Các giai đoạn trong quy trình nhân giống vô tính in vitro Giai đoạn 1: Chuẩn bị cây làm vật liệu gốc Giai đoạn 2: Tạo thể nhân giống invitro Giai đoạn 3: nhân giống invitro Giai đoạn
Trang 1Chương 4 Các phương pháp nhân giống thực
vật bằng NCMTB
Tạ Ngọc Ly
Trang 3Các giai đoạn trong quy trình nhân giống vô
tính in vitro
Giai đoạn 1: Chuẩn bị cây làm vật liệu gốc
Giai đoạn 2: Tạo thể nhân giống invitro
Giai đoạn 3: nhân giống invitro
Giai đoạn 4: Tái sinh cây hoàn chỉnh
Giai đoạn 5: Chuyển cây ra đất trồng
Trang 54.1 Nuôi cấy đỉnh sinh trưởng
Trang 6Quá trình sinh trưởng của cơ quan
hình thành mầm cơ quan và sự phân chia đầu tiên của nó thành các mô riêng biệt.
nhanh chóng, mầm cơ quan đạt đến kích thước tối đa và trở nên có hình dạng nhất định.
đầu sự hoá gỗ các thành tế bào, xuất hiện ở trên đó những chỗ dầy lên có cấu tạo và kết quả là không còn khả năng tiếp tục sinh trưởng.
Trang 7Nuôi cấy đỉnh sinh trưởng
3 khả năng về nguồn gốc cây :
sinh trưởng
chồi bên
chồi từ mô sẹo hoặc từ phôi
Trang 8
Các phương thức phát triển cây hoàn chỉnh từ đỉnh
sinh trưởng nuôi cấy
mầm)
Trang 9Mục đích nuôi cấy đỉnh sinh trưởng
Trang 10Nuôi cấy chồi ngọn
- Giai đoạn khử trùng mẫu cấy
- Giai đoạn nhân nhanh
- Giai đoạn tạo rễ in vitro
- Giai đoạn thuần hóa cây in vitro ở vườn ươm
Trang 12Nuôi cấy tạo chồi bất định từ các cơ quan khác nhau
Một số loại mẫu vật được dùng
như sau:
- Đoạn thân: thuốc lá, cam,
chanh, cà chua, bắp cải…
- Mảnh lá: thuốc lá, cà chua, bắp
cải, cà phê, ca cao…
- Cuống lá: thủy tiên…
- Các bộ phận của hoa: súp lơ,
Trang 13Các yếu tố ảnh hưởng sự tạo chồi
Trang 14Qui trình nhân giống invitro
Trang 151 Đối với các cây có chồi ngọn dài 2 Đối với các cây có chồi ngọn điểm hoa thị
Trang 17Nuôi cấy đỉnh sinh trưởng làm sạch virus
~0.5 mm
Trang 186
7
~0.5 mm
Trang 21Các phương pháp chuẩn đoán bệnh virus
Trang 22Qui trình nuôi cấy ĐST tạo cây sạch bệnh
Trang 23
khởi đầu, nguồn gốc và kích thước của mẫu
Trang 24Các phương pháp kết hợp để tăng hiệu quả diệt virus
Qui trình vi ghép?
Trang 254.2 Nhân giống thông qua giai đoạn mô sẹo
Mô sẹo (A) và tái sinh chồi từ mô sẹo (B) của chi Lilium
- Giai đoạn phát sinh mô sẹo
-Giai đoạn phân chia tế bào
-Giai đoạn biệt hoá
- Loại tế bào xốp, có không bào to, nhân to và tế bào chất loãng Loại tế
bào này rất khó tái sinh thành cơ quan.
- Loại tế bào chặt, có không bào nhỏ, nhân to và tế bào chất đậm đặc
Loại tế bào này dễ tái sinh thành cơ quan
Sự phát sinh mô sẹo
Trang 26Sự tạo thành mô sẹo
Trang 27Sự hình thành chồi từ mô sẹo
- Các chất sinh trưởng đưa vào môi trường.
