Nghiên cứu sinh học, sinh thái và nhân giống rong bắp sú (kappaphycus striatus) (f schmitz) doty ex p c silva, 1996

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO VIỆN HÀN LÂM KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ VIỆT NAM HỌC VIỆN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ VŨ THỊ MƠ NGHIÊN CỨU SINH HỌC, SINH THÁI VÀ NHÂN GIỐNG RONG BẮP SÚ – Kappaphycus striatus (F Schmitz) Doty ex P.C Silva, 1996 Chuyên ngành: THỦY SINH VẬT HỌC Mã số: 42 01 08 LUẬN ÁN TIẾN SĨ SINH HỌC NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: GS.TS DƯƠNG TẤN NHỰT GS.TS NGUYỄN NGỌC LÂM KHÁNH HÒA, 2022 LỜI CẢM ƠN Trong suốt trình học tập, nghiên cứu thực luận án tiến sĩ, nhận nhiều quan tâm, giúp đỡ tận tình từ q thầy cơ, anh chị, đồng nghiệp, bạn bè gia đình Đầu tiên, tơi xin bày tỏ lịng biết ơn sâu sắc đến GS.TS Dương Tấn Nhựt (Viện Nghiên cứu Khoa học Tây Nguyên) Thầy truyền cho nhiệt huyết, lòng say mê khoa học, phương pháp làm việc khoa học, hiệu hướng nghiên cứu Thầy tận tình hướng dẫn, cung cấp tài liệu, sách q giá, hết lịng sửa chữa sai sót báo chuyên đề luận án Thầy không tạo điều kiện thuận lợi để tơi hồn thành tốt luận án nghiên cứu mà cịn tích lũy cho tơi vốn kiến thức vốn sống mà khơng đâu có Tôi xin gửi lời cảm ơn đến GS.TS Nguyễn Ngọc Lâm (Viện Hải dương học) hỗ trợ giúp tơi hồn thành mơn học định hướng, dìu dắt giúp đỡ tơi hồn thành luận án Lịng biết ơn sâu sắc kính gửi tới GS.TS Reddy (Trung tâm muối Viện Nghiên cứu Hóa học Biển, Bhavnagar, Ấn Độ) người trao cho hội để tiếp cận lĩnh vực nghiên cứu nuôi cấy mô rong biển Tôi quên giúp đỡ TS Lê Kim Cương TS Hoàng Thanh Tùng (Viện Nghiên cứu Khoa học Tây Nguyên), TS Huỳnh Hoàng Như Khánh ThS Trần Mai Đức (Viện Nghiên cứu & Ứng dụng cơng nghệ Nha Trang) có hỗ trợ suốt trình thực luận án Lời cám ơn chân thành gửi đến Ban lãnh đạo Viện Nghiên cứu Khoa học Tây Nguyên, Viện Hải dương học Viện Nghiên cứu & Ứng dụng công nghệ Nha Trang tạo điều kiện thuận lợi để thực luận án Kính gởi lịng biết ơn chân thành đến quý thầy cô khoa Khoa học Công nghệ biển, Học Viện Khoa học Công Nghệ, VAST giúp đỡ tơi hồn thành mơn học trang bị cho kiến thức lĩnh vực thủy sinh vật học Tôi xin gửi lời cảm ơn đến cán phòng Sinh học phân tử chọn tạo giống trồng, Viện Nghiên cứu Khoa học Tây Nguyên, đặc biệt TS Vũ Thị Hiền, CN Hoàng Đắc Khải, TS Nguyễn Thị Phương Mai nghiên cứu sinh NCS Lê Thị Diễm, NCS Trương Hoài Phong, NCS Hà Thị Mỹ Ngân em sinh viên em Mai, em Nguyệt… hết lịng giúp đỡ động viên tơi hồn thành luận án Chân thành cảm ơn quý đồng nghiệp Viện Nghiên cứu Ứng dụng công nghệ Nha Trang, đặc biệt tập thể phòng Vật liệu Hữu từ Tài nguyên biển, suốt thời gian qua giúp đỡ, động viên tinh thần cho tơi hồn thành luận án Nhân dịp này, cho phép gửi lời cảm ơn đến thầy cô dành thời gian quý báu để đọc, tham gia hội đồng cấp với góp ý cụ thể, gợi ý bổ ích, giúp tơi hồn thiện tốt nội dung nghiên cứu luận án Cuối cùng, cơng trình luận án khơng hồn thành khơng có cảm thơng chia sẻ gia đình, người thân bạn bè sát cánh động viên chăm sóc gia đình thời gian tơi vắng nhà theo đuổi đường khoa học Khánh Hòa, tháng 01 năm 2022 Tác giả luận án Vũ Thị Mơ ii MỤC LỤC Trang LỜI CAM ĐOAN i MỤC LỤC ii DANH MỤC CHỮ VIẾT TẮT vi DANH MỤC BẢNG viii DANH MỤC HÌNH x DANH MỤC BIỂU ĐỒ xii MỞ ĐẦU CHƯƠNG TỔNG QUAN 1.1 Giới thiệu rong Bắp sú 1.1.1 Hệ thống phân loại 1.1.2 Một số đặc điểm sinh học sinh thái 1.1.2.1 Đặc điểm hình thái 1.1.2.2 Đặc điểm sinh trưởng phát triển 1.1.2.3 Các yếu tố ảnh hưởng đến sinh trưởng phát triển rong 1.1.2.4 Đặc điểm phân bố tự nhiên 1.1.2.5 Chu trình sinh trưởng phát triển 1.1.3 Giá trị rong Bắp sú 1.2 Nhân giống in vitro rong biển 11 1.2.1 Các giai đoạn nhân giống in vitro 11 1.2.1.1 Tạo nguồn vật liệu ban đầu 11 1.2.1.2 Cảm ứng mô sẹo 12 1.2.1.3 Tái sinh phơi vơ tính 13 1.2.1.4 Tái sinh 13 1.2.1.5 Giai đoạn thích nghi 14 1.2.2 Các yếu tố ảnh hưởng đến nhân giống in vitro rong biển 14 1.2.2.1 Nguồn mẫu cấy 14 1.2.2.2 Chất khử trùng 14 1.2.2.3 Môi trường dinh dưỡng 16 1.2.2.4 Nhiệt độ 17 iii 1.2.2.5 Ánh sáng 17 1.2.2.6 Chất tạo đông 18 1.2.2.7 Các chất điều hòa sinh trưởng thực vật 18 1.3 Tình hình nghiên cứu đặc điểm sinh học, sinh thái nhân giống rong biển giới 20 1.3.1 Tình hình nghiên cứu đặc điểm sinh học sinh thái 20 1.3.2 Tình hình nghiên cứu nhân giống rong biển 23 1.4 Tình hình nghiên cứu đặc điểm sinh học, sinh thái nhân giống rong biển Việt Nam 26 CHƯƠNG VẬT LIỆU, NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 2.1 Vật liệu, địa điểm thời gian nghiên cứu 30 2.1.1 Vật liệu 30 2.1.2 Địa điểm 30 2.1.3 Thời gian 31 2.2 Nội dung nghiên cứu 31 2.2.1 Đặc điểm sinh học sinh thái dòng rong Bắp sú 31 2.2.2 Nhân giống rong Bắp sú phương pháp nuôi cấy in vitro 32 2.3 Phương pháp nghiên cứu 32 2.3.1 Điều kiện nuôi cấy/trồng 32 2.3.1.1 Điều kiện