(LUẬN văn THẠC sĩ) nghiên cứu xây dựng phương pháp multiplex pcr xác định một số tác nhân gây nhiễm khuẩn huyết​

ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƢỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - - Phạm Thị Thùy NGHIÊN CỨU XÂY DỰNG PHƢƠNG PHÁP MULTIPLEX PCR XÁC ĐỊNH MỘT SỐ TÁC NHÂN GÂY NHIỄM KHUẨN HUYẾT LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC Hà Nội - 2016 download by : skknchat@gmail.com ĐẠI HỌC QUỐC GIA HÀ NỘI TRƢỜNG ĐẠI HỌC KHOA HỌC TỰ NHIÊN - - Phạm Thị Thùy NGHIÊN CỨU XÂY DỰNG PHƢƠNG PHÁP MULTIPLEX PCR XÁC ĐỊNH MỘT SỐ TÁC NHÂN GÂY NHIỄM KHUẨN HUYẾT Chuyên ngành: Sinh học thực nghiệm Mã số: 60420114 LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: TS Lã Thị Huyền PGS.TS Nguyễn Quang Huy Hà Nội - 2016 download by : skknchat@gmail.com Lời cam đoan Tơi xin cam đoan: Luận văn cơng trình nghiên cứu thực cá nhân, thực hướng dẫn khoa học PGS TS Nguyễn Quang Huy TS Lã Thị Huyền Các số liệu, kết luận văn trung thực chưa cơng bố cơng trình khác Tôi xin chịu trách nhiệm nghiên cứu Hà Nội, tháng 12 năm 2016 Học viên Phạm Thị Thùy download by : skknchat@gmail.com Lời cảm ơn Trước hết, tơi xin bày tỏ lịng biết ơn chân thành sâu sắc tới: PGS TS Nguyễn Quang Huy – Trưởng khoa Sinh học - Trường đại học Khoa học Tự nhiên – Đại học Quốc Gia Hà Nội TS Lã Thị Huyền – Phụ trách phịng Cơng nghệ Tế bào Động vật – Viện Công nghệ Sinh học – Viện Hàn lâm Khoa học Việt Nam tận tình hướng dẫn tơi q trình nghiên cứu để hồn thành luận văn thạc sĩ Tơi xin chân thành cảm ơn thầy cô giáo Khoa Sinh học – Trường đại học Khoa học Tự nhiên – Đại học Quốc Gia Hà Nội nói chung thầy giáo chuyên ngành Sinh học thực nghiệm học nói riêng bảo tận tình tạo điều kiện thuận lợi cho thực luận văn Tôi xin chân thành cảm ơn Khoa Hóa sinh, khoa Vi sinh khoa phòng liên quan Bệnh viện Thanh Nhàn cung cấp mẫu thí nghiệm cho tơi Tơi xin gửi lời cảm ơn tới cô chú, anh chị bạn cơng tác phịng phịng Cơng nghệ Tế bào Động vật tồn thể chú, anh chị bạn đồng nghiệp Khoa Hóa sinh – Bệnh viện 198 nhiệt tình giúp đỡ tạo điều kiện thuận lợi để tơi hồn thành luận văn Cuối cùng, xin chân thành cảm ơn tất người thân, bạn bè động viên giúp đỡ thời gian qua Hà Nội, tháng 12 năm 2016 Học viên Phạm Thị Thùy download by : skknchat@gmail.com MỤC LỤC MỞ ĐẦU CHƢƠNG TỔNG QUAN TÀI LIỆU 1.1 Nhiễm khuẩn huyết 1.1.1 Khái niệm, lịch sử tình hình nhiễm khuẩn huyết giới Việt Nam 1.1.2 Dấu hiệu nhiễm khuẩn huyết .7 1.2 Tác nhân vi khuẩn gây nhiễm khuẩn huyết thường gặp 1.2.1 Tụ cầu khuẩn Staphylococcus aureus 1.2.2 Acinetobacter baumannii 1.2.3 Klebsiella pneumoniae 11 1.2.4 Pseudomonas aeruginosa 12 1.2.5 Escherichia coli .14 1.3 Các phương pháp chẩn đoán nhiễm khuẩn huyết 15 1.3.1 Chẩn đoán nhiễm khuẩn huyết phương pháp cấy máu 15 1.3.2 Lai huỳnh quang chỗ 15 1.3.3 Các kỹ thuật khuếch đại DNA 16 1.3.4 Giải trình tự 18 1.4 Multiplex PCR ứng dụng 19 1.4.1 Giới thiệu chung multiplex PCR 19 1.4.2 Các loại phản ứng multiplex PCR 19 1.4.3 Thiết kế mồi cho phản ứng multiplex PCR .20 1.4.4 Ưu điểm phương pháp multiplex PCR 21 1.4.5 Tối ưu hóa thành phần cho phản ứng multiplex PCR .22 1.4.6 Ứng dụng phản ứng multiplex