- Chất được sản sinh ra trong nuôi cấy mô sẹo.
Trang 28# Auxins : 0.01 - 10 mg / L
hoạt tính IAA
IBA NAA 2,4 - D 2,4,6 - T Dicamba Picloram
2 - ip Zeatin
Trang 29
ảnh hưởng của auxin lên sự tạo mô sẹo
Trang 31Phát sinh cơ quan
Auxin/cytokinin 10:1-100:1 phát sinh rễ.
Auxin/cytokinin 1:10-1:100 phát sinh chồi
Auxin/cytokinin 1:1 phát sinh mô sẹo
Trang 32Ảnh hưởng kết hợp NAA và BA
Trang 33Ảnh hưởng kết hợp NAA và BAP
Trang 341.Shoot tip in the medium 2.Shoot callus
3.Growth of stem
4.Root initiation
5.Hardening
6.Whole plant
Trang 354.3 Kỹ thuật nhân giống qua tái sinh phôi soma
Trang 36Phôi soma
Phôi soma là các cá thể nhân giống có cực
tính bắt nguồn từ các tế bào soma
3 nguồn phát sinh phôi soma:
+ tế bào sinh dưỡng của cây trưởng thành
+ mô tái sinh không phải là hợp tử
+ lá mầm và trụ dưới lá mầm của phôi và cây con
Con đường phát sinh phôi soma
+ Phát sinh trực tiếp không qua giai đoạn mô sẹo
+ Phát sinh từ tế các tế bào phôi hóa cảm ứng trong mô sẹo
Trang 37Phát sinh phôi trực tiếp
Trang 39Phát sinh phôi gián tiếp
Trang 41 Đặc điểm tế bào hình thành phôi
Trang 42 Các giai đoạn phát triển của phôi vô tính
Hình cầu (Globular)
Trái tim (Heart)
Thủy lôi (Torpedo)
Lá mầm (Cotyledonary)
Hạt giống (Germination)
Các giai đoạn hình thành phôi vô tính
Gđ 1: Cảm ứng biệt hóa của tế bào tiền phôi
Gđ 2:Biểu hiện trình tự phát triển ở các tế bào tiền phôi
Trang 43Các giai đoạn phát triển của phôi
Trang 44Soybean – Wayne Parrot, UGA
Trang 45Các nhân tố ảnh hưởng đến phát sinh phôi vô tính
Các chất điều hoà sinh trưởng:
Auxin (2,4D, IBA, picloram) là một trong những yếu tố cần thiết
để cảm ứng sự phát sinh phôi nhưng lại là yếu tố có thể ức chế
sự hình thành và phát triển phôi ở giai đoạn hai và các giai đoạn tiếp theo
Cytokinin: Sự kết hợp giữa auxin và cytokinin ảnh hưởng đến sự sinh cơ quan phôi
Sự tăng trưởng của phôi bị ức chế do sự hiện diện của auxin trong môi
trường, do có sự liên quan tới sự tổng hợp ethylen
Trang 46 - Sự gia tăng sinh tổng hợp các polyamine và loại bỏ auxin
là cần thiết cho sự hình thành phôi.
