Ảnh hưởng của quá trình lên men đến hoạt tính sinh học của lá ổi rừng

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO TRƯỜNG ĐẠI HỌC SƯ PHẠM KỸ THUẬT THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH ĐỒ ÁN TỐT NGHIỆP NGÀNH CÔNG NGHỆ THỰC PHẨM ẢNH HƯỞNG CỦA Q TRÌNH LÊN MEN ĐẾN HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA LÁ ỔI RỪNG GVHD: ThS ĐẶNG THỊ NGỌC DUNG SVTH: TỪ THỊ YẾN NHI HUỲNH ANH THƯ SKL009134 Tp.Hồ Chí Minh, tháng 8/2022 TRƯỜNG ĐẠI HỌC SƯ PHẠM KỸ THUẬT THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH KHOA CƠNG NGHỆ HĨA HỌC VÀ THỰC PHẨM BỘ MƠN CƠNG NGHỆ THỰC PHẨM KHĨA LUẬN TỐT NGHIỆP MÃ SỐ: 2022-18116193 ẢNH HƯỞNG CỦA QUÁ TRÌNH LÊN MEN ĐẾN HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA LÁ ỔI RỪNG GVHD: Th.S Đặng Thị Ngọc Dung SVTH: Từ Thị Yến Nhi MSSV: 18116193 SVTH: Huỳnh Anh Thư MSSV: 18116212 THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH – 08/2022 TRƯỜNG ĐẠI HỌC SƯ PHẠM KỸ THUẬT THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH KHOA CƠNG NGHỆ HĨA HỌC VÀ THỰC PHẨM BỘ MƠN CƠNG NGHỆ THỰC PHẨM KHĨA LUẬN TỐT NGHIỆP MÃ SỐ: 2022-18116193 ẢNH HƯỞNG CỦA QUÁ TRÌNH LÊN MEN ĐẾN HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA LÁ ỔI RỪNG GVHD: Th.S Đặng Thị Ngọc Dung SVTH: Từ Thị Yến Nhi MSSV: 18116193 SVTH: Huỳnh Anh Thư MSSV: 18116212 THÀNH PHỐ HỒ CHÍ MINH – 08/2022 LỜI CẢM ƠN Sau thời gian học tập rèn luyện Trường Đại học Sư phạm Kỹ thuật Thành phố Hồ Chí Minh, biết ơn kính trọng, chúng tơi xin gửi lời cảm ơn chân thành đến Ban Giám hiệu, phòng, khoa thầy nhiệt tình hướng dẫn, giảng dạy tạo điều kiện thuận lợi giúp đỡ chúng tơi suốt q trình học tập, nghiên cứu hoàn thiện đồ án tốt nghiệp Đặc biệt, chúng tơi xin bày tỏ lịng biết ơn sâu sắc tới Cô Thạc sĩ Đặng Thị Ngọc Dung, người thầy trực tiếp hướng dẫn, giúp đỡ trình thực đề tài Tuy nhiên điều kiện lực thân hạn chế, đồ án tốt nghiệp chắn khơng tránh khỏi thiếu sót Kính mong nhận đóng góp ý kiến thầy cô giáo, bạn bè để nghiên cứu chúng tơi hồn thiện Chúng tơi xin trân trọng cảm ơn! Tp HCM, tháng 08 năm 2022 Tác giả ii LỜI CAM ĐOAN Chúng xin cam đoan tồn nội dung trình bày khóa luận tốt nghiệp chúng tơi thực Chúng xin cam đoan nội dung tham khảo khóa luận tốt nghiệp trích dẫn xác đầy đủ theo quy định Ngày 09 tháng 08 năm 2022 Ký tên iii Ký tên Bảng 4.5 Kết điều kiện lên men L.bulgaricus S.thermophilus đến TPC, TFC, khả kháng oxy hóa kháng α-amylase TPC (mg GAE/g) Nhiệt độ Tỷ lệ cấy giống 30℃ 37℃ 101.54 ± 12.34 a 100.18 ± 5.62a 44℃ 91.31 ± 0.91 a 3% 89.71 ± 1.77 b 5% 96.43 ± 9.88 b 7% 99.46 ± 0.50 b 9% 97.94 ± 1.68 b 12h 107.06 ± 1.05e 24h 101.22 ± 2.86 Thời 36h 93.47 ± 2.30 gian 48h 97.70 ± 1.20 60h 72h de cd de 86.19 ± 8.48 c de 98.66 ± 7.48 *Các chữ in thường cột biểu khác biệt trung bình có ý n 64 Bảng 4.6 Kết điều kiện lên men B.subtilis đến TPC, TFC, khả kháng oxy hóa kháng α-amylase TPC (mg GAE/g) 30℃ 86.59 ± 0.60a 37℃ 91.55 ± 1.60 43℃ 87.55 ± 0.50 a 3% 