PCR 24 1.4.7 Tình hình ứng dụng kỹ thuật PCR việc xác định tác nhân nhiễm khuẩn huyết 25 CHƢƠNG VẬT LIỆU VÀ PHƢƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU .27 download by : skknchat@gmail.com 2.1 Vật liệu 27 2.1.1 Hóa chất sinh phẩm .27 2.1.2 Thiết bị .28 2.2 Phương pháp nghiên cứu 28 2.2.1 Thiết kế primer 29 2.2.2 Tách chiết DNA .29 2.2.3 Phương pháp làm giàu DNA vi khuẩn 30 2.2.4 Xác định nồng độ DNA 31 2.2.5 Phương pháp điện di DNA gel agarose 31 2.2.6 Phương pháp PCR 32 2.2.7 Phương pháp giải trình tự gen 33 2.2.8 Đạo đức nghiên cứu .34 CHƢƠNG KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 35 3.1 Kết lựa chọn thiết kế mồi đặc hiệu gen đích .35 3.2 Kết kiểm tra cặp mồi thực nghiệm 38 3.2.1 Kiểm tra DNA tổng số tách chiết từ chủng vi khuẩn 38 3.2.2 Kết PCR kiểm tra cặp mồi đơn chủng vi khuẩn đích 39 3.2.3 Kết xác định trình tự sản phẩm PCR từ chủng vi khuẩn Staphylococcus aureus, Acinetobacter baumannii, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae Pseudomonas aeruginosa 40 3.2.4 Kiểm tra tính đặc hiệu cặp mồi 43 3.2.5 Kết kiểm tra tính đặc hiệu cặp mồi gen đích phản ứng multiplex PCR 45 3.3 Kết tối ưu phản ứng multiplex PCR xác định đồng thời vi khuẩn đích 47 3.3.1 Kết tối ưu nồng độ mồi phản ứng multiplex PCR 47 3.3.2 Kết tối ưu nhiệt độ gắn mồi phản ứng multiplex PCR .48 3.3.3 Kết lựa chọn Master Mix phản ứng multiplex PCR 50 3.4 Kết thử nghiệm phương pháp multiplex PCR chủng nhiễm khuẩn 51 download by : skknchat@gmail.com 3.5 Kết thử nghiệm phương pháp multiplex PCR mẫu bệnh phẩm .53 3.5.1 Kết thử nghiệm phương pháp multiplex PCR mẫu bệnh phẩm cấy máu 53 3.5.2 Kết thử nghiệm phương pháp multiplex PCR mẫu lâm sàng 58 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 61 TÀI LIỆU THAM KHẢO 62 PHỤ LỤC download by : skknchat@gmail.com DANH MỤC CÁC BẢNG Bảng 1.1 Tiêu chí đặt tên ACCP / SCCM [16] Bảng 2.1 Trình tự Nucleotide cặp mồi 27 Bảng 3.1 Trình tự mồi kích thước sản phẩm PCR theo tính tốn lý thuyết 37 Bảng 3.2 Kết thử nghiệm phản ứng multiplex PCR 52 Bảng 3.3 So sánh kết multiplex PCR mẫu bệnh phẩm cấy máu 55 với kết phương pháp cấy máu 55 download by : skknchat@gmail.com DANH MỤC CÁC HÌNH Hình 1.1 Mối quan hệ phản ứng viêm toàn thân nhiễm trùng, vùng giao nhiễm khuẩn huyết [16, 56] Hình 1.2 Hình ảnh cấu trúc gen vi khuẩn Staphylococcus aureus Hình 1.3 Hình ảnh chế xâm nhập vi khuẩn Acinetobacter baumannii 10 Hình 1.4 Hình ảnh tác động vi khuẩn Klebsiella pneumonia .11 Hình 1.5 Hình ảnh tác động vi khuẩn Pseudomonas aeruginosa 13 Hình 1.6 Hình ảnh phân loại vi khuẩn Escherichia coli .14 Hình 1.7 Mơ hình mơ tả phản ứng multiplex PCR 20 Hình 3.1 Điện di kiểm tra DNA tổng số chủng Staphylococcus aureus, Acinetobacter baumannii, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae Pseudomonas aeruginosa tách chiết từ chủng chuẩn 38 Hình 3.2 Kiểm tra tính đặc hiệu cặp mồi gen đích chủng vi khuẩn gây nhiễm khuẩn huyết tương ứng 40 Hình 3.3 Kiểm tra khả nhân đặc hiệu cặp mồi femA, gltA, oprL, mdh, phoA với chủng Staphylococcus aureus, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae Escherichia coli 43 Hình 3.4 Kiểm tra tính đặc hiệu cặp mồi