1. Trang chủ
  2. » Luận Văn - Báo Cáo

Đề tài cảm biến sinh học trên cơ sở transistor hiệu ứng trường (FET) sử dụng ống nano cacbon

154 1K 2

Đang tải... (xem toàn văn)

Tài liệu hạn chế xem trước, để xem đầy đủ mời bạn chọn Tải xuống

THÔNG TIN TÀI LIỆU

Thông tin cơ bản

Định dạng
Số trang 154
Dung lượng 2,62 MB

Nội dung

Luận án tiến sỹ : Đề tài cảm biến sinh học trên cơ sở transistor hiệu ứng trường (FET) sử dụng ống nano cacbon MỤC LỤCDANH MỤC CÁC KÝ HIỆU, CHỮ VIẾT TẮT . 9DANH MỤC CÁC HÌNH VẼ, ĐỒ THỊ . 11MỞ ĐẦU . 17CHƢƠNG I. CẢM BIẾN SINH HỌC TRÊN CƠ SỞ TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG ỐNG NANO CARBON (CNTFETs) 21I.1 GIỚI THIỆU VI KHUẨN E.COLI . 21I.2 GIỚI THIỆU CẢM BIẾN SINH HỌC 22I.3 GIỚI THIỆU ỐNG NANO CARBON 25I.3.1 Cấu tạo của ống nano carbon 25I.3.2 Tính chất của ống nano carbon . 28I.3.3 Phƣơng pháp chế tạo ống nano carbon . 29I.4 TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG TRÊN CƠ SỞ CẤU TRÚC MOS (MOSFET) 30I.5 TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG TRÊN CƠ SỞ ỐNG NANO CARBON (CNTFETs) . 33I.5.1 Cấu tạo và nguyên lý hoạt động của CNTFETs . 33I.5.2 Công nghệ chế tạo CNTFETs . 35I.5.2.1 Transistor hiệu ứng trƣờng ống nano carbon cực cổng dƣới . 35I.5.2.2 Transistor hiệu ứng trƣờng ống nano carbon cực cổng trên 37I.6 GIỚI THIỆU CHUNG VỀ ADN . 38I.7 CÁC PHƢƠNG PHÁP CỐ ĐỊNH ADN LÊN BỀ MẶT ỐNG NANO CARBON CHO CẢM BIẾN SINH HỌC. . 40I.7.1 Phƣơng pháp hấp phụ vật lý . 41I.7.2 Phƣơng pháp liên kết cộng hoá trị 43I.8 CẢM BIẾN SINH HỌC TRÊN CƠ SỞ CNTFETs PHÁT HIỆN LAI HOÁ ADN 46I.9 KẾT LUẬN 47 5CHƢƠNG II. NGHIÊN CỨU CÔNG NGHỆ BIẾN TÍNH VÀ PHÂN TÁN ỐNG NANO CARBON ĐỊNH HƢỚNG ỨNG DỤNG TRONG CẢM BIẾN SINH HỌC VÀ CHẾ TẠO CNTFETs . 49II.1 GIỚI THIỆU . 49II.1.1 Các phƣơng pháp biến tính CNTs . 49II.1.2 Các phƣơng pháp phân tán ống nanno carbon (CNTs) . 51II.2 VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP 53II.2.1 Vật liệu hoá chất 53II.2.2 Quy trình biến tính và phân tán ống nano carbon . 54II.2.2.1 Xây dựng hệ thiết bị phản ứng . 54II.2.2.2 Phƣơng pháp biến tính ống nano carbon (CNTs) . 55II.2.2.3 Phƣơng pháp phân tán ống nano carbon trong dung dịch DMF 56II.2.3 Cố định ADN sử dụng ống nano carbon lên vi điện cực 56II.2.3.1 Thông tin về cảm biến 57II.2.3.2 Phƣơng pháp cố định ADN dò của vi khuẩn E.Coli lên bề mặt cảm biến . 57II.3 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 60II.3.1 Phân tán ống nano carbon trong dung dịch DMF . 60II.3.1.1 Hình ảnh của CNTs phân tán trong dung dịch DMF . 60II.3.1.2 Hình thái bề mặt của CNTs phân tán trong dung dịch DMF . 61II.3.1.3 Phổ hấp thụ UV-Vis của CNTs phân tán trong dung dịch DMF . 62II.3.1.4. Phổ tán xạ Raman của CNTs phân tán trong dung dịch DMF 62II.3.1.5 Phổ hồng ngoại FTIR của CNTs phân tán trong dung dịch DMF . 63II.3.2 Các yếu tố ảnh hƣởng đến quá trình phân tán của CNTs trong dung dịch DMF. 63II.3.2.1 Ảnh hƣởng của thời gian rung siêu âm đến quá trình phân tán CNTs . 65II.3.2.2 Ảnh hƣởng của giá trị pH đến quá trình phân tán CNTs 67II.3.3 Cố định chuỗi ADN dò của vi khuẩn E.Coli lên bề mặt ống nano carbon . 69II.3.3.1 Phân tán ống nano carbon trong dung dịch ADN 69 6II.3.3.2 Đặc trƣng cố định ADN dò của vi khuẩn E.Coli lên ống nano carbon 70II.3.4 Đặc trƣng đáp ứng ra của cảm biến . 72II.3.4.1 Thời gian đáp ứng của cảm biến 72II.3.4.2 Đặc trƣng tín hiệu ra của cảm biến . 73II.4 KẾT LUẬN 74CHƢƠNG III. NGHIÊN CỨU, THIẾT KẾ, CHẾ TẠO TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG TRÊN CƠ SỞ ỐNG NANO CARBON (CNTFETs) . 75III.1 GIỚI THIỆU . 75III.2 THIẾT KẾ CNTFETs . 76III.2.1 Cấu tạo CNTFETs cực cổng dƣới 76III.2.2 Thiết kế mặt nạ (MASK) cho CNTFETs . 77III.2.3 Thiết kế bản mạch in cho CNTFETs cực cổng dƣới . 80III.3 CHẾ TẠO CNTFETs CỰC CỔNG DƢỚI . 81III.3.1 Vật liệu hoá chất . 81III.3.2 Qui trình chế tạo CNTFETs cực cổng dƣới . 81III.4 HÀN DÂY VÀ ĐÓNG GÓI . 93III.4.1 Hàn dây 93III.4.2 Đóng gói CNTFETs cực cổng dƣới . 94III.5 XÂY DỰNG HỆ ĐO VÀ PHƢƠNG PHÁP ĐO ĐẶC TÍNH CNTFETs . 95III.5.1 Hệ đo 95III.5.2 Phƣơng pháp đo đặc tính điện CNTFETs 95III.6 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 96III.6.1 Hình thái CNTFETs . 96III.6.2 Tính chất tiếp xúc kim loại S/D-CNTs 97III.6.3 Đƣờng đặc tuyến ra ID–VDScủa CNTFETs 99III.6.4 Đặc tuyến truyền đạt ID–VGScủa CNTFETs . 100III.6.5 Các thông số của CNTFETs . 101III.6.6 Ảnh hƣởng của trễ điện đến tín hiệu ra của CNTFETs 105 7III.6.7 Ảnh hƣởng của chiều dài kênh đến các đặc trƣng của CNTFETs . 107III.7 KẾT LUẬN . 108CHƢƠNG IV. PHÁT TRIỂN CẢM BIẾN SINH HỌC TRÊN CƠ SỞ TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG ỐNG NANO CARBON (CNTFETs) ĐỂ PHÁT HIỆN LAI HÓA ADN CỦA VI KHUẨN E.COLI . 109IV.I GIỚI THIỆU 109IV.2 VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP 110IV.2.1 Vật liệu hoá chất 110IV.2.2 Thông tin về cảm biến 110IV.2.3 Phƣơng pháp thực nghiệm . 111IV.2.3.1. Xử lý bề mặt cảm biến trƣớc khi cố định ADN . 111IV.2.3.2 Phƣơng pháp cố định ADN . 111IV.2.4 Đo đặc trƣng nhạy của cảm biến 114IV.3 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 115IV.3.1 Đặc trƣng cố định ADN dò của vi khuẩn E.Coli lên ống nano carbon . 115IV.3.1.1 Ảnh hiển vi điện tử quét 115IV.3.1.2 Đặc trƣng phổ hồng ngoại FTIR . 116IV.3.1.3 Đặc trƣng ảnh hiển vi huỳnh quang 118IV.3.1.4 Đặc trƣng phổ Raman . 119IV.3.2 Đặc trƣng đáp ứng của cảm biến sinh học CNTFETs 120IV.3.2.1 Đặc trƣng tín hiệu cố định ADN dò của vi khuẩn E.Coli . 120IV.3.2.2 Đặc trƣng tín hiệu lai hóa ADN của vi khuẩn E.Coli . 121IV.3.2.3 Thời gian đáp ứng của cảm biến sinh học CNTFETs . 123IV.3.2.4 Độ nhạy của cảm biến sinh học CNTFETs 124IV.3.3 Các yếu tố ảnh hƣởng của quá trình cố định ADN dò đến tín hiệu ra của cảm biến sinh học CNTFETs 126IV.3.3.1 Ảnh hƣởng của nồng độ ADN dò . 126IV.3.3.2 Ảnh hƣởng của thời gian cố định ADN dò . 128 8IV.3.3.3 Ảnh hƣởng của giá trị pH . 129IV.3.4 Độ ổn định của cảm biến sinh học CNTFETs .130IV.3.4.1 Ảnh hƣởng của phủ màng BSA 130IV.3.4.2 Ảnh hƣởng của nhiệt độ lai hoá 131IV.3.4.3 Thời gian sống của cảm biến sinh học CNTFETs 132IV.3.4.4 Độ lặp lại của cảm biến sinh học CNTFETs 133IV.4 KẾT LUẬN . 134KẾT LUẬN CHUNG 136DANH MỤC CÁC CÔNG TRÌNH ĐÃ CÔNG BỐ CỦA LUẬN ÁN 138TÀI LIỆU THAM KHẢO . 140