96.34 ± 1.80 c 5% 93.87 ± 1.92cd 7% 92.59 ± 0.37 9% 102.74 ± 2.29d 12h 88.75 ± 2.37 24h 98.18 ± 1.46g Thời 36h 92.19 ± 1.46f gian 48h 89.07 ± 2.13ef 60h 86.19 ± 1.73 72h 86.19 ± 1.96e Nhiệt độ Tỷ lệ cấy giống b c ef e *Các chữ in thường cột biểu khác biệt trung bình có ý 65 CHƯƠNG KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 5.1 Kết luận Sau trình nghiên cứu ảnh hưởng trình lên men đến hoạt tính sinh học ổi rừng đưa kết luận sau: Nhiệt độ tỉ lệ giống cấy ba chủng vi sinh vật có ảnh hưởng khơng đáng kể đến hàm lượng chất có hoạt tính sinh học ổi rừng Khi tiến hành lên men nhiệt độ phát triển tối ưu vi sinh vật cho thấy khả kháng oxy hóa cao Đối với chủng L.bulgaricus S.thermophilus, B.subtilis nhiệt độ thời gian thấp khả kháng α-amylase cao S.cerevisiae nhiệt độ thời gian cao khả kháng α-amylase cao Thời gian lên men làm thay đổi đáng kể đến hàm lượng chất có hoạt tính sinh học ổi rừng (q trình lên men lâu hàm lượng chất có hoạt tính sinh học ổi rừng giảm) 5.2 Kiến nghị Từ kết trên, kiến nghị nghiên cứu sau: Tối ưu hóa điều kiện lên men trình lên men ổi rừng phương pháp lên men vi sinh vật Tối ưu hóa điều kiện lên men trình lên men ổi rừng phương pháp lên men bán rắn Nghiên cứu số hoạt tính sinh học nhóm polyphenol ổi như: tính kháng khuẩn, kháng vi sinh vật, khả chữa bệnh, làm đẹp… Nghiên cứu số ứng dụng nhóm polyphenol từ dịch chiết ổi để bổ sung vào số loại thực phẩm bánh, mứt, kẹo, nước giải khát… 66 TÀI LIỆU THAM KHẢO Factors Affecting Fermentation Process (2021, 12 29) Được truy lục từ YB STUDY: https://www.ybstudy.com/2021/12/5-factors-affecting-fermentation-process.html Ashok, P K., & Upadhyaya, K (2012) Tannins are Astringent Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 1(3), 45-50 Auesukaree, C (2017) Molecular mechanisms of the yeast adaptive response and tolerance to stresses encountered during ethanol fermentation Journal of Bioscience and Bioengineering, 124(2), 133–142 doi:10.1016/j.jbiosc.2017.03.009 Bàng, N (2021) Phần - Một số giống ổi phổ biến Việt Nam Nông nghiệp Việt Nam Được truy lục từ https://nongnghiep.vn/phan-4 mot-so-giong-cayoi-pho-bien-nhat-viet-nam-hien-nay-d287929.html Barbalho, S., Farinazzi-Machado, F., Goulart, R., Brunnati, A C., Ottoboni, A M., & Nicolau, C C (2012) Psidium Guajava (Guava): A Plant of Multipurpose Medicinal Applications Medicinal & Aromatic Plants, 1(4) doi:10.4172/2167-0412.1000104 Biswas, S., Talukdar, P., & Talapatra, S (2019) Presence of phytochemicals in fruits and leaves of guava (Psidium guajava Linn.) for cancer prevention: A mini review Journal of Drug Delivery and Therapeutics, 9(4-s), 726-729 doi:10.22270/jddt.v9i4s.3290 Burak, M., & Imen, Y (1999) Flavonoids and their antioxidant properties Turkiye Klin Tip Bil Derg, 19, 296–304 Casteda-Ovando, A., Pacheco-Hernández, M., Páez-Hernández, M., Rodríguez, J., & Galán-Vidal, C (2009) Chemical studies of anthocyanins: A review Food Chemistry, 113(4), 859-871 