gen đích phản ứng multiplex PCR 45 Hình 3.5 Tối ưu nồng độ mồi cho phản ứng multiplex PCR 47 Hình 3.6 Tối ưu nhiệt độ gắn mồi cho phản ứng multiplex PCR 49 Hình 3.7 Lựa chọn thành phần Mastermix phản ứng multiplex PCR 50 Hình 3.8 Thử nghiệm phương pháp multiplex PCR mẫu bệnh phẩm cấy máu .53 Hình 3.9 Thử nghiệm phương pháp multiplex PCR mẫu lâm sàng 59 download by : skknchat@gmail.com DANH MỤC CÁC CHỮ VIẾT TẮT ACCP American College of Chest Physicians AW1 Wash buffer AW1 AW2 Wash buffer AW2 BN Bệnh nhân DNA Deoxyribonucleic acid (acid Deoxyribonucleic) dNTP Deoxyribonucleoside triphosphate EDTA Ethylenediaminetetraacetic acid EtBt Ethidium bromide EtOH Ethanol ICU Intensive care unit (Đơn vị chăm sóc đặc biệt ) MLST Multilocus sequence typing (Xác định trình tự nhiều gen đặc trưng) MRSA Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (Tụ cầu vàng kháng Methicillin) Mutiplex PCR Phản ứng khuếch đại nhiều DNA đích NKH Nhiễm khuẩn huyết NVYT Nhân viên y tế PAF Platelet-activating factor RNA Ribonucleic acid (Acid Ribonucleic) SCCM Socity Critical Care Medicine SDS Sodium dodecyl sulfate SNP Single nucleotide polymorphism (Đa hình sợi đơn ) TAE Tris-EDTA-Acetic acid download by : skknchat@gmail.com Reviews Immunology, 13(12), pp 862–874 40 Jason P., Younsuck K., Bin D et al (2011), "Management of severe sepsis in patients admitted to Asian intensive care units: prospective cohort study", BMJ, 342, pp 32-45 41 Jbara I., Baysallar M., Kiliỗ A., Yetier S., Unay B., Aỗikel C., Yapar M., Doğanci L (2007), “Comparison of culture and polymerase chain reaction methods for the detection of Haemophilus influenzae, Streptococcus pneumoniae and Moraxella catarrhalis in cerebrospinal fluids and middle ear effusions”, Mikrobiyol Bul., 41(4), pp 495-502 42 Josefson P., Stralin K., Ohlin A., Ennefors T., Dragsten B (2011), “Evaluation of a commercial multiplex PCR test (Septi-Fast) in the etiological diagnosis of community-onset bloodstream infections”, European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases: official publication of the European Society of Clinical Microbiology, 30(9), pp 1127–1134 43 Kirn T J, Weinstein M P (2013), “Update on blood cultures: how to obtain, process, report, and interpret”, Clinical Microbiology and Infection: the official publication of the European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases, 19(6), pp 513–520 44 Kong R.Y.C., So C.L., Law W.F., Wu R.S.S (1999), “A sensitive and versatile multiplex PCR system for the rapid detection of enterotoxigenic (ETEC), enterohaemorrhagic (EHEC) and enteropathogenic (EPEC) strains of Escherichia coli”, Marine Pollution Bulletin, 38(12), pp 1207-1215 45 Kumar A., Haery C., Paladugu B., Symeoneides S., Taiberg L (2006), “The duration of hypotension before the initiation of antibiotic treatment is a critical determinant of survival in a murine model of Escherichia coli septic shock: asso-ciation with serum lactate and inflammatory cytokine levels”, The Journal of Infectious Diseases, 193(2), pp 251–258 46 Kurutepe S., Ecemiş T., Ozgen A., Biỗmen C., Celik P., Aktou ệzkan S., Sỹrỹcỹolu S (2012), “Investigation