in vitro 32 2.3.1.2 Điều kiện ex vitro 32 2.3.2 Nuôi trồng chăm sóc rong Bắp sú ngồi tự nhiên 33 2.3.3 Phương pháp bố trí thí nghiệm 34 2.3.3.1 Hiện trạng dòng rong Bắp sú nuôi trồng vịnh Vân Phong vịnh Cam Ranh 34 2.3.3.2 Đánh giá sinh trưởng, hàm lượng chất lượng carrageenan dịng rong thuộc lồi rong Bắp sú thu thập vịnh Vân Phong vịnh Cam Ranh 34 2.3.3.3 Tạo nguồn vật liệu 35 2.3.3.4 Cảm ứng mô sẹo nhân nhanh mô sẹo 36 2.3.3.5 Sự phát sinh phôi vô tính từ mơ sẹo 38 iv 2.3.3.6 Khả tái sinh thích nghi điều kiện sống tự nhiên 38 2.3.4 Phương pháp quan sát giải phẫu hình thái thực vật 41 2.3.5 Phương pháp ghi nhận số liệu 42 2.3.5.1 Các yếu môi trường 42 2.3.5.2 Xác định khối lượng tươi khô 42 2.3.5.3 Tốc độ tăng trưởng 42 2.3.5.4 Xác định chiều dài số nhánh/cây 43 2.3.5.5 Xác định hàm lượng chất lượng carrageenan 43 2.3.5.6 Các tiêu theo dõi 43 2.3.5.7 Một số cơng thức tính sau thu nhận số liệu 44 2.3.6 Xử lý số liệu 45 CHƯƠNG KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 3.1 Đặc điểm sinh học sinh thái rong Bắp sú 46 3.1.1 Hiện trạng dòng rong Bắp sú vịnh Vân Phong vịnh Cam Ranh 46 3.1.2 Sinh trưởng, hàm lượng chất lượng carrageenan dòng rong nâu Sacol nâu Payaka nuôi trồng vịnh Vân Phong vịnh Cam Ranh 47 3.1.2.1 Các yếu tố môi trường khu vực nuôi trồng 47 3.1.2.2 Sinh trưởng, hàm lượng chất lượng carrageenan dịng rong ni trồng 47 3.2 Nhân giống dịng rong nâu Sacol thuộc lồi rong Bắp sú 56 3.2.1 Tạo nguồn vật liệu 56 3.2.1.1 Thử nghiệm loại môi trường dinh dưỡng sinh trưởng rong giống điều kiện in vitro giai đoạn hóa 56 3.2.1.2 Khử trùng mẫu in vitro 58 3.2.2 Cảm ứng nhân nhanh mô sẹo 62 3.2.2.1 Ảnh hưởng số yếu tố cảm ứng mô sẹo 62 3.2.2.2 Ảnh hưởng loại môi trường dinh dưỡng NAA, BAP khả nhân nhanh mô sẹo 75 v 3.2.3 Sự phát sinh phơi vơ tính từ mơ sẹo 80 3.2.3.1 Ảnh hưởng độ rắn môi trường nuôi cấy khả phát sinh phơi vơ tính 80 3.2.3.2 Ảnh hưởng NAA BAP khả phát sinh phơi vơ tính 82 3.2.4 Khả tái sinh thích nghi điều kiện sống tự nhiên 88 3.2.4.1 Ảnh hưởng số yếu tố khả tái sinh hồn chỉnh từ phơi vơ tính 88 3.2.4.2 Giai đoạn thích nghi ngồi tự nhiên có nguồn gốc in vitro 102 3.2.4.3 Đánh giá hàm lượng chất lượng carrageenan dịng rong nâu Sacol có nguồn gốc in vitro 113 CHƯƠNG KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 4.1 Kết luận 117 4.2 Kiến nghị 117 DANH MỤC CƠNG TRÌNH CỦA TÁC GIẢ TÀI LIỆU THAM KHẢO PHỤ LỤC CHƯƠNG TỔNG QUAN 1.1 Giới thiệu rong Bắp sú 1.1.1 Hệ thống phân loại Trước đây, loài rong Bắp sú (Kappaphycus striatus) định danh Eucheuma striatum Schmitz xếp vào chi Eucheuma thuộc họ Solieriaceae, Gigartinales, lớp Eucheumatoideae, ngành Rhodophyta Đến năm 1989, dựa vào thành phần hóa học có chứa chủ yếu Kappa-carrageenan số loài chi Eucheuma, Doty tách chi mới, đặt tên Kappaphycus xếp loài rong Bắp sú vào chi mang tên K striatum [1] Năm 1996, Liao hiệu chỉnh thành K striatus [2] Hệ thống phân loại Giới : Plantae Ngành : Rhodophyta, Wettstein Lớp : Florideophyceae, Cronquist Bộ : Gigartinales, F Schmitz : Solieriaceae, J Agardh : Kappaphycus, Doty : K striatus (F Schmitz, 1895) Doty ex P.C Silva, 1996 Họ Chi Loài Tên tiếng việt: Rong Bắp sú [2] Rong Bắp sú có nhiều dịng khác nhau, có dịng ni trồng phổ biến giới là: Kab Kab sitangkai, Tawi – Tawi: Dòng rong Kab Kab Red Payaka Hingutanan Is., Bohol: Dòng rong đỏ Payaka Green Sacol Green Is., Roxas, Palawan: Dòng rong xanh Sacol Brown Sacol Tuluk sangay, zamboanga City: Dòng rong nâu Sacol Brown Payaka Hingutanan Is., Bohol: Dòng rong nâu Payaka Green Sacol Tando, Guimaras: Dòng rong xanh Sacol Trong số dòng rong trên, ba dòng rong (nâu Sacol, xanh Sacol nâu Payaka) có đặc tính sinh học vượt trội trồng phổ biến đảo Coco, Philippines Vì vậy, năm 2005, ba dòng di trồng vào vùng biển tỉnh miền Trung, Việt Nam (Hình 1.1) [3] Hình 1.1 Hình thái số dịng thuộc loài rong Bắp sú di trồng vào Việt Nam A: Dòng rong nâu Sacol B: Dòng rong nâu Payaka C: Dòng rong xanh Sacol 1.1.2 Một số đặc điểm sinh học sinh thái 1.1.2.1 Đặc điểm hình thái Tản rong Bắp sú có cấu tạo thân hình trụ đặc, thường tròn hay dẹp nhiều nhánh Thân dạng bò thẳng, cao khoảng 20 – 25 cm, đường kính thân nhánh – cm Phân nhánh dày – lần, theo kiểu đối nhau, mọc vịng, chạc hai khơng Nhánh chót ngắn, đỉnh nhánh chia chạc hai có đầu vuốt nhọn tù Khi sờ vào rong Bắp sú ta thấy nhánh rong dẻo mềm [4] Dòng rong nâu Sacol (Hình 1.1 A) có màu xanh nâu đến nâu, màu nâu dòng thay đổi nhẹ liên quan đến cường độ ánh sáng (CĐAS) Các nhánh rong trơn bóng, khoảng cách hai nhánh – cm, đỉnh nhánh chia chạc hai với đầu nhọn [4] Dịng rong nâu Payaka (Hình 1.1 B) có màu từ nâu nhạt đến nâu đậm nâu đỏ, màu nâu thay đổi đậm hay nhạt liên quan đến CĐAS vào mùa khác năm Rong thô sần sùi, bề mặt nhánh có nhiều u lồi, khoảng cách hai nhánh – cm Đỉnh nhánh cùn trịn [4] Dịng rong xanh Sacol (Hình 1.1 C) có đặc điểm phân nhánh tương tự dịng rong nâu Sacol có màu xanh hay xanh ngọc, màu xanh dòng thay đổi nhẹ liên quan đến CĐAS [4] 1.1.2.2 Đặc điểm sinh trưởng phát triển Rong Bắp sú loài hẹp muối, sinh trưởng phát triển tốt độ mặn từ 122 39 P.I Hargreaves, C.A Barcelos, A da Costa, N.J Pereira, Production of ethanol 3G from Kappaphycus alvarezii: Evaluation of different process strategies, Bioresour Technol., 2013, 134, 257–263 40 S Mabeau, J Fleurence, Seaweed in food products: Biochemical and nutritional aspects, Trends Food Sci Technol., 1993, (4), 103–107 41 M Ohno, D.B Largo, T Ikumoto, Growth rate, carrageenan yield and gel properties of cultured K-carrageenan producing red alga Kappaphycus alvarezzi (Doty) Doty in the subtropical waters of Shikoku, Japan, J Appl Phycol., 1994, (1), 1–5 42 H Bixler, H Porse, A decade of change in the seaweed hydrocolloids industry, J Appl Phycol., 2011, 23 (11), 321–335 43 C.R.K Reddy, B Jha, V Gupta, Developments in biotechnology of red algae, In: J Seckbach and D.J Chapman (editors), Red algae in the genomic age, cellular origin, life in extreme habitats and astrobiology, Springer S., 2010, 13, 305–339 44 M Polne-Fuller, The past, present and future of tissue culture and biotechnology of seaweeds, In: T Stadler, J Mollion, M.C Verdus, Y Karamanos, Morvan, D Christiaen (editors), Algae biotechnology, Elsevier, 1988, London, 111–118 45 L Fries, Axenic tissue cultures from the sporophytes of Laminaria digitata and Laminaria hyperborea (Phaeophyta), J Phycol., 1980, 16 (3), 475–477 46 C.R.K Reddy, N.S Yokoy, W.T.L Yong, M.L.J Luhan, A.Q Hurtado, Micropropagation of Kappaphycus and Eucheuma: Trends and prospects, In: A.Q Hurtado (editor), Tropical seaweed farming trends, problems and opportunities, developments in applied phycology, Springer Intl Pub., 2017, London, 91–110 47 Dương Tấn Nhựt, Công nghệ sinh học thực vật, tập Nhà xuất TP Hồ Chí Minh, 2007, Hồ Chí Minh, 1–129 48 C.R.K Reddy, G Raja Krishna Kumar, A.K Siddhanta, A Tewari, K Eswaran, In vitro somatic embryogenesis and regeneration of somatic embryos from pigmented callus of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty (Rhodophyta, Gigartinales), J Phycol., 2003, 39 (1), 610–616 49 E Sulistiani, D.T Soelistyowati, Alimuddin, S.A Yani, Callus induction and 123 filaments regeneration from callus of cottonii seaweed Kappaphycus alvarezii (Doty) collected from natuna islands, riau islands province, Biotropia (Bogor), 2012, 19 (2), 103–114 50 L Hayashi, N.S Yokoya, D.M Kikuchi, E.C Oliveira, Callus induction and micropropagation improved by colchicine and phytoregulators in Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Solieriaceae), J Appl Phycol., 2008, 20 (5), 653–659 51 C.J Dawes, E.W Koch, Branch, micropropagule and tissue culture of the red algae Eucheuma denticulatum and Kappaphycus alvarezii farmed in the Philippines, J Appl Phycol., 1991, (3), 247–257 52 C.S Zitta, T Rover, L Hayashi, Z.L Bouzon, Callus ontogeny of the Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales) brown tetrasporophyte strain, J Appl Phycol., 2013, 25 (2), 615–629 53 A.Q Hurtado, D.P Cheney, Propagule production of Eucheuma denticulatum (Burman) Collins et Harvey by tissue culture, Bot Mar., 2003, 46 (4), 338– 341 54 A.Q Hurtado, A.B Biter, Plantlet regeneration of Kappaphycus alvarezii var adik-adik by tissue culture, J Appl Phycol., 2007, 19 (6), 783–786 55 C.R.K Reddy, V Gupta, J Bhavanath, Developments in biotechnology of red algae, In: S Joseph, J.D David (editors), Red algae in the genomic age, Springer Nature, 2010, 13, 307–341 56 Garcia-Reina, R.R Romero, A Luque, Regeneration of thalliclones from Laurencia sp (Rhodophyta), Plant Cell Biotechnol., 1988, 18, 81–86 57 N.S Yokoya, S.M.P.B Guimarães, W Handro, Development of callus like structures and plant regeneration in thallus segments of Grateloupia filiformis Kützing (Rhodophyta), Hydrobiologia, 1993, 260 (1), 407–413 58 Dương Tấn Nhựt, Công nghệ sinh học thực vật, tập Nhà xuất Nông Nghiệp, 2011, Hồ Chí Minh, 1–531 59 B Haccius, Question of unicellular origin of non-zygotic embryos in callus cultures, Phytomorphology, 1978, 28 (1), 74–81 60 V Rafael, N Vásquez, A.M Espinoza, A.M Gatica, M.V Melara, Histological of somatic embryogenesis in rice (Oryza sativa cv 5272), Rev 124 Biol Trop, 2009, 57 (1), 141–150 61 L.C Chen, A.R.A Taylor, Medullary tissue culture of the red alga Chorzdrus crispus, Can J Bot, 1978, 56 (7), 883–886 62 S Zhang, C Liu, Y Jin, S Chi, X Tang, F Chen, X Fang, T Liu, Studies on the isolation and culture of protoplasts from Kappaphycus alvarezii, Acta Oceanol Sin., 2014, 33 (10), 114–123 63 W Thau, L Yong, S.H Ting, E Preparation, In vitro micropropagation of Eucheuma seaweeds, 2nd Int Conf Biotechnol Food Sci., 2011, 