doi:10.1016/j.foodchem.2008.09.001 Cevallos-Casals, B A., & Cisneros-Zevallos, L (2010) Impact of germination on phenolic content and antioxidant activity of 13 edible seed species Food Chemistry, 119(4), 1485-1490 doi:10.1016/j.foodchem.2009.09.030 Chang, C., Yang, M., Wen, H., & Chern, J (2002) Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods Journal of Food and Drug Analysis, 10(3), 178-182 doi:10.38212/2224-6614.2748 xi Chen, H.-Y., & Yen, G.-C (2007) Antioxidant activity and free radical-scavenging capacity of extracts from guava (Psidium guajava L.) leaves Food Chemistry, 101(2), 686-694 doi:10.1016/j.foodchem.2006.02.047 Đào, T V (2020) Ảnh hưởng phương pháp trích ly trùng đến hợp chất sinh học nước giải khát ổi (Psidium guyjava L.) Tạp chí Cơng Thương, Được truy lục từ https://tapchicongthuong.vn/bai-viet/anh-huong-cua-phuong-phap-trichly-va-thanh-trung-den-hop-chat-sinh-hoc-cua-nuoc-giai-khat-la-oi-psidium-guyjaval-73232.htm D'Archivio, M., Filesi, C., Benedetto, R., Gargiulo, R., Giovannini, C., & Masella, R (2007) Polyphenols, dietary sources and bioavailability Ann Ist Super Sanita, 43(4), 348-361 Das, M., & Goswami, S (2019) Antifungal and Antibacterial Property of Guava (Psidium guajava) Leaf Extract: Role of Phytochemicals International Journal of Health Sciences and Research, 9(2), 39-45 Dewi, P., Sutjiatmo, A., & Nurdiansyah, A (2013) Antidiarrheal Activity of Water Extracts of Guava Leaves (Psidium guajava L.) and Water Extracts of Green Tea Leaves (Camellia sinensis L.) Combination in Swiss Webster Mice Acta Pharmaceutica Indonesia, 38(2), 67-70 doi:10.5614/api.v38i2.5213 Dickinson, J., & Schweizer, M (2004) The Metabolism and Molecular Physiology of Saccharomyces cerevisiae (lần xuất 2nd) Boca Raton doi:10.1201/9780203503867 Đoàn, T T., Huỳnh, M T., Nguyễn, Đ Đ., Hà, T T., & Ngô, D T (2018) Khảo sát hàm lượng polyphenol khả kháng oxy hóa dịch trái giác (Cayratia trifolia) trước sau lên men sử dụng nấm men chịu nhiệt Saccharomyces cerevisiae HG1.3 Tạp chí Khoa học Công nghệ Việt Nam, Được truy lục từ https://vjst.vn/vjsta/tin-tuc/507/khao-sat-ham-luong-polyphenol-va-kha-nang-khangoxy-hoa-cua-dich-trai-giac-cayratia-trifolia-truoc-va-sau-len-men-su-dung-nammen-.aspx Dragovic-Uzelac, V., Levaj, B., Mrkic, V., Bursac, D., & Boras, M (2007) The content of polyphenols and carotenoids in three apricot cultivars depending on stage of maturity xii and geographical region Food Chemistry, 102(3), 966-975 doi:10.1016/j.foodchem.2006.04.001 Dulf, F., Vodnar, D., & Socaciu, C (2016) Effects of solid-state fermentation with two filamentous fungi on the total phenolic contents, flavonoids, antioxidant activities and lipid fractions of plum fruit (Prunus domestica L.) by-products Food Chemistry, 209, 27-36 Farag, R., Abdel-Latif, M., Baky, H., & Tawfeek, L (2020) Phytochemical screening and antioxidant activity of some medicinal plants' crude juices Biotechnol Rep (Amst), 