trưởng nhanh hơn

Lê Thị Thu Anh (2012) đánh giá tác dụng của glucose đến tỷ lệ sống của nghêu và sò huyết giai đoạn giống trong quá trình vận chuyển và những ngày đầu sau khi thả nuôi Thí nghiệm 1 trên đối tượng nghêu đã kết luận, sau

4 ngày vận chuyển tỷ lệ sống cao nhất ở nghiệm thức nước biển 25‰ + glucose 50 mg/L là 86,7% (nghêu kích thước lớn) Sau 21 ngày nuôi, tỷ lệ sống của nghêu đều đạt cao nhất ở nghiệm thức nước biển 25‰ + glucose 75 mg/L Ở thí nghiệm 2 thực hiện trên sò huyết đã cho kết quả, trong quá trình vận chuyển, sò huyết giống đạt tỷ lệ sống cao nhất khi tưới nước biển 15‰ + glucose 100 mg/L ở sò nhỏ (91,6%) và 50 mg/L ở sò lớn (36,1%) Sau 21 ngày nuôi sò nhỏ có tỷ lệ sống cao nhất ở nghiệm thức tưới nước biển 15‰ kết hợp glucose 75 mg/L (80,6%) Kết quả cho thấy tưới nước biển kết hợp với glucose thì nghêu và sò huyết có tỷ lệ sống cao

Mã Linh Tâm và Ngô Thị Thu Thảo (2013) đã đánh giá ảnh hưởng của việc bổ sung trực tiếp chế phẩm sinh học và glucose vào trong môi trường

nuôi Artemia franciscana dòng Vĩnh Châu Kết quả cho thấy, tỉ lệ sống của

Artemia đạt cao nhất (61%) ở nghiệm thức chỉ bổ sung glucose Chiều dài

Artemia lớn nhất (7,47 mm) trong nghiệm thức bổ sung Bacillus subtillis kết

hợp với glucose Tỉ lệ bắt cặp của Artemia cũng cao nhất (43%) ở nghiệm

thức này Bổ sung Bacillus subtillis cùng với glucose đã làm tăng sức sinh sản

của Artemia (48 phôi)

Tác dụng của bổ sung glucose là có thể dễ dàng thay đổi hàm lượng axit hữu cơ tổng cộng trong mô và tạo ra năng lượng góp phần vào tăng trưởng của sinh vật Vì vậy ứng dụng glucose vào nuôi trồng thủy sản nói chung và nghề nuôi nhuyễn thể nói riêng là có hiệu quả

Gần đây có một số nghiên cứu về β-glucan (beta-glucan) mà bản chất là D-glucose trong thành phần cấu tạo đạt được một số thành tựu β-glucan được

ứng dụng như là chất bổ sung sinh học nhờ vào khả năng kích thích hệ thống kháng thể, tăng cường hoạt động của các đại thực bào và kích thích tăng tiết nhiều chất hoạt hóa tế bào giúp tiêu diệt các mầm bệnh xâm nhập từ bên ngoài, giảm hệ số chuyển đổi thức ăn, kích thích tiêu hóa, phòng các bệnh đường ruột, nhiễm trùng do vi khuẩn, vi rút ở người và ngay cả ở động vật

Một nghiên cứu đã đánh giá hiệu quả của việc sử dụng các chất chống lại virus đốm trắng được thêm vào khẩu phần ăn của tôm he chân trắng

Litopenaeus vannamei Kết quả cho thấy thời gian chết trung bình của nhóm

đối chứng có sự khác biệt ý nghĩa về mặt thống kê (P<0,05) khi so sánh thời gian chết trung bình của nhóm tôm cho ăn β-glucan β-glucan giúp cho tôm kéo dài tuổi thọ lâu hơn 50% so với nhóm đối chứng Nghiên cứu này chỉ ra tiềm năng sử dụng β-glucan để kiểm soát bệnh đốm trắng

Huỳnh Trường Giang và ctv (2011) kết luận rằng, β-glucan (hợp chất

có chứa glucose được chiết xuất từ rong biển) có tác dụng tăng cường sức đề

kháng của tôm đối với vi khuẩn gây bệnh thuộc nhóm Vibrio và ngay cả với

virus đốm trắng trên một số loài tôm biển Điều này đã góp phần đáng kể vào khả năng chống lại bệnh, tăng trưởng và nâng cao tỷ lệ sống của tôm mà phương pháp hiệu quả nhất là cho đối tượng thủy sản ngâm trong môi trường

có β-glucan hòa tan