7, 58–60 64 L.M.E.G Xue-wu, Tissue and cell culture of New Zealand Pterocladia and Porphyra species, Hydrobiologia, 1987, 151–152, 147–154 65 N Saga, T Motomura, Y Sakai, Induction of callus from the marine brown alge Dictyosiphon foeniculaceus, Plant Cell Physiol., 1982, 23 (4), 723–30 66 B.P.M Cheney, A.H Luistro, Carrageenan analysis of tissue cultures and whole plants of Agardhiella subulata, Hydrobiologia, 1987, 151/152, 161–166 67 C.J Dawes, Irradiance acclimation of the cultured Philippine seaweeds, Kappaphycus alvarezii and Eucheuma denticulatum, Bot Mar., 1992, 35 (3), 189–195 68 P.M Bradley, D.P Cheney, N Saga, One step antibiotic disk method for obtaining axenic cultures of multicellular marine algae, Plant Cell Tissue Organ Cult., 1988, 12 (1), 55–60 69 A.B.G Lansdown, Silver in health care: Antimicrobial effects and safety in use, Curr Probl Dermatol, 2006, 33, 17–34 70 E Navarro, A Baun, R Behra, N.B Hartman, J Filser, A.J Miao, A Quiagg, P.H Santschi, L Sigg, Environmental behavior and ecotoxicity of engineered nano particles to algae, plants, and fungi, Ecotoxicology, 2008, 17 (5), 372–386 71 M Nasser, Z.V Sepideh, K Sajjad, Plant in vitro culture goes nano: Nanosilver mediated decontamination of ex vitro explants, J Nanomed Nanotechnol., 2013, (2), 161–164 72 Dương Tấn Nhựt, Dương Bảo Trinh, Đỗ Mạnh Cường, Hoàng Thanh Tùng, Nguyễn Phúc Huy, Vũ Thị Hiền, Vũ Quốc Luận, Lê Thị Thu Hiền, Nguyễn Hòa Châu, Khảo sát nano bạc làm chất khử trùng mẫu nhân giống vơ tính African violet (Saintpaulia ionantha H WendL.), Tạp chí Cơng 125 nghệ Sinh học, 2018, 16 (1), 87–97 73 Trần Hiếu, Hoàng Thanh Tùng, Cao Đăng Nguyên, Dương Tấn Nhựt, Tạo nguồn mẫu in vitro cho giống chanh dây tím (Passiflora edulis Sims) vàng (Passiflora edulis f Flavicarpa), Tạp chí Khoa học Đại học Huế, Khoa học Tự nhiên, 2018, 127 (1C), 71–84 74 Đỗ Mạnh Cường, Lê Thành Long, Hoàng Thanh Tùng, Vũ Quốc Luận, Vũ Thị Hiền, Nguyễn Thị Nhật Linh, Trương Thị Bích Phượng, Dương Tấn Nhựt, Vai trò nano bạc khử trùng, cảm ứng mẫu cấy ban đầu nâng cao tần suất hình thành tế bào đơn hoa salem (Limonium sinuatum (L.) Mill), Tạp chí Cơng nghệ Sinh học, 2018, (28), 55–61 75 Dương Tấn Nhựt, Đỗ Mạnh Cường, Hoàng Thanh Tùng, Hoàng Đắc Khải, Vũ Quốc Luận, Vũ Thị Hiền, Trương Thị Bích Phượng, Nâng cao tần suất phát sinh phơi vơ tính sâm Ngọc Linh (Panax vietnamensis Ha et Grushv.) thông qua khử trùng mẫu cấy nano bạc bổ sung nano bạc môi trường ni cấy, Tạp chí Cơng nghệ Sinh học, 2020, 18 (3), 517–527 76 R H Demling, L DeSanti, The role of silver in wound healing Part 1: Effects of silver on wound management, Wounds, 2001, 13, 4–15 77 L Provasoli, Media and prospects for the cultivation of marine algae, In: H Watanabe, A Hattori (editors), Culture and collection of algae, Japanese Soc Plant Physiol., 1968, Tokyo, 63–75 78 Suto, Skeletonema no tame no jinkou baiyoueki, Suisan Zoushoku, 1959, (2), 17–19 (in Japanese) 79 T Murashige, F Skoog, A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures, Physiol Plant, 1962, 15 (3), 473–497 80 Y.M Huang, S Maliakal, D Cheney, G.L Rorrer, Comparison of development, photo synthesis and growth of filament clump and regenerated microplantlet cultures of Agardhiella subulata (Rhodophyta, Gigartinales), J Phycol., 2002, 34 (5), 893–901 81 I Liao, H Su, J Lin, Larval foods for penaeid prawn, In: J.P Mc Vey (editor), Handbook of mariculture: Crustacean aquaculture, CRCPress, Inc Boca Raton, 1983, Florida, 29–60 82 R.R Robaina, The effects of the physical characteristics of the culture medium 126 of red seaweeds in tissue culture, Hydrobiology, 1990, 204/205, 137–142 83 M.K.M Ali, S.M Yasir, A.T Critchley, A.Q Hurtado, Impacts of Ascophyllum marine plant extract powder (AMPEP) on the growth, incidence of the endophyte Neosiphonia apiculata and associated carrageenan quality of three commercial cultivars of Kappaphycus in Sabah, Malaysia, J Appl Phycol., 2018, 30 (2), 1185–1195 84 M K.M Ali, M.Z.B Sani, K.K Hi, S.M Yasir, A.T Critchley, A.Q Hurtado, The comparative efficiency of a brown algal-derived biostimulant extract (AMPEP), with and without supplemented PGRs: The induction of direct, axis shoots as applied to the propagation of vegetative seedlings for the successful mass cultivation of three commercial cultivars of Kappaphycus in Sabah, Malaysia, J Appl Phycol., 2018, 30 (3), 1913–1919 85 N.S Yokoya, J.A West, A.E Luchi, Effects of plant growth regulators on callus formation, growth and regeneration in axenic tissue cultures of Gracilaria tenuistipitata and Gracilaria perplexa (Gracilariales, Rhodophyta), Phycol Res., 2004, 4, 244–254 86 H.Y Yeong, S.M Phang, C.R.K Reddy, N Khalid, Production of clonal planting materials from Gracilaria changii and Kappaphycus alvarezii through tissue culture and culture