of bacterial etiology with conventional 67 download by : skknchat@gmail.com and multiplex PCR methods in adult patients with community-acquired pneumonia” Mikrobiyol Bul., 46(4), pp 523-531 47 Labelle A J., Micek S T., Roubinian N., Kollef M H (2008), “Treatment related risk factors for hospital mortality in Candida bloodstream infections”, Critical Care Medicine, 36(11), pp 2967–2972 48 Lambiase A., Piazza O., Rossano F et al (2012), “Pesistence of carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii strains in an Italian intensive care unit during a forty-six month study periode”, New Microbiological, 35, pp 199-206 49 Leea N Y., Leea C C., Huang W H., Tsuic K C., Hsuehb P R., Koa W C (2012), “Carbapenem Therapy for Bacteremia Due to Extended-Spectrum-βLactamase-Producing Escherichia coli or Klebsiella pneumoniae: Implications of Ertapenem Susceptibility”, Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 56(6), pp 2888-2893 50 Levy M M., Fink M “SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS P., Marshall international J sepsis C (2001), definitions conference”, Critical Care Medicine, 31(4), pp 1250–1256 51 Levy M.M., Fink M.P., Marshall J.C., Abraham E., Angus D., Cook D., Cohen J., Opal S M., Vincent J L., Ramsay G (2003), “SCCM/ ESICM/ACCP/ATS/SIS international sepsis definitions conference”, Intensive Care Medicine, 29, pp 530–538 52 Liesenfeld O., Lehman L., Hunfeld K H., Kost G (2014), “Molecular diagnosis of sepsis: new aspects and recent developments”, European Journal of Microbiology and Immunology, (1), pp 1–25 53 Lomholt J A., Poulsen K., Kilian M (2001), “Epidemic populationstructure of Pseudomonas aeruginosa: evidence for a clone that is pathogenicto the eye and that has a distinct combination of virulence factors”, Infection Immunology, 69(10), pp 6284–6295 54 Maiden M C., Bygraves J A., Feil E., Morelli G., Russell J E., Urwin R., 68 download by : skknchat@gmail.com Zhang Q., Zhou J., Zurth K., Caugant D A., Feavers I M., Achtman M., Spratt B G (1998), “Multilocus sequence typing: a portable approach to identification of clones within populations of pathogenic microorganisms”, Proceedings of the National Academy of Sciences USA, 95(6), pp 3140– 3145 55 Mancini N., Carletti S., Ghidoli N., Cichero P., Burioni R (2010), “The era of molecular and other nonculture based methods in diagnosis of sepsis”, Clinical Microbiology Reviews, 23(1), pp 235–251 56 Martin G S., Mannino D M., Eaton S, Moss M (2003), “The epidemiology of sepsis in the United States from 1979 through 2000”, The New England Journal of Medicine, 348, pp 1546–1554 57 Martin, G S (2012), “Sepsis, severe sepsis and septic shock: changes in incidence, pathogens and outcomes”, Expert Review of Anti-infective Therapy, 10(6), pp 701–706 58 Mayr F B., Yende S., Linde-Zwirble W T., Peck-Palmer O M., Barnato A E (2010), “Infection rate and acute organ dysfunction risk as explanations for racial differences in severe sepsis”, JAMA: the journal of the American Medical Association, 303(24), pp 2495–2503 59 Mehrotra M., Wang G., Johnson W.M (2000), “Multiplex PCR for detection of genes