LỜI CAM ĐOAN Tôi xin cam đoan đề tài: “Cảm biến sinh học sở transistor hiệu ứng trƣờng (FET) sử dụng ống nano carbon” cơng trình Tất xuất đƣợc công bố chung với cán hƣớng dẫn khoa học đồng nghiệp đƣợc đồng ý tác giả trƣớc đƣa vào luận án Các kết luận án trung thực, chƣa đƣợc công bố sử dụng để bảo vệ luận án khác Hà Nội, ngày 12 tháng 12 năm 2012 Tác giả luận án Nguyễn Thị Thủy LỜI CẢM ƠN ******* Trong suốt thời gian học tập nghiên cứu năm viện ITIMS giúp tơi có thêm nhiều kiến thức kinh nghiệm công tác nghiên cứu khoa học Cùng với quan tâm bảo tận tình, chu đáo Ban giám đốc, Thầy giáo, tồn thể cán Viện đào tạo quốc tế khoa học vật liệu (ITIMS) tới tơi hoàn thành luận án tiến sĩ: “Cảm biến sinh học sở transistor hiệu ứng trƣờng (FET) sử dụng ống nano carbon” Để có đƣợc thành này, tơi xin đƣợc bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc tới GS.TS Nguyễn Đức Chiến TS Mai Anh Tuấn - ngƣời thầy nhiệt tình bảo, định hƣớng giúp đỡ mặt khoa học để tơi hồn thành đề tài luận án tiến sĩ Tơi xin chân thành cảm ơn tới Ban giám đốc, toàn thể cán Viện đào tạo quốc tế khoa học vật liệu (ITIMS); Viện Tiên tiến Khoa học Công nghệ (HAST); Viện đào tạo sau đại học - Trƣờng Đại học Bách khoa Hà Nội, Viện khoa học Việt Nam tạo điều kiện sở vật chất, hỗ trợ chuyên môn nhƣ thủ tục hành suốt q trình học tập thực đề tài Tôi xin chân thành cảm ơn tới Ban giám hiệu Trƣờng Đại học điện lực; Khoa điện tử viễn thông - Trƣờng Đại học điện lực tạo điều kiện để hỗ trợ thời gian học đóng góp ý kiến q báu mặt chun mơn q trình thực đề tài luận án Tôi xin gửi lời cảm ơn sâu sắc tới PGS.TS Nguyễn Văn Hiếu, Tiến sỹ Phƣơng Đình Tâm, Thạc sỹ Nguyễn Văn Tốn, Tiến sỹ Trần Quang Huy, Tiến sỹ Chu Thị Xuân, Tiến sỹ Phạm Đức Thành, anh chị dẫn cho kiến thức kỹ thực nghiệm Xin chân thành cảm ơn nhóm cảm biến sinh học - Viện ITIMS Tất kết luận án đƣợc thực giúp đỡ anh, chị, em nhóm nghiên cứu Tơi xin chúc anh, chị, em may mắn thành đạt đƣờng nghiên cứu khoa học tƣơng lai Xin chân thành cảm ơn đến tất đồng nghiệp, bạn bè, gia đình động viên giúp đỡ thời gian qua vật chất lẫn tinh thần, trợ giúp chuyên môn, công việc có liên quan trực tiếp gián tiếp đến luận án, v.v… giúp tơi hồn thành luận án Cuối cùng, xin gửi lời cảm ơn sâu sắc đến chồng hai tôi, ngƣời động viên, chia sẻ khó khăn suốt thời gian làm luận án Xin chân thành cảm ơn! Hà Nội, ngày 12 tháng 12 năm 2012 Tác giả luận án Nguyễn Thị Thủy MỤC LỤC DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU, CHỮ VIẾT TẮT .9 DANH MỤC CÁC HÌNH VẼ, ĐỒ THỊ 11 MỞ ĐẦU 17 CHƢƠNG I CẢM BIẾN SINH HỌC TRÊN CƠ SỞ TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG ỐNG NANO CARBON (CNTFETs) 21 I.1 GIỚI THIỆU VI KHUẨN E.COLI .21 I.2 GIỚI THIỆU CẢM BIẾN SINH HỌC 22 I.3 GIỚI THIỆU ỐNG NANO CARBON 25 I.3.1 Cấu tạo ống nano carbon 25 I.3.2 Tính chất ống nano carbon 28 I.3.3 Phƣơng pháp chế tạo ống nano carbon .29 I.4 TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG TRÊN CƠ SỞ CẤU TRÚC MOS (MOSFET) 30 I.5 TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG TRÊN CƠ SỞ ỐNG NANO CARBON (CNTFETs) .33 I.5.1 Cấu tạo nguyên lý hoạt động CNTFETs .33 I.5.2 Công nghệ chế tạo CNTFETs 35 I.5.2.1 Transistor hiệu ứng trƣờng ống nano carbon cực cổng dƣới 35 I.5.2.2 Transistor hiệu ứng trƣờng ống nano carbon cực cổng 37 I.6 GIỚI THIỆU CHUNG VỀ ADN 38 I.7 CÁC PHƢƠNG PHÁP CỐ ĐỊNH ADN LÊN BỀ MẶT ỐNG NANO CARBON CHO CẢM BIẾN SINH HỌC .40 I.7.1 Phƣơng pháp hấp phụ vật lý .41 I.7.2 Phƣơng pháp liên kết cộng hoá trị 43 I.8 CẢM BIẾN SINH HỌC TRÊN CƠ SỞ CNTFETs PHÁT HIỆN LAI HOÁ ADN 46 I.9 KẾT LUẬN 47 CHƢƠNG II NGHIÊN CỨU CƠNG NGHỆ BIẾN TÍNH VÀ PHÂN TÁN ỐNG NANO CARBON ĐỊNH HƢỚNG ỨNG DỤNG TRONG CẢM BIẾN SINH HỌC VÀ CHẾ TẠO CNTFETs 49 II.1 GIỚI THIỆU .49 II.1.1 Các phƣơng pháp biến tính CNTs 49 II.1.2 Các phƣơng pháp phân tán ống nanno carbon (CNTs) 51 II.2 VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP 53 II.2.1 Vật liệu hoá chất 53 II.2.2 Quy trình biến tính phân tán ống nano carbon 54 II.2.2.1 Xây dựng hệ thiết bị phản ứng .54 II.2.2.2 Phƣơng pháp biến tính ống nano carbon (CNTs) 55 II.2.2.3 Phƣơng pháp phân tán ống nano carbon dung dịch DMF 56 II.2.3 Cố định ADN sử dụng ống nano carbon lên vi điện cực 56 II.2.3.1 Thông tin cảm biến 57 II.2.3.2 Phƣơng pháp cố định ADN dò vi khuẩn E.Coli lên bề mặt cảm biến 57 II.3 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 60 II.3.1 Phân tán ống nano carbon dung dịch DMF 60 II.3.1.1 Hình ảnh CNTs phân tán dung dịch DMF 60 II.3.1.2 Hình thái bề mặt CNTs phân tán dung dịch DMF .61 II.3.1.3 Phổ hấp thụ UV-Vis CNTs phân tán dung dịch DMF 62 II.3.1.4 Phổ tán xạ Raman CNTs phân tán dung dịch DMF 62 II.3.1.5 Phổ hồng ngoại FTIR CNTs phân tán dung dịch DMF .63 II.3.2 Các yếu tố ảnh hƣởng đến trình phân tán CNTs dung dịch DMF 63 II.3.2.1 Ảnh hƣởng thời gian rung siêu âm đến trình phân tán CNTs 65 II.3.2.2 Ảnh hƣởng giá trị pH đến trình phân tán CNTs 67 II.3.3 Cố định chuỗi ADN dò vi khuẩn E.Coli lên bề mặt ống nano carbon .69 II.3.3.1 Phân tán ống nano carbon dung dịch ADN 69 II.3.3.2 Đặc trƣng cố định ADN dò vi khuẩn E.Coli lên ống nano carbon 70 II.3.4 Đặc trƣng đáp ứng cảm biến 72 II.3.4.1 Thời gian đáp ứng cảm biến 72 