of G changii explants in airlift photobioreactors, J Appl Phycol., 2014, 26 (2), 729–746 87 R R Robaina, P Garcia-Jimenez, A Luque, The growth pattern and structure of callus from the red alga Laurencia sp (Rhodophyta, Ceramiales) compared to shoot regeneration, Bot Mar., 1992, 35 (4), 267–272 88 M Polne-Fuller, A Gibor, Calluses and callus-like growth in seaweeds: Induction and culture, Hydrobiologia, 1987, 151/152, 131–138 89 Z Sung, R Okimoto, Embryonic proteins in somatic embryos of carrot, Proc Natl Acad Sci., 1981, 78 (6), 3683–3687 90 J Moz, A.C Cahue-López, R Patiđo, D Robledo, Use of plant growth regulators in micropropagation of Kappaphycus alvarezii (Doty) in airlift bioreactors, J Appl Phycol., 2006, 18 (2), 209–218 91 W.T.L Yong, S.H Ting, Y.S Yong, V.Y Thien, S.H Wong, W.L Chin, K.F Rodrgues, A Anton, Optimization of culture conditions for the direct 127 regeneration of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Solieriaceae), J Appl Phycol., 2014, 26 (3), 1597–606 92 K.R Tibubos, A.Q Hurtado, T.C Alan, Direct formation of axes in new plantlets of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty, as influenced by the use of AMPEP K+, spindle inhibitors, and plant growth hormones, J Appl Phycol., 2017, 29 (5), 2345–2349 93 T Fujimura, A Komamine, Mode of action of 2,4-D and zeatin on somatic embryogenesis in a carrot cell suspension culture, J Plant physiol., 1980, 99 (1), 1–8 94 G.S Gerang, M Ohno, Growth rates of Eucheuma denticulatum (Burman) Collins et Harvey and Kappaphycus striatum (Schmitz) Doty under different conditions in warm waters of Southern Japan, J Appl Phycol., 1997, (5), 413–415 95 M.S.P Mtolera, Effect of seagrass cover and mineral content on Kappaphycus and Eucheuma productivity in Zanzibar, West Indian Ocean J Mar Sci., 2003, (2), 163–170 96 M Kasim, A Mustafa, I Male, M.W Jalil, New methods on cultivation of Eucheuma denticulatum and Kappahycus alvarezii in Indonesia, J Fish Aquat Sci., 2017, 12 (5), 207–217 97 R.P Reis, R.R das Chagas Pereira, H.G de Góes, The efficiency of tubular netting method of cultivation for Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales) on the southeastern Brazilian coast, J Appl Phycol., 2014, 27 (1), 421–426 98 M Kasim, A Mustafa, T Munier, The growth rate of seaweed (Eucheuma denticulatum) cultivated in longline and floating cage, AACL Bioflux, 2016, (2), 291–299 99 M Kasim, I.J Effendy, E Ishak, Influence of initial weight of seeds in variation of growth and carrageenan content of Eucheuma spinosum, 2018, 11 (4), 1155–1163 100 I.K Martina, S.W Lee, C.O Ibrahim, A.S Roselina, Comparison of Kappaphycus striatus (F Schmitz) Doty Ex P.C Silva (Rhodophyta, Soliariciaceae) performance in Grassy, sandy and rocky seabeds at Pulau 128 kerindingan, Semporna, Sabah, Int J Agric For Plant., 2016, (6), 39–44 101 M.R.J Luhan, S.S Avañcena, J.P Mateo, Effect of short term immersion of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty in high nitrogen on the growth, nitrogen assimilation, carrageenan quality, and occurrence of “ice-ice” disease, J Appl Phycol., 2015, 27 (2), 917–922 102 L Hayashi, E.C Oliveira, G Bleicher-Lhonneur, P Boulenguer, R.V Seckendorff, V.T Shimoda, A Leflamand, A Vallée, A.T Critchley, The effects of selected cultivation conditions on the carrageenan characteristics of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Solieriaceae) in Ubatuba bay, São Paulo, Brazil, J Appl Phycol., 2007, 19 (5), 505–511 103 L Hayashi, G.S.M Faria, B.G Nunes, C.S Zitta, L.A Scariot, T Rover, M.R.L Felix, Z.L Bouzon, Effects of salinity on the growth rate, carrageenan yield, and cellular structure of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales) cultured in vitro, J Appl Phycol., 2011, 23 (3), 439–447 104 H.G de Góes, R.P Reis, Temporal variation of the growth, carrageenan yield and quality of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales) cultivated at Sepetiba bay, southeastern Brazilian coast, J Appl Phycol., 2012, 24 (2), 173– 180 105 M.S Bindu, Empowerment of coastal communities in cultivation and processing of Kappaphycus alvarezii a case study at Vizhinjam village, Kerala, India, J Appl Phycol., 2011, 23 (2), 157–163 106 C Periyasamy, P Anantharaman, P.V.S Rao, Experimental farming of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty with income estimates at different sites in the Mandapam region, Palk bay, southeast coast of India, J Appl Phycol., 2015, 27 (2), 935–944 107 R.R Loureiro, R.P Reis, F.D Berrogain, A.T Critchley, Extract powder from the brown alga Ascophyllum nodosum (Linnaeus) Le Jolis (AMPEP): A “vaccine-like” effect on Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty ex P.C Silva, J Appl Phycol., 2012, 24 (3), 427–432 108 R.R Loureiro, R.P Reis, F.D Berrogain, A.T