chất giữa quá trình sinh tổng hợp ethylen và polyamine
Trang 47 Ảnh hưởng của pH đến sự phát sinh phôi soma
- sự phát triển của phôi soma ở những giai đoạn khác nhau thường làm biến đổi pH của môi trường
- Những phôi soma hình thành ở những pH thấp (pH 3,8) thường cho tỉ lệ nảy mầm thành cây con thấp
phát sinh hình thái
Trang 48 Nguồn nitơ: Các nitrogen hữu cơ cũng là yếu tố thúc đẩy quá
trình sinh phôi
Nito dạng khử (amon) kết hợp axit hữu cơ (a malic, a xitric)
Hàm lượng đường cao cần thiết cho sự tái sinh phôi soma
Các điều kiện nuôi cấy phôi soma
Ánh sáng :
- Giai đoạn phôi non được nuôi cấy trong tối
- Khi tái sinh phôi: cần ánh sáng
Trang 50 Mô sẹo
Trang 51Kỹ thuật nuôi cấy phôi
- ngâm nguyên liệu vào trong dung dịch khử trùng thương mại có hypochlorite (Clorox 5-10%, sodium hoặc calcium hypochlorite 0,45%) trong 5-10 phút hoặc cồn (70-75%)
trong 5 phút
- bổ sung nồng độ thấp của các chất hoạt dịch (surfactant) như Tween 20, Tween 80, Teepol, hoặc Mannoxol làm tăng tính thấm của mô Đối với hạt ngô, và các phôi tách rời:
ngâm trong cồn 70% cộng với 5-10 phút khử trùng bằng sodium hypochlorite 2,6%.
Trang 52Những đặc tính cơ bản của cây từ phôi soma
nông học khác Phôi soma bảo tồn mọi đặc tính ưu thế lai của cây mẹ nếu mẹ có ưu thế lai cao
nhiễm phải
Trang 54Hạt nhân tạo
- Là phôi vô tính bọc trong một lớp vỏ polymer, trong cấu
trúc lưới của lớp vỏ đó, nước, chất dinh dưỡng và chất sinh trưởng được cung cấp thay cho nội nhũ.
Hạt nhân tạo gồm có ba phần:
- Phôi vô tính
- Vỏ bọc polymer tự nhiên được chiết xuất từ
cỏ biển (agar, alginate) hoặc cây trồng
(arabic), nhựa từ hạt (tamarind) hoặc từ vi
sinh vật (dextran)
- Màng ngoài (calcium alginate)
Trang 55Cấu tạo của hạt nhân tạo
Trang 58Tạo phôi vô tính
Mô thực vật được nuôi cấy trên môi trường bổ sung 2,4-D từ 30 –
40 µ M để tạo mô sẹo.
Sự tăng sinh mô sẹo được cấy chuyền và thực hiện nuôi cấy trên môi trường có bổ sung 10 µM 2,4-D và 1µM BA, hay môi trường lỏng có 5µM 2,4-D.
Phôi được sản sinh ra được phát triển thành phôi trưởng thành
thông việc cấy chuyền những khối tế bào mô sẹo lớn từ môi trường
có 2,4-D sang lắc môi trường lỏng không có 2,4-D
Trang 59Bao hạt
nhiên từ rong biển (agar, caragreenan, alginate), cây trồng, chất gôm (chất dính) của hạt hoặc sinh khối vi sinh như
dextran, gellan gum Alginate được sử dụng nhiều nhất
-Na- alginate được làm tan trong nước với nồng độ 2-4 %,
- Dùng pipet nhỏ giọt vào dung dịch CaCl2 (2,5%)
Trang 60 [(C 5 H 7 O 4 COO) 2 Ca] n + nNa 2 CO 3 2[C 5 H 7 O 4 COONa] n + nCaCO 3
Alginat Ca Alginat Na
Alginat Na là dạng tan trong nước
2[C 5 H 7 O 4 COONa] n + nCaCl 2 [(C 5 H 7 O 4 COO) 2 Ca] n + 2nNaCl
Alginat Na Alginat Ca
Alginat Ca kết tủa, trở thành dạng không tan, tạo thành màng không thấm nước
Trang 61Hỗn hợp alginat Na 4 % và môi trường MS
Chuyển phôi vào giọt nhiểu
Tạo màng bao alginat Ca trong 20 phút
Ngâm nước và thu hạt nhân tạo
Hoà tan 100 ml Alginat Na 4% vào 1 lít môi trường MS có chứa các muôi
khoáng, đường, vitamin, các chất sinh trưởng Tiến hành nhỏ từng giọt nhẹ
nhàng hỗn hợp này vào một cốc dung dịch CaCl2 2,5% hay CaNO3 100mM Mỗi lần nhỏ dùng một ống hút chuyển vào trong gịot đó một phôi soma
Trang 63 Bảo quản hạt nhân tạo
- Hạt nhân tạo sau khi tạo thành được làm khô, bảo quản trong
- Thời gian bảo quản thường chỉ trong vòng 2 đến 4 tháng
Trang 64A) Proembryogenic mass with somatic embryos in different development
stages (bar = 2 mm); B) zygotic embryos of Nothofagus alpina; C) encapsulate
of somatic embryo through micropipette with sodium alginate; D) artificial
seeds rinsed with sterile water for 40 min; E) survival of somatic embryo
encapsulated after 21 d; F) elongation of somatic embryo encapsulated in
sodium alginate at 4%; G) germination of zygotic embryo encapsulated in
sodium alginate at 4% after 5 d; H) conversion of encapsulated zygotic embryo
to plant after 14 d.