II.3.4.2 Đặc trƣng tín hiệu cảm biến .73 II.4 KẾT LUẬN 74 CHƢƠNG III NGHIÊN CỨU, THIẾT KẾ, CHẾ TẠO TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG TRÊN CƠ SỞ ỐNG NANO CARBON (CNTFETs) .75 III.1 GIỚI THIỆU .75 III.2 THIẾT KẾ CNTFETs .76 III.2.1 Cấu tạo CNTFETs cực cổng dƣới 76 III.2.2 Thiết kế mặt nạ (MASK) cho CNTFETs .77 III.2.3 Thiết kế mạch in cho CNTFETs cực cổng dƣới .80 III.3 CHẾ TẠO CNTFETs CỰC CỔNG DƢỚI .81 III.3.1 Vật liệu hoá chất 81 III.3.2 Qui trình chế tạo CNTFETs cực cổng dƣới 81 III.4 HÀN DÂY VÀ ĐÓNG GÓI .93 III.4.1 Hàn dây 93 III.4.2 Đóng gói CNTFETs cực cổng dƣới .94 III.5 XÂY DỰNG HỆ ĐO VÀ PHƢƠNG PHÁP ĐO ĐẶC TÍNH CNTFETs .95 III.5.1 Hệ đo 95 III.5.2 Phƣơng pháp đo đặc tính điện CNTFETs 95 III.6 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 96 III.6.1 Hình thái CNTFETs .96 III.6.2 Tính chất tiếp xúc kim loại S/D-CNTs 97 III.6.3 Đƣờng đặc tuyến ID –VDS CNTFETs 99 III.6.4 Đặc tuyến truyền đạt ID –VGS CNTFETs .100 III.6.5 Các thông số CNTFETs 101 III.6.6 Ảnh hƣởng trễ điện đến tín hiệu CNTFETs 105 III.6.7 Ảnh hƣởng chiều dài kênh đến đặc trƣng CNTFETs .107 III.7 KẾT LUẬN .108 CHƢƠNG IV PHÁT TRIỂN CẢM BIẾN SINH HỌC TRÊN CƠ SỞ TRANSISTOR HIỆU ỨNG TRƢỜNG ỐNG NANO CARBON (CNTFETs) ĐỂ PHÁT HIỆN LAI HÓA ADN CỦA VI KHUẨN E.COLI .109 IV.I GIỚI THIỆU 109 IV.2 VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP 110 IV.2.1 Vật liệu hoá chất 110 IV.2.2 Thông tin cảm biến 110 IV.2.3 Phƣơng pháp thực nghiệm 111 IV.2.3.1 Xử lý bề mặt cảm biến trƣớc cố định ADN .111 IV.2.3.2 Phƣơng pháp cố định ADN .111 IV.2.4 Đo đặc trƣng nhạy cảm biến 114 IV.3 KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 115 IV.3.1 Đặc trƣng cố định ADN dò vi khuẩn E.Coli lên ống nano carbon .115 IV.3.1.1 Ảnh hiển vi điện tử quét 115 IV.3.1.2 Đặc trƣng phổ hồng ngoại FTIR .116 IV.3.1.3 Đặc trƣng ảnh hiển vi huỳnh quang 118 IV.3.1.4 Đặc trƣng phổ Raman .119 IV.3.2 Đặc trƣng đáp ứng cảm biến sinh học CNTFETs 120 IV.3.2.1 Đặc trƣng tín hiệu cố định ADN dị vi khuẩn E.Coli 120 IV.3.2.2 Đặc trƣng tín hiệu lai hóa ADN vi khuẩn E.Coli .121 IV.3.2.3 Thời gian đáp ứng cảm biến sinh học CNTFETs .123 IV.3.2.4 Độ nhạy cảm biến sinh học CNTFETs 124 IV.3.3 Các yếu tố ảnh hƣởng trình cố định ADN dị đến tín hiệu cảm biến sinh học CNTFETs 126 IV.3.3.1 Ảnh hƣởng nồng độ ADN dò .126 IV.3.3.2 Ảnh hƣởng thời gian cố định ADN dò .128 IV.3.3.3 Ảnh hƣởng giá trị pH 129 IV.3.4 Độ ổn định cảm biến sinh học CNTFETs…………………………….130 IV.3.4.1 Ảnh hƣởng phủ màng BSA 130 IV.3.4.2 Ảnh hƣởng nhiệt độ lai hoá 131 IV.3.4.3 Thời gian sống cảm biến sinh học CNTFETs 132 IV.3.4.4 Độ lặp lại cảm biến sinh học CNTFETs 133 IV.4 KẾT LUẬN .134 KẾT LUẬN CHUNG 136 DANH MỤC CÁC CƠNG TRÌNH ĐÃ CƠNG BỐ CỦA LUẬN ÁN 138 TÀI LIỆU THAM KHẢO .140 DANH MỤC CÁC KÝ HIỆU, CHỮ VIẾT TẮT TT Viết tắt ADN Từ tiếng Anh đầy đủ Nghĩa tiếng Việt ARN Deoxyribonucleic acid Ribonucleic acid Axit nucleic Axit ribonucleic APTS BSA Amino Propyl Triethoxy Silane Bovine serum albumin Chất APTS Albumin huyết bò CNTs Carbon nanotubes Ống nano carbon CVD Chemical vapour deposition Lắng đọng hoá pha COOH Carboxyl CNTFETs Field effect transistor based on carbon nanotube DMF D Dimethylformamide Drain Nhóm chức cacboxylic Transistor hiệu ứng trƣờng sở ống nano carbon Chất DMF Cực máng EDC FET 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride Enzyme linked immuno sorbent assay Field effect transistor FM Fluorescence microscopy Thử nghiệm hấp phụ miễn dịch gắn men Transistor hiệu ứng trƣờng Hiển vi huỳnh quang FE-SEM Hiển vi điện tử quét phát xạ trƣờng Phổ hồng ngoại biến đổi Fourier Cực cổng 10 11 12 13 14 ELISA Chất EDC 17 G Field Emision Scanning Electron Microscope Fourier transform infrared spectroscopy Gate 18 GTD Glutaraldehyde Chất GTD HIV Human immunodeficiency virus MWCNT Multi-walled carbon nanotube MOS Metal oxide semiconductor Virus gây suy giảm miễn dịch cho ngƣời Ống nano carbon đa tƣờng Kim loại ơxít bán dẫn MOSFET Metal oxide semiconductor field effect transistor 23 NMP N-methylpyrrolidone Transistor hiệu ứng trƣờng cấu trúc kim loại ơxít bán dẫn Chất NMP 24 NHS N-hydroxysulfo-succinimide Chất NHS 15 16 19 20 21 FTIR 22 25 ISFET Ion sensitive field effect transistor 26 PBS Phosphate buffered saline Transistor hiệu ứng trƣờng nhạy ion Muối đệm phốt phát PCR Polymerase chain reaction Phản ứng chuỗi polyme QCM S Quartz crystal microbalance Source Vi cân tinh thể thạch anh Cực nguồn SWCNT Single-walled carbon nanotube SMCC TEM Succinimidyl - (Nmaleimidomethyl) cyclohexane-1carboxylate Transmission electron microscopy Ống nano carbon đơn tƣờng Chất SMCC TOAB Tetra-n-octylammonium bromide Hiển vi điện tử truyền qua Chất TOAB UV-Vis Ultraviolet-visible Tử ngoại-khả kiến 27 28 29 30 31 32 33 34 10 TÀI LIỆU THAM KHẢO Tài liệu tham khảo tiếng Việt Hồ Huỳnh Thuỳ Dƣơng (2005), Sinh học phân tử, Nhà Xuất Giáo dục Khuất Hữu Thanh (2005), Cơ sở di truyền phân tử kỹ thuật gen, Nhà Xuất Khoa học Kỹ thuật Hà Nội Nguyễn Đức Chiến, Nguyễn Văn Hiếu (2007), Công nghệ chế tạo mạch vi điện tử, NXB Bách khoa Hà Nội Phạm Thành Hổ (2003), Di truyền học, Nhà Xuất Giáo dục Phan Thị Ngà (2004), Virút viêm não Nhật Bản kỹ thuật chuẩn đoán, NXB Y học Phƣơng Đình Tâm (2009), Nghiên cứu chế tạo cảm biến ADN nhằm ứng dụng y học thực phẩm, Luận án tiến sỹ, ĐHBK Hà Nội Trần Quang Huy (2012), Nghiên cứu phát triển cảm biến miễn dịch điện hóa để phát virus viêm não Nhật Bản, Luận án tiến sỹ, ĐHBK Hà Nội Trần Quang Huy, Nguyễn Thị Thƣờng, Nguyễn Thị Thanh Thủy, Phƣơng Đình Tâm, Mai Anh Tuấn (2007), “Phát axit nucleic vi rút gây bệnh cảm biến sinh học DNA” Tạp chí Y học dự phòng, tập XVII, số (91), tr 57 – 63 Tài liệu tham khảo tiếng Anh A Bachtold, P Hadley, T