28, e00536 doi:10.1016/j.btre.2020.e00536 Fathi, T., El-akkad, H., Gendy, A S., Abdelkader, M., Salah, S., & Hussein, E (2019) In vitro bio-medical studies on Psidium guajava leaves Plant Archives, 19(1), 199-207 Fujimori, K., & Shibano, M (2013) Avicularin, a plant flavonoid, suppresses lipid accumulation through repression of C/EBPα-activated GLUT4-mediated glucose uptake in 3T3-L1 cells J Agric Food Chem, 61(21), 5139-5147 doi:10.1021/jf401154c Gerson, D., Kole, M., Ozum, B., & Oguztoreli, M (1988) Substrate Concentration Control in Bioreactors Biotechnology and Genetic Engineering Reviews, 6(1), 67-150 doi:10.1080/02648725.1988.10647846 Guo, C., Yang, J., Wei, J., Li, Y., Xu, J., & Jiang, Y (2003) Antioxidant activities of peel, pulp and seed fractions of common fruits as determined by FRAP assay Nutrition Research, 23(12), 1719-1726 doi:10.1016/j.nutres.2003.08.005 Halkes, B., Berg, A., Hoekstra, M., Pont, J., & Kreis, R (2001) The Use of Tannic Acid in the Local Treatment of Burn Wounds: Intriguing Old and New Perspectives Wounds: a Compendium of Clinical Research and Practice, 13(4) Harnett, J., Davey, G., Patrick, A., Caddick, C., & Pearce, L (2011) Lactic Acid Bacteria: Streptococcus thermophilus Trong Encyclopedia of Dairy Sciences (trang 143-148) Haslam, E (1966) Chemistry of vegetable tannins London & New York: Academic Press xiii Hayashi, T., Sawa, K., Kawasaki, M., Arisawa, M., Shimizu, M., & Morita, N (1988) Inhibition of cow's milk xanthine oxidase by flavonoids Journal of Natural Products, 51(2), 345-348 doi:10.1021/np50056a030 Hossain, N., Zaini, J., & Mahlia, T (2017) A review of bioethanol production from plantbased waste biomass by yeast fermentation Journal of Technology, 8(1), doi:10.14716/ijtech.v8i1.3948 iGEMLMU-Munich (2014) Growth conditions, storage, media and antibiotics for Bacillus subtilis iGEM LMU-Munich Được truy lục từ https://2014.igem.org/Team:LMU-Munich Jaiarj, P., Khoohaswan, P., Wongkrajang, Y., Peungvicha, P., Suriyawong, P., Saraya, M S., & Ruangsomboon, O (1999) Anticough and antimicrobial activities of Psidium guajava Linn leaf extract Journal of Ethnopharmacology, 67(2), 203–212 doi:10.1016/s0378-8741(99)00022-7 Jia, Z., Tang, M., & Wu, J (1999) The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals Food Chemistry, 64(4), 555-559 doi:10.1016/S0308-8146(98)00102-2 Khan, M., Shin, J., & Kim, J (2018) The promising future of microalgae: current status, challenges, and optimization of a sustainable and renewable industry for biofuels, feed, and other products Microbial Cell Factories, 17(1), 1-21 doi:10.1186/s12934018-0879-x Korsten, L., & Cook, N (1996) Optimizing Culturing Conditions for Bacillus Subtilis South African Avocado Growers’ Association Yearbook, 19, 54-58 Kovács, Á (2019) Bacillus subtilis Trends Microbiol, 27(8), 724-725 doi:10.1016/j.tim.2019.03.008 Kumar, M., Tomar, M., Amarowicz, R., Saurabh, V., Nair, M