Trang 65Encapsulated somatic embryo (B) initial stage of seed
germination (C) germinated seed
of loda variety (D) germinated seed of china variety (E) plant obtained from synthetic seed and (F) callus was observed from
somatic embryo in seed bead
Trang 66Các phương thức tạo hoàn chỉnh in vitro
Trang 67Callus induction, plantlet regeneration and the artificial seed conversion of Pogonatherum paniceum
(A) Calli induced from mature seeds (bar = 1 cm) (B) Shoots regenerated from the calli on
regeneration medium (bar = 1 cm) (C) Tuft of multiple shoot buds from a piece of callus
(bar = 1 cm) (D) The surviving plants after transplantation (bar = 1 cm) (E) The shoot buds rooted
on MS basal medium (bar = 1 cm) (F) Calli sub-cultured for 2 years (bar = 1 cm) (G) Shoots
regenerated from the callus sub-cultured for 2 years (bar = 1 cm) (H) Calcium alginate capsule
formed by the encapsulation of shoot buds using 3% sodium alginate and 1% activated carbon
(bar = 1 cm) (I) Germination of artificial seed and recovery of complete plantlet (bar = 1 cm) (J) A healthy plant in pot containing fertile soil and vermiculite (2:1) (bar = 1 cm).
Trang 68Ưu điểm của phương pháp nhân giống phôi vô tính
lưu giữ dài hạn
giống quy mô lớn, đặc biệt là nhân giống bằng bioreactor (Takayama and Akita , 1994)
trong nhân nhanh hàng loạt cây trồng, ví dụ: nhân giống xoan ấn Độ (Azadirachta indica A Jus.) (Murthy and
Saxena, 1998), thông (Garin cs.,1998), đu đủ (Jordan and Velozo, 1996; Castllo cs, 1998), loa kèn (Tribulato cs.1997)
Trang 69Quy trình nuôi cấy mô
Trang 70Quy trình nhân giống vô tính in vitro được thực hiện theo ba
(hoặc bốn) giai đoạn :
1 Giai đoạn I – cấy gây:
Yêu cầu của mẫu: - tỉ lệ nhiễm thấp
- tỉ lệ sống cao
- tốc độ sinh trưởng nhanh
2 Giai đoạn II – nhân nhanh
Những khả năng tạo cây:
- Phát triển chồi nách
- Tạo phôi vô tính
- Tạo đỉnh sinh trưởng mới
3 Giai đoạn III – chuẩn bị và đưa ra ngoài đất
- Tạo rễ
- Huấn luyện thích nghi với môi trường
- Chuyển từ dị dưỡng sang tự dưỡng
Trang 72www.themegallery.com
Trang 73Sự phát triển trên cấu
trúc có sẵn trước đó Phát sinh cơ quan dựa trên
tính toàn thế
Chồi ngủ Chồi bất định
Trang 74Quả in vitro Hoa nở in vitro
Trang 75Sự phát triển của quả Sự phát sinh rễ
Trang 76Vi ghép in vitro Sự phát triển của thể giả
hành
Trang 77Phát sinh chồi
Trang 78Các vấn đề liên quan đến nhân giống invitro
trưởng đến nhân giống in vitro
Trang 79chọn mẫu: các nhân tố khi chọn mẫu bao gồm kiểu gen, cơ
quan được chọn, tuổi sinh lý, mùa vụ, giai đoạn sinh trưởng,
độ khỏe của mẫu và nguồn mẫu.