Nakanishi, and C Dekker (2001) “Logic circuits with carbon nanotube transistors”, Science, Vol 294, pp 1317-1320 10 A Star, E Tu, J Niemann, P Gabriel, C S Joiner, C Valcke (2006), “Labelfree detection of DNA hybridization using carbon nanotube network fieldeffect transistors”, PNAS, 103, 921 – 925 11 A Javey, Q Wang, W Kim, and H Dai (2009), “Advancements in Complementary Carbon Nanotube Field-Effect Transistors”, Department of Chemistry and Laboratory for Advanced Materials, Stanford University, Stanford, CA 94305, USA 140 12 A Arrais, E Diana, D Pezzini, R Rossetti, E Boccaleri (2006), “A fast effective route to pH-dependent water-dispersion of oxidized single-walled carbon nanotubes”, Carbon 44, 3, 587–590 13 A.Vaseashta, D Dinova  Malinovska (2005), “Nanostructured and nanoscale devices, sensors and detectors”, Science and Technology of Advanced Materials, Vol 6, No 3-4, pp 312  318 14 Berger S.A Infectious diseases of Vietnam (2010) http://www.gideononline.com/ebooks/country/infectious-diseases-of-vietnam 15 B L Allen, P D Kichambar,and A Star (2006), “Carbon nanotube FieldEffect-Transistor-Based Biosensors”, Advanced, materials, Vol 19, 11, 14391451 16 Binh V P., Tung P X T., Duong D N T., Tuyen L T., T Duy T P., Chien N T.,Quoc N V., Chien D M, Cees J M van Rijn and Hien T D (2011), “Detection of DNA of genetically modified maize by a silicon nanowire fieldeffect transistor, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 2, 025010 (6pp) 17 C V Nguyen, L Delzeit, A M Cassell, J Li, J Han, and M Meyyappan (2002), “Preparation of Nucleic Acid Functionalized Carbon Nanotube Arrays”, Nano letters, 2, 1079-108 18 C M Pandey, R Singh, G Sumana, M.K Pandey, B.D Malhotra (2011), “Electrochemical genosensor based on modified octadecanethiol selfassembled monolayer for scherichia coli detection”, Sensors and Actuators B 151, 333- 340 19 C Chen, Z Hou, X Liu, E S W Kong, J Miao, Y Zhang (2007), “Fabrication and characterization of the performance of multi-channel carbonnanotube field-effect transistors”, Physics Letters A 366 474–479 20 C R Lowe (2007), “Overview of Biosensor and Bioarray Technologies”, Institute of Biotechnology, University of Cambridge, Cambridge, UK Ltd ISBN 978-0-470-01965-4 21 C Wang, J Zhang, K Ryu, A Badmaev, L G De Arco, and C Zhou (2009), “Wafer-Scale Fabrication of Separated Carbon Nanotube Transistors for Display Applications”, Nano lett, 9, 12, 4285 – 91 Thin-Film 22 C D Boehm (1989), “Use of Polymerase Chain Reaction for Diagnosis of Inherited Disorders”, Clin Chem., 35, 9, 1843 – 1848 141 23 Cao T T., Tam N.T.T, Chuc N.V., Tinh T X., Thang B H.and Minh P N (2011), “Single-walled carbon nanotubes synthesized by chemical vapor deposition of C2H2 over an Al2O3 supported mixture of Fe, Mo, Co catalysts”, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 2, 035007 (5pp) 24 Chuc N V., Dung D D., Hong P N., Quang L D., Khoi P H and Minh P N.(2008), “Synthesis of Carbon Nanotubes on Steel Foils, Synthesis of Carbon Nanotubes on Steel Foils”, Journal of the Korean Physical Society, Vol 52, No 5, pp 1368-1371 25 D J Fu-Jeng, I Kim and J Watada (2007), “Bio  inspired evolutionary method for cable trench problem”, International Journal of Innovative computing, Information and control, Vol 3, No.1, pp 111  118 26 D S Hecht, L Hu George, G Grüner (2007), “Electronic properties of carbon nanotube/fabric composites”, Current Applied Physics 7, 60-63 27 D Ivnitski, D J O'Neil, A Gattuso, R Schlicht, M Calidonna, R Fisher (2003), “Nucleic acid approaches for detection and indentification of biological warfare and infectious disease agents”, BioTecniques, Vol 35, 4, pp 862 869 28 D.Grieshaber, R.MacKenzie, J Văorăos, E Reimhult (2008), “Electrochemical Biosensors  Sensor Principles and Architectures”, Sensors, Vol 8, pp.1400  1458 29 Dinh T B., Danh T M., Duc N H and Binh N H (2013), “High-sensitivity planar Hall sensor based on simple gaint magneto resistance NiFe/Cu/NiFe structure for biochip Application”, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 4, 015017 (4pp) 30 Dzung N T , Lam T D., Huy L N., Binh N H, Hieu N V (2011), “Modified interdigitated arrays by novel poly (1,8-diaminonaphthalene)/carbon nanotubes composite for selective detection of mercury(II)”, Talanta 85, 2445– 2450 31 E Paleek (1998), “Electrochemical biosensors for DNA hybridization and DNA damage”, Biosensors and Bioelectronics, Vol 13, 6, 621-628 32 E L Gui, L.J Li, K Zhang, Y Xu, X Dong, X Ho, P S Lee, J Kasim, Z X Shen, J A Rogers, S.G Mhaisalkar (2007), “DNA Sensing by Field-Effect Transistors Based on Networks of Carbon Nanotubes”, J am Chem Soc., 129, 14427 – 14432 142 33 F Caruso (1998), “In-situ measurement of DNA immobilization and hybridization using a 27 MHz quartz crystal microbalance”, Colloids and Surfaces B: Bio-interfaces 10, 199–204 34 F Kleinjung, F.F Bier, A Warsinke, F.W Scheller (1997), “Fibre-optic genosensor for specific determination of femtomolar DNA oligomers”, Analytica Chimica Acta, 350, 51-58 35 F Zezza (2006), “Detection of Fusarium culmorum in wheat by a surface plasmon resonance - based DNA sensor”, Journal of Microbiological Methods, Vol 66, pp 529 36 G A Evtugyn, O E Goldfarb, H C Budnikov, A N Ivanov, V G Vinter (2005), “Amperometric DNA  Peroxidase Sensor for the Detection of Pharmaceutical Preparations”, Sensors, Vol 5, pp 364 – 376 37 G.I Dovbeshko, Repnytska, O.P Obraztsova, E.D Shtogun (2003), “DNA Interaction with Single-Walled Carbon Nanotubes: A SEIRA Study”, Chem Phys.Lett, 372, 432-437 38 G.J Lee, J.E Lim, J.H Park, S.K Choi, S Hong, H.K Park (2009), “Neurotransmitter detection by enzyme- immobilized CNT-FET”, Current