Critchley, Effects of a commercial extract of the brown alga Ascophyllum nodosum on the biomass production of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty ex P C Silva and its 129 carrageenan yield and gel quality cultivated in Brazil, J Appl Phycol., 2014, 26 (2), 763–768 109 R.G Marroig, R.R Loureiro, R.P Reis, The effect of ascophyllum nodosum (Ochrophyta) extract powder on the epibiosis of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta) commercially cultivated on floating rafts, J Appl Phycol., 2016, 28 (4), 2471–2477 110 I.A.G Borlongan, K.R Tibubos, D.A.T Yunque, A.Q Hurtado, A.T Critchley, Impact of AMPEP on the growth and occurrence of epiphytic Neosiphonia infestation on two varieties of commercially cultivated Kappaphycus alvarezii grown at different depths in the Philippines, J Appl Phycol., 2011, 23 (3), 615–621 111 W.T.L Yong, J.Y.Y Chin, V.Y Thien, S Yasir, Evaluation of growth rate and semi-refined carrageenan properties of tissue cultured Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales), Phycol Res., 2014, 62 (4), 316–321 112 Budiyanto, M Kasim, S.Y Abadi, Growth and carrageenan content of local and tissue culture seed of Kappaphycus alvarezii cultivated in floating cage, AACL Bioflux, 2019, 12 (1), 167–178 113 H.Z Wahidatul, S Shapawi, Y Rossita, Growth and biochemical composition of Kappaphycus (Rhodophyta) in customized tank culture system, J Appl Phycol., 2016, 28 (4), 2453–2458 114 A Hurtado, A Critchley, A Trespoey, G Bleicher-Lhonneur, Growth and carrageenan quality of Kappaphycus striatum var Sacol grown at different stocking densities, duration of culture and depth, J Appl Phycol., 2008, 20 (5), 551–555 115 M Ali, J.V.H Wong, J Sulaiman, J.L Juli, S Yasir, Improvement of growth and mass of Kappaphycus striatum var Sacol by using plant density study at Selakan island in Semporna Malaysia, Int Conf Biol Chem Environ Sci, 2014, Penang, 58–63 116 R.J.F Robles, Effects of different concentrations of ammonium phosphate on the yield and quality of carrageenan, Kappaphycus striatus (Schmitz) Doty ex Silva, J Binet, 2020, 01, 1–9 117 C.J Dawes, A.O Lluisma, G.C Trono, Laboratory and field growth studies of 130 commercial strains of Eucheuma denticulatum and Kappaphycus alvarezii in the Philippines, J Appl Phycol., 1994, (1), 21–24 118 S R.H Mulyaningrum, H.S Suwoyo, M Paena, B.R Tampangallo, Epiphyte identification on Kappaphycus alvarezii seaweed farming area in arungkeke waters, Jeneponto and the effect on carrageenan quality, ILMU Kelaut Indones J Mar Sci., 2019, 24 (3), 146–152 119 A.Q Hurtado, A.T Critchley, A Trespoey, G.B Lhonneur, Occurrence of Polysiphonia epiphytes in Kappaphycus farms at Calaguas Is, Camarines Norte, Phillippines, J Appl Phycol., 2006, 18 (3–5), 301–306 120 C.S Vairappan, C.S Chung, A.Q Hurtado, F.E Soya, G.B Lhonneur, A Critchley, Distribution and symptoms of epiphyte infection in major carrageenophyte producing farms, J Appl Phycol., 2008, 20 (5), 477–483 121 F.E Msuya, Seaweed farming as a potential cluster, In: Proc innovation system and clusters programme in Tanzania (ISCP-Tz): Cluster initiative launching workshop, Dar es Salaam, 2006, Tanzania, 102–113 122 G Tsiresy, J.P Eeckhaut, T Lavitra, P Dubois, G LepointIgor, Phenology of farmed seaweed Kappaphycus alvarezii infestation by the parasitic epiphyte Polysiphonia sp in Madagascar, J Appl Phycol., 2016, 28 (5), 2903–2914 123 A Azizi, N.M Hanafi, M.N Basiran, C.H Teo, Evaluation of disease resistance and tolerance to elevated temperature stress of the selected tissue cultured Kappaphycus alvarezii Doty 1985 under optimized laboratory conditions, Biotech, 2018, (8), 321–330 124 C.J Dawes, G.C Trono, A.O Lluisma, Clonal propagation of Eucheuma denticulatum and Kappaphycus alvarezii for Philippine seaweed farms, Hydrobiologia, 1993, 260 (1), 379–383 125 R.C Salvador, A.E Serrano, Isolation of protoplasts from tissue fragments of Philippine cultivars of Kappaphycus alvarezii (Solieriaceae, Rhodophyta), J Appl Phycol., 2005, 17 (1), 15–22 126 F.A.S Neves, C Simioni, Z.L Bouzon, L Hayashi, Effects of spindle inhibitors and phytoregulators on the micropropagation of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales), J Appl Phycol., 2015, 27 (1), 437–445 127 Y.S Yong, W.T.L Yong, V.Y Thien, S.E Ng, A Anton, S Yassir, 131 Acclimatization of micropropagated Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty ex Silva (Rhodophyta, Solieriaceae) in outdoor nursery system, J Appl Phycol., 2015, 27 (1), 413–419 128 R.C Salvador, A.E.J Serrano, Germination and growth of somatic cells of Philippine strains of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty (Solieriaceae, Rhodophyta), ELBA Bioflux, 2014, (11), 36–45 129 K.R Tibubos, A.Q Hurtado, A.T Critchley, Direct