for Staphylococcus aureus enterotoxins, exfoliative toxins, toxic shock syndrome toxin 1, and methicillin resistance”, Journal of Clinical Microbiolog, 38(3), pp 1032-1035 60 Nordmann P., Gniadkowski M., Giske C G., Poirel L., Wood-ford N (2012), “Identification and screening of carbapenemase producing Enterobacteriaceae”, Clinical Microbiology and Infection, 18(5), pp 432– 438 61 Oliveira K., Haase G., Kurtzman C., Hyldig-Nielsen J J., Stender H (2001), “Differentiation of Candida albicans and Candida dubliniensis by fluorescent in situ hybridization with peptide nucleic acid probes”, Journal of Clinical 69 download by : skknchat@gmail.com Microbiology, 39(11), pp 4138–4141 62 Opal S M., Garber G E., LaRosa S P., Maki D G., Freebairn R C (2003), “Systemic host responses in severe sepsis analyzed by causative microorganism and treatment effects of drotrecogin alfa (activated)”, Clinical Infectious Diseases, 37(1), pp 50–58 63 Osek J (2001), “Multiplex polymerase Chain reaction assay for identification of Escherichia coli strains”, Journal of Veterinary Diagnostic investigation, 13(4), pp 308-311 64 Paolucci M., Landini M P., Sambri V (2010), “Conventional and molecular techniques for the early diagnosis of bacteraemia”, International Journal of Antimicrobial Agents, 36(2), pp 6–16 65 Perez-roth E., Claverie F., Villar J., Mendez S (2001), “Multiplex PCR for simultaneous identification of Staphylococcus aureus and detection of methicilin and mupirocin resistance”, Journal of Clinical Microbiology, 39(11), pp 4037-4041 66 Pirnay J P., De Vos D., Cochez C., Bilocq F., Vanderkelen A., Zizi M., Ghysels B., Cornelis P (2002), “Pseudomonas aeruginosa displays an epidemic population structure”, Environment Microbiology, 4(12), pp 898– 911 67 Prathiba K., Chow C., Gamini K., Chit L P (2004), “Rapid detection of Klebsiella pneumoniae from blood culture bottles by real-time PCR”, Clinical Microbiology, 42(3), pp 1337–1340 68 Qian Q., Tang Y W., Kolbert C P., Torgerson C A., Hughes J G (2001), “Direct identification of bacteria from positive blood cultures by amplification and sequencing of the 16S rRNA gene: evaluation of BACTEC 9240 instrument true-positive and false-positive results”, Journal of Clinical Microbiology, 39(10), pp 3578–3582 69 Ramsamy Y., Hardcastle T C., Muckart D J (2016), “Surviving Sepsis in the Intensive Care Unit: The Challenge of Antimicrobial Resistance and the 70 download by : skknchat@gmail.com Trauma Patient”, World journar of surgery, DOI: 10.1007/s00268-016-35310 70 Rangel Frausto M S., Pittet D., Costigan M., Hwang T., Davis C S (1995), “The natural history of the systemic inflammatory response syndrome (SIRS) A prospective study”, JAMA: the journal of the American Medical Association, 273(2), pp 117–123 71 Russmann H., Kempf V A., Koletzko S., Heesemann J., Auten-rieth I B (2001), “Comparison of fluorescent in situ hybridization and conventional culturing for detection of Helicobacter pylori in gastric biopsy specimens” Journal of Clinical Microbiology, 39(1), pp 304–308 72 Sautter R L., Bills A R., Lang D L., Ruschell G., Heiter B J (2006), “Effects of delayed-entry