Applied Physics 9, S25-S28 39 G.U Sumanasekera, C.K.W Adu, S Fang, P.C Eklund (2000), “Effect of gas adsorption and collision on Electrical transport in single-walled Carbon nanotubes”, Physics Review Letter 85, 1097 40 G.O Gladchenko, M.V Karachevtsev, V.S.Leontiev, V.A Valeev, A.Y Glamazda, A.M Plokhotnichenko, S.G Stepanian (2006), “Interaction of Fragmented Double-Stranded DNA with Carbon Nanotubes in Aqueous Solution”, Mol Phys., 104, 3193 41 H Shimauchi, Y Ohno, S Kishimoto, T Mizutani (2006), “Suppression of hysteresis in carbon nanotube field-effect transistors: Effect of contamination induced by device fabrication process”, Japanese Journal of Applied Physics, vol 45, pp 5501–5503 42 H Y Lin, L C Chiueh, D Yang, C Shih (2000), “Detection of Genetically Modified Soybeans and Maize by the Polymerase Chain Reaction Method”, Journal of Food and Drug Analysis, Vol 8, No 3, pp 200 – 207 143 43 H W.Ch Postma, T Teepen, Z Yao, M Grifoni, C Dekker (2001), “Carbon nanotube single- Electron transistors at Room temperature”, Science 293, 76 44 H Cai, X Cao, Y Jiang, P He, Y Fang (2003), “Carbon nanotube-enhanced electrochemical DNA biosensor for DNA hybridization detection ”, Anal Bioanal Chem, 375, 287-293 45 H Dai, J H Hafner, A.G Rinzler, D T Colbert, R E Smalley (1996), “Nanotubes as nanoprobes in scanning probe microscopy”, Nature 384,147 46 Hopkins A.R., Kruk N.A., Lipeles R.A (2007), “Macroscopic Alignment of Single-Walled Carbon Nanotubes (SWNTs)”, Surf Coat Technol., 202, 12821286 47 H Wang (2009), “Dispersing carbon nanotubes using surfactants”, Science 14, 364371 48 http://academic.brooklyn.cuny.edu/biology/16-05-doublehelix.jpg 49 http://jnm.snmjournals.org/content/48/7/1039/F1.expansion.html 50 http://www.who.int 51 Huy.T.Q., Thuy N.T.T., Tam P.D., Tuan M A., and Chien N.D (2007), “Investigation of electrochemical DNA sensor for biomedical application” Proceedings of the 2sd International Conference on Biomedical Engineering, 273 – 278 52 Hwang E.S., Cao C., Hong S., Jung H.J.,Cha C.Y., Choi J.B., Kim Y.J., Baik S (2006), “The DNA Hybridization Assay Using Single-Walled Carbon Nanotubes as Ultrasensitive, Long-Term Optical Labels”, Nanotechnology, 17, 3442-3445 53 Hong N T., Ken H K., N T T Tam, Minh P N., Khoi P H, S Lee(2009), “ Combined model for growing mechanism of carbon nanotubes using HFCVD: effect of temperature and molecule gas diffusion”, Thin Solid Films 517, 3562–3565 54 Hieu N V, Thuy L T B., Chien N D (2008), “Highly sensitive thin film NH3 gas sensor operating at room temperature based on SnO2/MWCNTs composite, Sensors and Actuators B 129, 888–895 55 Hieu N V, Duc N A P., Trung T., Tuan M A., Chien N D (2010), “Gassensing properties of tin oxide doped with metal oxides and carbon nanotubes: 144 A competitive sensor for ethanol and liquid petroleum gas”, Sensors and Actuators B 144, 450–456 56 Hieu N V, Dung N Q., Tam P D., Trung T., Chien N D (2009), “Thin film polypyrrole/SWCNTs nanocomposites-based NH3 sensor operated at room temperature, Sensors and Actuators B 140, 500–507 57 Hieu N V., Duy N V., Huy P T., Chien N D (2008), “Inclusion of SWCNTs in Nb/Pt co-doped TiO2 thin-film sensor for ethanol vapor detection”, Physica E 40 , 2950–2958 58 I Mannelli, M Minunni, S Tombelli, M Mascini (2003), “Quartz crystal microbalance (QCM) affinity biosensor for genetically modified organisms (GMOs) detection”, Biosensors and Bioelectronics 18, 129-140 59 Iijima, T Ichihashi (1991), “Single-shell carbon nanotubes of 1-nm diameter”, Nature 363, 603 60 J A Berberich, L Yang, I Bahar, A Russell (2005), “A stable three enzyme creatinine biosensor Analysis of the impact of silver ions on creatine amidinohydrolase”, Acta Biomaterialia Vol 1, pp.183 – 191 61 J K Kundul, Jaroslav, “Detection of Apple Stem Grooving Virus in Different Tissues of Apple Trees throughout the Year”, Plant Protection Science, Vol 39, No 3, pp 93  96 62 J Meng, M Yang, L Song, H Kong, C.Y Wang, R Wang, C Wang, S Xie, HY.Xu (2009), “Concentration control of carbon nanotubes in aqueous solution and its influence on the growth behavior of fibroblasts”, Colloids and Surfaces B: Biointerfaces 71, 148-153 63 J R Epstein (2003), “High-density microsphere-based fiber optic DNA microarrays”, Biosensors and Bioelectronics 18, 541-546 64 J Wang (2006), “Electrochemical biosensors: Towards point-of-care cancer diagnostics”, Biosensors and Bioelectronics 21, 1887–1892 65 J.B Cui, R Sordan, M Burghard, K Kern (2002), Carbon nanotube memory devices of high charge storage stability, Appl Phys Lett, 81, 3260 66 J.N Bonart, H Kind, T Stockli, L O Nilsson (2001), “Field Emission from Carbon Nanotube: the first five year”, Solid State Electronics 45, 893 145 67 J Zhao, “Dispersion of carbon nanotubes and their polymer composites”, Department of material sccience and engineering University of Cincinnati, October 2001 68 J Oh, S Yoo, Y W Chang, K Lim, K H Yoo ( 2009), “Nanotubes carbon based biosensors for dectection hepatitis B”, Current Applied Physics 9, 045 69 J E Weber, S Pillai, M K Ram, A Kumar, S R Singh (2011), “Electrochemical impedance-based DNA sensor using a modified single walled carbon nanotube electrode”, Materials Science and Engineering C 31, 821 – 825 70 J Yang, W D Zhang, S Gunasekaran (2010), “An amperometric nonenzymatic glucose sensor by electrodepositing copper nanocubes onto vertically well-aligned multi-walled carbon nanotube arrays”, Biosensors and Bioelectronics 26, 279 – 284 71 J E Huang, X H Li, J C Xu, H L Li (2003), “Well dispersed single– walled carbon nanotube/polyaninline composite films”, Carbon 41, 27312736 72 J Wang, S Li, Y Zhang (2010), “A sensitive