formation of axes in new plantlets of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty, as influenced by the use of AMPEP K+, spindle inhibitors, and plant growth hormones, J Appl Phycol., 2017 130 M.K.M Ali, A.T Critchley, A.Q Hurtado, Micropropagation and sea based nursery growth of selected commercial Kappaphycus species in Penang, Malaysia, J Appl Phycol., 2020, 32 (2), 1301–1309 131 M.R.J Luhan, J.P Mateo, Clonal production of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty in vitro, J Appl Phycol., 2017, 29 (5), 2339–2344 132 A.Q Hurtado, D.A Yunque, K Tibubos, A.T Critchley, Use of acadian marine plant extract powder from Ascophyllum nodosum in tissue culture of Kappaphycus varieties, J Appl Phycol., 2009, 21 (6), 633–639 133 D Sahoo, M Ohno, M Hiraoka, Laboratory, field and deep seawater culture of Eucheuma serra a high lectin yielding red alga, Algae, 2002, 17 (2), 127– 133 134 M.R.J Luhan, H Sollesta, Growing the reproductive cells (carpospores) of the seaweed, Kappaphycus striatum, in the laboratory until outplanting in the field and maturation to tetrasporophyte, J Appl Phycol., 2010, 22 (5), 579–585 135 Trần Mai Đức, Huỳnh Quang Năng, Trần Kha, Trần Quang Thái, Kết nghiên cứu di trồng loài Kappaphycus striatum (Schimitz) Doty vào vùng biển Việt Nam, Báo cáo hội nghị khoa học biển Đông 2007, 2007, Nha Trang, 1–9 136 L.D Hung, K Hori, H.Q Nang, T Kha, L.T Hoa, Seasonal changes in growth rate, carrageenan yield and lectin content in the red alga Kappaphycus alvarezii cultivated in Camranh bay, Vietnam, J Appl Phycol., 2009, 21 (3), 265–272 137 Lê Như Hậu, Võ Duy Triết, Nguyễn Bách Khoa, Lâm Thu Ngân, Tiềm 132 rong biển làm nguyên liệu sản xuất ethanol nhiên liệu Việt Nam, Báo cáo tổng kết đề tài, Viện Nghiên cứu Ứng dụng công nghệ Nha Trang, 2010 138 Đặng Diễm Hồng, Nghiên cứu sinh học kỹ thuật nuôi trồng số loài tảo biển quần đảo Trường Sa, Báo cáo tổng kết đề tài, Viện Công nghệ Sinh học – Trung tâm Khoa học Tự nhiên Công nghệ Quốc gia, 2002 139 Huỳnh Hoàng Như Khánh, Nghiên cứu thử nghiệm phương pháp nhân giống rong sụn (K alvarezii) (Doty) Doty kĩ thuật Công nghệ sinh học, Báo cáo tổng kết đề tài nhánh, Viện Nghiên cứu Ứng dụng công nghệ Nha Trang, 2006 140 K.T An, V.H Cam, Callus induction of Kappaphycus alvarezii collected from Khanh Hoa province by tissue culture, J Fish Sci Technol., 2015, special, 44– 49 141 Phạm Thị Mát, Đào Duy Thu, Nguyễn Văn Nguyên, Nghiên cứu nhân giống rong sụn (Kappaphycus alvarezii) phương pháp nuôi cấy mô, Nông nghiệp Phát triển nông thôn, 2019, 12, 124–131 142 Phạm Thị Mát, Đào Duy Thu, Nguyễn Thị Duyệt, Nguyễn Văn Nguyên, Nghiên cứu tái sinh tản rong sụn Kappaphycus alvarezii, Doty từ mô sẹo phương pháp tạo phôi, Nông nghiệp Phát triển nông thôn, 2016, 11 (Đặc biệt), 205–211 143 Nguyễn Thị Duyệt, Phạm Thị Mát, Đào Duy Thu, Nguyễn Văn Nguyên, Nghiên cứu xác định tác nhân biện pháp xử lý nhiễm nuôi cấy mô rong sụn Kappaphycus alvarezii, Doty, Nông nghiệp Phát triển nông thôn, 2016, 11, 199–211 144 A.Q Hurtado, A.T Critchley, A Trespoey, G Bleicher-Lhonneur, Growth and carrageenan quality of Kappaphycus striatum var Sacol grown at different stocking densities, duration of culture and depth, J Appl Phycol., 2008, 20 (5), 551–555 145 https://giovanni.gsfc.nasa.gov/ 146 C.E.P Penniman, A.C Mathieson, Reproductive phenology and growth of Gracilaria tikvahiae McLachlan (Gigartinales, Rhodophyta) in the Great bay Estuary, New Hampshire, Bot Mar, 1986, 29 (2), 147–154 147 S Istinii, M Ohno, H Kusunose, Methods of analysis for agar, carrageenan 133 and alginate in seaweed, Bull Mar Sci Fish Ko, 1994, 14, 49–55 148 N Stanley, Production, properties and uses of carrageenan, In: P Leonel (editor), Production and utilization of products from commercial seaweeds, FAO Fish Tech., 1987, Canada, 116–146 149 E.P Glenn, M.S Doty, Growth of the seaweed Kappaphycus alvarezii, K striatus and Eucheuma denticulatum as affected by environment in Hawaii, Aquaculture, 1990, 84 (3–4), 245–255 150 D.D Hong, H.M Hien, N.T.H Thu, D.T.T Hang, H.Q Nang, Establish cultivation by mixing crops of different strains of Eucheuma and Kappaphycus species, J Mar Biosci Biotechnol., 2010, (1), 24–30 151 Trần Kha, Võ Duy Triết, Huỳnh Quang Năng, Lê Như Hậu, Thử nghiệm ni trồng hai lồi rong Eucheuma denticulatum (Burman) Collins et Harvey Kappaphycus striatum, (Schmitz) Doty vùng biển tỉnh Khánh Hòa, Việt Nam, Tuyển tập Báo cáo Hội nghị Quốc gia “Biển Đông-2007,” 2007, Nha Trang, 343–352 152 S.C Agardh, S Nor, S Muhamad, A Pick, K Ling, C Wong, Effect of plant growth regulators on direct regeneration and callus induction from Sargassum polycystum C Agardh, J Appl Phycol., 2019, 30 (6), 3299–3310 153 G.R Kumar, C.R.K Reddy, S Thiruppathi, S Dipakkore, K Eswaran, P.V.S Rao, B Jha, Tissue