conditions on the recovery and detection of microorganisms from BacT/ALERT and BAC-TEC blood culture bottles”, Journal of Clinical Microbiology, 44(4), pp 1245–1249 73 Savitha, N., Prasanthi, N., Dasarathy, R., Gayathri A (2006), “Genotyping ofmethicillin- resistant Staphylococcus aureus isolates from Indian hospitals” , Current Science, 91(10), pp 1364-1369 74 Shepard J R., Addison R M., Alexander B D., Della Latta P., Gherna M (2008), “Multicenter evaluation of the Candida albicans/Candida glabrata peptide nucleic acid fluorescent insitu hybridization method for simultaneous dualcolor identification of C Albicans and C glabrata directly from blood culture bottles”, Journal of Clinical Microbiology, 48(1), pp 50–55 75 Tang Y W., Kilic A., Yang Q., McAllister S K., Li H (2007), “StaphPlex system for rapid and simultaneous identification of antibiotic resistance determinants and Panton-Valentine leukocidin detection of staphylococci from positive blood cultures”, Journal of Clinical Microbiology, 45(6), pp 1867–1873 76 Thong, K L., Lai, M Y., Teh C S J., Chua K H (2011), “Simultaneous detection of methicillin-resistant Staphylococcus aureus, Acinetobacter 71 download by : skknchat@gmail.com baumannii, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae and Pseudomonas aeruginosa by multiplex PCR”, Tropical Biomedicine, 28(1), pp 21–31 77 Tsalik E L., Jones D., Nicholson B., Waring L., Liesenfeld O (2010), “Multiplex PCR to diagnose bloodstream infections in patients admitted from the emergency department with sepsis”, Journal of Clinical Microbiology, 48(1), pp 26–33 78 Turenne C Y., Witwicki E., Hoban D J., Karlowsky J A., Kabani A M (2000), “Rapid identification of bacteria from positive blood cultures by fluorescence-based PCR-single-strand conformation polymorphism analysis of the 16S rRNA gene”, Journal of Clinical Microbiology, 38(2), pp 513– 520 79 Vincent J L (2000), “Procalcitonin: the marker of Sepsis”, Critical Care Medicine, 28(4), pp 1226–1228 72 download by : skknchat@gmail.com PHỤ LỤC Phụ lục 1: Hình ảnh Chromas trình tự gen mdh Klebsiella pneumoniae Phụ lục 2: Hình ảnh Chromas trình tự gen femA Staphylococcus aureus Phụ lục 3: Hình ảnh Chromas trình tự gen oprL Pseudomonas aeruginosa i download by : skknchat@gmail.com Phụ lục 4: Hình ảnh Chromas trình tự gen phoA Escherichia coli Phụ lục 5: Hình ảnh Chromas trình tự gen gltA Acinetobacter baumannii ii download by : skknchat@gmail.com Phụ lục 6: Kết phân tích Blast gen oprL Pseudomonas aeruginosa iii download by : skknchat@gmail.com Phụ lục 7: Kết phân tích Blast gen gltA Acinetobacter baumannii iv download by : skknchat@gmail.com Phụ lục 8: Kết phân tích Blast gen phoA Escherichia coli v download by : skknchat@gmail.com Phụ lục 9: Kết phân tích Blast gen mdh Klebsiella pneumoniae vi download by : skknchat@gmail.com Phụ lục 10: Kết phân tích Blast gen femA Staphylococcus aureus vii download by : skknchat@gmail.com STT Họ tên Khoa Mã (kí hiệu mẫu) 2300m 2297m 2369m 2079m 2309m 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 Đỗ Bá L Nguyễn Đức L Cao Thị V Đào Văn H Hà Phương A Nguyễn Thị Q Nguyễn Văn T