S., Maheshwari, C., Satankar, V (2021) Guava (Psidium guajava L.) Leaves: Nutritional Composition, Phytochemical Profile, and Health-Promoting Bioactivities Foods, 10(4), 752 doi:10.3390/foods10040752 Le, H T., Dang, T K., Tran, N T., & Bui, T T (2019) Inhibitory Effect of the Leaf of Psidium guajava Grown in Vietnam on α-Glucosidase and Protein Tyrosine xiv Phosphatase 1B in vitro VNU Journal of Science: Medical and Pharmaceutical Sciences, 35(1), 31-36 doi:10.25073/2588-1132/vnumps.4161 Lee, Y., Yuk, D., Lee, J., Lee, S., Ha, T., Oh, K., Hong, J (2009) (-)-Epigallocatechin3-gallate prevents lipopolysaccharide-induced elevation of beta-amyloid generation and memory deficiency Brain Research, 1250, 164-174 doi:10.1016/j.brainres.2008.10.012 Liên Hương (2018) lợi ích trái ổi Sức khỏe Đời sống Được truy lục từ https://suckhoedoisong.vn/8-loi-ich-cua-trai-oi-169125002.htm Lintu Thomas, A T (2017) Biochemical and mineral analysis of the undervalued leaves – Psidium guajava L Int J Adv Sci Res, 2, 16–21 Lintu, T., Lasyaja, A., Anitha, T., Suganya, M., Gayathri, P., Chithra, S., & Pubs, G (2017) Biochemical and mineral analysis of the undervalued leaves – Psidium guajava L International Journal of Advanced Science and Research, 2(3), 16-21 Liogier, A H (1994) Psidium guajava L Trong Descriptive Flora of Puerto Rico and Adjacent Islands (trang 430–435) Liu, C.-W., Wang, Y.-C., Lu, H.-C., & Chiang, W.-D (2014) Optimization of ultrasoundassisted extraction conditions for total phenols with anti-hyperglycemic activity from Psidium guajava leaves Process Biochemistry, 49(10), 1601-1605 doi:10.1016/j.procbio.2014.06.009 Lozoya, X., Reyes-Morales, H., Chávez-Soto, M A., Martínez-García, M d., SotoGonzález, Y., & Doubova, S V (2002) Intestinal anti-spasmodic effect of a phytodrug of Psidium guajava folia in the treatment of acute diarrheic disease Journal of Ethnopharmacol, 83(1-2), 19-24 doi:10.1016/s0378-8741(02)00185-x Luo, Y., Peng, B., Liu, Y., Wu, Y., & Wu, Z (2018) Ultrasound extraction of polysaccharides from guava leaves and their antioxidant and antiglycation activity Process Biochemistry, 73, 228-234 doi:10.1016/j.procbio.2018.08.003 Luo, Y., Peng, B., Wei, W., Tian, X., & Wu, Z (2019) Antioxidant and Anti-Diabetic Activities of Polysaccharides from Guava Leaves Molecules, 24(7), 1343 doi:10.3390/molecules24071343 xv Mai, H (2019) Tác dụng kỳ diệu ổi Sức khỏe Đời sống Đã truy lục 07 07, 2022, từ https://suckhoedoisong.vn/tac-dung-ky-dieu-cua-la-oi-169132447.htm Marinova, D., Ribarova, F., & Atanassova, M (2005) Total phenolics and flavonoids in Bulgarian fruits and vegetables Journal of the University of Chemical Technology and Metallurgy, 40(3), 255-260 Marrugat, J., Covas, M.