DNA biosensor fabricated from gold nanoparticles, carbon nanotubes, and zinc oxide nanowires on a glassy carbon electrode”, Electrochimica Acta 55, 4436 – 4440 73 J Li, Y Zhang, T Yang, H Zhang, Y Yang, P Xiao (2009), “DNA biosensor by self-assembly of carbon nanotubes and DNA to detect riboflavin”, Materials Science and Engineering C 29, 2360 – 2364 74 J Jia, W Guan1, M Sim, Y Li, H Li (2008), “Carbon Nanotubes Based Glucose Needle-type Biosensor”, Sensors, 8, 1712-1718 75 J Wang (2002), “Electrochemical nucleic acid biosensor”, Analytica Chimica Acta, Volume 469, Issue 1, 63-71 76 J Yu, N Grossiord, C E Koning, J Loos (2007), “Controlling the dispersion of multi-wall carbon nanotubes in aqueous surfactant solution”, Carbon, 45, 618-623.24 77 K Balaubramanian, M Burghard (2005), “Chemically Funtionalzaed carbon nanotubes”, Small 1, No 2, 180 – 92 146 78 K Bradley, J C P Gabriel, M Briman, A Star, G Grüner (2003) , “Charge transfer from Ammonia Physisorbed on Nanotubes”, Phys Rev Lett, 91, 218 301 79 K R Rogers (2001), “Fiber optic biosensor for detection of DNA damage”, Analytica Chimica Acta 444, 51–60 80 K.P.S.S Hembram, G M Rao (2009), “Studies on CNTs/DNA composite”, Materials Science and Engineering C 29, 1093-1097 81 Khurisov B.I., Kharissova, Gutierrez HL, Mendez U (2009), “Recent advances on the soluble carbon nanotubes”, Ind Eng Chem Res 48, 572590 82 Kim U J, Furtado C A, Liu X, Chen G and Eklund P C (2005), “Raman and IR spectroscopy of chemically processed single-walled carbon nanotubes”, J Am Chem Soc 127, 9, 15437-45 83 Kuznetsova A, Popova I, Yates JT Jr, Bronikowski MJ, Huffman CB, Liu J, Smalley RE, Hwu HH, Chen JG (2001), “Oxygen-containing functional groups on single-wall carbon nanotubes: NEXAFS and vibrational spectroscopic studies”, J Am Chem Soc 123, 43, 10699-704 84 L Jiang, L Gao, J Sun ( 2003), “Production of aqueous colloidal dispersions of carbon nanotubes” , Journal of Colloid and Interface Science, 260, 89-94 85 Lam T D., Nhung H T M, Trang T M., Hoang V T., Ngoan N T., Thanh D T., Manh H D., Qui T N., Dien G P., Ha P T., Hong L V., Phuc N X (2010), “Nanosized magnetofluorescent Fe3O4–curcumin conjugate for multimodal monitoring and drug targeting”, Colloids and Surfaces A: Physicochem Eng Aspects 371, 104–112 86 Lam T D., Hong L V., Linh P H., Nhung H T M., Quy N T., Thien T L., Ha P T and Phuc N X (2010), “Biomedical and environmental applications of magnetic nanoparticles”, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 1, 045013 (5pp) 87 Lam T D., Dzung N T., Binh N H, Quan P D., Le N H (2011), “Corrigendum to „Development of interdigitated arrays coated with functional polyaniline/MWCNT for electrochemical biodetection: Application for human papilloma virus”, Talanta 85, 2715 88 Lien T T N., Lam T D., An V T H., Hoang T V., Duong T Q., Dinh Q K., Toshifumi T., Young H L., Jong S K (2010), “Multi-wall carbon nanotubes 147 (MWCNTs)-doped polypyrrole DNA biosensor for label-free detection of genetically modified organisms by QCM and EIS”, Talanta 80,1164–1169 89 Lich N.Q., Pho P Q., Chien N D., Lam N H (2012), “Investigation of the NH3 gas sensitivity and selectivity of CNT-based sensor”, Proceedings of International Conference on Advanced Materials and Nanotechnologies (ICAMN) 110 – 114 90 M S Alqasaimeh (2007), “A Urea Biosensor from Stacked Sol-Gel Films with Immobilized Nile Blue Chromoionophore and Urease Enzyme”, Sensors, 7, 2251-2262 91 M Zheng, A Jagota, E D Semke, B A Diner, R S McLean, S R.Lustig, R E Richardson, N G Tassi (2003), “A-assisted, dispersion, of separation, nanotubes carbon”, Nat Mater 2, 5, 338-342 92 M T Matinez, Y C.Tseng, N Ormategui, I Loinaz, R Eritja, J Bokor (2009), “Label-free DNA biosensors based on functionalized nanotubes carbon field effect transistors”, Nano Lett, 9, 530 93 M H Abouzar (2005), “Label-free detection of charged macromolecules using a field-effect-based biosensor” , Master of Science Thesis, Department of Applied Sciences and Technology, Germany 94 M W Marshall, S Popa-Nita, J G Shapter (2006), “Measurement of functionalised carbon nanotube carboxylic acid groups using a simple chemical process”, Carbon 44, 1137–1141 95 M Pacios, N Yilmaz, I Martín-Fernández, R Villa, P Godignon, M Del Valle, J Bartrolí, M J Esplandiu (2012), “A simple approach for DNA detection on carbon nanotube microelectrode arrays”, Sensors and Actuators B 162, 120 – 127 96 Michel T., Paillet M., Zahab A., Nakabayashi D., Jourdain V., Parret R and Sauvajol J-L (2010), “About the indexing of the structure of single-walled carbon nanotubes from resonant Raman scattering”, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 04500 97 Minh P N., Chuc N.V, Hong P N., Tam N.T.T.and Khoi P H (2008), “New Technique for the Synthesis of Carbon Nanotubes”, Journal of the Korean Physical Society, Vol 53, No 5, pp 2725_2730 148 98 N Ahsen (2001), “Oligonucleotide Melting Temperatures under PCR Conditions: Nearest  Neighbor Corrections for Mg 2+ , Deoxynucleotide Triphosphate, and Dimethyl Sulfoxide Concentrations with Comparison to Alternative Empirical Formulas”, Clinical Chemistry, Vol 47, No 11, 1956  1961 99 N Deiigiannis (2000), “ADN Detection System of Homo-olïgomers by Electrocbemical Impedence Measurements and Quantification through Radiole beling” Matter Thesis In The Department of Chemistry and Biochemistry Germany 100 Nakashima N., Okuzono S., Murakami H., Nakai T., Yoshikawa K (2003), “DNA Dissolves Single-Walled Carbon Nanotubes in Water”, Chem Lett., 5, 456-457 101 N H Binh (2005), “Fabrication of the DNA sensor based on micro- electrodes to detection the transgenic of soybean”, Material