Nguyễn Đức M Nguyễn Văn Q Lê Văn P Bùi Thanh T Nguyễn Xuân T Tạ Thị L Nguyễn Đình K Phạm Văn T Phạm Văn K Vũ Thị H Phạm văn T Nguyễn Thế Ng Tạ Thị L Lương Thị G Đỗ Văn H Cao Dụ T 24 25 26 27 Lưu Thị B Nguyễn Đức M Đỗ Văn H Nguyễn Viết C HSTC HSTC CTCH HSTC HSTC HSTC NTT HSTC HSTC C1 HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC CC Nội HSGM Thận TN CTCH HSTC HSTC HSTC (VT2) HSTC HSTC HSTC HSTC VT1 28 29 30 Phạm Trí D Lê Hữu P Nguyễn Viết C Độtquỵ HSTC HSTC 2303m 2250m 2348m 31 32 33 Lê Văn P Trần Trung H Nguyễn Xuân L HSTC 2249m 2222m 2326m HSTC 2272 2238m 2278m 2253m 2011m 2044m 2105m 2342m 2300m 2314m 2364m 2351m 2337m 2339m 2279m 2367m 2365m 2302m 2238m 2367m 2348 Kết cấy máu Âm tính A.baumannii Cầu khuẩn Gr (+) K pneumonia Âm tính Âm tính Trực khuẩn Gr(+) S.aureus Cầu khuẩn Gr (-) E.Coli Âm tính P.aeruginosa Trực khuẩn Gr(-) Trực khuẩn Gr(-) Nấm candida Knisie Cầu khuẩn Gr (+) Cầu khuẩn Gr (+) Nấm candida Knisie Cầu khuẩn Gr (+) Cầu khuẩn Gr (+) Citrobacter sp Cầu khuẩn Gr (+) Trực khuẩn Gr(-) Cầu khuẩn Gr (+) S.aureus Cầu khuẩn Gr (+) Streptococus Pneumonie Cầu khuẩn Gr (+) Nấm candida Knisie Streptococus Pneumonie E.Coli Cầu khuẩn Gr (+) Trực khuẩn Gr(-) viii download by : skknchat@gmail.com 34 35 36 37 38 Nguyễn Thị B Nguyễn Thị Q Trần Thị S Đào Văn H Nguyễn Viết C 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 Phạm Văn T Phạm Thanh K Doãn Thị K Lê Văn L Trần Thế P Đào Văn H Lương Thị G Lê Văn P Nguyễn Văn L Nguyễn.T.M.T Nguyễn văn V Lê Thị Ng Nguyễn Viết V Trần Văn Ng Vũ Xuân Nguyễn Văn V Dương văn T Bùi Thanh T Lê Tiến T Nguyễn Xuân T Nguyễn Thị D Hoàng Sinh L Nguyễn Văn L Lê Tiến T Nguyễn Viết T Vũ Văn Q Lê Tiến T Vũ Thị V Bùi Thanh T Lê Thị C HSTC HSTC TT HSTC HSTC (VT2) GMHS TTM HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC HSTC CTCH HSTC GMHS HSTC HSTC NTH HSTC CTCH GMHS HSTC HSTC HSTC GMHS 2262m 2396m 2067m 2247m 2351m 2391m 2218m 2261m 2326m 2067m 2380m 2249m 2159m 2331m 2158m 2136m 2221m 2277m 2056m 2158m 2030m 2011m 2085m 2043m 2109m 2046m 2330m 2086m 2091m 2096m 2085m 2062m 2011m 2069m Cầu khuẩn Gr (-) Âm tính Trực khuẩn Gr(-) Âm tính Streptococus Pneumonie Nấm candida Knisie Pseudomonas sp Cầu khuẩn Gr (+) Trực khuẩn Gr(-) Trực khuẩn Gr(+) Âm tính Citrobacter sp E.Coli E.Coli Cầu khuẩn Gr (+) E.Coli S.aureus K pneumonia E.Coli Tụ cầu da E.Coli Tụ Cầu da Âm tính S.aureus P.aeruginosa S.aureus Tụ cầu da Trực khuẩn Gr(-) S.aureus Tụ cầu da E.Coli S.aureus Tụ cầu da Âm tính S.aureus Phụ lục 11: Danh sách 68 bệnh nhân ix download by : skknchat@gmail.com ... - - Phạm Thị Thùy NGHIÊN CỨU XÂY DỰNG PHƢƠNG PHÁP MULTIPLEX PCR XÁC ĐỊNH MỘT SỐ TÁC NHÂN GÂY NHIỄM KHUẨN HUYẾT Chuyên ngành: Sinh học thực nghiệm Mã số: 60420114 LUẬN VĂN THẠC SĨ KHOA HỌC NGƯỜI... hành đề tài: ? ?Nghiên cứu xây dựng phƣơng pháp multiplex PCR xác định số tác nhân gây nhiễm khuẩn huyết” nhằm góp phần vào việc chẩn đốn điều trị cho bệnh nhân nghi ngờ mắc nhiễm khuẩn huyết Việt... điều trị mầm bệnh vi khuẩn khó khăn khả đề kháng với kháng sinh cao chúng [79] Do phương pháp xác định nhanh tác nhân gây nhiễm khuẩn quan trọng Phương pháp multiplex PCR phương pháp có khả đáp ứng