-I., Fitó, M., Schrưder, H., Miró-Casas, E., Gimeno, E., SOLOS Investigators (2004) Effects of differing phenolic content in dietary olive oils on lipids and LDL oxidation a randomized controlled trial European Journal of Nutrition, 43(3), 140-147 doi:10.1007/s00394-004-0452-8 Mascher, T (2014) Growth conditions, storage, media and antibiotics for Bacillus subtilis iGEM LMU-Munich Metodiewa, D., Kochman, A., & Karolczak, S (1997) Evidence for antiradical and antioxidant properties of four biologically active N,N-diethylaminoethyl ethers of flavanone oximes: a comparison with natural polyphenolic flavonoid (rutin) action Biochemistry and Molecular Biology International, 41(5), 1067-1075 doi:10.1080/15216549700202141 Moon, N., & Reinbold, G (1976) Commensalism and Competition in Mixed Cultures of Lactobacillus bulgaricus and Streptococcus thermophilus Journal of Milk and Food Technology, 39(5), 337–341 doi:10.4315/0022-2747-39.5.337 Morton, J (1987) Guava Trong Fruits of Warm Climates (trang 356–363) Miami Narendranath, N., & Power, R (2005) Relationship between pH and medium dissolved solids in terms of growth and metabolism of lactobacilli and Saccharomyces cerevisiae during ethanol production Appl Environ Microbiol, 71(5), 2239-2243 doi:10.1128/AEM.71.5.2239-2243.2005 Nguyễn, H T., Hoàng, H Đ., & Đặng, Á H (2013) Nghiên cứu hoạt hóa hạt tế bào nấm men cố định sau thời gian xúc tác cho trình lên men rượu Tạp chí Khoa học Cơng nghệ, 51(4), 465-474 Nguyen, Q.-V., & Eun, J.-B (2011) Antioxidant activity of solvent extracts from Vietnamese medicinal plants Journal of Medicinal Plants Research, 5(13), 27982811 doi:10.5897/JMPR.9000201 xvi Nguyen, V T., Vuong, Q V., Bowyer, M C., Altena, I A., & Scarlett, C J (2015) Effects of different drying methods on bioactive compound yield and antioxidant Drying Technology, 33(8), 1006-1017 doi:10.1080/07373937.2015.1013197 Nguyen, V., Tran, T., & Tran, N (2022) Phytochemical compound yield and antioxidant activity of cocoa pod husk (Theobroma cacao L.) as influenced by different dehydration conditions Drying Technology, 40(10), 2021-2033 doi:10.1080/07373937.2021.1913745 Oh, W., Lee, C., Lee, M., Bae, E., Sohn, C., Oh, H., Ahn, J (2005) Antidiabeter effects of extracts from Psidium guajava Journal of Ethnopharmacology, 96(3), 411-415 Othman, N., Roblain, D., Chammen, N., Thonart, P., & Hamdi, M (2009) Antioxidant phenolic compounds loss during the fermentation of Chétoui olives Food Chemistry, 116(3), 662-669 Panche, A N., Diwan, A D., & Chandra, S R (2016) Flavonoids: an overview J Nutr Sci, 5, e47 doi:10.1017/jns.2016.41 Quinto, E., Jiménez, P., Caro, I., Tejero, J., Mateo, J., & Girbes, T (2014) Probiotic Lactic Acid Bacteria: A Review Food and Nutrition Sciences, 5(18), 1765-1775 doi:10.4236/fns.2014.518190 Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M., & Rice-Evans, C (1999) Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay Free Radical Biology and Medicine, 26(9-10), 1231-1237 doi:10.1016/s08915849(98)00315-3 Ren, W., Qiao, Z., Wang, H., Zhu, L., & Zhang, L (2003) Flavonoids: promising anticancer agents Medicinal Research Reviews, 23(4), 519-534 