Science Master Thesis, HUT 102 N T M Hai (1999), “ISFET Fabrication and investigation of pH- ISFET based biosensor”, Material Science Master Thesis, HUT 103 O K Park, T Jevananda, N H Kim, S I Kim, J H Lee (2009), “Effects of surface modification on the dispersion and electrical conductivity of carbon nanotube/ployaniline composites”, Science 60, 551554 104 P.R.Gray, R.G.Meyer (1984), Analysis and design of analog integrated circuits, John, Wiley, New York 105 P.D.Thanh (2002), “ISFET fabrication and application for pesticide biosensor”, Material Science Master Thesis, HUT 106 P Avouris (2002), “Molecular Electronics with carbon nanotube”, Acc Chem., 35, 1026-1034 107 Phuc N X, Lam T D., Ha P T., Nam P H., Thu T M., Hoai L P., Hong L V., Hung M D., Hoa P T B., Giang Pham T H., Dac T N., Nhung H T M., K Lam and Quy N T (2012), “Iron oxide-based conjugates for cancer theragnostics”, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 3, 033001 (13pp) 108 Q Wang, B Zhang, X Lin, W Weng (2011), “Hybridization biosensor based on the covalent immobilization of probe DNA on chitosan–mutiwalled carbon 149 nanotubes nanocomposite by using glutaraldehyde as an arm linker”, Sensors and Actuators B, 156, 599-605 109 R Levicky, A Horgan (2005), “Physicochemical perspectives on DNA microarray and biosensor technologies”, Trends in Biotechnology, Vol 23, No 3, 143  149 110 R Martel, H.-S P.Wong, K Chan, and P.Avouris (2001), Carbon nanotube field-effect transistors for logic applications, in Proc IEDM 2001, 159–161 111 R Martel, T Schmidt, H R Shea, T Hertel, P Avouris (1998), “Single and multi-wall carbon nanotube field-effect transistors”, Appl Phys.Lett., vol 73, 2447–2449 112 R Martel, V Derycke, C Lavoie, J Appenzeller, K Chen, J Tersoff, and P Avouris (2001), “Ambipolar electrical transport in semiconducting single-wall carbon nanotubes”, Phys Rev Lett., vol 87, 256 805/1–256 805/4 113 R.F.Service (1996), “Mixing Nanotube Structure to Make a Tiny Switch”, Science 271, 1232 114 R A Villamizar, A Maroto, F Xavier Rius, I Inza, M J Figueras (2008), “Fast detection of Salmonella Infantis with carbon nanotube field effect transistors”, Biosensors and Bioelectronics 24, 279 – 283 115 R A Villamizar, A Maroto, F X Rius (2009), “Improved detection of Candida albicans with carbon nanotube field-effect transistors”, Sensors and Actuators B 136, 451 – 457 116 Reddy A L M., Ramaprabhu S (2007), “Hydrogen storage properties of nanocrystalline Pt dispersed multi-walled carbon nanotubes”, Int J Hydrog Energy 32, 3998- 4004 117 R Saito (1998), Physical Properties of Carbon Nanotubes, London, Imperial College Press 118 S M Sze (1981), Physics of Semiconductor Device, Wiley, New York 119 S Pantalei, E Zampetti, A Macagnano, A Bearzotti, I Venditti, M V Russo (2007), “Enhanced Sensory Properties of a Multichannel Quartz Crystal Microbalance Coated with Polymeric Nanobeads”, Sensors, Vol 7, 2920  2928 150 120 S Tans, S Verschueren, and C Dekker (1998), “Room-temperature transistor based on single carbon nanotube”, Nature, Vol 393, 49–52 121 S.A Mc Gill, S.G Rao, P Manadhar, P Xiong, S Hong (2006), “Highperformances, hysteresis-free carbon nanotube field-effect transistors via directed assembly”, Appl Phys Lett 89, 163-123 122 S Usuda, H Okamoto, H Iwanari, K Baba, F Tsuda, Y Miyakawa, M Mayumi (1999), “Serological detection of hepatitis B virus genotypes by ELISA with monoclonal antibodies to type-specific epitopes in the preS2region product”, Journal of Virological Methods 80, 97 – 112 123 Sánchez P.G., Cabrera C R (2007), “Vertical Attachment of DNA-CNT Hybrids on Gold”, J Electroanal Chem., 606, 47-54 124 Sánchez P.G., Morales N Y., Cbrera C.R (2005), “Study of Self-Assembled Monolayers of DNA and DNA-Carbon Nanotube Hybrids”, Rev Adv Mater Sci., 10, 261-265 125 S Tombelli (2005), “Piezoelectric biosensors: Strategies for coupling nucleic acids to piezoelectric devices”, Methods 37, 48-56 126 S E Baker, W Cai, T L Lasseter, K P Weidkamp, R J Hamers (2002), “Covalently Bonded Adducts of Deoxyribonucleic Acid (DNA) Oligonucleotides with Single-Wall Carbon Nanotubes”, Synthesis and Hybridization, Nanoletters, 2, 1413-1417 127 S Subramanian, K H Aschenbach, J P Evangelista, M B Najjar, W Song, R D Gomez (2012), “Rapid, sensitive and label-free detection of Shiga-toxin producing Escherichia coli O157 using carbon nanotube biosensors”, Biosensors and Bioelectronics 32, 69 – 75 128 Star, A.; Tu, E.; Niemann, J.; Gabriel, J.C.P.; Joiner, C.S.; Valcke, C (2006), “Label-free detection of DNA hybridization using carbon nanotube network field-effect transistors”, Proc Natl Acad Sci.USA, 103, 921–926 129 S H Jin, A E Islam, T Kim, M A Alam, J A Roges, (2012), “Sourses of hysteresis in carbon nanotube field – effect transistor and their elimination via methylsiloxane encapsulants and optimized growth procedures”, Adv.Funct mater, 22, 2276 – 2284 151 130 T G Drummond, M G Hill, J K Barton (2003), “Electrochemical DNA sensor”, Nature Biotechnology- Nature Biotechnol, Vol 21, No.10, 1192-1199 131 T V Trung, (2007), “Portable Device Detected Pesticide Concentration by Biosensor”, Material Science Master Thesis, HUT 132 T Weber (1997), “Polymerase chain reaction for detection of JC virus DNA in cerebrospinal fluid: a quality control study”, Journal of Virological Methods, Vol 69, pp 231  237 133 Taeger S., Xuang L.Y., Günther K., Mertig M (2005), “Noncovalent Sidewall Functionalization of Carbon Nanotubes by Biomolecules: Single-stranded DNA and Hydrophobin”, AIP Conf Proc., 262-265 134 T Ahuja (2007), “Biomolercular immobilization on conducting polymers for biosensing applications”, Biomaterials 28, 