Trang 81Ảnh hưởng của môi trường.
Trang 82Tính bất định về mặt di truyền
+ kiểu di truyền
+ thể bội : cây đa bội thể tần số biến dị cao hơn cây nhị bội
+ số lần cấy truyền: số lần cấy truyền càng cao thì tần số biến
dị càng lớn
+ loại mô
Trang 83Sự hoại mẫu đưa vào nuôi cấy
-Sử dụng thuốc kháng sinh
Trang 84Việc sản xuất các chất gây độc từ mẫu cấy
-tách các phần tử phenol ra khỏi môi trường
bổ sung các chất khử redox (oxidation-redution) phenol vào môi trường
-ngăn chặn sự hoạt động của enzim phenolase
giảm lượng phenol có sẵn trong mẫu bằng môi trường lỏng giống môi trường rắn
-mẫu chuẩn bị có vết cắt nhỏ, để ngoài vài giờ trước khi cấy, hay nơi cấy trong môi trường không có ánh sáng
Trang 85+ sử dụng mẫu cấy nhỏ từ mô sẹo
+ gây vết thương trên mẫu nhỏ nhất khi khử trùng
+ ngâm mẫu vào dung dịch vitamin C và axit citric vài giờ
trước khi cấy
+ Nuôi cấy mẫu trong môi trường lỏng, O2 thấp không có đèn 1-2 tuần chuyển mẫu từ môi trường có nồng độ chất kích thích sinh trưởng thấp sang môi trường có nồng độ cao.
Trang 86Hiện tượng thủy tinh thể
Đặc điểm cây thủy tinh thể
Ngăn chặn quá trình thủy tinh thể
+ giảm sự hút nước bằng cách tăng nồng độ đường
+ giảm sự tăng hấp thụ nước bằng cách tăng nồng độ đường trong nuôi
cấy và dùng các chất có áp suất thẩm thấu cao, nhưng phương pháp này làm thay đối sự tổng hợp cấu trúc không gian của diệp lục và ức chế
hình thành chồi.
+ giảm gây vết thương trên mẫu qua chất khử trùng và tiếp xúc với môi
trường cấy ít nhất ABA ngăn chặn được sự hóa thủy tinh thể ở một số loài cây trồng.
+ giảm nồng độ đạm trong môi trường nuôi cấy
+chuyển cây in vitro thuần hóa ngoài vườn ươm không ảnh hưởng đến
cây bị thủy tinh thể.
+ giảm etylen trong bình nuôi cấy bằng cách thông khí tốt
+ tăng nồng độ ánh sáng và giảm nhiệt độ phòng cấy.
Trang 87Sự phát sinh cơ quan chồi và rễ
Trang 89Sự tạo rễ
Trang 90Ưu nhược điểm của vi nhân giống
Ưu điểm của vi nhân giống
Trang 91Hạn chế của vi nhân giống
được
Trang 92Phương pháp nhân giống quang tự dưỡng
không có đường, mà sự tăng trưởng hay tích lũy các
hydratcarbon tuỳ thuộc vào sự quang hợp và sự hấp thu khoáng vô cơ của thực vật được nuôi cấy
Trang 93Nhược điểm của các phương pháp nuôi cấy mô
truyền thống
- Hiệu suất quang hợp cây in vitro thấp Cây thiếu khả năng tự dưỡng Tỷ lệ
thoát hơi nước cao do lớp tế bào cutin mỏng cùng với hoạt động không bình thường của khí khổng.