culture and regeneration of thallus from callus of Gelidiella acerosa (Gelidiaies, Rhodophyta), Phycologia, 2004, 43, 596–602 154 M Aguirre‐Lipperheide, F.J Estrada‐Rodríyuez, L V Evans, Facts, problems, and needs in seaweed tissue culture: An appraisal, J Phycol., 1995, 31 (5), 677–688 155 P Baweja, D Sahoo, P García-Jiménez, R.R Robaina, Review: Seaweed tissue culture as applied to biotechnology: Problems, achievements and prospects, Phycol Res., 2009, 57 (1), 45–58 156 W Huang, Y Fujita, Callus induction and thallus regeneration of the red alga Meristotheca papulosa (Rhodophyta, Gigartinales), Bot Mar., 1997, 40 (1), 55–61 157 Vũ Thị Mơ, C.R.K Reddy, Khảo sát quy trình khử trùng mẫu, ảnh hưởng cường độ ánh sáng, nồng độ môi trường agar lên hình thành mơ sẹo rong 134 Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty (Rhodophyta) điều kiện in vitro, 2016, 14 (3), 515–522 158 F Davidson, The effect of auxins on the growth of marine algae, J Bot., 1950, 37, 501–510 159 P.M Bradley, D.P Cheney, Some effects of plant growth regulators on tissue cultures of the marine red alga Agardhiella subulata (Gigartinales, Rhodophyta), Hydrobiologia, 1990, 204–205 (1), 353–360 160 C.J Dawes, E.W Koch, Branch, micropropagule and tissue culture of the red algae Eucheuma denticulatum and Kappaphycus alvarezii farmed in the Philippines, J Appl Phycol., 1991, (3), 247–257 161 F Kaczyna, R Megnet, The effects of glycerol and plant growth regulators on Gracilaria verrucosa (Gigartinales, Rhodophyceae), Hydrobiologia, 1993, 268, 57–64 162 G Collantes, C Melo, A Candia, Micropropagation by explants of Gracilaria chilensis Bird, McLachlan and Oliveira, J Appl Phycol., 2004, 16 (3), 203– 213 163 G.R Kumar, C.R.K Reddy, B Jha, Callus induction and thallus regeneration from callus of phycocolloid yielding seaweeds from the Indian coast, J Appl Phycol., 2007, 19 (1), 15–25 164 E.F George, Plant propagation by tissue culture, Exegetics Ltd, 1993, England, 1–573 165 N.S Yokoya, W Handro, Effects of plant growth regulators and culture medium on morphogenesis of Solieria filiformis (Rhodophyta) cultured in vitro, J Appl Phycol., 2002, 14, 97–102 166 Y.S Yong, W.T.L Yong, S.E Ng, A Anton, S Yassir, Chemical composition of farmed and micropropagated Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales), a commercially important seaweed in Malaysia, J Appl Phycol., 2015, 27 (3), 1271–1275 167 P Baweja, D Sahoo, Regeneration studies in Grateloupia filicina (J.V Lamouroux) C Agardh an important carrageenophyte and edible seaweed, Algae, 2009, 24 (3), 163–168 168 I.S Pinto, E Murano, S Coelho, A Felga, R Pereira, The effect of light on 135 growth and agar content of Gelidium pulchellum (Gelidiaceae, Rhodophyta) in culture, Hydrobiologia, 1999, 398/399, 329–338 169 Y Huang, G.L Rorrer, Cultivation of microplantlets derived from the marine red alga Agardhiella subulata in a stirred tank photobioreactor, Biotech Prog., 2003, 19 (2), 418–427 170 E.J.D Paula, C Erbert, R.T.L Pereira, Growth rate of the carrageenophyte Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales) in vitro, Phycol Res., 2001, 49 (3), 155–161 171 W Wang, C.Q Lan, M Horsman, Closed photobioreactors for production of microalgal biomasses, Biotech Adv., 2012, 30 (4), 904–912 172 R.V Raikar, M Iima, Y Fujita, Effect of temperature, salinity and light intensity on the growth of Gracilaria spp (Gracilariales, Rhodophyta) from Japan, Malaysia and India, Indian J Mar Sci., 2001, 30 (2), 98–104 173 D.B Largo, K Fukami, T Nishijima, Occasional pathogenic bacteria promoting ice-ice disease in the carrageenan producing red algae Kappaphycus alvarezii and Eucheuma denticulatum (Solieriaceae, Gigartinales, Rhodophyta), J Appl Phycol., 1995, (6), 545–554 174 N.S Yokoya, E.C de Oliveira, Effects of salinity on the growth rate, morphology and water content of some Brazilian red algae of economic importance, Cienc Mar., 1992, 18 (2), 49–64 175 M Kumar, P Kumari, V Gupta, C.R.K Reddy, B Jha, Biochemical responses of red alga Gracilaria corticata (Gracilariales, Rhodophyta) to salinity induced oxidative stress, J Exp Mar Bio Ecol., 2010, 391 (1), 27–34 PHỤ LỤC ... 2.2 Nội dung nghiên c? ??u 31 2.2.1 Đ? ?c điểm sinh h? ?c sinh thái dòng rong B? ?p sú 31 2.2.2 Nhân giống rong B? ?p sú phương ph? ?p nuôi c? ??y in vitro 32 2.3 Phương ph? ?p nghiên c? ??u ... hình nghiên c? ??u đ? ?c điểm sinh h? ?c sinh thái Trên giới, c? ? nhiều nghiên c? ??u đ? ?c điểm sinh h? ?c sinh thái lồi rong c? ? chứa carrageenan Tuy nhiên, hầu hết t? ?c giả t? ?p trung nghiên c? ??u rong Sụn, số c? ?ng... 1.3.1 Tình hình nghiên c? ??u đ? ?c điểm sinh h? ?c sinh thái 20 1.3.2 Tình hình nghiên c? ??u nhân giống rong biển 23 1.4 Tình hình nghiên c? ??u đ? ?c điểm sinh h? ?c, sinh thái nhân giống rong biển Việt