791-805 135 T Dastagir, E S Forzani, R Zhang, I Amlani, L A Nagahara, R Tsui, N Tao (2007), “Electrical detection of hepatitis C virus RNA on single wall carbon nanotube-field effect transistors”, Analyst, 132, 738 – 740 136 Tung P X T., Tuyen L T T., Duy T P., Binh V P., Hien T D and Chien D M (2010), “Oxidation of a platinum microwire surface applied in glucose detection”, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 1, 025013 (4pp) 137 Tuyen L T T, Duy T P, Tung P X T Hien T D and Chien D M (2010), “Glucose oxidase immobilization on different modified surfaces of platinum nanowire for application in glucose detection”, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 1, 035004 (4pp) 138 Tuan T Q , Son N V., Dung H T K., Luong N H., Thuy B T., Anh N T V., Hoa N D., Hai N H (2011), “Preparation and properties of silver nanoparticles loaded in activated carbon for biological and environmental applications”, Journal of Hazardous Materials 192, 1321– 1329 139 Thang B H., Hong P N., P V Trinh, Chuc N V., N T T Tam, Khoi P H., Minh P N (2010), “Simulation of thermal dissipation in a l-processor using carbon nanotubes based composite”, Computational Materials Science 49, S302–S306 140 Thang B H., Chuc N V., Trinh P V., Tam Ngo T T and Minh P N (2011), “Thermal dissipation media for high power electronic devices using a carbon 152 nanotube-based composite”, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 2, 025002 (4pp) 141 Thang N B., Tinh T.X., Chuc N.V., Tam N.T.T., Thang B H., Nghia N X., Khoi P H and Minh P N (2012), “Fabrication of horizontally aligned ultralong single-walled carbon nanotubes on Si substrates using the fast-heating chemical vapor deposition method”, Adv Nat Sci.: Nanosci Nanotechnol 3, 025010 (4pp) 142 V Derycke, R Martel, J Appenzeller and Ph Avouris (2002), “Controlling doping and carrier injection in carbon nanotube transistors”, Applied Physics Letters, Vol 80, 15, 2773-2775 143 V N Popov (2004), “Carbon nanotubes: properties and application”, Materials Science and Engineering R 43, 61–102 144 V Noel, S Reisberg, B Piro, Minh C P., (2006), “Selectivity and sensitivity of a reagentless electrochemical DNA sensor studied by square wave voltammetry and fluorescence”, Bioelectrochemistry, Vol 69, 2, 172  179 145 W Yang, P Thordarson, J Gooding, S P Ringer, F Braet (2007), “Carbon nanotubes for biological and biomedical applications”, Nanotechnology, 18, 41200141 146 Wind S J., Appenzeller J., Avouris P., Martel R., Derycke U (2003), “Vertical scaling of carbon nanotube field effect transistors using top gate electrodes”, Physical Review Letters Vol 80, 20, 3817 147 www.eng.uc.edu/~gbeaucag/Classes/Nanopowders/CarbonBasedNanoPowder s/ZhaoCarbonNanoTubeComposite.doc, 10-2006 148 X Liu, W Tan (1999), “A fiber-optic evanescent wave DNA biosensor based on novel molecular beacons”, Analytical Chemistry 71, 5054- 5059 149 X Tang, S Bansaruntip, N Nakayama, E Yenilmez, Y L Chang, Q Wang (2006), “Nanotubes carbon DNA sensor and sensing mechanism”, Nano Lett, 6, 1632 150 Xuan-H P., Minh P N B., Cheng A L., Kwi N H., J H Kim, H Won, G H Seong (2010), “Electrochemical characterization of a single-walled carbon nanotube electrode for detection of glucose”, Analytica Chimica Acta 671, 36 – 40 153 151 Y Han, D Mayer, A O Usser, S Ingebrandt (2006), “Surface activation of thin silicon oxides by wet cleaning and silanization”, Thin solid Films, Vol.510, No 1-2, pp 175-180 152 Y.Wang, J.Wu, F.Fei (2003), “A treatment method to give separated multiwalled carbon nanotubes with high purity, high crystallization and a large aspect ratio”, Carbon, 41, 2939 – 2948 153 Y Uludag, R Hammond, M A Cooper (2010), “A signal amplification assay for HSV type viral DNA detection using nanoparticles and direct acoustic profiling”, Journal of Nanobiotechnology doi:10.1186/1477- 3155-8-3 154 Y Zou, C Xiang, L X Sun, F Xu (2008), “Glucose biosensor based on electrodeposition of platinum nanoparticles onto carbon nanotubes and immobilizing enzyme with chitosan-SiO2 sol–gel”, Biosensors and Bioelectronics 23, 1010 – 1016 155 Y Chen, Elling, Y L Lee, S C Chong (2006), “A Fast, Sensitive and Label Free Electrochemical DNA Sensor”, journal of Physics, Vol.34, 204  209 156 Yu J., Grossiord N., Koning C E , Loos J (2007), “The dispersion of multiwall nanotubes in aqueous surfactant solution”, Carbon 45, 618-623 157 Y.M Lin, J Appenzeller, Z Chen, Z G Chen, H M Cheng, P Avouris (2005), “High-Performance Dual-Gate Carbon Nanotube FETs with 40-nm Gate Length” , IEEE electron device letters, Vol 26, 11, 823- 825 158 Y Zhang, Z Wang, Y Wang, L Huang, W Jiang, M Wang (2012), “Electrochemical detection of sequence-specific DNA with the amplification of gold nanoparticles”, International Journal of Electrochemistry 2011 doi:10.4061/2012/619782 159 Y Tan, D E Resasco (2005), “Dispersion of Single-Walled Carbon Nanotubes of Narrow Diameter Distribution”, J Phys Chem B, 109, 1445414460 154 ... Chƣơng 1: Cảm biến sinh học sở transistor hiệu ứng trường ống nano carbon (CNTFETs) Chƣơng trình bày tổng quan kiến thức liên quan đến cảm biến sinh học sở transistor hiệu ứng trƣờng ống nano carbon... tán ống nano carbon định hƣớng ứng dụng cảm biến sinh học chế tạo CNTFETs; (2) nghiên cứu, thiết kế, chế tạo transistor hiệu ứng trƣờng sở ống nano carbon; (3) phát triển cảm biến sinh học sở transistor. .. tiêu đề: ? ?Cảm biến sinh học sở transistor hiệu ứng trƣờng (FET) sử dụng ống nano carbon” đƣợc đề xuất cho luận án tiến sĩ Đây nghiên cứu Việt Nam kết hợp ống nano carbon với thành phần sinh học

Ngày đăng: 05/04/2014, 18:56

TỪ KHÓA LIÊN QUAN

TÀI LIỆU CÙNG NGƯỜI DÙNG

TÀI LIỆU LIÊN QUAN