- Tỷ lệ nhiễm nấm khuẩn cao
- Bình nuôi cấy thường quá nhỏ và kín
- Không khí bên trong bị bão hoà hơi nước.
- Chất điều hòa sinh trưởng thường xuyên được sử dụng.
- Xảy ra các hiện tượng bất thường về sinh lý chẳng hạn sự hóa thuỷ tinh thể
(vitrification) hoặc phát sinh hình thái dẫn đến chậm phát triển hoặc biến dị (soma variation) của cây cấy mô.
- Cây ra rễ không hoàn chỉnh Trong một số trường hợp còn có sự hình thành
mô sẹo ở gốc.
Trang 94Kiểm soát các điều kiện môi trường nuôi cấy
invitro
suốt chu kỳ ánh sáng.
+Các bình nuôi cấy có các nắp đậy có khả năng trao đổi khí
+bình nuôi cấy có diện tích lớn
thực vật khoảng 0,1 %
Trang 95 Kiểm soát chế độ chiếu sáng:
- Hướng chiếu sáng
Trang 96 Nhiệt độ không khí
Trang 97Ưu điểm của vi nhân giống quang tự dưỡng
nuôi cấy không có đường
giảm ở mức tối thiểu.
được nuôi cấy in vitro.
cấy lớn
Trang 99Qui trình ra cây
Trang 100Quy trình tái sinh cây nuôi cây
- Mở nút đậy bình bình nuôi cấy: 1 tuần
- Gắp cây khỏi giá thể
- Rửa sạch agar và dưỡng chất
- Để héo 1 -2 giờ
- Trồng vào khay ươm: 1 tháng
- Trồng vào bầu đất
Trang 101Tách cây khỏi bình nuôi cấy, rửa sạch agar và
dinh dưỡng
Trang 102Trồng
cây vào giá thể xốp,
giữa ẩm tốt
Trang 103Đặc điểm của giá thể ươm cây
- Tỉ lệ giá thể: Đất (70%) + Phân chuồng ủ hoai (10%) + tro trấu (20%)
Trang 104Điều kiện môi trường giâm cây
- Nhiệt độ 30 o C
- Ánh sáng:
+ Một tuần đầu: ½ ánh sáng tự nhiên (7000 lux)
+ Tuần thứ 2: 70% ánh sáng tự nhiên (10.000 – 12.000 lux) + Từ tuần thứ 3: 100% ánh sáng tự nhiên
- Độ ẩm:
+ Tuần đầu: phun sương ẩm 90%
+ Tuần 2: 70%
+ Từ tuần 3: 60%
Trang 105Điều kiện phân bón
- Tuần đầu không bón phân
- Từ tuần thứ 2: phun NPK tỉ lệ 30:10:10, với nồng độ 3g/lít, một tuần một lần
- Từ tuần thứ 4: Tăng nồng độ phân 5-10g/lít, 5 ngày phun một lần
Trang 106Hệ thống nhà thuần hoá tận dụng một phần ánh sáng tự nhiên, có khả năng giữ ẩm tốt
Trang 107Tấm che nilon nhằm mục đích giữ ẩm
Trang 110Hệ thống nhà lưới nhằm điều chỉnh ánh sáng tự nhiên
Trang 111Hệ thống nhà ươm
Trang 112Bét phun sương
Trang 113Hệ thống kệ bố trí khay ươm
Trang 114Hệ thống tưới sương tạo
ẩm 90%
Trang 115Tưới phun sương tạo
ẩm 70% sau 1 tuần
Trang 116Cây phát triển thuận lợi trên khay ươm sau một tháng
Trang 117Cây phát triển hoàn chỉnh trên chậu ươm, có thể chuyển ra trồng bầu đất
Trang 118Nhà
thuần
hoá đơn giản,
dùng lưới nilon
Trang 119Quy trình thuần hoá
cây
Trang 120Chuyển cây từ khay ươm vào bầu đất
ngoài vườn ươm