doi:10.1002/med.10033 Rodríguez, N., Valdés-Infante, J., Velázquez, J., Rivero, D., Sourd, D., Martínez, F., Rodríguez, J (2010b) Colección cubana de germoplasma de guayabo (Psidium guajava L.): Establecimiento, caracterización y selección de cultivares CitriFrut, 27(1), 28-38 xvii Scalbert, A., Johnson, I., & Saltmarsh, M (2005) Polyphenols: antioxidants and beyond The American Journal of Clinical Nutrition, 81(1 Suppl), 215S-217S doi:10.1093/ajcn/81.1.215S Shabbir, H., Kausar, T., Noreen, S., Rehman, H U., Hussain, A., Huang, Q., Nawaz, A (2020) In Vivo Screening and Antidiabetic Potential of Polyphenol Extracts from Guava Pulp, Seeds and Leaves Animals (Basel), 10(9), 1714 doi:10.3390/ani10091714 Shahidi, F., & Ambigaipalan, P (2015) Phenolics and polyphenolics in foods, beverages and spices: Antioxidant activity and health effects – A review Journal of Functional Foods, 18(Part B), 820-897 doi:10.1016/j.jff.2015.06.018 Stanbury, P., Whitaker, A., & Hall, S (1995) Principles of Fermentation Technology (lần xuất 2nd) Tufail, M., Hussain, S., Malik, F., Mirza, T., Parveen, G., Shafaat, S., Sadiq, A (2011) Isolation and evaluation of antibacterial activity of bacteriocin produced by Lactobacillus bulgaricus from yogurt African Journal of Microbiology Research, 5(22), 3842-3847 Tuncer, B Ö., & Tuncer, Y (2011) Properties of exopolysaccharide producer Streptococcus thermophilus ST8.01 isolated from homemade yoghurt Journal of Food and Nutrition Research, 50-56 Viljoen, B., & Heard, G (2000) Saccharomyces cerevisiae Trong R Robinson, C A Batt, & P Patel, Encylopedia of Food Acknowledgements Microbiology San Diego : Academic Press Walker, E H., Pacold, M E., Perisic, O., Stephens, L., Hawkins, P T., Wymann, M P., & Williams, R L (2000) Structural determinants of phosphoinositide 3-kinase inhibition by wortmannin, LY294002, quercetin, myricetin, and staurosporine Molecular Cell, 6(4), 909-919 doi:10.1016/s1097-2765(05)00089-4 Walsh, R., & Martin, P (1977) Growth of saccharomyces cerevisiae and saccharomyces uvarum in a temperature gradient incubator Journal of The Institute of Brewing, 83, 169-172 doi:10.1002/J.2050-0416.1977.TB06813.X xviii Wang, L., Bei, Q., Wu, Y., Liao, W., & Wu, Z (2017) Characterization of soluble and insoluble-bound polyphenols from Psidium guajava L leaves co-fermented with Monascus anka and Bacillus sp and their bio-activities Journal of Functional Foods, 32, 149-159 doi:10.1016/j.jff.2017.02.029 Waterman, P G., & Mole, S (1994) Analysis of phenolic plant metabolites Zhang, X., Chen, J., Li, X., Yi, K., Ye, Y., Liu, G., & Wang, Z (2017) Dynamic changes in antioxidant activity and biochemical composition of tartary buckwheat leaves during Aspergillus niger fermentation Journal of Functional Foods, 32, 375-381 Zirnstein, G., & Hutkins, R (1999) STREPTOCOCCUS: Streptococcus Thermophilus Encyclopedia of Food Microbiology, 2127-2133 doi:10.1006/rwfm.1999.1540 xix